Method Article
* Эти авторы внесли равный вклад
В данной статье мы представляем протокол, в котором подробно описывается хирургическая модель получения почки в доклинической модели свиньи для последующей машинной перфузии или трансплантации.
Машинная перфузия превратилась в жизнеспособную стратегию для оценки, мониторинга, лечения и оптимизации органов ex vivo , а также для продления срока хранения. Модели крупных животных имели первостепенное значение для развития и оптимизации этих технологий. Тем не менее, для обеспечения качества трансплантата и воспроизводимости данных следует придерживаться стандартизированных и клинически переводимых хирургических методов заготовки органов и тканей. Таким образом, здесь мы описываем оптимизированный протокол закупки почек в доклинической модели свиней. Восстановление почек проводится с использованием свиней смешанной породы (йоркширский кросс/микс). Вкратце, после стерильной дезинфекции и драпировки операционного поля, выполняется полный разрез по средней линии для обеспечения оптимального доступа к обеим почкам. Мочеточник, почечная вена и артерия рассекаются до тех пор, пока они не выйдут из нижней полой вены и аорты соответственно. После полной почечной диссекции мочеточник перевязывают и разрезают дистально. Затем донорское животное полностью гепаринизируется с концентрацией 100 МЕ на кг/массу тела. Далее почечная артерия пережимается вплотную к аорте, а почечная вена пережимается вплотную к полой вене с помощью сосудистого зажима Сатинского. Затем почечный трансплантат резецируется, а почечная артерия немедленно канюлируется на заднем столе. Затем почка будет промыта ледяным консервационным раствором и храниться на льду до аппаратной перфузии или трансплантации. Наконец, культя почечной артерии перевязывается шелковой лигатурой 2-0, а полая вена закрывается полипропиленовым швом 6-0. Этот метод восстанавливает почки и моделирует либо живого (одна почка), либо мертвого (две почки) донора. Восстановление одной почки дает преимущество для проведения последующей аутотрансплантации. В модели умершего донора кровь может быть собрана до эвтаназии путем введения игл для мешка с кровью непосредственно в аорту, тем самым обескровливая животное и обеспечивая кровь для перфузии ex vivo с помощью аппарата.
Трансплантация почки является оптимальным методом лечения терминальной стадии почечной недостаточности (ТХПН), обеспечивая улучшение качества жизни и долгосрочные результаты по сравнению с диализом1. Несмотря на достижения в области сохранения органов, десятки людей умирают каждый день от ТХПН, находясь в списке ожидания на пересадку почки. Аппаратная перфузия — это растущая область, которая увеличивает время хранения, позволяя расширить донорские сети и более эффективно распределять органы. Эта технология также позволяет осуществлять мониторинг и оптимизацию органов ex vivo, тем самым сводя к минимуму последствия ишемии-реперфузионного повреждения (ИРИ). По сравнению со статическим холодным хранением (SCS), было показано, что машинная перфузия значительно снижает частоту задержки функции трансплантата 3,4. Аппаратная перфузия также продемонстрировала оживление маргинальных графтов, которые в противном случае не соответствовали бы критериям для трансплантации5. Несмотря на технический прогресс, наиболее распространенным методом консервации остается СКС на льду. Дальнейшие доклинические эксперименты и данные могут помочь сделать машинную перфузию основой сохранения почек.
Модель трансплантации почки на свиньях хорошо известна и является неотъемлемой частью развития технологии сохранения почек, особенно машинной перфузии. В отличие от однолобулярных почек грызунов, почки свиньи и человека являются многодольчатыми, схожими по размеру и имеют аналогичную артериальную, венозную и мочевую анатомию 6,7. Таким образом, свиная почка способствует прямому переносу в клинические условия, особенно с точки зрения медицинских устройств и лекарственной терапии. Кроме того, почки свиньи демонстрируют такую же патофизиологиюIRI, как и почки человека8, что делает их идеальными для исследований по сохранению почек.
Для обеспечения качества трансплантата и воспроизводимости данных необходимо применять стандартизированные и клинически переводимые хирургические методы заготовки органов и тканей. Таким образом, здесь мы описываем оптимизированный протокол закупки почек в доклинической модели свиней. Этот протокол позволяет восстановить почки и имитирует состояние живого (одна почка) или мертвого (две почки) донора. Восстановление одной почки дает преимущество в проведении последующей аутотрансплантации. В модели восстановления двойной почки забор крови перед эвтаназией возможен путем введения игл из мешка с кровью непосредственно в аорту, тем самым обескровливая животное и обеспечивая кровь для перфузии ex vivo аппаратом.
Все описанные процедуры были одобрены Комитетом по институциональному уходу и использованию Университета Джона Хопкинса, лицензированным Министерством сельского хозяйства США (USDA), застрахованным Управлением по благополучию лабораторных животных (OLAW) и аккредитованным Ассоциацией по оценке и аккредитации ухода за лабораторными животными (AAALAC). Содержание животных осуществлялось в соответствии с Законом о защите животных Министерства сельского хозяйства США, Руководством Национальных институтов здравоохранения по уходу за лабораторными животными и их использованием, а также Политикой Службы общественного здравоохранения США по гуманному уходу за лабораторными животными и их использованию.
1. Животные и жилье
2. Предоперационная процедура и анестезия
3. Процедура забора почки
4. Процедура забора крови
Наша исследовательская группа имеет обширный опыт, охватывающий почти 15 лет, с моделями свиней как трансплантации солидных органов, так и васкуляризированной композитной аллотрансплантации 9,10,11,12,13,14,15,16,17 . Здесь мы описываем результаты наших экспериментов по восстановлению почек свиньи (n = 139). Мы использовали приобретенные почки для трансплантации, аппаратной перфузии или первичной клеточной культуры и до сих пор не испытали никаких осложнений при использовании этой модели хирургической процедуры (Рисунок 1). Мы определяем успешное извлечение почки как хирургическое вмешательство без технических сбоев, а также без неблагоприятных исходов, связанных с анатомией или хирургической техникой. Примеры грубого внешнего вида почечного трансплантата показаны на рисунке 2, представляя успешную реперфузию почки с помощью аппаратной перфузии или трансплантации.
В зависимости от уровня подготовки и знакомства лаборатории с моделями свиней, мы рекомендуем провести как минимум один-три предварительных эксперимента со всем персоналом, участвующим в процедурах. В текущей серии исследований среднее общее время процедуры - от разреза по средней линии до эвтаназии - составило 88 минут (Таблица 1). Среднее время от разреза по средней линии до извлечения обоих почечных трансплантатов составило 73 мин. В дополнение к поддержке со стороны ветеринарного персонала, включая ветеринара и одного или двух ветеринарных техников, требуется как минимум три дополнительных хирурга и лабораторного персонала. В зависимости от уровня опыта, может быть рекомендован еще один ассистент хирурга и один или два дополнительных вспомогательных сотрудника, включая докторантов или лаборантов, для обеспечения эффективности забора трансплантата, промывания органов и забора крови с целью минимизации времени теплой ишемии и риска свертывания крови во время забора крови.
Как и у человека, в почках свиньи возможны анатомические вариации (рис. 3, табл. 2). Стандартная анатомия - одна почечная артерия и одна почечная вена - наблюдалась в 64% почек. Наиболее распространенными вариациями были одна артерия и две вены (26%), две артерии и одна вена (5%), одна артерия и три вены (4%), а также две артерии и две вены (1%). Примерно половина (46%) свиней имели типичную двустороннюю анатомию. Атипичная анатомия наблюдалась как односторонне (22% левых атипичных, 14% правых атипичных), так и двусторонне (19%). При выборе почки для трансплантации мы рекомендуем избегать любой атипичной анатомии. Если обе почки имеют две вены, выберите почку с более длинными венами и восстановите на задней столе до одного просвета перед трансплантацией. При выборе почки для аппаратной перфузии венозная анатомия менее важна, если в аппарате используется объединенный венозный дренаж. Мы рекомендуем избегать анатомии двух артерий при перфузии с одним насосом, так как разница в сопротивлении между артериями приведет к неравномерному кровообращению.
Рисунок 1: Краткая информация об успешном извлечении почек для трансплантации, машинной перфузии и экспериментов с первичными клеточными культурами. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этого рисунка.
Рисунок 2: Примеры грубого внешнего вида почечного трансплантата. (A) Нативная правая почка in situ. (Б) Почковый трансплантат после промывания ледяным консервирующим раствором. (В) Почечный трансплантат после аппаратной реперфузии. (D) Почечный трансплантат после трансплантации и реперфузии. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Рисунок 3: Вариации анатомии почек свиньи. (А,Б) Типичная анатомия с одной почечной артерией и одной почечной веной на каждую почку. (В) Атипичная анатомия с одной почечной артерией и двумя почечными венами. (D) Атипичная анатомия с одной почечной артерией и тремя почечными венами. (E) Атипичная анатомия с двумя почечными артериями и одной почечной веной. (F) Атипичная анатомия с двумя почечными артериями и двумя почечными венами. Используемые сокращения: РК - правая почка; IVC - нижняя полая вена; АО- аорта; LK- левая почка. Пожалуйста, нажмите здесь, чтобы просмотреть увеличенную версию этой цифры.
Экспериментальная задача или шаг | Среднее время (мин) | Хирург | Хирургическая помощь | Ветеринар | Ветеринарный техник | Исследователь | Общая численность персонала |
Предоперационная подготовка | 60 | 1 | 2 | 1 | 4 | ||
Операция по извлечению трансплантата (одна почка) | 41 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 5 |
Операция по извлечению трансплантата (обе почки) | 73 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 5 |
Промывание органов (на почку) | 6 | 1 | 1 | 1 | 1 | 4 | |
Сбор крови | 15 | 1 | 1 | 1 | 1 | 1 | 5 |
Эвтаназия | Н/Д | 1 | 1 | 2 |
Таблица 1: Потребности в человеческих ресурсах и времени для проведения операции по закупке почек свиньи.
Двусторонняя анатомия почек | Поголовье свиней | Процент свиней |
Оба типичных | 17 | 46% |
Правый типичный, левый нетипичный | 8 | 22% |
Левый типичный, правый нетипичный | 5 | 14% |
Оба нетипичных | 7 | 19% |
37 | 100% | |
Односторонняя анатомия почки | Количество почек | Процент почек |
1 артерия, 1 вена | 47 | 64% |
1 артерия, 2 вены | 19 | 26% |
1 артерия, 3 вены | 3 | 4% |
2 артерии, 1 вена | 4 | 5% |
2 артерии, 2 вены | 1 | 1% |
74 | 100% |
Таблица 2: Сводка анатомических вариаций, обнаруженных в почках свиньи.
Модель свиньи для трансплантации почки сыграла жизненно важную роль в развитии и оптимизации технологии машинной перфузии. Учитывая анатомическое, иммунологическое и патофизиологическое сходство с человеческими почками 6,7,8, свиные почки предлагают облегченный перенос в клинические испытания и практику.
Модель заготовки почек свиньи может быть использована для проведения различных доклинических экспериментов. В модели живого донора может быть восстановлена и сохранена одна почка с последующей аутотрансплантацией и удалением контралатеральной почки18,19. В модели умершего донора обе почки могут быть приобретены и использованы для исследований сохранения, исследований аппаратной перфузии или аллотрансплантации. Процедура забора крови, описанная в разделе 4, является ключевой для исследований аппаратной перфузии с использованием перфузата, содержащего цельную кровь или продукты крови, особенно при длительной машинной перфузии, требующей замены перфузата 20,21,22. При непосредственном канюляции аорты получается постоянный и быстрый поток крови, полностью обескровливающий животное за минимальное количество времени. Несколько мешков с кровью могут быть заполнены путем введения каждой иглы проксимально к предыдущему, тем самым сводя к минимуму утечку крови из предыдущего места прокола.
Как гипотермическая машинная перфузия (ГМП), так и нормотермическая машинная перфузия (НМП) являются новыми методами сохранения и оптимизации почек. По сравнению с SCS, было показано, что как HMP, так и NMP улучшают исходы и снижают частоту отсроченной функции трансплантата 3,4,5. Необходимы дальнейшие исследования для определения оптимального метода, но некоторые доклинические исследования показали, что NMP обеспечивает лучшие результаты23. Машинная перфузия дает возможность для тестирования жизнеспособности и прогнозирования маргинальных графтов21, а также возможности для восстановления ранее непригодных к использованиюграфтов 24. Дополнительные исследования продемонстрировали, что машинная перфузия является средством доставки лекарств и биоинженерии, включая доставку стволовых клеток25 и рецеллюляризацию почки свиньи эндотелиальными клеткамичеловека26. Ксенотрансплантация почки от свиньи к человеку является недавним прорывом27,28, и дальнейшие успехи могут заключаться в машинной перфузии.
Изменения в анатомии почек являются неизбежным препятствием при выполнении нескольких операций по восстановлению почек. Почка с двумя почечными артериями является редким вариантом. По нашему опыту, контралатеральная почка имеет нормальную артериальную анатомию и может быть использована вместо атипичной. Венозные аномалии встречаются чаще, чем артериальные, но и лучше поддаются реконструкции. Потенциальные вариации и возможности реконструкции венозной анатомии были описаны ранее19,29 и выходят за рамки данной статьи.
Несмотря на свою эффективность, вышеуказанный протокол ограничен временем и ресурсами, необходимыми для успешного завершения сложной операции на крупных животных, включая персонал, хирургическое оборудование, содержание животных, а также до- и послеоперационный уход. Кроме того, молодая, здоровая почка свиньи является ограниченной моделью для оценки пожилых взрослых доноров, доноров с основным заболеванием почек и доноров с сопутствующими заболеваниями, включая гипертонию и диабет.
Этот оптимизированный и воспроизводимый протокол для закупки почек свиньи позволяет проводить доклинические исследования в области трансплантации почек, их сохранения и машинной перфузии.
У авторов нет конфликта интересов, который можно было бы раскрыть.
Авторы выражают признательность многим ветеринарным техникам из Медицинской школы Университета Джона Хопкинса за их техническую помощь. Мы также хотели бы выразить нашу благодарность докторам Джессике Иззи и Аманде Максвелл, а также многочисленным ветеринарным ординаторам, включая докторов Мэллори Браун, Джессику Планкард и Алексис Роуч, за предоставление нашим животным отличного клинического ухода и ветеринарного надзора. Наконец, мы хотели бы выразить признательность всем сотрудникам Лаборатории васкуляризированной композитной аллотрансплантации (VCA) Медицинской школы Джона Хопкинса, которые оказали помощь в любом качестве при заборе почек или других процедурах забора органов, выполненных в нашей лаборатории. Эта работа была поддержана грантом Национального института диабета, болезней пищеварительной системы и почек (NIDDK) R44DK136396.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
70% Ethanol Solution | Fisher Scientific | 04-355-122 | |
Adson Tissue ForceA2:D30ps, 4.75", 1 x 2 Teeth | Wexler Surgical | FL0081.1 | |
Bair Hugger Animal Health Overbody Blanket | 3M | 53777 | |
Bair Hugger Warming Unit | 3M | 77500 | |
Balfour Abdominal Retractor w/ Fixed Side Blades, 4" Deep, 10" Maximum Spread | MPM Medical Supply | 124-7017 | |
Betadine Solution (5% Providone-iodine) | MWI Animal Health | NDC-67618-155-01 | |
Cefazolin for Injection, USP | MWI Animal Health | NDC-63323-237-10 | |
Chlorhexidine Solution | MWI Animal Health | NDC-30798-624-31 | |
Custodial HTK Organ Preservation Solution | Essential Pharmaceuticals | 25767073545 | |
DeBakey Tissue Forceps, 7.75", 2 mm Tips | Wexler Surgical | FL0789.1 | |
EUTHASOL (pentobarbital sodium and phenytoin sodium) | Virbac | NDC-051311-050-01 | |
Heparin Sodium Injection, USP | MWI Animal Health | NDC-71288-402-10 | |
Hot Dog Temperature Management Controller | Augustine Surgical Inc. | WC71V | |
Hot Dog Veterinary Underbody Warming Mattress | Augustine Surgical Inc. | V106 | |
Invisishield Isolation Bag, 20" x 20" | Medline | DYNJSD1003 | |
Jacobson Micro Needle Holder, Straight Jaws, Round Handle, 7.25" | Wexler Surgical | NL0729.11 | |
Ketamine Hydrochloride Injectable Solution | NexGen Pharmaceuticals | NC-0256 | |
Lap Sponges 18" x 18" | Medline | MDS231318LF | |
Metzenbaum Dissection Scissors, 7" Curved | Wexler Surgical | SL5011.1S | |
Non-Conductive Suction Tubing with Scalloped Connectors, 1/4" x 10' | Medline | DYND50251 | |
Pantoprazole Sodium for Injection | MWI Animal Health | NDC-55150-202-00 | |
Perfusion Cannula, Free-Flow, 3 mm Blunt Tip | MED Alliance Solutions | PER-3003S | |
Rigid Bulb Tip Yankauer | Medline | DYND50130 | |
Satinsky Clamp, 30 mm Angled DeBakey Atraumatic Jaws, Curved Shanks, 10" | Wexler Surgical | AL2150.1 | |
Scalpel Handle #3 | World Precision Instruments | 500236 | |
Servator B UW (University of Wisconsin) | Global Transplant Solutions | JFISERB10A r2 | |
Single Collection Unit Prefilled CPDA-1, 450 mL | Jorgensen Laboratories | JO520 | |
Sofsilk Suture Tie, 2-0, Black, 18" | Covidien | S-195 | |
Surgical Scalpel Blade No. 10 | World Precision Instruments | 500239 | |
Surgipro II Suture, 6-0, Blue, 30", Double Armed, CV-22 Needle | Covidien | VP-733-X | |
Three-Quarter Surgical Drape | Medline | DYNJP2414 | |
Valleylab Electrosurgical Pencil with Stainless Steel Electrodes | Covidien | CVNE2516H | |
Valleylab Force FXc Electrosurgical Generator | Covidien | MFI-MDT-FORCE-FXC | |
Valleylab Polyhesive Adult Patient Return Electrode | Covidien | E7507-SD | |
Xylazine Hydrochloride Injectable Solution | NexGen Pharmaceuticals | NC-0334 |
Запросить разрешение на использование текста или рисунков этого JoVE статьи
Запросить разрешениеThis article has been published
Video Coming Soon
Авторские права © 2025 MyJoVE Corporation. Все права защищены