Name: transvaginal mesh insertion in the ovine model
Uploaded: 2017-07-27T12:30:00.000+00:00
Duration: 10 min 32 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model at JoVE.com

نشكر إيفان ليرمانز، روزيتا كينارت، آن ليسنس (مركز التكنولوجيات الجراحية، كو ليوفن، لوفين، بلجيكا). وقدم جو فيربينن وكريستوف رينيرز (معهد فيساليوس للتشريح، كلية الطب، جامعة ليوفن، لوفين، بلجيكا) الدعم التقني خلال التجربة. نشكر لين مورتيه للمساعدة في إدارة البيانات والمخطوطات. نشكر فيغ تكستيلتشنيكن لتصنيع تنسجم النموذج، وتعقيم لهم، والتبرع لهم دون قيد أو شرط للبحث.

<html> تم الحصول على الموافقة الأخلاقية لهذه التجربة من لجنة الأخلاقيات للتجربة الحيوانية من جامعة ليوفن (P065 / 2013). تم التعامل مع الحيوانات وفقا للمبادئ التوجيهية الوطنية الحالية بشأن رعاية الحيوان. 1. المواد والحيوان التجريبي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الجراحة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في الجراحة المسرح تغطية طاولة مع ثنى العقيمة وإعداد مبطن معقمة واحدة معقمة ( الشكل 1 ، لوحة A)، والأدوات الجراحية المعقمة، والغرز، والشاش العقيمة. إجراء الإجراء الجراحي بأكمله في ظروف معقمة إذا كانت التجربة تشمل المتابعة. وضع جميع الصكوك على الطاولة لتكون جاهزة للاستخدام أثناء الجراحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة زرع مستطيلة معقمة و / أو زرع مع رسو الأسلحة من حزمة معقمة ووضعها على الطاولة مغطاة ثنى العقيمة ( الشكل 1B ، C، و D ). </li></ol></li></ol>FO: المحافظة على together.within الصفحات = &quot;1&quot;&gt; <img alt="شكل 1" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig1.jpg" /> الشكل 1: البزل والزرع. ( A ) تخطيطي، التخطيط، بسبب، ال التعريف، تروكار. ( B ) على شكل H فلوريد البولي فينيلين (بفدف) زرع، مع تفاصيل من الجزء المركزي (لوحة C ). شكله مستوحى من تنسجم أربعة الذراع المتاحة حاليا لإصلاح هبوط المهبل. يتم تمديد الجسم المستطيل (30 × 40 مم 2 ) أفقيا بأربعة أذرع ممدودة (150 × 10 مم 2 ). تم تصميم أبعاد الأسلحة لتكون طويلة بما فيه الكفاية لكسر هياكل التعليق ذات الصلة، استنادا إلى الدراسات التشريحية السابقة 17 . ( D ) زرع مستطيلة (30 × 40 مم 2 ). كل من يزرع مصنوعة من فلوريد البولي فينيل؛ خصائص النسيج والخصائص في الجدول 1 . <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حيوان تجريبي (إوه، 45-60 كجم) <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدارة التخدير من 1 مل من 15 ملغ / مل كبريتات الأتروبين و 1 مل / 50 كجم من زيلازين هكل العضل (إم) 30 دقيقة قبل إجراء العمليات الجراحية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد 30 دقيقة، تأكد من أن التخدير جعلت الأغنام الخمول والنعاس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج قسطرة في الوريد في الوريد الوداجي وإدارة 0.075 مل / كغ من الكيتامين 100 ملغ / مل حمض الهيدروكلوريك. تأكيد التخدير العميق من خلال مراقبة عدم وجود رد فعل على المحفزات المؤلمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل الحيوان على الطاولة الجراحية وتأمين الشعب الهوائية عن طريق التنبيب. الحفاظ على التخدير مع 2.5٪ إيسوفلوران في 5 L / دقيقة الأكسجين. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الحفاظ على خط الوريد إدراجها في الوريد الوداجي وتوريد 500 مل من محلول ملحي بمعدل تدفق 150 مل / ساعة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدارة المضادات الحيوية وقائية إم (أموكسيسيلين كلافولانات، 7 ملغ / كغ) والمسكنات ما بعد الجراحة (بوبرينورفين والكلوروكرسول، 1 مل) أو ما يعادلها وفقا للبروتوكولات المحلية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع الحيوان في مضاءةموقف هوتومي على نهاية الجدول الجراحي وتأمين أطرافه، مع الوركين في فرط الانثناء، وذلك باستخدام الحبال ( الشكل 2 ، لوحة A). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تفريغ المثانة والمستقيم يدويا عن طريق الضغط عليها عبر المهبل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> يحلق العجان، الجزء الإنسي من الفخذ، والذيل طيات وتطهير مع بوليفيدون أيوديوم 7.5٪ ( الشكل 2 ، لوحة B و C). </li></ol></li></ol><img alt="الشكل 2" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig2.jpg" /> الشكل 2: جراحة الحيوان. ( A ) الأغنام وضعت في موقف ضعيف، مع الوركين فرط فليكسد من خلال تأمين الأطراف السفلية. ( ب ) نقاط الدخول الخارجية لإدراج مبزل هي على الجانب البطني (السهم الفارغ) وظهريا على طيات الجانبية الذيل (السهم الكامل). ( C ) موقف نقاط الإدراج بطني. يمثل خط متقطع في الوسطال التعريف، ميدساجيتال، حلق، بسبب، ال التعريف، أنيمال. ( D ) تشريح ريكتوفاجينال الحاجز. ( E ) إدراج مبزل بطني من خلال العضلات على الجانب الإنسي من الفخذ، الثقبة المسدة، ومساحة بارافاجينال. يتم التحكم في مسار بزل خارقة مع الاصبع. ( f و g ) مرة واحدة في مبزل في مكان، سلك حبال (فتح السهم) متقدمة ومحملة الذراع من شبكة المهبل. ( H ) الموقف النهائي للبطني (الأسهم الكاملة) والظهرية (السهم فارغة) الأسلحة. ( I ) يتم وضع الجزء المركزي التوتر خالية بين الجدار المهبلي و أدفنتيتيا المستقيم. <ol start="10" style="margin-left: 40px;;text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الموظفين لعملية جراحية في ظروف معقمة. وضع على غطاء الجراحية وقناع الفم، وغسل اليدين لعملية جراحية، ووضع على ثوب الجراحية والقفازات المعقمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغطية الحيوان مع ثنى عقيمة وجعل افتتاح فوق الأعضاء التناسليةتوقف. </li></ol> 2. الإجراء الجراحي <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد الحاجز ريكتوفاجينال <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فهم الجدار المهبلي الظهري 3 سم الجمجمة إلى حلقة النسجية باستخدام ملقط أليس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خذ حقنة محملة 10 مل من المياه المالحة ومزودة إبرة 22 G. إدراجه من خلال ظهارة المهبل (حوالي 3-4 ملم عميق) وفي خط الوسط من الحاجز ريكتوفاجينال، 1.5 سم الجمجمة إلى حلقة النسجية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أداء &quot;المائية تشريح&quot; عن طريق حقن المياه المالحة في الحاجز ريكتوفاجينال 11 . </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل شق خط الوسط 3 سم طويلة على ظهارة المهبل، بدءا الذيلية إلى ملقط أليس (الخطوة 2.1.1) وتنتهي في حلقة النسجية باستخدام مشرط. أدخل الفضاء المستقيم المهبلي من خلال هذا شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع ضام الإبقاء على النفس (انظر جدول المواد ) على العجان ووضع أربعة السنانير إقامة حادة في شق المهبل للحفاظ على فتحه. </لى&gt; <li style=";text-align:right;direction:rtl"> بإصبعك، تشريح بصراحة اللفافة المستقيم المهبلي من جدار المهبل أفقيا نحو الجدران الجانبية الحوض و كرانيالي تصل إلى الجانب الذيلية من طريق مسدود دي الكيس. خلق مساحة مناسبة لل 30 × 40 مم 2 الجزء المركزي للشبكة ( الشكل 2 ، لوحة D). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> أداء الارقاء مع ملقط هيموستاتيك أو ربطة متقابلة الأرقاء كلما لزم الأمر. ملاحظة: يمكن أن تكون مثبتة صغيرة بليدرز مع ملقط مرقئ. هذا يسحق السفينة ويبدأ سلسلة التخثر الطبيعي. للحصول على نزيف أقوى، فهم السفينة النزيف مع ملقط ووضع رباط متقاطع، وتأمين ذلك مع عقدة مربع. عند هذه النقطة، يمكن للمرء إما إدراج زرع مستطيلة (الخطوة 2.2) أو الاستمرار مع تشريح لإدراج الغرسة مع رسو الأسلحة (الخطوة 2.3). </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شقة شبكة الإدراج <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج مثبط المهبل في شق المهبل للسماح رؤية أفضل منالجزء القحفي، بسبب، ال التعريف، تشريح، أريا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة الزاوية اليسرى واليسرى الجمجمة من الزرع مع توقف بسيط 3/0 خياطة البولي بروبلين على الجانبين الأيسر والأيمن من الجانب الأكثر الجمجمة من الفضاء المستقيم الشرجي المهبل. قطع المواد خياطة المتبقية. الحفاظ على خياطة بعيدا عن التجويف المهبلي ( أي، لا تخترق جدار المهبل). ملاحظة: يتم خياطة الغرسة دائما إلى النسيج الضام تشمل الحاجز المستقيم المهبلي. لا يتم اختراق جدار المهبل إذا كان لا يمكن أن ينظر إلى المواد خياطة في المهبل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة واحدة إضافية بسيطة خياطة توقف في منتصف الطريق على طول الجانب الجمجمة من الزرع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة الحواف الجانبية للزرع في منتصف الطريق على النسيج الضام المحيطة مع بسيطة توقف 3/0 البولي بروبيلين. إبقاء الزرع مسطحة قدر الإمكان والتوتر خالية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة الزوايا الذيلية اليسرى واليمنى مع بسيطة توقف 3/0 خيوط البولي بروبلين على اليسار واليمينجانبي الجانب الأكثر الذيلية من الفضاء ريكتوفاجينال. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إضافة واحدة إضافية بسيطة خياطة توقف في منتصف الطريق على طول الجانب الذيلية من الزرع. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إغلاق الشقوق المهبلية مع تشغيل 3/0 بوليغلاكتين خياطة. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إدراج وترسيخ زرع بالأسلحة (تقنية موجهة مبزل). <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مواصلة تشريح الفضاء المستقيم المهبلي التي تم إنشاؤها في الخطوة 2.1 كرانيو بطني للوصول إلى الجانب الإنسي من الثقبة السدادة، والتي يمكن بسهولة أن جس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تشريح الفضاء كودو-أفقيا للوصول إلى الجانب الذيلية من الرباط المقدسة والعضلة العصعصية تقع كاوديجيوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مع لا. 24 شفرة، وجعل أربعة شقوق 1 سم واسعة على الجانب الفرج، وقطع من خلال الجلد والسطحية العضلة اللفافة ( الشكل 2 ، لوحة B و C). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل اثنين من &quot;بطني&quot; الشقوق على الجانب الإنسي من الفخذ، ما يقرب من 4 سم الجمجمة من الحدود الذيلية سو القوس الوركي ( أي ، الحدود السفلية من الارتفاق) و 3 سم الوحشي من خط الوسط ( الشكل 2 ، لوحة C). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل اثنين من الشقوق &quot;الظهرية&quot; على مستوى إدراج طيات الذيل، 2 سم وسطي إلى درنة إسكياديكوم، والتي يمكن بسهولة جس ( الشكل 2 ، لوحة B). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مبزل منحني من خلال واحدة من الشقوق بطني ( الشكل 2 ، لوحة E). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تمرير مبزل من خلال العضلة المقربة ماغنوس، السدادة الخارجي، والجانب الإنسي من الثقبة المسد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> السيطرة على تطور مبزل مع إصبع إدراجها من خلال شق المهبل. توجيه طرفها إلى قوس الوترية من العضلة الرافعة الرافعة ( الشكل 2 ، لوحة E). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فضح الأسلاك التوجيهية في شق الجدار المهبلي وتحميله مع المقابلة المماثل ذراع شبكة الجمجمة ( الشكل 2 ، لوحة F). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب مبزل محملة مع مإيش الذراع من خلال الهياكل المذكورة أعلاه. إبقاء الذراع خالية من التوتر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كرر العملية مع الذراع الجمجمة الثاني من خلال شق بطني على الجانب الآخر من الحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> من خلال واحدة من الشقوق الظهرية، وتمرير مبزل من خلال العضلة العصعصية، فقط البعيدة إلى الرباط المقدسة ( الشكل 2 ، لوحة G). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> فضح سلك دليل من خلال شق المهبل، فهم الذراع الظهرية للشبكة، وسحب بها. الحفاظ على التوتر الذراع خالية وتكرار على الجانب الآخر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ضبط الموقف من شبكة عن طريق تسطيح وتطبيق التوتر على الأسلحة، ولكن الحفاظ على شبكة خالية من التوتر ( الشكل 2، لوحة I؛ الشكل 3 ). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إصلاح الجسم من شبكة مع بسيطة توقف 3/0 خياطة البولي بروبيلين في منتصف الحدود الذيلية، وتأمينه إلى النسيج الضام المحيطة بها. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع الأسلحة على مستوى الجلد وإغلاق جميع شقوق الجلد مع توقف بسيط 3/0 بوليجلخيوط ايكابرون ( الشكل 2 ، لوحة H). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إغلاق شق المهبل مع تشغيل 3/0 بوليغلكابرون خياطة. </li></ol></li></ol><img alt="الشكل 3" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig3.jpg" /> الشكل 3: رسم تخطيطي من الحوض أوفين، مع الأسلحة القحفية تمر عبر الثقبة السدادة والأسلحة الذيلية يمر من خلال طيات الذيل. الرباط العجزي العريض هو باللون الأزرق. لوحة أصغر يوضح موقف الأسلحة على حيوان في موقف راقد، قبل تقصير كمية مفرطة من المواد. تظهر اللوحة الرئيسية نفسها ولكن مع إزالة الجلد والعضلات.

<ol>
	<li>Glazener, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Childbirth+and+prolapse:+Long-term+associations+with+the+symptoms+and+objective+measurement+of+pelvic+organ+prolapse.">Childbirth and prolapse: Long-term associations with the symptoms and objective measurement of pelvic organ prolapse.</a> BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 120 (2), 161-168 (2013).</li><li>Jia, X., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficacy+and+safety+of+using+mesh+or+grafts+in+surgery+for+anterior+and/or+posterior+vaginal+wall+prolapse:+systematic+review+and+meta-analysis.">Efficacy and safety of using mesh or grafts in surgery for anterior and/or posterior vaginal wall prolapse: systematic review and meta-analysis.</a> BJOG. 115 (11), 1350-1361 (2008).</li><li>Maher, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transvaginal+mesh+or+grafts+compared+with+native+tissue+repair+for+vaginal+prolapse.">Transvaginal mesh or grafts compared with native tissue repair for vaginal prolapse.</a> Review. 2 (2), 10-13 (2016).</li><li>Nieminen, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Outcomes+after+anterior+vaginal+wall+repair+with+mesh:+a+randomized,+controlled+trial+with+a+3+year+follow-up.">Outcomes after anterior vaginal wall repair with mesh: a randomized, controlled trial with a 3 year follow-up.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 203 (3), e1-e8 (2010).</li><li>Abramowitch, S. D., Feola, A., Jallah, Z., Moalli, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tissue+mechanics,+animal+models,+and+pelvic+organ+prolapse:+a+review.">Tissue mechanics, animal models, and pelvic organ prolapse: a review.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 144, S146-S158 (2009).</li><li>Couri, B., Lenis, A., Borazjani, A., Paraiso, M. F. R., Damaser, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Animal+models+of+female+pelvic+organ+prolapse:+lessons+learned.">Animal models of female pelvic organ prolapse: lessons learned.</a> Expert Rev. Obs. Gynecol. 7 (3), 249-260 (2012).</li><li>Deprest, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+biology+behind+fascial+defects+and+the+use+of+implants+in+pelvic+organ+prolapse+repair.">The biology behind fascial defects and the use of implants in pelvic organ prolapse repair.</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 17, S16-S25 (2006).</li><li>Ozog, Y., Mazza, E., De Ridder, D., Deprest, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biomechanical+effects+of+polyglecaprone+fibers+in+a+polypropylene+mesh+after+abdominal+and+rectovaginal+implantation+in+a+rabbit.">Biomechanical effects of polyglecaprone fibers in a polypropylene mesh after abdominal and rectovaginal implantation in a rabbit.</a> Int. Urogynecol. J. 23 (10), 1397-1402 (2012).</li><li>Manodoro, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Graft-related+complications+and+biaxial+tensiometry+following+experimental+vaginal+implantation+of+flat+mesh+of+variable+dimensions.">Graft-related complications and biaxial tensiometry following experimental vaginal implantation of flat mesh of variable dimensions.</a> BJOG. 120 (2), 244-250 (2013).</li><li>Endo, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cross-linked+xenogenic+collagen+implantation+in+the+sheep+model+for+vaginal+surgery.">Cross-linked xenogenic collagen implantation in the sheep model for vaginal surgery.</a> Gynecol. Surg. , 113-122 (2015).</li><li>Feola, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Host+reaction+to+vaginally+inserted+collagen+containing+polypropylene+implants+in+sheep.">Host reaction to vaginally inserted collagen containing polypropylene implants in sheep.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 212 (4), e1-e474 (2015).</li><li>Barnhart, K. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Baseline+dimensions+of+the+human+vagina.">Baseline dimensions of the human vagina.</a> Hum. Reprod. 21 (6), 1618-1622 (2006).</li><li>Tayrac, R., Alves, A., Th&#233;rin, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Collagen-coated+vs+noncoated+low-weight+polypropylene+meshes+in+a+sheep+model+for+vaginal+surgery.+A+pilot+study.">Collagen-coated vs noncoated low-weight polypropylene meshes in a sheep model for vaginal surgery. A pilot study.</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (5), 513-520 (2007).</li><li>Sobiraj, A., Busse, G., I, H. B. O. S. E. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ivastigation+into+the+blood+plasma+profiles+progesterone+in+sheep+sufferingform+vaignal+inversion+and+prolapse.">Ivastigation into the blood plasma profiles progesterone in sheep sufferingform vaignal inversion and prolapse.</a> Br. Vet. J. 142 (142), 218-223 (1986).</li><li>Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+conditions+for+pelvic+floor+reconstruction+with+polypropylene+implant+and+its+application+for+the+treatment+of+vaginal+prolapse.">Anatomical conditions for pelvic floor reconstruction with polypropylene implant and its application for the treatment of vaginal prolapse.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 131, 214-225 (2007).</li><li>Carey, M., Slack, M., Higgs, P., Wynn-Williams, M., Cornish, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Vaginal+surgery+for+pelvic+organ+prolapse+using+mesh+and+a+vaginal+support+device.">Vaginal surgery for pelvic organ prolapse using mesh and a vaginal support device.</a> BJOG An Int. J. Obstet. Gynaecol. 115 (3), 391-397 (2008).</li><li>Urbankova, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+anatomy+of+the+ovine+and+female+pelvis.">Comparative anatomy of the ovine and female pelvis.</a> Gynecol. Obstet. Invest. , (2016).</li><li>Maurer, M. M., R&#246;hrnbauer, B., Feola, a., Deprest, J., Mazza, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mechanical+biocompatibility+of+prosthetic+meshes:+A+comprehensive+protocol+for+mechanical+characterization.">Mechanical biocompatibility of prosthetic meshes: A comprehensive protocol for mechanical characterization.</a> J. Mech. Behav. Biomed. Mater. 40, 42-58 (2014).</li><li>Leval, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Novel+Surgical+Technique+for+the+Treatment+of+Female+Stress+Urinary+Incontinence.">Novel Surgical Technique for the Treatment of Female Stress Urinary Incontinence.</a> Transobturator Vaginal Tape Inside-Out. Eur. Urol. 44 (6), 724-730 (2003).</li><li>Reisenauer, C., Kirschniak, A., Drews, U., Wallwiener, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Transobturator+vaginal+tape+inside-out.">Transobturator vaginal tape inside-out.</a> Eur. J. Obstet. Gynecol. Reprod. Biol. 127 (1), 123-129 (2006).</li><li>Bafghi, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bowel+perforation+as+late+complication+of+tension-free+vaginal+tape.">Bowel perforation as late complication of tension-free vaginal tape.</a> J Gynecol Obs. Biol Reprod. 34 (6), 606-607 (2005).</li><li>Hinoul, P., Vanormelingen, L., Roovers, J. P., de Jonge, E., Smajda, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anatomical+variability+in+the+trajectory+of+the+inside-out+transobturator+vaginal+tape+technique+(TVT-O).">Anatomical variability in the trajectory of the inside-out transobturator vaginal tape technique (TVT-O).</a> Int. Urogynecol. J. Pelvic Floor Dysfunct. 18 (10), 1201-1206 (2007).</li><li>Schaller, O., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Illustrated Veterinary Anatomical Nomenclature. , (2007).</li><li>. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Serious+Complications+Associated+with+Transvaginal+Placement+of+Surgical+Mesh+for+Pelvic+Organ+Prolapse.">Serious Complications Associated with Transvaginal Placement of Surgical Mesh for Pelvic Organ Prolapse.</a> FDA Safety Communication. , (2016).</li><li>Reinier, M., Groep, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Final+Opinion+on+the+use+of+meshes+in+urogynecological+surgery.">Final Opinion on the use of meshes in urogynecological surgery.</a> SCENIHR- European Commission. , (2016).</li></ol>

تم دعم هذا البرنامج البحثي على نموذج الأوبئة بمنحة غير مشروط من مدري و بلاسينغام، بورش، غارارد وأشلي (أتلانتا غا، الولايات المتحدة الأمريكية). ويجري التعامل مع الاتفاقات عن طريق مكتب نقل البحوث والتنمية في ليوفين. لم يتدخل الرعاة في التخطيط أو التنفيذ أو الإبلاغ عن هذه التجربة، كما أنهم لا يمتلكون النتائج. و نس و ل مستلمين من منحة من المفوضية الأوروبية في إطار FP7 (بيب-أوبي المشروع؛ NMP3-لا-2012-310389). تم دعم التمويل الإضافي من خلال منحة من المفوضية الأوروبية في برنامج الشراكة الصناعية الأكاديمية (251356).

هنا، وصفنا إجراء تجريبي في الأغنام، تهدف إلى تقليد تشريح المهبل وإدخال شبكة عبر المهبل من زرع مع أو بدون رسو الأسلحة. وقد استلهمت الخطوات والصكوك اللاحقة من العمليات الجراحية التي أجريت ل بوب والإجهاد سلس البول 15 ، 16 ، 19 ، 20 . بعد التشريح التشريحي الأولي، كانت لا تزال هناك بعض المشاكل أثناء التجريبي شبكة الإدراج. في الحيوان الأول، تم العثور على ثقب في التجويف البريتوني على مستوى دي كول دي الكيس. وقد سبق وصف ذلك سريريا في النساء 21 . في الإجراءات اللاحقة، تم تجنب هذا عن طريق توجيه غيض من مبزل أكثر أفقيا ( أي أقرب إلى الجدار الجانبي الحوض). في الأغنام في وقت لاحق، لم تلاحظ أي مضاعفات أخرى. الهياكل التشريحية الأكثر تخوفا نحنأعاد، ال التعريف، أوبتوراتور، العصب، أيضا، أرتيري. في البشر، والمسافة بين مبزل / زرع وقناة المسد هو 1.9 - 3.0 سم 22 . وقد أوضحت سابقا التباين العالي من موقف مبزل / زرع في النساء من قبل تحديد المواقع بالضبط من الساقين أو مسار الإبرة. ولذلك، تم تأمين أطرافه الخلفية من الأغنام في فرط الانثناء في الوركين للسماح لمزيد من الوصول إلى المهبل. في هذا الموقف يتم نقل العضلات غراسيليس كرانيالي. ونتيجة لذلك، مر مبزل من خلال العضلة المقربة المغنطيس، والتي هي غير مقسمة ولكن متطورة في الأغنام 23 . ممر أكثر الجمجمة من مبزل ممكن حتى الآن قد تضر الهياكل في قناة المسد. وبالمثل ما هو موضح سريريا، والأسلحة ثابتة الزرع لمواقع تشريحية معينة، المقابلة للمرفقات الطبيعية من الحاجز ريكتوفاجينال في الأغنام 23 . زرع شقة مسطحة، على ما يبدو دعم pأوستيريور جدار مهبلي دون يمتد أكثر أفقيا. ونتيجة لذلك، لم يكن لديها ميل إلى أضعاف. قد يكون من الممكن استخدام زرع أكبر. ومع ذلك، كما تبين من قبل في الأغنام، وترتبط أكبر يزرع مع ما يصل إلى 50٪ تراجع والمزيد من المضاعفات المحلية المتعلقة الكسب غير المشروع 9 . وشملت التحقيقات السابقة من زرع الرواية في مختلف النماذج الحيوانية الأغنام كنموذج للجراحة المهبلية. هدف واحد من هذا العمل هو إصلاح زرع بطريقة مماثلة لتلك التي أجريت سريريا ( أي، عبر ترانزفيكسينغ الأسلحة من شبكة إلى الهياكل التشريحية في الحوض). لم يتم وصف هذا الإجراء في وقت سابق في نموذج الأغنام. وتتبع هذه الجراحة استراتيجية مماثلة لما تم استخدامه لتقديم عمليات جراحية جديدة مدعمة بالإبرة والمزرعة في الممارسة السريرية 15 . ومع ذلك، يبدو أن هذه النتائج أقل أهمية من بضع سنوات مضت، حيث أن استخدام الغرس المهبلي، وبالتالي الإجراءات الموجهة مبزلتسقط بسرعة بسبب التحذيرات الصحية المتعاقبة من قبل ادارة الاغذية والعقاقير و سينيهر 24 ، 25 . على الرغم من أننا تصف هنا هذه التقنية، وعدد الحيوانات في هذه التجربة كان محدودا جدا، وبالتالي فإن المستوى الكامل من التقلب التشريحي قد لا تكون ممثلة هنا. هناك قيود أخرى هي أن هذه التقنية تصف إجراء المقصورة الخلفية، والتي قد تكون أقل ممارسة. هناك عدد قليل من التقارير عن الجراحة في المقصورة الأمامية في الأغنام 13 ، ولكن عادة ما تستخدم زرع أصغر والمضاعفات كانت أكثر تواترا. على الرغم من أن هذه النتائج قد تكون كافية للتخطيط لمزيد من التجارب، جدوى الأمامي وضع شبكة المهبل قد تكون أيضا بالمعلومات. في الختام، هذا هو وصف لتقنية الجراحية آمنة وممكنة في نموذج الحيوان البيضاوي لعملية جراحية المهبل التي تسمح عبر المهبل والمضاد الموجهة التوتر-زرع المهبل مجانا. ويمكن اختراق هياكل مماثلة ذات صلة دون التعرض لمخاطر واضحة على إصابات السفن أو الأعصاب أو الأعضاء. هذا بالطبع يمكن أيضا أن تستخدم أيضا لجراحة المهبل محاكاة باستخدام الأنسجة الأصلية.

يتم تشخيص هبوط الجهاز الحوض سريريا في نصف النساء اللائي لديهن على الأقل تسليم المهبل واحد، ولكن بشكل شخصي، فإنه يزعج نصف النساء عموما 1 . الدعامة الأساسية للعلاج هو إعادة الإعمار الجراحي باستخدام الأنسجة الأصلية أو مواد زرع، ولكن كل من هذه الأساليب له حدوده، بما في ذلك تكرار أو مضاعفات المحلية 2 ، 3 ، 4 . لم يتم بعد تحديد الغرسة المثالية؛ وبالتالي، هناك طلب مستمر على ابتكار المنتجات وتطوير خط أنابيب مناسب للتجريب قبل السريرية قبل إدخال منتجات وتقنيات جديدة إلى السوق. واحدة من الخطوات في هذا المسار هو التقييم التجريبي على نماذج حيوانية مناسبة 5 ، 6 . ومن الناحية المثالية، ينبغي أن تحاكي البيئات التشريحية والبيوميكانيكية والبيولوجية. عندما يتعلق الأمرe تقييم تجريبي من الغرسات الجديدة، وعادة ما يتم اختبارها أولا في نماذج أصغر، إما للتوافق مع الحياة الحيوية أو لإعادة بناء عيوب جدار البطن. وقد انتقد هذا النوع من التجارب، لأن الغرسات لا تدخل في مجال الاهتمام ( أي المهبل) 7 . نماذج الجراحة المهبلية هي أكثر ندرة، وبالتأكيد عندما يكون الهدف من التجربة لتوثيق الخصائص الميكانيكية الحيوية من إكسلانتس. لهذا السبب، كان هناك انتقال من الأرانب إلى الأغنام 8 . النعاج الكبار هي نماذج الحيوانات الكبيرة مع المهبل الحجم معقول ويمكن الوصول إليها. ويمكن استخدامها لتقييم منتصف المدة للزرع الجديدة، ويمكن إعادة إنتاج التعرض المهبلي مع مواد معينة 9 ، 10 ، 11 ، 12 ، 13 . ليس فقط الأبعاد والتشريحمن المهبل البيضاوي وأرضية الحوض مماثلة لتلك الموجودة في البشر، ولكن أيضا حدوث عفوية من هبوط، والذي يحدث في 15٪ من النعاج. إن هبوط عوامل الخطر متداخلة ( أي التعدد، والتاريخ السابق للملوثات العضوية الثابتة، وزيادة الضغط داخل البطن الناجم عن ارتفاع وزن الجسم أو عند الرعي على التلال، والآثار القابلة للمقارنة للإستروجينات النباتية) 6 ، 14 . في أوروبا، الأغنام هي البديل المعقول الوحيد، حيث أن الأبحاث على الرئيسيات غير البشرية قد حظرت تماما تقريبا. هنا، تم اتخاذ نموذج خطوة أخرى أبعد من ذلك عن طريق محاكاة إدخال ترانسفاجينال من يزرع باستخدام تروكارس وأدلة للتوضع خالية من التوتر تنسجم في الحاجز المستقيم المهبلي. وأعقب ذلك تحديد زرع باستخدام رسو مع الأسلحة من خلال أربطة العضلات، والتي يمكن اعتبارها تعادل الممارسة السريرية 15 ، 16 . حتى الآن، هذه التقنيةعلى الرغم من أن الكثيرين يعتقدون أن مضاعفات محددة قد تحدث بسبب استخدام هذه الشرائط الأطول و / أو ثقب الهياكل التشريحية. في دراسة تشريحية مفصلة في وقت سابق، تمت مقارنة أرضية حوض الحوض مع الحوض الأنثوي 17 . عندما يتعلق الأمر بترسيخ الغرسة، لا تملك الأغنام الرباط العجزي، إلا أنها تتمتع برباط كيسيرتوبيروس واسع التطور. العصب بودندال يمتد بطني أكثر من ذلك، مما يجعل من غير آمنة لاستخدام هذا المعلم كنقطة تعليق. على العكس من ذلك، العضلة العصعصية ولفافة، وكذلك الغشاء المسد، يمكن الوصول إليها من خلال الفضاء ريكتوفاجينال. هنا، ويقترح الوصول وموقف الهياكل التشريحية لتثبيت الأسلحة رسو. وتناقش الأدوات التي يمكن استخدامها لوضع شبكة. وأخيرا، فإن العلاقة بين الأسلحة أو تروكارس إلى الهياكل التشريحية المجاورة، مثل السفن والأعصاب، وs وكذلك المضاعفات المحتملة أثناء العملية، كما وصفها.

<table><tbody><tr><td>Animals:&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>parous female sheep (45 - 65 kg)</td><td>Zo&amp;ouml;technical Institute of the KU Leuven</td><td>NA</td><td>experimetnal animal</td></tr><tr><td>Sterile clothing:&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>sterile drape 45 x 75 cm</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>33002</td><td>other material</td></tr><tr><td>sterile OR drape 150 x 180 cm</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>33009</td><td>other material</td></tr><tr><td>sterile glowes 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>16652</td><td>other material</td></tr><tr><td>sterile surgical gown 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>19342</td><td>other material</td></tr><tr><td>surgical head cap 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>17427</td><td>other material</td></tr><tr><td>surgical face mask 2x</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>11983</td><td>other material</td></tr><tr><td>Other surgical material</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>implant</td><td>FEG Textiltechnik GmbH, Aachen, Germany</td><td>NA</td><td>purposely designed implant</td></tr><tr><td>3/0 polypropylene suture</td><td>Prolene, Ethicon, Diegem, Belgium</td><td>8762H</td><td>suture material</td></tr><tr><td>3/0 polygecaprone suture</td><td>Vicryl, Ethicon</td><td>J311H</td><td>suture material</td></tr><tr><td>gauze swabs 10 x 10 cm 10x, 12-ply</td><td>Lohmann &amp;amp; Rauscher, Regensdorf, Germany</td><td>11574</td><td>other material</td></tr><tr><td>syringe 10 mL</td><td>Becton Dickinsosn S.A., Madrid, Spain</td><td>300613</td><td>aqua-dissection</td></tr><tr><td>needle 16 gauge</td><td>Terumo, Leuven, Belgium</td><td>NN-2238R</td><td>aqua-dissection</td></tr><tr><td>Surgical equipment:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>blade no.22</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>10022-00</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Allis tissue forceps 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>11091-15</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Standart pattern forceps 1 x 2 theeth 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>11023-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Standart pattern forceps straight serrated 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>11000-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Scalpel handle 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>10004-13</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Halstead-Mosquito forceps 2x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>13008-12</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Standart pattern scissors 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>14001-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Metzenbaum scissors 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>14016-18</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Crile Wood needle holder 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>12003-15</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Kell forceps 1x</td><td>Fine science isntruments, Heidelberg, Germany</td><td>13018-14</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Long Starr Self-Retaining Retractor with eight 5 mm sharp stay hooks</td><td>Cooper Surgical, Tumbull, USA</td><td>3704</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Heaney Simon Vaginal Retractor</td><td>Medical supplies &amp;amp; equipments co., Katy, Texas, USA</td><td>403-129FSI</td><td>surgical instruments</td></tr><tr><td>Trocar (Insnare)</td><td>Bard, West Sussex, United Kingdom</td><td>NA</td><td>any trocar on market for transvaginal mesh implantation</td></tr><tr><td>Medication:</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>amoxilicilline clavulanate 1000 mg / 300 mL (Ampiciline)</td><td>GSK, Wavre, Belgium</td><td>NA</td><td>antibiotics</td></tr><tr><td>buprenorfin 0.3 mg/mL + chlorocresol 1.35 mg/mL (Vetregesic)</td><td>Ecuphar, Oostkamp, Belgium</td><td>NA</td><td>analgesia</td></tr><tr><td>ketamin HCL 100 mg/mL (Ketamine 1000)</td><td>Ceva Sante Animale, Brussels, Belgium</td><td>NA</td><td>anesthesia</td></tr><tr><td>isoflurane (IsoFlo)</td><td>Abbott Laboratories Ltd, Maidenhead, Berkshire, UK</td><td>NA</td><td>anesthesia</td></tr><tr><td>polyvidone iodium 7.5% (Braunol)</td><td>B. Braun Medical, Machelen, Belgium</td><td>NA</td><td>local desinfection</td></tr><tr><td>saline solution 500 mL</td><td>B. Braun Medical, Machelen, Belgium</td><td>NA</td><td>aqua-dissection</td></tr><tr><td>Xxylazine HCl , 1 mL/50 kg&amp;nbsp;</td><td>Vexylan, Ceva Sante Animale, Belgium</td><td>NA</td><td>premedication</td></tr><tr><td>atropine Sulfate 15 mg/mL (),</td><td>Viatris, Belgium</td><td>NA</td><td>premedication</td></tr></tbody></table>

transvaginal mesh insertion in the ovine model

يصف هذا البروتوكول شبكة الإدراج في الحاجز ريكتوفاجينال في الأغنام باستخدام تقنية شق المهبل واحد، مع وبدون إدراج مبزل موجهة من الأسلحة رسو. خضعت الأغنام باروس تشريح الحاجز ريكتوفاجينال، تليها إدخال زرع مع أو بدون أربعة رسو الأسلحة، وكلاهما مصممة لتناسب التشريح البيضاوي. وقد وضعت الأسلحة رسو في مكان باستخدام مبزل وتقنية &quot;في الخارج&quot;. تم تمرير الأسلحة الجمجمة من خلال السدادة، غراسيليس، والعضلات المقربة ماغنوس. تم تثبيت الأسلحة الذيلية بالقرب من الرباط العجزي، من خلال عضلات العصعص. هذه التقنية تسمح لمحاكاة الإجراءات الجراحية التي أجريت في النساء الذين يعانون من هبوط الجهاز الحوض. يتم تحديد المساحات والعناصر التشريحية بسهولة. الجزء الأكثر أهمية من الإجراء هو إدراج مبزل الجمجمة، والتي يمكن أن تخترق بسهولة التجويف البريتوني أو أجهزة الحوض المحيطة بها. ثيs يمكن تجنبها من قبل تشريح خلف الصفاق أكثر شمولا وتوجيه مبزل أكثر أفقيا. تم تصميم هذا النهج فقط لاختبار تجريبي من الغرسات الجديدة في نماذج حيوانية كبيرة، كما يتم استخدام الإدراج الموجهة مبزل حاليا سريريا.

الإدارة في إعداد مراقبة أطول بعد إجراء العمليات الجراحية، قد يتم إدخال التعبئة المهبلية (حزمة شاش منقوعة من محلول ملحي تم إدخالها في المهبل مباشرة بعد الجراحة) لمدة 24 ساعة لتأمين موضع الزرع. يجب وضع الأغنام في قفص الانتعاش وتتبع وظيفة الجهاز التنفسي حتى الانتعاش الكامل. في وقت لاحق، فمن الممكن لوضع الأغنام في مستقر والسماح لها للتحرك بحرية والشرب وأكل ليبيتوم الإعلانية . التعبئة المهبلية، إذا كان موجودا، يجب إزالتها 24 ساعة بعد الجراحة. يجب أن تتلقى الأغنام المسكنات (بوبرينورفين والكلوروكرسول، 1 مل، إم) لمدة لا تقل عن ثلاثة أيام بعد العملية الجراحية. خلال الأسبوع الأول بعد العملية الجراحية، يجب فحص الحيوان يوميا، ثم كل أسبوع حتى نهاية التجربة. عياداتإيكال الجدوى خلال هذا الإجراء، لم تكن هناك مشاكل مع إدراج شبكة في أي من الحيوانات. لم يكن هناك تقريبا أي نزيف خلال تشريح الحاجز ريكتوفاجينال والمساحات البافينية. كان من الممكن تحديد الجانب الإنسي من الثقبة السدادة من خلال تشريح. أيضا، كان إدراج مبزل مباشرة، مع وجود اختلاف في المقاومة بين العضلات أكثر امتثالا ولفافة أكثر مقاومة للعضلات الفردية. على الرغم من أن المسار الأولي من خلال العضلات كان أقل تسيطر، غيض من مبزل أصبح ملموس مرة واحدة في اتصال مع العضلات السدادة. وضعت الأسلحة الظهرية دون مضاعفات أو عقبات. شبكة تحديد المواقع والنتائج خلال تشريح لاحق للتحقيق في تحديد المواقع المناسبةزرع مع الأسلحة رسو، الذي اعتبر أكثر صعوبة لتحقيق، الموت الرحيم ثلاثة الحيوانات عن طريق الحقن في الوريد من 1.0 مل من خليط هيدروكلوريد إمبوتراميد-مبيزونيوم-تتراكايين. بعد القتل الرحيم، تم تشريح المنطقة الجراحية بعناية لاستكشاف موقف شبكة وتأثير الإدراج من الأسلحة من شبكة من خلال الهياكل التشريحية ذات الصلة. أقصر مسافة من الأسلحة البطنية من الشريان السدادة والعصب إلى وعاء بودندال الداخلي تم قياسها مع حاكم، وتم التحقيق في علاقتها مع قوس الوتر من الرافعة العاني. في نهاية المطاف، تم تحديد العصب الفرجي والشريان بودندال الداخلي، والمسافة لهم قياسها مع حاكم. لم يحدث نزيف ذات الصلة في أي من النعاج، كما لم يكن هناك أي داخل الأعصاب العصبية، الأمعاء، أو إصابة المثانة. في الأغنام الأولى، ذراع الجمجمة مرت من خلال الذيلية الذيليةإلخ من طريق مسدود، ولكن تبقى الأمعاء سليمة. تم تجنب ذلك في الأغنام القادمة عن طريق توجيه غيض من مبزل أكثر أفقيا بعيدا عن مسدود دي الكيس . تم تحديد الممرات الذراع الأخرى في الهياكل التشريحية وصفها سابقا، بعيدا عن الأعصاب الحوض والأوعية. مرت الأسلحة الجمجمة من خلال الجانب الذيلية من الثقبة المسد ( الشكل 4 ، لوحة A). كانت نقطة الدخول من مبزل على مستوى قوس الوتر من العاني الرافعة، 2 - 2.5 سم الذيلية إلى قناة المسد والسفن المسد والعصب ( الشكل 4 ، لوحة B). مرة واحدة في الفضاء بارافاجينال، كان الذراع يقع 1 - 1.5 سم بطني إلى الشريان الفرجي و الوريد و 1 سم الوحشي إلى الشريان المهبلي. أذن الذيلية مرت 1 سم الذيلية إلى الجانب الذيلية من الرباط العجزية واسعة، الحق من خلال العضلة العصعصية. في هذا الموقع، لا توجد السفن الرئيسية أو الأعصاب في أي مكان قريب. يقع العصب بودندال on، ال التعريف، داخلي، سطح، بسبب، ال التعريف، كودال، جزأ من، ال التعريف، كاكروتوبيروس، ليغامنت. تم وضع الجزء الأوسط من شبكة مسطحة، مع جزء الجمجمة تمتد خلف الصفاق تحت الطرف الذيلية من ديس الكيس وجزء الذيلية أسفل على طول الحاجز ريكتوفاجينال. لم تحدث ثقب المستقيم ( الشكل 4 ، لوحة D). <img alt="الشكل 4" src="/files/ftp_upload/55706/55706fig4.jpg" /> الشكل 4. تشريح التشريحية على هيميسكتيون الحوض . a: الجانبي الحوض الجانبي بعد إزالة البريتوني الجداري والأنسجة الدهنية خلف الصفاق. العانة (P) هو في الجزء العلوي من الشكل ويتم نقل المهبل (V) بشكل وسطي للكشف عن مسار ذراع الجمجمة (السهم الكامل). الذراع يمر عبر قوس الوتر من الرافعة العاني. دبوس الأخضر يتوافق مع موقف p الداخلية<html> أوديندال الأوعية، الدبوس الأزرق يصادف الشريان المهبلي، ويتم وضع دبوس الأصفر في الرافعة الرافعة. ب: الجانبي الحوض الجانبي بعد إزالة الذراع (بالطبع ملحوظ مع خط أصفر). يقع مدخل نقطة في الجانب الذيلية من الثقبة المسد (ملحوظ مع أربعة دبابيس الزرقاء). العصب المسد والسفن (الخط الأحمر) تمر من خلال الجانب الجمجمة. الأوعية المهبلية الداخلية و المهبلية (الخط الأخضر و الأزرق، على التوالي) هي الظهرية للذراع. ويشار إلى العضلات السدادة (أوم) والعضلات الرافعة للشرج (لام) كذلك. C: مسار الذراع (السهم المفتوح) من خلال العضلات الإنسية من الفخذ. يتم نقل العضلات غراسيليس إنسيالي لعرض مسار الذراع من خلال سيميتندينوسوس والعضلة المقربة ماغنوس. D: يتم وضع الجزء الأوسط من الغرسة (السهم المفتوح) بين المهبل (V)، الصفاق الجدارية، والمستقيم (R). <table fo:keep-together.within-page="1" fo:keep</html style=";text-align:right;direction:rtl">= &quot;دائما&quot;&gt; الصفحات -مع-next.within <tbody><tr><td></td><td rowspan="2"> شبكة مستطيلة </td><td colspan="2"> شبكة الذراع </td></tr><tr><td></td><td> جسم مركزي </td><td> أسلحة </td></tr><tr><td> الأبعاد (مم × مم) </td><td> 30 × 40 </td><td> 30 × 40 </td><td> 10 × 150 </td></tr><tr><td> سمك (مم) </td><td> 0.54 </td><td> 0.54 </td><td> 0.7 </td></tr><tr><td> الوزن (ز / م 2 ) </td><td> 83 </td><td> 83 </td><td> 73 </td></tr><tr><td> حجم المسام (مم 2 ) </td><td> 2.5 × 2.5 </td><td> 2.5 × 2.5 </td><td> 1.0 × 1.4 </td></tr><tr><td> صلابة (N / مم) </td><td> 0.3 </td><td> 0.3 </td><td> 14.7 </td></tr><tr><td> مؤشر متباين الخواص60. </td><td> 1.3 </td><td> 1.3 </td><td> 7.5 </td></tr></tbody></table> الجدول 1: خصائص المواد الجافة. ويبين الجدول الخصائص المادية للشبكة مستطيلة وشبكة مع رسو الأسلحة. تم الحصول على صلابة ومؤشر متباين الخواص من مورر وآخرون 18 .

Watch this Scientific Journal Video about Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model at JoVE.com

Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model

يصف هذا البروتوكول زرع شبكة في الحاجز ريكتوفاجينال المبيض باستخدام تقنية شق مهبلي واحد، مع وبدون إدراج مبزل موجهة من الأسلحة رسو.

ترانزفاجينال شبكة الإدراج في نموذج أوفين

This protocol describes mesh insertion into the rectovaginal septum in sheep using a single vaginal incision technique, with and without the trocar-guided ...

transvaginal-mesh-insertion-in-the-ovine-model

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

15.9K Views.  Clinical Specialties Research Groups, Faculty of Medicine, KU Leuven.  يصف هذا البروتوكول زرع شبكة في الحاجز ريكتوفاجينال المبيض باستخدام تقنية شق مهبلي واحد، مع وبدون إدراج مبزل موجهة من الأسلحة رسو. 

Video: Transvaginal Mesh Insertion in the Ovine Model

An Orthotopic Endometrial Cancer Model with Retroperitoneal Lymphadenopathy Made From In Vivo Propagated and Cultured VX2 Cells

Endometrial cancer is the most common gynecologic malignancy in North America and the incidence is rising worldwide. Treatment consists of surgery with or without adjuvant therapy depending on lymph node involvement as determined by lymphadenectomy. Lymphadenectomy is a morbid procedure, which has not been shown to have a therapeutic benefit in many patients, and thus a new method to diagnose lymph node metastases is required. To test novel imaging agents, a reliable model of endometrial cancer with retroperitoneal lymph node metastases is needed. The VX2 endometrial cancer model has been described frequently in the literature; however, significant variation exists with respect to the method of model establishment. Furthermore, no studies have reported on the use of cultured VX2 cells to create this model as only cells propagated in vivo have been previously used. Herein, we present a standardized surgical method and post-operative monitoring method for the establishment of the VX2 endometrial cancer model and report on the first use of cultured VX2 cells to create this model.

This protocol presents a standardized method to grow VX2 cells in culture and to create an orthotopic VX2 model of endometrial cancer with retroperitoneal lymph node metastases in rabbits. Orthotopic endometrial cancer models are important for the pre-clinical study of novel imaging modalities for the diagnosis of lymph node metastases.

نموذج سرطان بطانة الرحم التثهي مع اعتلال الغدد الليمفاوية الرجعية المصنوعة من في فيفو الخلايا VX2 المنتشرة والمستزرعة

Endometrial cancer is the most common gynecologic malignancy in North America and the incidence is rising worldwide. Treatment consists of surgery with or ...

Cancer Research

Anterior Cervical Discectomy and Fusion in the Ovine Model

Anterior cervical discectomy and fusion (ACDF) is the most common surgical operation for cervical radiculopathy and/or myelopathy in patients who have failed conservative treatment1,5. Since the operation was first described by Cloward2 and Smith and Robinson6 in 1958, a variety refinements in technique, graft material and implants have been made3. In particular, there is a need for safe osteoinductive agents that could benefit selected patients. The ovine model has been shown to have anatomical, biomechanical, bone density and radiological properties that are similar to the human counterpart, the most similar level being C3/44. It is therefore an ideal model in which preclinical studies can be performed. In particular this methodology may be useful to researchers interested in evaluating different devices and biologics, including stem cells, for potential application in human spinal surgery.

This video demonstrates the technique of anterior cervical discectomy and fusion in the ovine model.

استئصال القرص العنقي الأمامي والانصهار في نموذج الأغنام

Anterior cervical discectomy and fusion (ACDF) is the most common surgical operation for cervical radiculopathy and/or myelopathy in patients who have ...

Biology

Methods for Studying Uterine Contributions to Pregnancy Establishment in an Ovariectomized Mouse Model

For pregnancy to be established, a viable blastocyst must successfully interact with a receptive uterine lining (endometrium) to facilitate implantation and placenta formation and enable ongoing pregnancy. The limitations to pregnancy success caused by embryonic defects are well known and have been largely overcome in recent decades with the rise of in vitro fertilization (IVF) and assisted reproductive technologies. As yet, however, the field has not overcome the limitations caused by an inadequately receptive endometrium, thus resulting in stagnating IVF success rates. Ovarian and endometrial functions are closely intertwined, as hormones produced by the ovary are responsible for the endometrium's menstrual cyclicity. As such, when using rodent models of pregnancy, it can be difficult to ascertain whether an observed result is due to an ovarian or uterine deficit. To overcome this, an ovariectomized mouse model was developed with embryo transfer or artificial decidualization to allow the study of uterine-specific contributions to pregnancy. This article will provide instructions on how to perform ovariectomy and offer insights into various techniques for supplying exogenous hormones to support successful artificial decidualization or pregnancy following embryo transfer from healthy donors. These techniques include subcutaneous injection, slow-release pellets, and osmotic mini pumps. The key advantages and disadvantages of each method will be discussed, enabling researchers to choose the best study design for their specific research question.

Pregnancy establishment is a dynamic process involving complex embryo and uterine crosstalk. The precise contributions of the maternal uterine environment to these processes remain an active area of investigation. Here, detailed protocols are provided to aid in designing in vivo animal models to address these research questions.

طرق دراسة مساهمات الرحم في تأسيس الحمل في نموذج فأر استئصال المبيض

For pregnancy to be established, a viable blastocyst must successfully interact with a receptive uterine lining (endometrium) to facilitate implantation ...

Developmental Biology

In Vivo Real-Time Study of Drug Effects on Carotid Blood Flow in the Ovine Fetus

The ability of an organism to maintain a constant blood flow to the brain in response to sudden surges in systemic blood pressure (BP) is known as cerebral autoregulation (CAR), which occurs in the carotid artery. In contrast to full-term neonates, preterm neonates are unable to reduce the cerebral blood flow (CBF) in response to increased systemic BP. In preterm neonates, this exposes the fragile cerebral vessels to high perfusion pressures, leading to their rupture and brain damage. Ex vivo studies using wire myography have demonstrated that carotid arteries from near-term fetuses constrict in response to the activation of adrenergic alpha1 receptors. This response is blunted in the preterm fetus. Thus, to examine the role of alpha1-AR in vivo, presented here is an innovative approach to determine the effects of drugs on a carotid arterial segment in vivo in an ovine fetus during the developmental progression of gestation. The presented data demonstrate the simultaneous measurement of fetal blood flow and blood pressure. The perivascular delivery system can be used to conduct a long-term study over several days. Additional applications for this method could include viral delivery systems to alter the expression of genes in a segment of the carotid artery. These methods could be applied to other blood vessels in the growing organism in utero as well as in adult organisms.

In Vivo Real-Time Study of Drug Effects on Carotid Blood Flow in the Ovine Fetus

The present protocol describes a method to deliver drugs and gene expression-modifying agents perivascularly in an in utero developing fetus. Importantly, the effect of drugs/agents on blood flow can be measured with the progression of pregnancy.

في الجسم الحي دراسة في الوقت الحقيقي لتأثيرات الدواء على تدفق الدم السباتي في جنين الأغنام

The ability of an organism to maintain a constant blood flow to the brain in response to sudden surges in systemic blood pressure (BP) is known as ...

Ovine Lumbar Intervertebral Disc Degeneration Model Utilizing a Lateral Retroperitoneal Drill Bit Injury

Intervertebral disc degeneration is a significant contributor to the development of back pain and the leading cause of disability worldwide. Numerous animal models of intervertebral disc degeneration have been developed. The ideal animal model should closely mimic the human intervertebral disc with regard to morphology, biomechanical properties and the absence of notochordal cells. The sheep lumbar intervertebral disc model fulfils these criteria. We present an ovine model of intervertebral disc degeneration utilizing a drill bit injury through a lateral retroperitoneal approach. The lateral approach significantly reduces the incision and potential morbidity associated with the traditional anterior approach to the ovine spine. Utilization of a drill-bit method of injury affords the ability to produce a consistent and reproducible injury, of precise dimensions, that initiates a consistent degree of intervertebral disc degeneration. The focal nature of the annular and nucleus pulposus defect more closely mimics the clinical condition of focal intervertebral disc herniation. Sheep recover rapidly following this procedure and are typically mobile and eating within the hour. Intervertebral disc degeneration ensues and sheep undergo necropsy and subsequent analysis at periods from eight weeks. We believe that the drill bit injury model of intervertebral disc degeneration offers advantages over more conventional annular injury models.

Intervertebral disc degeneration is a significant contributor to back pain and a leading cause of disability worldwide. Numerous animal models of intervertebral disc degeneration exist. We demonstrate an ovine model of intervertebral disc degeneration, utilizing a drill bit, which achieves a consistent disc injury and reproducible level of disc degeneration.

أوفين القطني الفقرية نموذج التنكس القرص الاستفادة من الجانبي خلف الصفاق مثقاب إصابة

Intervertebral disc degeneration is a significant contributor to the development of back pain and the leading cause of disability worldwide. Numerous ...

Intravitreal Injections in the Ovine Eye

There are several methods for the delivery of therapeutic agents to the retina, including intravitreal (IVT), subretinal, suprachoroidal, periocular, or topical administration. IVT drug delivery involves an injection into the vitreous humor of the eye, a gelatinous substance that fills the posterior chamber of the eye and maintains the shape of the eye globe. Although the IVT route is less specifically targeted than subretinal delivery, it is much less invasive and is widely used in clinical settings for a range of ocular diseases. 
We previously demonstrated the efficacy of intravitreal delivery of an adeno-associated virus (AAV)-mediated gene therapy product (AAV9.CLN5) in sheep with a naturally occurring CLN5 form of neuronal ceroid lipofuscinosis (NCL). Affected sheep received IVT gene therapy in one eye, with the other untreated eye serving as an internal control. Retinal structure and function were maintained in the treated eye up to 15 months after treatment, while the untreated eye displayed progressively declining function and severe atrophy during postmortem examination. Based on the sheep studies, the CLN5 gene therapy product was cleared as a candidate investigational new drug (IND) by the United States Food and Drug Administration in September 2021. This paper details the surgical protocol for IVT delivery of a therapeutic viral vector to the ovine eye.

Intravitreal injections were performed in the sheep eye with the aim of delivering viral-mediated gene therapy to the retina.

الحقن داخل الجسم الزجاجي في عين الأغنام

There are several methods for the delivery of therapeutic agents to the retina, including intravitreal (IVT), subretinal, suprachoroidal, periocular, or ...

Development of a Uterosacral Ligament Suspension Rat Model

Pelvic organ prolapse (POP) is a common pelvic floor disorder (PFD) with the potential to significantly impact a woman's quality of life. Approximately 10%-20% of women undergo pelvic floor repair surgery to treat prolapse in the United States. PFD cases result in an overall $26.3 billion annual cost in the United States alone. This multifactorial condition has a negative impact on the quality of life and yet the treatment options have only dwindled in the recent past. One common surgical option is uterosacral ligament suspension (USLS), which is typically performed by affixing the vaginal vault to the uterosacral ligament in the pelvis. This repair has a lower incidence of complications compared to those with mesh augmentation, but is notable for a relatively high failure rate of up to 40%. Considering the lack of standard animal models to study pelvic floor dysfunction, there is an urgent clinical need for innovation in this field with a focus on developing cost-effective and accessible animal models. In this manuscript, we describe a rat model of USLS involving a complete hysterectomy followed by fixation of the remaining vaginal vault to the uterosacral ligament. The goal of this model is to mimic the procedure performed on women to be able to use the model to then investigate reparative strategies that improve the mechanical integrity of the ligament attachment. Importantly, we also describe the development of an in situ tensile testing procedure to characterize interface integrity at chosen time points following surgical intervention. Overall, this model will be a useful tool for future studies that investigate treatment options for POP repair via USLS.

Pelvic organ prolapse affects millions of women worldwide and yet some common surgical interventions have failure rates as high as 40%. The lack of standard animal models to investigate this condition impedes progress. We propose the following protocol as a model for uterosacral ligament suspension and in vivo tensile testing.

تطوير نموذج فأر معلق الرباط الرحمي العجزي

Pelvic organ prolapse (POP) is a common pelvic floor disorder (PFD) with the potential to significantly impact a woman's quality of life. Approximately ...

Chronic Ovine Model of Right Ventricular Failure and Functional Tricuspid Regurgitation

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to suboptimal clinical results. We set out to establish a chronic ovine model of FTR and right heart failure to investigate the mechanisms of FTR. Twenty adult male sheep (6-12 months old, 62 &#177; 7 kg) underwent a left thoracotomy and baseline echocardiography. A pulmonary artery band (PAB) was placed and cinched around the main pulmonary artery (PA) to at least double the systolic pulmonary artery pressure (SPAP), inducing right ventricular (RV) pressure overload and signs of RV dilatation. PAB acutely increased the SPAP from 21 &#177; 2 mmHg to 62 &#177; 2 mmHg. The animals were followed for 8 weeks, symptoms of heart failure were treated with diuretics, and surveillance echocardiography was used to assess for pleural and abdominal fluid collection. Three animals died during the follow-up period due to stroke, hemorrhage, and acute heart failure. After 2 months, a median sternotomy and epicardial echocardiography were performed. Of the surviving 17 animals, 3 developed mild tricuspid regurgitation, 3 developed moderate tricuspid regurgitation, and 11 developed severe tricuspid regurgitation. Eight weeks of pulmonary artery banding resulted in a stable chronic ovine model of right ventricular dysfunction and significant FTR. This large animal platform can be used to further investigate the structural and molecular basis of RV failure and functional tricuspid regurgitation.

Right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation are associated with left-sided heart disease and pulmonary hypertension, which contribute significantly to morbidity and mortality in patients. Establishing a chronic ovine model to study right ventricular failure and functional tricuspid regurgitation will help in understanding their mechanisms, progression, and possible treatments.

نموذج الأغنام المزمن لفشل البطين الأيمن والقلس الوظيفي ثلاثي الشرف

The pathophysiology of severe functional tricuspid regurgitation (FTR) associated with right ventricular dysfunction is poorly understood, leading to ...

<meta charset="utf8"></head><body>تحسين نقل الأجنة في قناة البيض في الخنازير المستنسخة

Embryo Transfer Surgery via Laparotomy in Gilts

This protocol aims to demonstrate the surgical technique for transferring cloned pig embryos to the oviduct, a method widely used in the production of genetically modified pigs for biomedical research. Nine gilts underwent hormonal synchronization and laparotomy for the transfer of cloned embryos produced by somatic cell nuclear transfer (SCNT) at stages of up to 4 cells on day 2 to the oviduct. Gestational diagnosis was conducted via ultrasound examination 30 days post-transfer surgery. Six out of the nine operated gilts exhibited signs of pregnancy on ultrasound examination. However, as there was no progression in fetal development as assessed by echography, the gilts underwent necropsy at 60 days for the collection of biological material and assessment of the reproductive system. Adhesions were observed in the uterine horns, ovaries, and oviducts. From the uterine lumen of two of the euthanized gilts, one and four embryonic structures with gestational ages ranging between 12 to 20 days were obtained. Despite the absence of live piglets, likely attributed to the low-efficiency rate of transferring cloned pig embryos, which is influenced by various factors, including the number and quality of transferred embryos, the presented surgical technique proved to be rapid and safe.

<meta charset="utf8"></head><body>أضواء الكاتب: الطرق الجراحية والنتائج في عمليات نقل أجنة الخنازير المستنسخة في قناة البيض

This protocol describes the application of the surgical technique used to transfer cloned pig embryos via laparotomy in gilts.

جراحة نقل الأجنة عن طريق شق البطن في الذهب

This protocol aims to demonstrate the surgical technique for transferring cloned pig embryos to the oviduct, a method widely used in the production of ...

ترانزفاجينال شبكة الإدراج في نموذج أوفين

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

نموذج سرطان بطانة الرحم التثهي مع اعتلال الغدد الليمفاوية الرجعية المصنوعة من في فيفو الخلايا VX2 المنتشرة والمستزرعة

استئصال القرص العنقي الأمامي والانصهار في نموذج الأغنام

طرق دراسة مساهمات الرحم في تأسيس الحمل في نموذج فأر استئصال المبيض

في الجسم الحي دراسة في الوقت الحقيقي لتأثيرات الدواء على تدفق الدم السباتي في جنين الأغنام

أوفين القطني الفقرية نموذج التنكس القرص الاستفادة من الجانبي خلف الصفاق مثقاب إصابة

الحقن داخل الجسم الزجاجي في عين الأغنام

تطوير نموذج فأر معلق الرباط الرحمي العجزي

نموذج الأغنام المزمن لفشل البطين الأيمن والقلس الوظيفي ثلاثي الشرف

جراحة نقل الأجنة عن طريق شق البطن في الذهب

جراحة نقل الأجنة عن طريق شق البطن في الذهب