CDM נתמכה על ידי איגוד המנתחים האמריקאי (ACS) מלגת מחקר תושב. MSH נתמכה על ידי המכון בקליפורניה רפואה רגנרטיבית (CIRM) מענק הכשרה עמית קליני TG2-01159. MSH, פורמייקה, ו MTL נתמכו על ידי האגודה האמריקנית של ולסת המנתחים (Asms) / ולסתות קרן המנתחים (MSF) מענק מחקר פרס. HPL נתמכה על ידי מענק NIH R01 GM087609 ואת מתנת אינגריד Lai וביל שו לכבוד אנתוני שו. HPL ו MTL נתמכו על ידי המעבדה Hagey עבור רפואה רגנרטיבית Pediatric וקרן אלון. MTL נתמכה על ידי קרן גאן / אוליבייה.

הפרוטוקול הבא אושר על ידי הטיפול בבעלי החיים מוסדי אונ&#39; סטנפורד ועדת שימוש (IACUC) ואת עומד בכל ההנחיות האתיות המוסדיות לגבי השימוש בבעלי חיים למחקר. 1. יצירת הידבקויות בטן <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את העכבר על דיאטה צ&#39;או אנטיביוטי שבוע לפני ההליך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חיטוי מכשירי ניתוח טרום חם פתרון ההשקיה המלוחה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את העכבר באמצעות 2% isoflurane בשאיפה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות גוזז שיער ואחריו יישום מהיר (5 - 10 שניות) של סוכן מקריח, להסיר את השיער מן הרוב של פני השטח של הבטן. ביסודיות להסיר את סוכן המקריח ידי מנגב בעדינות עם גזה רטובה, לחלופין, על ידי הטבילה בעיון את החצי התחתון של העכבר לתוך מים חמים. ביסודיות לייבש את החיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את האף של בעל החיים לתוך חרטומו הרדמה. במהלך הניתוח כולו, בזהירות לפקח על rשיעור espiratory של החיה לכייל את קצב זרימת ההרדמה כנדרש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש במכשיר התחממות, כגון כרית חימום או מנורת חימום, כדי למנוע היפותרמיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפני prepping הבטן, לאבטח את העכבר עם רצועות של סרט להציב מעל ומתחת הבטן כדי למנוע את העכבר מן הסטה במהלך הניתוח. לחטא את הבטן עם בבטאדין, ולאחר מכן פעל עם 70% אתנול. כלול כמו הרבה שטח ככל האפשר הכנה, כולל השיער על הקצוות של האזור המגולח. מניחים וילון סטרילי על העכבר. (איור 1) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תת עורי להזריק 0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג עצירות, או 3 מיקרוגרם עבור עכבר 30 גרם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפוך את החתך בעור. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל קו אמצע הבטן התחתון, לתפוס את העור עם מלקחיים ולעשות חתך אנכי רדוד בעור באמצעות מספריים חדים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Carry הקיצוץ superiorly אל xyphoid עם המספריים. תשמור על עצמך כדי להזין רק את העור. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ככל השרירים בבטן הוא now גלוי מכסה את הקרביים, לתפוס את קו האמצע של השרירים עם מלקחיים ובזהירות מאוד לעשות חתך קטן לתוכו באמצעות מספריים חדים. ודא שלא לחתוך בטעות לתוך איבר בטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר הזנת שטח הצפק עם חתך קטן רואה את השכבה השרירית להתרחק אברי בטן, להאריך את החתך superiorly ו inferiorly על ידי החדרה המספרית לתוך הפתח והחיתוך בזהירות בשני הכיוונים. הרחב את החתך מן xyphoid superiorly אל מעל השלפוחית ​​inferiorly. (איור 2) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> עכשיו כי קרבים נחשפים, לאתר את cecum בעדינות exteriorize זה. הימנע לתפוס את cecum עם מלקחי שיניים או חדים. במקום להשתמש במלקחיים atraumatic כגון מלקחיים משוננים Adson. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לגרד את cecum עם נייר זכוכית. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעדינות לגרד את פני השטח של שני הצדדים של cecum עם 100 נייר זכוכית חצץ עבור 30 - 60 שניות עד פני השטח הופך פחות appea מבריק petechiaer על פני השטח. אם המנתח הוא ימני, זה עוזר לכוון את cecum עם הקצה מול ימינה לעטוף את cecum על אצבע המורה השמאלית של המנתח. (איור 3) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בצע את המלטש בעדינות, כפי שהוא קל לגרום ניקוב בטעות של קיר cecal הדק. כמות קטנה של חוליות אמורה להרגיש כמו הנייר הזכוכית מועברת על פני שטח cecal. אם נייר זכוכית מורגשת לתפוס שוב ושוב על cecum, זה צפוי להביא דמעה בקיר cecal. צפה בקפידה על מנת להבטיח כי חלקיקים של נייר זכוכית לא לעקור ולהישאר בבטן, מכיוון שהדבר עלול לגרום לתגובה גוף זר מוגזמת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם דמעה בקיר cecal מתרחשת, לסיים את ההליך להרדימו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אם כלי דם cecal הוא טעון על ידי נייר הזכוכית וגורמים לדימום, להחזיק לחץ עד שתי דקות עם גזה. עם זאת, אם הדימום נמשך אחרי הפעם, במקום תפר הספרה שמונה 7-0 monofilament סביבנקודת הדימום. זה יעצור את הדימום באופן מהימן כמעט בכל המקרים. יש להיזהר שלא לשלב כמות גדולה של קיר cecal לתוך התפר, כמו זה סיכוני גרימת נימק של חלק המעורב של הקיר. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לפצוע את דפנות בטן התקינות. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש ברב של נייר זכוכית כדי לגרד את פני השטח הצפק של השריר של דפנות בטן התקינות. להיות יותר אגרסיביים עם מלטש כאן מאשר על cecum ולהמשיך עד פני השטח של דפנות תקין בטן מופיע מחוסל. הימנע מלטש כל כך קשה כי העור גלוי דרך פתחים בשכבת השרירים. (איור 4) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש נהג מחט קסטרו-Viejo, למקם בין שתיים לארבע הספרה שמונה 4-0 תפרים משי לתוך שכבת השרירים של דפנות בטן תקין. השאר את הזנבות באורך 5 מ&quot;מ. יש להיזהר שלא לתפוס מעי קיר בטעות לתוך התפר. (איור 5) </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות מזרק 10 מ&quot;ל מלא wה- i חמם מלוח, להשקות את המעיים כמה פעמים. כוון את הזרם של מי מלח לתוך חלל הבטן כדי להשקות את פן גם כן. אם השטח מתחת העכבר הופך ספוג, להזיז את העכבר מעל או להחליף את השטח, כדי למנוע היפותרמיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש גזה סטרילי להציב על החתך כדי לספוג השקיה עודפת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קח קמצוץ של עמילן ומפזר אותו על פני השטח של הדפנות התקינים בטן על שני הצדדים של cecum. (איור 6) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא כי אין דימום פעיל. אם יש, להשתמש בספוג גזה להפעיל לחץ ישיר על נקודת הדימום עד שייעצר. אם הדימום לא נעצר בקלות, למקם תפר עוצר דמום כמתואר לעיל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש בקצה הקהה של מלקחי אצבע, בעדינות לדחוף את המעיים בחזרה לתוך חלל הבטן. מקם את cecum ליד התפרים בתוך דפנות הבטן הנכונות על מנת למקסם את היווצרות הידבקות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Cלאבד את החתך בבטן. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות 6-0 תפר קלוע נספג, במקום תפר רץ לתוך השכבה השרירית בראש החתך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את התפר למטה לכיוון חלק התחתון של החתך, וקירוב השכבה השרירית. מסעות בכ -3 מ&quot;מימ ולקחת 3 ביסים מ&quot;מ עם כל תפר חדש. תשמור על עצמך לא לקחת בטעות ביס של מעי תוך שימת תפרים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בתחתית החתך, לעזוב לולאה של תפר מהנשיכה הקודמת ולהשתמש זה מכשיר לקשור התפר. חותך את התפר עוזב 5 מ&quot;מ זנבות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור על שלושת השלבים לעיל עם תפר 6-0 ניילון monofilament כדי לסגור את העור. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לנהל 20 מ&quot;ל / בולוס מלוחים תת עורית ק&quot;ג (בערך 0.5 מ&quot;ל עבור עכבר 30 גרם). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות גזה יבשה, לייבש את החיה כולה ביסודיות, כמו הפרווה הגבה נוטה להירטב במהלך השקיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> רופף לעטוף דבק ההלבשה סביב הבטן כדי לכסות את החתך. יש להיזהר שלא להגביל אהרגליים או מכניקת נשימה של nimal עם הרוטב. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בזהירות לפקח על בעלי החיים כפי שהוא מתאושש מן ההרדמה. נהל עצירות כל 12 שעות במשך 2-3 ימים לאחר ההליך לשליטה בכאב. </li></ol> 2. רקמות קציר הדבקה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חכה לפחות שבעה ימים לאחר הניתוח הראשוני. שוב, חיטוי מכשירי ניתוח להרדים את העכבר עם isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעקר את הבטן עם בבטאדין ואחריו אתנול 70%. להתגלח את שער שיער נוסף מהצד הימני של הבטן, כך דגימת ההידבקות המכילה עור לא תהיה מכוסית בשיער, מה שהופך היסטולוגיה יותר קשה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש חתך paramedian עזב, מאז מעי לעתים קרובות דבוק החתך המקורי. החל בקצה התחתון של הבטן, כ -5 מ&quot;מימ מהשמאל בתחתית החתך המקורי, לתפוס את העור עם מלקחיים קטנים שיניים וחותכים את העור עם מספריים חדים. הרחב זה לחתוך מעולהly אל בית החזה. (איור 7) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים, לחתוך לתוך שכבת השרירים ואחרי הכניסה למקום הצפק, להאריך את לחתוך את החלק העליון והתחתון של החתך. תהיינה רקמות דבקות בגרימת cecum ואת המעי דק לדבוק דפנות ימין של הבטן ואולי גם החתך המקורי. (איור 8) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בעזרת מספריים והחל מ קצה של החתך, מעל לרמה של cecum, להתחיל לחתוך לתוך דופן הבטן במעגל מסביב לאזור שבו המעי הוא חסיד. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לסירוגין מעל ומתחת לרמה של cecum, בהדרגה לחתוך את כל הדרך סביב ההידבקות לסגור את המעגל, מניב &quot;אי&quot; של עור חסיד דופן בטן אל המעי. (איור 9) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שוב באמצעות מספריים, לחתוך לתוך המעי ולהפריד החלק חסיד משאר המעי, מניב כריך של רקמות שמורכבת העור דופן הבטןמצד אחד, מעי בצד השני, ורקמות דבקות מחבר בין שני שביניהם. (איור 10) </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחלופין, להשתמש במספריים מחודדים כדי להפריד את העור בצורה חדה מן השריר בדופן בטן. עבור היסטולוגיה לשקול לעזוב את העור המצורף, אבל לבידוד עיכול תא העור ניתן להסיר. אם הרקמה ישמש היסטולוגיה, הקפד להסיר חומר תפר ככל האפשר מבלי להפריע ממשק דבק יתר על המידה. לעיכול לצינוק מקובל להשאיר את התפרים במקום כל עוד הרקמה לעכל מסונן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר מוציא רקמות הידבקות, להרדים את העכבר באמצעות שיטה הומנית שאושרה על ידי ועדת השימוש בבעלי חיים המוסדית שלך. </li></ol>

<ol>
	<li>Ellis, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Adhesion-related+hospital+readmissions+after+abdominal+and+pelvic+surgery:+a+retrospective+cohort+study.">Adhesion-related hospital readmissions after abdominal and pelvic surgery: a retrospective cohort study.</a> Lancet. 353 (9163), 1476-1480 (1999).</li><li>Brochhausen, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Current+strategies+and+future+perspectives+for+intraperitoneal+adhesion+prevention.">Current strategies and future perspectives for intraperitoneal adhesion prevention.</a> J Gastrointest Surg. 16 (6), 1256-1274 (2012).</li><li>diZerega, G. S., Campeau, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Peritoneal+repair+and+post-surgical+adhesion+formation.">Peritoneal repair and post-surgical adhesion formation.</a> Hum Reprod Update. 7 (6), 547-555 (2001).</li><li>Hellebrekers, B. W., Kooistra, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+postoperative+adhesion+formation.">Pathogenesis of postoperative adhesion formation.</a> Br J Surg. 98 (11), 1503-1516 (2011).</li><li>Herrick, S. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Human+peritoneal+adhesions+are+highly+cellular,+innervated,+and+vascularized.">Human peritoneal adhesions are highly cellular, innervated, and vascularized.</a> J Pathol. 192 (1), 67-72 (2000).</li><li>Beyene, R. T., Kavalukas, S. L., Barbul, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-abdominal+adhesions:+Anatomy,+physiology,+pathophysiology,+and+treatment.">Intra-abdominal adhesions: Anatomy, physiology, pathophysiology, and treatment.</a> Curr Probl Surg. 52 (7), 271-319 (2015).</li><li>ten Broek, R. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Benefits+and+harms+of+adhesion+barriers+for+abdominal+surgery:+a+systematic+review+and+meta-analysis.">Benefits and harms of adhesion barriers for abdominal surgery: a systematic review and meta-analysis.</a> Lancet. 383 (9911), 48-59 (2014).</li><li>Becker, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Prevention+of+postoperative+abdominal+adhesions+by+a+sodium+hyaluronate-based+bioresorbable+membrane:+a+prospective,+randomized,+double-blind+multicenter+study.">Prevention of postoperative abdominal adhesions by a sodium hyaluronate-based bioresorbable membrane: a prospective, randomized, double-blind multicenter study.</a> J Am Coll Surg. 183 (4), 297-306 (1996).</li><li>Cassidy, M. R., Sherburne, A. C., Heydrick, S. J., Stucchi, A. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Combined+intraoperative+administration+of+a+histone+deacetylase+inhibitor+and+a+neurokinin-1+receptor+antagonist+synergistically+reduces+intra-abdominal+adhesion+formation+in+a+rat+model.">Combined intraoperative administration of a histone deacetylase inhibitor and a neurokinin-1 receptor antagonist synergistically reduces intra-abdominal adhesion formation in a rat model.</a> Surgery. 157 (3), 581-589 (2015).</li><li>Thaler, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coincidence+of+connective+tissue+growth+factor+expression+with+fibrosis+and+angiogenesis+in+postoperative+peritoneal+adhesion+formation.">Coincidence of connective tissue growth factor expression with fibrosis and angiogenesis in postoperative peritoneal adhesion formation.</a> Eur Surg Res. 37 (4), 235-241 (2005).</li><li>Hong, G. S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+macrophage-dependent+peroxisome+proliferator-activated+receptor+gamma+signalling+on+adhesion+formation+after+abdominal+surgery+in+an+experimental+model.">Effects of macrophage-dependent peroxisome proliferator-activated receptor gamma signalling on adhesion formation after abdominal surgery in an experimental model.</a> Br J Surg. 102 (12), 1506-1516 (2015).</li><li>Whang, S. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+search+of+the+best+peritoneal+adhesion+model:+comparison+of+different+techniques+in+a+rat+model.">In search of the best peritoneal adhesion model: comparison of different techniques in a rat model.</a> J Surg Res. 167 (2), 245-250 (2011).</li><li>Buckenmaier, C. C., Pusateri, A. E., Harris, R. A., Hetz, S. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+antiadhesive+treatments+using+an+objective+rat+model.">Comparison of antiadhesive treatments using an objective rat model.</a> Am Surg. 65 (3), 274-282 (1999).</li><li>Rajab, T. K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+model+for+the+induction+of+experimental+adhesions.">An improved model for the induction of experimental adhesions.</a> J Invest Surg. 23 (1), 35-39 (2010).</li></ol>

החוקרים מצהירים כי אין להם אינטרסים כלכליים מתחרים.

השלבים הקריטיים בהליך זה הם: ביסודיות ששרטו את cecum מבלי לגרום ניקוב, צבת תפרים בתוך דפנות הבטן, וליישם את הכמות הנכונה של עמילן. רק להחיל נייר זכוכית אל cecum, או לחלק מסוים קטן של המעי. שימוש רחב של נייר זכוכית על כמויות גדולות של מעי דק נוטה לגרום ileus משמעותי. תשמור על עצמך כדי לגרד את cecum עם מספיק כוח שהמשטח הופך מחוספס, אבל לא עד כדי כך את דמעות הקיר. מציאת איזון זה יכול לקחת קצת זמן. תמיד טפל המעי בזהירות ולהימנע באמצעות מלקחיים חדים או שיניים לתמרן מעי. זה קל לגרום בטעות דימום על ידי גרירה לפדר המעי הדק עם מלקחיים או על ידי משיכת המעי מדי בכוח. אם דמעה מתרחשת בקיר cecal, ההליך צריך להסתיים ואת החיה מורדמת. מניסיוננו, תוצאות מדמיעות cecal במוות של החיה לאחר כמה ימים, גם אם הקריעה היא RepaIRED היטב. בנוסף, דמעה של קיר cecal תגרום שפיכת השרפרף שתשפיע על התגובה הדלקתית באופן בלתי צפוי. המוסטאסיס חייב להיות שלם בסוף ההליך. כמה כלי דימום יהיה לפתוח מחדש ולהתחיל לדמם לאחר שנראה כי הפסיק. במקרה של ספק, להציב monofilament נספגים הספרה שמונה תפר סביב נקודת דימום. סוג של תפר זה עדיף על משי או קלוע תפר נספג כי זה יכול להיות משך אף הרקמה עם התנגדות מינימלית. עם זאת מצאנו כי משי או קלוע תפר נספג הוא יעיל ביותר דפנות בטן גרימת הידבקויות, כפי monofilament הוא פחות דלקתי. יישום של עמילן בסוף ההליך מסייע להגדיל את ההיווצרות של הידבקויות, אך גילינו כי כמות מוגזמת של עמילן תגרום תגובה דלקתית שגורמת למוות. העמילן צריך להיות מפוזר על lightly. לא צריך להיות עד כדי כך הוא יוצר שכבה מוצקה. כאשר הראשון ללמוד הליך זה, מקובל להפסיד עכברים מספר. מניסיוננו הגורמים השכיחים ביותר למוות הם התייבשות עקב ileus נגרמת על ידי שחיקה נמרץ מדי של מעי, ואלח-דם עקב ניקוב מעיים. מוות שנגרם על ידי דימום יכול להתרחש אם המוסטאסיס מלא אינו מושג בסוף הניתוח. אם היווצרות הידבקות אינה מספקת, לשקול שימוש שחיקה אגרסיבית יותר של cecum ואת הדפנות ימניות וסיים יותר עמילן, או צבת תפרים יותר על דפנות בטן. מניסיוננו, מחכה פחות משבוע לפני פתיחתו מחדש את תוצאות הבטן בתוך פחות היווצרות הדבקה נאותה. מצד השני, אם שיעור התמותה של עכברים לאחר הניתוח הוא גבוה, שקול להשתמש שחיקה פחות אגרסיווי של cecum, בוחן מקרוב יותר עבור המוסטאסיס, ומיישום עמילן פחות. כמו כן, חשוב לעקוב אחר בזהירותשיעור הנשימה של העכבר במהלך הניתוח. לאחר הניסיון הרווחי מנתח עם הליך זה, תמותה צריכה להיות פחות מ -10%. טכניקה זו נועדה ליצור הידבקויות בעיקר בין cecum ואת דפנות בטן התקינות. הידבקויות גם יהוו לעתים קרובות בין המעי הדק, הכבד, ואת חתך קו האמצע. באמצעות טכניקה זו בדרך כלל לא לגרום הידבקויות בצד השמאלי של הבטן. הגבלה של טכניקה זו היא כי הידבקויות בין מעי דופן בטן נוטות יותר יוצר יותר הידבקויות בין הלולאות של מעי. בנוסף, הוא אינו צפוי לגרום רקמות מלאות של דבק בטן קפוא לחלוטין, אשר נתפסה לעתים קרובות אצל בני אדם שעברו מספר ניתוחים. כפי שנאמר במבוא, טכניקות רבות להפקת הידבקויות בטן בעכברים ומינים אחרים, במיוחד עכברוש, תוארו בספרות 6,12-14. ישנם הרבה פחות שפורסם protoco<html> ls ליצירת הידבקויות בעכברים. אנו משערים כי בגלל יצירת הידבקויות בעכברים היא יותר קשה מאשר אצל חולדות, רוב החוקרים בחרו לפתח את הטכניקה שלהם בחולדה. עם זאת, בגלל הזמינות הגדולה יותר של עכברים טרנסגניים ונוגדנים אנטי עכבר, אנו מאמינים כי הוא יקר להם מודל חזק ליצירת הדבקה בעכברים, למרות הקושי הטכני יותר. פתחנו פרוטוקול זה לאחר שניסה רב של פרוטוקולי עכברוש שפורסם. מצאנו כי שיטות ליצירת הידבקויות בחולדה, כגון שימוש electrocautery על cecum, לעתים קרובות לגרום עכברים למות. לא היינו מרוצים צפיפות של הידבקויות המיוצר על ידי טכניקות שמשתמשות התערבות יחיד, כגון הצבת כפתורים איסכמי דפנות לבד, או רק abrading cecum. הטכניקה אנו מציגים כאן מייצג שילוב של התערבויות שמצאנו, באמצעות ניסוי וטעייה, לייצר הידבקויות בעקביות תוך מזעור התמותה. תוכן &quot;&gt; מכיוון טכניקה זו גורמת רקמות דבקות בעקביות כדי ליצור בין cecum ואת הדפנות, אנו מאמינים כי הוא אידיאלי להתערבויות בדיקה נועדו להפחית היווצרות הידבקות. כמו כן טכניקה זו יכולה לשמש כדי לחקור את המסלולים המולקולריים סוגי תאים, כי הם המעורבים ביצירת הדבקה. הרקמה הדבקה ניתן נכרת בקלות והתכוננו היסטולוגיה, והתשואות תמונות היסטולוגית מעולה (איורים 11, 12). כמה חוקרים אולי רוצים מודל שבו הידבקויות מהוות פחות מ 100% מהזמן. השמטת יישום של עמילן תפחית את שיעור הדבקה על כ -80%. צמצום מספר תפרי משי להציב לתוך הדפנות התקינים בטן יפחית את שיעור הידבקות נוספת. מניסיוננו, יום השבעה לאחר הניתוח הוא נקודת הזמן הראשונה שבה המעי הוא חסיד בעקביות אל דופן הבטן. עם זאת, בנקודות זמן אחרות עשויות להיות רלוונטיות יותר בהתאםעל המוקד של הפרויקט. לדוגמא, חוקרים מעוניינים בהגירת נויטרופילים מקרופאגים לחלל הידבקות מומלץ למסוק רקמה בחמישה הימים הראשונים שלאחר ניתוח. מנגד, בתצהיר של קולגן על ידי פיברובלסטים מתרחש במשך שבועות לאחר הפציעה הראשונית, ועל כך הוא יהיה יותר מקום לבחון רקמות בנקודות זמן בפיסוק במשך כמה שבועות לאחר הניתוח. כירורגיים כירורגי הם מאוד מועילים עבור הגדלה של השדה כירורגי בעת ביצוע הליך זה. מיקרוסקופ ניתוח יכול לשמש גם, אך מגביל את היכולת של המנתח כדי לבדוק את שדה הניתוח מזוויות שונות. ההליך יכול להיעשות גם ללא גדלה בכלל.

הידבקויות בטן הן סוג של רקמה צלקתית היוצרות בבטן בתגובה לדלקת, בדרך כלל לאחר ניתוח או זיהום intraabdominal. הידבקויות הם גורם עיקרי של כאבי בטן כרוניים פוריות, והם הגורם השכיח ביותר של חסימה קטן מעי 1. הנוכחות של הידבקויות ומאפשרת לבצע פעולת בטן שנייה קשה יותר ומגדילה את הסיכון לסיבוכים 2. למרות שנים של מחקר, המנגנונים להיווצרות הידבקויות להישאר ממעטים להבין. זה ידוע כי פגיעה ראשונית אל פני שטח הצפק גורמת דיות של נוזל הפיברין-עשיר, אשר לאחר מכן יוצר קריש שקושר את פני השטח של מעי ואת דופן הבטן יחד 3. מאוחר יותר, פיברובלסטים ותאים אחרים נודדים לחלל דבק ומפרישי רקמת חיבור 4. במהלך חודשים ארוכים ואף שנתי ההידבקות מתבגרת על ידי פיתוח כלי דם ועצבים <sup&gt; 5. מוצרים מסחריים קיימים מספר אשר נועדו להפחית את היווצרות הידבקויות לאחר ניתוח בטן (למשל, Seprafilm). כל המוצרים הללו לשמש מחסומים מכניים לעצור היווצרות הידבקות על ידי מניעת מגע פיזי בין לולאות של המעי ואת 6,7 דופן הבטן. למרות ראיות מניסוי מבוקר מחסום הידבקות כירורגית מפחית את היווצרות של הידבקויות 8, רבים המנתחים כאנקדוטה התאכזבו עם האפקטיביות של מוצרי מחסום מכני. כיום אין טיפולים אנטי הידבקות מבוססת תרופה, אשר משקף את העובדה כי התהליכים המדויקים המעורבים ביצירת הדבקה הם הבינו היטב. פיתוח טיפול שמתמקד במיוחד סוכנים הסלולר או המולקולריים המעורבים ביצירת הידבקויות ידרוש הבנה טובה יותר של האירועים שבהם מעורבים היווצרות של הידבקות. בקבוצה קיים מספרהים זיהה מסלולים מולקולריים כי עשוי להיות חשוב עבור היווצרות הידבקות 9-11. במודלים של בעלי חיים לספק סביבה מעולה עבור חקר היווצרות הידבקויות. מחקרים רבים פורסמו המתאר ויצירה כירורגית של הידבקות בכמה חיות, בפרט חולדה ועכבר 6,12-14. בהינתן הניסיון שלנו עם לומד פיברוזיס העכבר ואת הזמינות הרחבה של עכברים טרנסגניים ונוגדנים מבוססי עכבר, בחרנו את העכבר כמודל שלנו לחקר הידבקויות. בזאת, אנו מדווחים על טכניקה שפיתחנו כדי reproducibly ומהימנה ליצור הידבקויות בטן בתוך העכבר.

<table><tbody><tr><td>Fisherbrand Absorbent Underpads, 20&quot; x 24&quot;</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-206-62</td><td></td></tr><tr><td>Polylined Sterile Field, 18&quot; x 24&quot;</td><td>Busse Hospital Disposables</td><td>696</td><td>Cut a rectangular hole of the appropriate size</td></tr><tr><td>Isothesia isoflurane</td><td>Henry Schein&amp;nbsp;</td><td>050033</td><td></td></tr><tr><td>Fisherbrand Sterile cotton gauze pad, 4&quot; x 4&quot;</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-415-469</td><td></td></tr><tr><td>Puralube petrolatum ophthalmic ointment, 1/8 oz. tube</td><td>Dechra Veterinary Products</td><td>NDC 17033-211-38</td><td></td></tr><tr><td>Nair depilatory cream</td><td>Church &amp;amp; Dwight Co.</td><td>22339-05</td><td></td></tr><tr><td>Buprenex buprenorphine&amp;nbsp; 0.3 mg/ml</td><td>Reckitt Benckiser Pharmaceuticals Inc.</td><td>NDC 12496-0757-5</td><td></td></tr><tr><td>1 cc insulin syringe, 27&amp;nbsp;G</td><td>Becton Dickinson</td><td>329412</td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Prep Solution</td><td>Medline</td><td>MDS093944H</td><td></td></tr><tr><td>Webcol alcohol prep swabs</td><td>Covidien</td><td>6818</td><td></td></tr><tr><td>General-Purpose Labarotory Labeling tape</td><td>VWR</td><td>89097-912</td><td></td></tr><tr><td>BioGel PI surgical gloves</td><td>M&amp;ouml;lnlycke Health Care</td><td>ALA42675Z</td><td></td></tr><tr><td>Micro Forceps with teeth</td><td>Roboz</td><td>RS-5150</td><td></td></tr><tr><td>Fine scissors- sharp</td><td>Fine Science Tools</td><td>14060-09</td><td></td></tr><tr><td>Straight serrated forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Castro-Viejo needle driver</td><td>Fine Science Tools</td><td>12565-14</td><td></td></tr><tr><td>100 grit 1/4 sheet sandpaper</td><td>ACE Hardware</td><td>1010446</td><td>Cut into strips</td></tr><tr><td>4-0 silk suture, 30&quot;, SH needle</td><td>Ethicon</td><td>K831</td><td></td></tr><tr><td>7-0 PDS II absorbable monofilament suture, 30&quot;, BV-1 needle</td><td>Ethicon</td><td>Z135</td><td>Usually comes double-armed. Cut the suture at the midway point to generate two usable sutures.</td></tr><tr><td>Rice starch</td><td>MP Biomedicals</td><td>102955</td><td></td></tr><tr><td>0.9% Sodium Chloride Irrigation</td><td>Baxter</td><td>BHL2F7121</td><td>Warm to 37 &amp;deg;C prior to use</td></tr><tr><td>10 ml syringe</td><td>Becton Dickinson</td><td>309604</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Vicryl absorbable braided suture, 18&quot;, RB-1 taper needle</td><td>Ethicon</td><td>J212H</td><td></td></tr><tr><td>6-0 Ethilon nylon monofilament&amp;nbsp; suture, 18&quot;, P-3 needle,&amp;nbsp;</td><td>Ethicon</td><td>1698G</td><td></td></tr><tr><td>Tegaderm Transparent Film Dressing Frame Style, 6 cm x 7 cm</td><td>3M</td><td>1624W</td><td>Cut in half lengthwise</td></tr></tbody></table>

creation of abdominal adhesions in mice

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or intraabdominal infection. The precise mechanisms underlying adhesion formation are poorly understood. Many compounds and physical barriers have been tested for their ability to prevent adhesions after surgery with varying levels of success. The mouse and rat are important models for the study of abdominal adhesions. Several different techniques for the creation of adhesions in the mouse and rat exist in the literature. Here we describe a protocol utilizing abrasion of the cecum with sandpaper and sutures placed in the right abdominal sidewall. The mouse is anesthetized and the abdomen is prepped. A midline laparotomy is created and the cecum is identified. Sandpaper is used to gently abrade the surface of the cecum. Next, several figure-of-eight sutures are placed into the peritoneum of the right abdominal sidewall. The abdominal cavity is irrigated, a small amount of starch is applied, and the incision is closed. We have found that this technique produces the most consistent adhesions with the lowest mortality rate.

<html> בשבעה ימים לאחר ניתוח, את cecum ואולי עולה מעי גס, כבד, ולולאות של מעי דק אמורים להיות חסיד אל דופן הבטן הימנית צדדית. (איור 8) רקמת ניכרת יכול להיות מוטבעת מחולק ויניב שקופיות היסטולוגית מעולות. (איור 11, 12) כאשר ההליך מבוצע כראוי, 100% של עכברים צריכים הידבקויות משמעותיות בשבעה ימים. תמותה צריכה להיות פחות מ -5%. <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig1.jpg" /> איור 1: הכנה לניתוח (א) החיה אובטח עם הקלטת ואת הבטן prepped בבטאדין (ב) בבטאדין נוקתה עם ספוגית אלכוהול וילון סטרילי הושם...om / קבצים / ftp_upload / 54,450 / 54450fig1large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig2.jpg" /> איור 2:.. חתך החתך צריך להאריך מרמת שלפוחית ​​xyphoid <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig3.jpg" /> איור 3:. שחיקה של cecum (א) כורך את cecum על אצבע המורה השמאלית עם הקצה מצביע ימינה מאפשרת בבסיס cecum להיות מיוצב על ידי האגודל השמאלי (ב) רמה מתאימה של מלטש עוזבת את. cecum עם משטח מחוספס<html> פחות הוא מבריק יותר מבעבר, ועם כמה נקודות petechial לדימום. טיפול נוסף יש לנקוט בעת מלטש ליד בצד mesenteric, כמו הכלי כאן ידמם הכי בזריזות. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig3large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig4.jpg" /> איור 4:. שחיקה של הבטן וול הקרבי נסחפים צידת השטח הצפק של קיר השריר הוא שייף עד להופעתה מחוספסת. כלי הדם לראות בדיוק מעל נייר הזכוכית בדופן הבטן נתקל בו לעתים קרובות אבל לא לדמם משמעותי. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig4large.jpg" target="_blank">נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> 1 &quot;&gt; <img alt="איור 5" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig5.jpg" /> איור 5:.. מיקום של האיור-של-שמונה תפר תפר משי ספרת שמונה להציב לתוך קיר השריר, לפני היותו כבול <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 6" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig6.jpg" /> איור 6:. Application עמילן שכבה האור של עמילן בזוק מעל דפנות המעי הבטן. שתי דמות של ושמונה תפרים נראים בקיר השריר. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 7" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig7.jpg" /> איור 7חתך עבור הניתוח השני (א) החתך התחיל רק בצד השמאל של החתך המקורי (ב) החתך החדש אמור להאריך מרמת שלפוחית ​​בית החזה:... <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig7large.jpg" target="_blank">נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של נתון זה.</a> <img alt="הספרה 8" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig8.jpg" /> איור 8:. הידבקות לולאות של מעי דק (SB) הן חסיד אל הדפנות התקינים וזה לזה. חתך קו האמצע המקורי, עכשיו נרפא, נתפס (Inc). <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig8large.jpg" target="_blank">נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 9" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig9.jpg" /> <s<html> טרונג&gt; איור 9: מבתקת רקמות דבקות. (א) ו- (ב) &quot;אי&quot; של עור חסיד דופן בטן אל המעי הבסיסי הוא משוחרר על ידי חיתוך במעגל שלם סביב האזור החסיד. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig9large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 10" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig10.jpg" /> איור 10:. הדגימה וחוצת המעי תניב כריך של רקמות עם מעי בצד אחד (א) ו- עור בצד השני (ב). פיסות תפר גלוי להסירו אם הדגימה היא לשמש עבור היסטולוגיה. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig10large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> jove_content &quot;FO: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="איור 11" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig11.jpg" /> איור 11:. היסטולוגיה hematoxylin ו eosin (H &amp; E) מוכתם סעיף של הידבקות בשבעה ימים לאחר עור מראה ניתוח בדופן בטן (תחתונה) המחוברים באמצעות הממשק הדבק אל cecum (למעלה). בנקודת זמן מוקדמת זו את cecum היא דבקה צפוי דופן הבטן בעיקר באמצעות הפיברין ומולקולות אחרות, ו רקמת צלקת משמעותית טרם נוצר. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig11large.jpg" target="_blank">נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 12" src="/files/ftp_upload/54450/54450fig12.jpg" /> איור 12: הדמית Immunofluorescent קטע ההידבקות בשבעה ימים לאחר הניתוח מוכתם immunofluorescently עבור ac שריר α-חלקה.פח, מראה מכתים האמיתי של זקיקי העור השיער (משמאל) וקיר שריר cecal (באמצע), ו מכתים הלא ספציפית של פני השטח luminal cecal (מימין). <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54450/54450fig12large.jpg" target="_blank">נא ללחוץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Creation of Abdominal Adhesions in Mice at JoVE.com

Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

יצירת הידבקויות בטן עכברים

Abdominal adhesions consist of fibrotic tissue that forms in the peritoneal space in response to an inflammatory insult, typically surgery or ...

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

12.6K Views.  Stanford University School of Medicine. Abdominal adhesions that form after surgery are a major cause of pain, infertility, and hospitalization and reoperation for small bowel obstruction. Our surgical procedure for creating abdominal adhesions in mice is a reliable tool to study the mechanisms underlying the formation of adhesions.

Video: Creation of Abdominal Adhesions in Mice

Creation of Murine Experimental Abdominal Aortic Aneurysms with Elastase 

Transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta is the most widely used animal model of abdominal aortic aneurysm (AAA) ever since it was first described in rats by Anidjar and colleagues.1 The rationale for its development was based on the disrupted nature of elastin observed in AAAs. This rat model has been modified to produce AAAs in the infrarenal aortic region of mice.2 The model has the ability to add broad insight into the pathobiology of AAA due to the emergence of numerous transgenic and gene knockout mice. Moreover, it is a viable platform to test potential therapeutic agents for AAA. In this video, we demonstrate the elastase infusion AAA procedure used in our laboratory. 
Mice are anesthetized using 2.5% isoflurane, and a laparotomy is performed under sterile conditions. The abdominal aortais isolated with the assistance of an operating stereomicroscope (Leica). After placing temporary ligatures around the proximal and distal aorta, an aortotomy is created at the bifurcation with the tip of a 30-gauge needle. A heat-tapered segment of PE-10 polyethylene tubing is introduced through the aortotomy and secured. The aortic lumen is subsequently perfused for 5-15 minutes at 100 mm Hg with saline containing type I porcine pancreatic elastase (4.5 U/mL; Sigma Chemical Co.). After removing the perfusion catheter, the aortotomy is repaired without constriction of the lumen.

Creation of Murine Experimental Abdominal Aortic Aneurysms with Elastase

This video shows how to induce abdominal aortic aneurysms (AAA) in mice via transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta. The model has the ability to add broad insight into the pathobiology of AAA due to the emergence of numerous transgenic and gene knockout mice.

יצירת ניסויית מפרצת אבי העורקים הבטני Murine עם Elastase

Transient intraluminal infusion of porcine pancreatic elastase into the infrarenal segment of the abdominal aorta is the most widely used animal model of ...

Biology

Bile Duct Ligation in Mice: Induction of Inflammatory Liver Injury and Fibrosis by Obstructive Cholestasis

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well as to excrete bilirubin and other metabolic products. In the liver, the experimental obstruction of the extrahepatic biliary system initiates a complex cascade of pathological events that leads to cholestasis and inflammation resulting in a strong fibrotic reaction originating from the periportal fields. Therefore, surgical ligation of the common bile duct has become the most commonly used model to induce obstructive cholestatic injury in rodents and to study the molecular and cellular events that underlie these pathophysiological mechanisms induced by inappropriate bile flow. In recent years, different surgical techniques have been described that either allow reconnection or reanastomosis after bile duct ligation (BDL), e.g., partial BDL, or other microsurgical methods for specific research questions. However, the most frequently used model is the complete obstruction of the common bile duct that induces a strong fibrotic response after 21 to 28 days. The mortality rate can be high due to infectious complications or technical inaccuracies. Here we provide a detailed surgical procedure for the BDL model in mice that induce a highly reproducible fibrotic response in accordance to the 3R rule for animal welfare postulated by Russel and Burch in 1959.

Disruption of bile flow results in severe inflammatory cholestatic liver injury with a characteristic time-dependent sequence of morphological alterations. Here we present a protocol for the surgical ligation of the common bile duct in mice that allows to induce a strong fibrotic response after 21 to 28 days.

מרה Duct קשירת בעכברים: אינדוקציה של דלקת כבד פגיעה ופיברוזיס ידי חסימתית cholestasis

In most vertebrates, the liver produces bile that is necessary to emulsify absorbed fats and enable the digestion of lipids in the small intestine as well ...

Balloon-based Injury to Induce Myointimal Hyperplasia in the Mouse Abdominal Aorta

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine balloon denudation model, which is comparable with established vessel injury models in large animals. The aorta denudation model with balloon catheters mimics the clinical setting and leads to comparable pathobiological and physiological changes. Briefly, after performing a horizontal incision in the aorta abdominalis, a balloon catheter will be inserted into the vessel, inflated, and introduced retrogradely. Inflation of the balloon will lead to intima injury and overdistension of the vessel. After removing the catheter, the aortic incision will be closed with single stiches. The model shown in this article is reproducible, easy to perform, and can be established quickly and reliably. It is especially suitable for evaluating expensive experimental therapeutic agents, which can be applied in an economical fashion. By using different knockout-mouse strains, the impact of different genes on MH development can be assessed.

This article demonstrates a murine model to study the development of myointimal hyperplasia (MH) after aortic balloon injury.

מבוסס על בלון פציעה לזירוז היפרפלזיה Myointimal באבי העורקים בטן העכבר

The use of animal models is essential for a better understanding of MH, one major cause for arterial stenosis.In this article, we demonstrate a murine ...

Creation of Colonic Anastomosis in Mice

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of colonic surgeries and can occur in up to 26% of surgical anastomoses, with mortality being up to 39% for patients with such a leak. Currently, there remains a paucity of data detailing the cellular mechanisms of anastomotic healing. Devising preventative strategies and treatment modalities for anastomotic leak could be greatly potentiated by a better understanding of appropriate anastomotic healing.
A murine model is ideal as previous studies have shown that the murine anastomosis is the most clinically similar to the human case as compared with other animal models. We offer an easily reproducible murine model of colonic anastomosis in mice that will allow for further illustration of anastomotic healing.

Anastomotic leak or breakdown after surgery is a major cause of postoperative morbidity and mortality. Our surgery for creating a colonic anastomosis is a reliable and reproducible method for studying the healing mechanisms of anastomoses.

יצירה של השקה שטיפת המעי הגס בעכברים

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of ...

Murine Appendectomy Model of Chronic Colitis Associated Colorectal Cancer by Precise Localization of Caecal Patch

The human appendix has been recently implicated to play important biological roles in the pathogenesis of various complex diseases, such as colorectal cancer, inflammatory bowel disease, and Parkinson&#8217;s disease. To study the function of the appendix, a gut disease-associated murine appendectomy model has been established and its step-by-step protocol is described here. This report introduces a facile protocol for caecal patch removal in mice followed by the chemical induction of chronic colitis-associated colorectal cancer using a combination of dextran sulfate sodium (DSS) and azoxymethane (AOM). IgA specific cells and IgA concentration were significantly reduced upon removal of the caecal patch in male C57BL/6 mice&#160;compared to those in the sham group. Simultaneously administering 2% DSS and AOM resulted in nearly 80% mice survival in both sham and appendectomy groups without significant body weight loss. Histological results confirmed colonic inflammation and different degrees of adenocarcinoma. This model can be used for the study of the functional role of the appendix in maintaining gut microbiota homeostasis and pathogenesis of gut colitis and malignancies, as well as for the potential development of drug targeting therapies.

The presented protocol describes a facile surgical removal of the appendix (caecal patch) in a mouse followed by the induction of inflammatory bowel disease-associated colorectal cancer. This murine appendectomy model enables investigation of the biological role of the appendix in the pathogenesis of human gastrointestinal disease.

מורנה הנדנדקטומיה מודל של קוליטיס כרונית הקשורים סרטן המעי הגס על ידי לוקליזציה מדויקת של תיקון Caecal

The human appendix has been recently implicated to play important biological roles in the pathogenesis of various complex diseases, such as colorectal ...

Establishing In Situ Closed Circuit Perfusion of Lower Abdominal Organs and Hind Limbs in Mice

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small size of mouse organs, ex vivo perfusion of bone, bladder, skin, prostate, and reproductive organs is challenging or not feasible. Here, we report for the first time an in situ lower body perfusion circuit in mice that includes the above tissues, but bypasses the main clearance organs (kidney, liver, and spleen). The circuit is established by cannulating the abdominal aorta and inferior vena cava above the iliac artery and vein and cauterizing peripheral blood vessels. Perfusion is performed via a peristaltic pump with perfusate flow maintained for up to 2 h. In situ staining with fluorescent lectin and Hoechst solution confirmed that the microvasculature was successfully perfused. This mouse model can be a very useful tool for studying pathological processes as well as mechanisms of drug delivery, migration/metastasis of circulating tumor cells into/from the tumor, and interactions of immune system with perfused organs and tissues.

A protocol is described for in situ perfusion of the mouse lower body, including the bladder, the prostate, sex organs, bone, muscle and foot skin.

הקמת מעגל באתרו של איברי הבטן התחתונה וגפיים האחוריות בעכברים

Ex vivo perfusion is an important physiological tool to study the function of isolated organs (e.g. liver, kidneys). At the same time, due to the small ...

<meta charset="utf8"></head><body>מודל מורין לחקר אילאוס לאחר הניתוח באמצעות מניפולציה במעיים

Postoperative Ileus Murine Model

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI is a consequence of mechanical damage during surgery, resulting in disruption of motility in the gastrointestinal tract. The mechanisms of POI are related to aberrant neuronal sensitivity, impaired epithelial barrier function, and increased local inflammation. However, the details remain enigmatic. Therefore, experimental murine models are crucial for elucidating the pathophysiology and mechanism of POI injury and for the development of novel therapies.
Here, we introduce a murine model of POI generated via intestinal manipulation (IM) that is similar to clinical surgery; this is achieved by mechanical damage to the small intestine by massaging the abdomen 1-3 times with a cotton swab. IM delayed gastrointestinal transit 24 h after surgery, as assessed by FITC-dextran gavage and fluorescence detection of the segmental digestive tract. Moreover, tissue swelling of the submucosa and immune cell infiltration were investigated by hematoxylin and eosin staining and flow cytometry. Proper pressure of the IM and a hyperemic effect on the intestine are critical for the procedure. This murine model of POI can be utilized to study the mechanisms of intestinal damage and recovery after abdominal surgery.

<meta charset="utf8"></head><body>מודל Ileus Murine לאחר הניתוח

We describe a murine model of postoperative ileus generated via intestinal manipulation. Gastrointestinal transit function, pathologic changes, and immune cell activation were assessed 24 h after surgery.

מודל Ileus Murine לאחר הניתוח

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI ...

Immunology and Infection

Partial Bile Duct Ligation in the Mouse: A Controlled Model of Localized Obstructive Cholestasis

In rodents, complete bile duct ligation (cBDL) of the common bile duct is an established surgical technique for studying obstructive cholestasis and bile duct proliferation. However, long-term experiments can lead to increased morbidity and mortality. In select mouse strains with underlying liver disease, meaningful comparisons can be made even with ligation of a single lobe of the liver, which can reduce animal losses and expenses. Here, we describe partial bile duct ligation (pBDL) in the mouse, in which only the left hepatic bile duct is ligated, causing biliary obstruction in the left lobe but not the remaining lobes. With careful microsurgical technique, pBDL experiments can be cost-effective, since the unligated lobe serves as an internal control to the ligated lobes, when subjected to the same conditions in the same animal. Unlike cBDL, a separate sham-operated control group is not necessary. pBDL is highly useful to directly compare localized versus systemic effects of cholestasis and other retained bile components. pBDL can also be repurposed as a novel method to investigate mechanisms related to medications and cell migration.

Here, we present partial bile duct ligation as a surgical model of liver injury and regeneration in rodents.

צינור המרה חלקית מצדו העכבר: מודל מבוקרת של מקומי חסימתית לחסימת מרה תוך כבדית

In rodents, complete bile duct ligation (cBDL) of the common bile duct is an established surgical technique for studying obstructive cholestasis and bile ...

יצירת הידבקויות בטן עכברים

Summary

Explore More Videos

יצירת ניסויית מפרצת אבי העורקים הבטני Murine עם Elastase

מרה Duct קשירת בעכברים: אינדוקציה של דלקת כבד פגיעה ופיברוזיס ידי חסימתית cholestasis

מבוסס על בלון פציעה לזירוז היפרפלזיה Myointimal באבי העורקים בטן העכבר

יצירה של השקה שטיפת המעי הגס בעכברים

מורנה הנדנדקטומיה מודל של קוליטיס כרונית הקשורים סרטן המעי הגס על ידי לוקליזציה מדויקת של תיקון Caecal

הקמת מעגל באתרו של איברי הבטן התחתונה וגפיים האחוריות בעכברים

מודל Ileus Murine לאחר הניתוח

מודל Ileus Murine לאחר הניתוח

מודל Ileus Murine לאחר הניתוח

צינור המרה חלקית מצדו העכבר: מודל מבוקרת של מקומי חסימתית לחסימת מרה תוך כבדית