Este trabajo es apoyado por un fondo de Bourns Facultad de Ingeniería de la Universidad de California, Riverside. BK recibió una beca del Memorial Award Tsai Wen-pulmón en el diseño mecánico.

1. planar de 4 capas de dispositivos (capas apiladas) Construcción <ol><li> Imprimir las matrices de cada capa del dispositivo 9 en cada pedazo de papel de filtro utilizando una impresora de tinta sólida. 11,12 colocar cada papel de filtro en una placa caliente a 170 ° C durante 2 min. Esto fundir la tinta a base de cera y dejar que penetre completamente el grosor del papel, formando barreras hidrofóbicas. NOTA: Los diseños exactos utilizados están disponibles como archivos adicionales. </li><li> Retire el papel de filtro de placa caliente y deje que se enfríe a temperatura ambiente. </li><li> Depósito 4 l de colorante 5 mM (rojo: rojo Allura; amarillo: tartrazina; azul: sal disódica Erioglaucina; verde: 10: 1 mezcla de tartrazina: Erioglaucina sal disódica) en cada rama (un color por rama) de la capa 3 (tercera capa de la parte superior del dispositivo completo) utilizando una micropipeta. </li><li> Comience con la parte inferior capa más. Sujetar el papel de filtro entre la plantilla y un soporte rígido, tal como un pedazo de vidrio plano, utilizando clip de la carpetas, u otro método temporal similares. Asegúrese de que el patrón esté plana contra el papel. Esto minimizará cualquier sombra de pulverización emitidos por el esténcil sobre el papel. </li><li> Aplicar el adhesivo (véase la lista de materiales y equipos) con una de aproximadamente 1,33 seg (un recuento de cuatro a 180 bpm) pulverizar a unos 24 cm. 9,10 Durante este tiempo, mover la lata de adhesivo a través de la galería de símbolos a un ritmo medio. Demasiado lento de los viajes a través de la plantilla hará que el adhesivo se acumule en la plantilla en sí, obstruirlo. Demasiado rápida de los viajes dejará de depositar suficiente adhesivo en el papel. Cuatro pases durante este tiempo (arriba-abajo-arriba-abajo) son suficientes para prevenir sombras de pulverización. </li><li> Retire la plantilla y colocar la siguiente capa del dispositivo (capas numeradas están disponibles como archivos adicionales) sobre la capa rociada recientemente, alineando los bordes del papel. Presione firmemente las dos capas juntas. </li><li> Reemplazar plantilla y repetir el proceso de pulverización para cada capa del dispositivo. Retire el stack de dispositivos y lugar de cinta de embalaje a través de la capa inferior. Esto evita cualquier fuga de fluido desde el dispositivo. Cortar los dispositivos individuales de la hoja con tijeras, siguiendo el borde de la región impreso. </li></ol> 2. planar de 4 capas de dispositivos (Capas de Origami plegables) Construcción <ol><li> hojas de impresión que contienen todas las capas del dispositivo sobre papel de filtro utilizando una impresora de tinta sólida. Coloque papel de filtro en una placa caliente a 170 ° C durante 2 min. Retire el papel de filtro de placa caliente y deje que se enfríe a temperatura ambiente. NOTA: Los diseños exactos utilizados están disponibles como archivos adicionales. </li><li> Depósito 4 l de colorante 5 mM (rojo: rojo Allura; amarillo: tartrazina; azul: sal disódica Erioglaucina; verde: 10: 1 mezcla de tartrazina: Erioglaucina sal disódica) en cada rama (un color por rama) de la capa 3 (tercera capa a partir de la parte superior del dispositivo completo) a través de micropipeta. </li><li> Sujetar la hoja de dispositivos entre la plantilla y un soporte rígido, tal como un pedazo de vidrio de placa, Utilizando binderclips, u otro método temporal similar. Asegúrese de que el patrón esté plana contra el papel. </li><li> Aplicar el adhesivo (véase la lista de materiales y equipos) con una de aproximadamente 1,33 seg (un recuento de cuatro a 180 bpm) pulverizar a unos 24 cm. Cuatro pases durante este tiempo (arriba-abajo-arriba-abajo) son suficientes para prevenir sombras de pulverización. </li><li> Retire la plantilla y dar vuelta la hoja más. Vuelva a colocar la plantilla y rociar la cara posterior del papel. Retire la hoja de dispositivos y comenzar plegable en un pliegue de acordeón, tal como se representa en la Figura 1. Cortar cada dispositivo fuera de la hoja con tijeras, siguiendo el borde de la región impresa. Coloque la cinta de embalaje a través de la capa inferior. </li></ol> 3. no planas (Origami) Construcción de dispositivos <ol><li> Dispositivo de impresión (Figura 2A) sobre papel de filtro utilizando una impresora de tinta sólida y colocar el papel de filtro en una placa caliente a 170 ° C durante 2 min. Eliminar dispositivo de la placa de cocción y deje que se enfríe a temperatura ambiente. NOTA:Los diseños exactos utilizados están disponibles como archivos adicionales. </li><li> Impresión del modelo (Figura 2C) sobre el papel de la impresora utilizando una impresora de tinta sólida y cortar al tamaño del papel de filtro pliegue. Coloque patrón de pliegues sobre una placa caliente a 170 ° C durante 2 min, para fundir la cera, haciendo que el patrón sea visible desde ambos lados del papel. Retire patrón de pliegues de placa caliente y deje que se enfríe a temperatura ambiente. </li><li> Alinear los bordes del patrón de pliegues a los bordes del papel que contiene los patrones de canal y adjuntar los dos trozos de papel utilizando clips de la carpeta, o cualquier otro método temporal similar. </li><li> Trace el patrón de pliegues con un lápiz romo, aplicando suficiente fuerza que aparecen marcas en la hoja de dispositivo, pero no tan fuerte que el patrón de pliegues de papel rasga. Si eso ocurre, el dispositivo corre el riesgo de ser dañado. Prehendido hace que el papel se pliegue mucho más fácilmente y permite una mayor exactitud y precisión en el plegado. </li><li> Comience doblando el dispositivo con la montaña y el vallepliegues de acuerdo con el patrón de pliegues. Una vez que se ha aplicado el adhesivo, todo el dispositivo debe ser montado muy rápidamente, de modo plegable el dispositivo tanto como sea posible antes de la aplicación de adhesivo es muy útil. </li><li> Una vez que se pliega el dispositivo, desplegar el dispositivo para exponer las partes del dispositivo que requieren adhesivo. Recorte máscaras (Figura 2D) que limitan el lugar en el que el adhesivo dispositivo se pueden aplicar, utilizando una hoja de afeitar. </li><li> Sujetar el dispositivo entre la plantilla y la máscara y un soporte rígido, tal como un pedazo de vidrio plano. Asegúrese de que el patrón esté plana contra el dispositivo. Aplicar el adhesivo (ver materiales y equipos de la lista) con una de aproximadamente 1,33 seg (un recuento de cuatro a 180 bpm) pulverizar a unos 24 cm. Cuatro pases durante este tiempo (arriba-abajo-arriba-abajo) son suficientes para prevenir sombras de pulverización. Retire la plantilla y dar vuelta la hoja más. Vuelva a colocar la plantilla y la máscara y rociar la cara posterior del papel. </li><li> Retire inmediatamente dispositivo de plantilla y empezar a plegar ladispositivo. Una vez que el dispositivo está completamente plegada, aplicar presión a la parte adhesiva que contiene hasta que el adhesivo se haya secado. NOTA: El tiempo de secado del adhesivo es muy sensible a la humedad ambiental, por lo que en lugares con baja humedad, plegables en una cámara de humedad controlada permite más tiempo para doblar el dispositivo. </li></ol> 4. ensayo de absorción para dispositivos de 4 capas <ol><li> Selección aleatoria de 20 dispositivos, previamente constituidos de acuerdo a los protocolos anteriores. Coloque los dispositivos en un lugar a salvo de cualquier viento o brisa para minimizar la evaporación. Depósito 40 l de agua a la entrada de cada dispositivo. Registre el tiempo que toma para que cada dispositivo tenga todos sus puntos de venta completamente lleno de tinte. </li></ol> 5. Comparación de Origami de Capilaridad <ol><li> Construir dos pavos reales de Origami - ona de acuerdo con el protocolo anterior (Sección 3), y el otro sin el uso de una plantilla durante la aplicación de adhesivo. </li><li> Inserte un extremo de un pequeño paper plomo (aproximadamente 5 mm de ancho por 5 cm de largo) en el cuerpo de cada pavo real. </li><li> Coloque las dos pavos reales en una cámara mantenida a una humedad relativa alta (&gt; 90%) para minimizar la evaporación. Coloque cada pata y el plomo de cada pavo en un recipiente lleno de colorante 5 mM (rojo: rojo Allura, amarillo: tartrazina, azul: sal disódica Erioglaucina). Registro de proceso de mecha con una cámara digital. </li></ol>

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	<li>Li, X., Ballerini, D. R., Shen, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+perspective+on+paper-based+microfluidics:+Current+status+and+future+trends.">A perspective on paper-based microfluidics: Current status and future trends.</a> Biomicrofluidics. 6, 11301-11313 (2012).</li><li>Yetisen, A. K., Akram, M. S., Lowe, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Paper-based+microfluidic+point-of-care+diagnostic+devices.">Paper-based microfluidic point-of-care diagnostic devices.</a> Lab Chip. 13, 2210-2251 (2013).</li><li>Cate, D. M., Adkins, J. A., Mettakoonpitak, J., Henry, C. 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Los autores no tienen nada que revelar.

Los protocolos anteriores utilizan chapas perforadas como plantillas para la aplicación de adhesivos en aerosol para construir plana y los dispositivos de microfluidos de papel 3D no planas. En los dispositivos planas, esto tiene la ventaja de permitir que los dispositivos sean completamente desplegada después de que el adhesivo se haya secado sin destruir el dispositivo. En otras técnicas de construcción a base de adhesivos, esto es casi imposible, aunque, algunos diseños permiten el desmontaje destructiva parcial por pelando dos mitades unidas con un adhesivo removible. 14 de la construcción sin adhesivo no permitir que los dispositivos serán descubiertos después de su uso, pero requiere abrazaderas o soportes personalizados para cada dispositivo. 8 En los dispositivos con efecto de mecha principalmente laterales adhesivos pueden mecha lenta significativamente. Modelando el adhesivo, la cantidad de adhesivo aplicado a las regiones de mecha se puede reducir significativamente, lo que limita cualquier interferencia potencial efecto de mecha. Los dispositivos con efecto de mecha predominantemente verticaltambién exhiben efecto de mecha igualmente lenta causada por adhesivo, aunque en un grado mucho menor. Diseño de una plantilla que bloquea completamente toda mecha regiones, lo que limita la aplicación del adhesivo a las regiones hidrofóbicas solamente, puede eliminar cualquier interferencia posible absorción de humedad, pero también pueden añadir un considerable tiempo de alineación para el proceso de construcción. En los dispositivos no planas, el adhesivo modelada facilita en gran plegable, como la cantidad de adhesivo que se aplica al papel se reduce, haciendo plegable significativamente más fácil que con una capa de adhesivo aplicado de manera uniforme. Papel completamente cubierto de adhesivo es mucho más difícil de doblar cuando cualquier contacto incidental entre las diferentes zonas del papel hace que la adhesión que debe deshacerse antes de continuar. Para los dispositivos de múltiples capas planar 3D que tienen un área de mecha grande en relación a la zona hidrófoba, plegamient emparejado con un adhesivo aerosol no es probable que la construcción óptima tecnologíanique, debido a la incapacidad del adhesivo para mantener las capas de papel humedecidas juntos, mientras que la superación de la tendencia de los pliegues de desarrollarse. Los dispositivos con diseños que incluyen suficientes fronteras hidrófobos aumentarán la tasa de éxito de los dispositivos de origami plegado. El uso de un adhesivo de unión más fuerte resistencia también puede ayudar a resolver este problema, evitando que el agua de debilitar el papel bond-adhesivo. dispositivos de la capa apiladas general obtuvieron mejores resultados, ya que carecen de pliegues, que tienden a desplegar el dispositivo. Además, el uso de una plantilla durante la aplicación del adhesivo reduce la cantidad total de adhesivo aplicado, lo que reduce drásticamente el tiempo necesario para que el fluido entre las capas del fieltro. En el diseño de los dispositivos de microfluidos de papel 3D no planas, hay una serie de cuestiones a tener en cuenta. Es importante comparar el patrón de pliegue del dispositivo de doblado a la disposición de los canales, como la colocación de los canales a lo largo de un pliegue forzará el pliegue abierto sobre imbibi aguación, debido a la hinchazón fibras de celulosa. Dependiendo del diseño del dispositivo específico, el comportamiento, sin embargo, esto puede o no ser deseable. Dispositivo de almacenamiento en condiciones ambiente no es favorable a la viabilidad del dispositivo, 10 por lo tanto el almacenamiento a largo plazo en el marco de aire seco se recomienda para prevenir la unión adhesiva entre las capas de debilitamiento. Como se ha señalado con anterioridad por Lewis et al., 9 el uso de adhesivos en aerosol proporcionan un medio eficiente para producir rápidamente grandes cantidades de dispositivos de microfluidos de papel 3D. Modelando tales adhesivos, nuevos dispositivos pueden ser más rápidamente desarrollado que tome ventaja de ser capaz de ser desplegado después de su uso. Además, el patrón permite la construcción y el desarrollo de dispositivos de microfluidos de papel 3D no plana. Se espera que dichos productos sean capaces de proporcionar una funcionalidad que no se encuentra previamente en la microfluídica de papel planas, como la actuación integrada y detección. Por ejemplo, el accionamiento puede serlogrado mediante la creación de una bicapa de una película de polímero reactivo de agua 15 y un sustrato de papel con patrón. En un dispositivo construido a partir de una bicapa de este tipo, el accionamiento se genera cuando mechas de agua a lo largo de los canales del dispositivo e interactúa con la película. Una vez que la película se seca, el dispositivo podría volver a su configuración inicial, dejándolo listo para ser utilizado de nuevo.

En los últimos años, la microfluídica papel ha ganado mucha popularidad por su potencial para proporcionar punto de atención de bajo costo (POC), dispositivos de diagnóstico. 1-3 dispositivos de POC ofrecen una funcionalidad similar a las de las pruebas basadas en laboratorio en un formato que permite que los resultados sean obtenido con relativa rapidez. dispositivos de POC hechos de papel son de bajo costo, peso ligero, y las alternativas fáciles de utilizar para los chips de microfluidos caros y laboratorios miniaturizados, lo que es ideal para su uso en entornos con recursos limitados. Los dispositivos de microfluidos de papel más comunes son dispositivos de flujo lateral de una dimensión, pero plana en tres dimensiones (3D) de papel tienen dispositivos de microfluidos prometen proporcionar dispositivos de diagnóstico multiplexados 4 que ocupan una huella mucho más pequeña que la que se requiere por un dispositivo de 2D 5 y utilizar correspondientemente un volumen de muestra más pequeña. Inicialmente, los dispositivos de microfluidos de papel 3D planar se montan individualmente, capa por capa wiº modelada capas de papel que alternan con cinta de doble cara cortada con láser. Agujeros alineados cuidadosamente cortados en la capa de cinta se llenaron con polvo de celulosa para asegurar el transporte de fluido entre capas. Posteriormente se desarrollaron 4 Un número de métodos alternativos, cada uno 6-9 mejorar diferentes aspectos de los dispositivos. En particular, al evitar los adhesivos, los dispositivos podrían ser plegadas a través de técnicas de Origami con las capas unidas por una abrazadera externa. 8 Esto elimina cualquier interferencia adhesivo potencial en una prueba de diagnóstico y permite que el dispositivo sea desplegado post-uso, permitiendo potencialmente muestra aún menor volúmenes de mostrar los resultados internos. Alternativamente, mediante el uso de un adhesivo aerosol aplicado entre cada capa de papel, hojas de dispositivos podrían ser montados de forma simultánea, sin tiempo de patrones y la alineación de la cinta. 9 Sin embargo, mediante la aplicación de un adhesivo de aerosol a través de una plantilla, es posible obtener el beneficio deambas de estas técnicas. Rociando el adhesivo a través de una plantilla, sólo una fracción del adhesivo se aplica al dispositivo, reduciendo al mínimo cualquier posible interferencia con la transferencia de fluido entre capas. Además, con la selección de la plantilla cuidado, un patrón de adhesivo se puede aplicar que los resultados en unión con adhesivo semi-permanente, lo que permite que los dispositivos se desarrollaron después de su uso, mientras que todavía proporciona suficiente contacto entre capas para permitir que el líquido que absorbe y expulsa entre capas. Por último, la aplicación de adhesivos de aerosol a través de una plantilla facilita la construcción de dispositivos de microfluidos de papel 3D no planas, minimizando la cantidad de adhesivo aplicada a las caras adyacentes que pueden requerir de plegado frecuente y despliegue durante la construcción. 10 Además, el uso de adhesivo con patrón permite dispositivo para ser desplegado después de su uso para el almacenamiento más conveniente. Se espera que los dispositivos de microfluidos de papel no plano en 3D que se utilizará para las tareas que de otro modo sería imposible en un plano 3D Device. La figura 1 ilustra el flujo de proceso general utilizado para construir tanto planar y dispositivos 3D no planas.

<table><tbody><tr><td>Camera</td><td>Nikon</td><td>D5100</td><td></td></tr><tr><td>Solid-ink printer</td><td>Xerox</td><td>ColorQube 8880</td><td></td></tr><tr><td>Hotplate</td><td>Torrey Pines</td><td>HS60</td><td></td></tr><tr><td>Humidity chamber</td><td>Electro-Tech Systems</td><td>5503-E</td><td></td></tr><tr><td>Spray adhesive</td><td>3M</td><td>62497749309</td><td>Super 77 (16.75 oz can)</td></tr><tr><td>Filter paper</td><td>Whatman</td><td>Grade 4</td><td></td></tr><tr><td>Perforated steel sheet</td><td>MetalsDepot</td><td>PS16116</td><td></td></tr><tr><td>Tartrazine</td><td>Sigma-Aldritch</td><td>T0388</td><td></td></tr><tr><td>Allura Red</td><td>Sigma-Aldritch</td><td>458848</td><td></td></tr><tr><td>Erioglaucine disodium salt</td><td>Sigma-Aldritch</td><td>861146</td><td></td></tr></tbody></table>

using adhesive patterning to construct 3d paper microfluidic devices

We demonstrate the use of patterned aerosol adhesives to construct both planar and nonplanar 3D paper microfluidic devices. By spraying an aerosol adhesive through a metal stencil, the overall amount of adhesive used in assembling paper microfluidic devices can be significantly reduced. We show on a simple 4-layer planar paper microfluidic device that the optimal adhesive application technique and device construction style depends heavily on desired performance characteristics. By moderately increasing the overall area of a device, it is possible to dramatically decrease the wicking time and increase device success rates while also reducing the amount of adhesive required to keep the device together. Such adhesive application also causes the adhesive to form semi-permanent bonds instead of permanent bonds between paper layers, enabling single-use devices to be non-destructively disassembled after use. Nonplanar 3D origami devices also benefit from the semi-permanent bonds during folding, as it reduces the likelihood that unrelated faces may accidently stick together. Like planar devices, nonplanar structures see reduced wicking times with patterned adhesive application vs uniformly applied adhesive.

Las pruebas de dispositivos de 4 capas se llevaron a cabo en una cámara sellada, protegiéndolos de cualquier viento o la brisa que podrían provocar la evaporación excesiva del volumen de líquido depositado limitado. La mayoría de la mecha en los dispositivos de 4 capas es en las capas medias del dispositivo, por lo que se esperaba que las diferencias de capilaridad velocidades debido a la evaporación a ser mínima. Además, no hay efecto de mecha lateral mínima, con sólo 13 mm entre la entrada y la salida de cualquier persona, lo que sugiere que las variaciones en tiempos de mecha son probablemente debido a, transferencia vertical de líquido de capa intermedia. Tiempos medios de absorción y las tasas de éxito para los dispositivos de 4 capas construidas con diferentes cantidades de adhesivo aplicada se muestran en la Tabla 1. En los dispositivos apilados, la cobertura uniforme de adhesivo resultó en tasas relativamente altas de éxito que disminuyó a medida que aumentamos la cantidad de adhesivo. Covera adhesiva con dibujosge dado lugar a muy bajas tasas de éxito cuando el adhesivo solamente se aplicó a un lado, pero tuvo tasas de éxito mucho más altas y tiempos de mecha más rápido cuando el adhesivo modelada se aplicó a ambos lados. Éxitos típicos se representan en la Figura 3A. Hay varias explicaciones posibles para este comportamiento observado, cualquier combinación de las cuales pueden ser aplicables. El adhesivo aplicado puede estar bloqueando físicamente, ya sea parcial o totalmente, los poros en la superficie del papel, lo que resulta en un área de contacto eficaz más pequeña entre las capas de papel. Además, el adhesivo en sí mismo puede actuar como otro sustrato poroso, revestimientos de modo más pesadas de resultado adhesivo en una capa de adhesivo más grueso que el fluido debe absorber a través, dando lugar a veces más tiempo que absorbe. Patrón del adhesivo, por otro lado, crea adhesivas &quot;puntos&quot; que ocluyen sólo parcialmente las zonas de contacto, lo que permite más fluido que absorbe y expulsa de capa de papel a capa de papel directamente, lo que disminuye los tiempos de efecto de mecha. Sin embargo, este mismo REDUCción en la cobertura de adhesivo también disminuye la fuerza de la unión adhesiva entre capas de papel, lo que resulta en la disminución de las tasas de éxito cuando la hinchazón y las arrugas que se desarrollan fibras causar capas se separen lo suficiente que ya no están en contacto. Al duplicar el tamaño de la frontera alrededor de los canales (aumentando el área dispositivo al estar ~ 30%), las tasas de éxito, tanto para aplicaciones de adhesivos de uno o dos lados aumentaron. Una comparación entre los dos tamaños se muestra en la Figura 4. Fallo de los dispositivos apilados típica se caracteriza por puntos de venta que no lograron llenar por completo con el tinte, o tardan más de 5 minutos para llenar. Esto se representa en la Figura 3B. En los dispositivos de origami plegado, la cobertura uniforme de adhesivo dio lugar a bajas tasas de éxito con fracaso total resultante al aplicar la cantidad equivalente de adhesivo presente en los dispositivos, uniforme, de adhesivo de una sola cara apiladas. cubierta adhesiva con dibujosedad resultó en tasas de éxito mucho más bajos; Sin embargo, esta disminución fue compensada mediante el uso de dispositivos ligeramente más grandes que tenían fronteras 3 mm. fallo del dispositivo Origami típica se caracteriza por puntos de venta que no lograron llenar con cualquier cantidad de colorante. Estos puntos de venta se encuentran exclusivamente a lo largo de los dos lados del dispositivo que contenía los pliegues. Esto se representa en la Figura 3C. Las masas de adhesivo aplicado en diferentes métodos de pulverización se muestran en la Tabla 2. La duración de pulverización descrito anteriormente de 1,33 seg (a cuatro recuento a 180 bpm) depósitos de 0,26 mg / cm 2 (masa seca) de adhesivo cuando se pulveriza uniformemente a través de la hoja de de los dispositivos, mientras que sólo el depósito de 0,02 mg / cm 2 (masa seca) cuando se pulveriza a través de una plantilla que era 23% abierta. En estructuras 3D no planas, la cobertura de adhesivo uniforme como resultado más difícil de plegado, como las caras adyacentes<html> prematuramente pegados entre sí. Las capas dentro de la estructura no se podía desplegar una vez secado el adhesivo, y los intentos de hacerlo dado lugar a tiras de papel. la cobertura adhesiva modelada hizo doblando mucho más fácil, ya que cualquier adherencia accidental era fácil de hacer. Una vez seco el adhesivo, las capas podrían ser separados sin ninguna rasgadura o el desgarro del papel. Ambos métodos de aplicación de adhesivo resultaron en dispositivos que dirige con éxito líquido la longitud de sus canales y sin mezclar; Sin embargo, el dispositivo con adhesivo aplicado uniformemente era notablemente más lento. Un lapso de tiempo de este efecto de mecha se muestra en la Figura 5. Wicking se realizó en una cámara de humedad controlada mantenida a&gt; 90% de humedad relativa para minimizar la evaporación, tal como evaporación aumenta con la disminución de humedad relativa. Debido a los largos canales presentes en este diseño, de hasta 165 mm de largo, la evaporación puede aumentar significativamente el tiempo de absorción, incluso con un depósito de líquido infinito. contenido &quot;fo: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/53805/53805fig1.jpg" /> Figura 1. Dispositivo de flujo del proceso de fabricación. (A) Stacked fabricación del dispositivo. (B) la fabricación del dispositivo de Origami. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53805/53805fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/53805/53805fig2.jpg" /> Figura 2. Patrones de pavo real. Patrón (A) del canal, donde el negro indica las regiones hidrofóbicas. (B) Las flechas indican el camino tomado por cada colorante. Los círculos indican el punto de contacto entre las capas y las líneas de puntos indican los caminos de absorción vertical. La longitud de cada canal de su respectiva entrada al borde de la cola está indicada en milímetros. anchos de canal promedio de entre 2 y3 mm en la región de la cola. (C) Crease Pattern (modificado a partir de 13). Las líneas rojas corresponden a pliegues de la montaña en la estructura final; líneas negras corresponden a pliegues valle; líneas azules corresponden a pliegues que no se pliegan en la estructura final, pero la ayuda en las etapas preliminares de plegado. (D) Máscaras colocados entre el dispositivo Origami y la plantilla de metal durante la aplicación de adhesivo, donde se eliminan las partes blancas. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53805/53805fig2large.jpg" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="figura 3" src="/files/ftp_upload/53805/53805fig3.jpg" /> Figura 3. Los éxitos y fracasos típicos (A) El éxito Típica -. Todos los puntos de venta completamente lleno de tinte. (B) el fracaso apilados Típica - puntos de venta que no tenía ninguna aparente Pattern en su distribución. (C) la falta de origami Típica - todos los puntos de venta que no lograron llenar fueron localizados a lo largo del extremo izquierdo columna derecha o, más cerca de los pliegues. Todas las barras de escala son de 5 mm. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53805/53805fig3large.jpg" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 4" src="/files/ftp_upload/53805/53805fig4.jpg" /> Figura 4. Dispositivo Tamaño de comparación. (A) dispositivo más pequeño (1,6 mm frontera). (B) dispositivo de mayor tamaño (mm frontera 3). Todas las barras de escala son de 5 mm. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53805/53805fig4large.jpg" target="_blank">Por favor, haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="Figura 5" src="/files/ftp_upload/53805/53805fig5.jpg" /> Figura 5. Lapso de tiempo de Origami del pavo real de la izquierda:. Cobertura uniforme de adhesivo. Derecha:. Cobertura adhesiva modelada <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53805/53805fig5large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Estilo dispositivo </td><td> Tipo de adhesivo (Duración / frontera / Lados) </td><td> SD ± promedio (seg) </td><td> Tasa de éxito </td></tr><tr><td> Origami </td><td> Uniforme (1.33 seg / 1,6 mm / Doble) </td><td> 44 ± 14 </td><td> 45% </td></tr><tr><td></td><td> Uniforme (0.67 seg / 1,6 mm / Doble) </td><td> 0 ± 0 </td><td> 0% </td></tr><tr><td></td><td> Modelado (1.33 seg / 1,6 mm / Doble) </td><td> 41 ± 13 </td><td> 15% </td></tr><tr><td></td><td> Modelado (1.33 seg / 3 mm / Doble) </td><td> 64 ± 50 </td><td> 40%</td></tr><tr><td> apilada </td><td> Uniforme (1,33 seg / 1,6 mm / Individual) </td><td> 152 ± 66 </td><td> 80% </td></tr><tr><td></td><td> Uniforme (1.33 seg / 1,6 mm / Doble) </td><td> 119 ± 68 </td><td> 60% </td></tr><tr><td></td><td> Modelado (1.33 seg / 1,6 mm / Individual) </td><td> 164 ± 75 </td><td> 25% </td></tr><tr><td></td><td> Modelado (1.33 seg / 1,6 mm / Doble) </td><td> 81 ± 25 </td><td> 80% </td></tr><tr><td></td><td> Modelado (1.33 seg / 3 mm / Individual) </td><td> 116 ± 63 </td><td> 85% </td></tr><tr><td></td><td> Modelado (1.33 seg / 3 mm / Doble) </td><td> 80 ± 55 </td><td> 100% </td></tr></tbody></table> Tabla 1. Cuatro Capa rendimiento del dispositivo. Normal que absorbe la unidad de tiempo y de éxito para diferentes condiciones de aplicación de adhesivo. N = 20. <table fo:keep-together.within-page = &quot;1&quot;&gt; <tbody><tr><td> La cobertura de adhesivo </td><td> Pulverizar Duración (seg) </td><td> Masa media ± desviación estándar (mg / cm²) </td></tr><tr><td> Uniforme </td><td> 1.33 </td><td> 0,26 ± 0,05 </td></tr><tr><td> Uniforme </td><td> 0.67 </td><td> 0,14 ± 0,03 </td></tr><tr><td> Estampado </td><td> 1.33 </td><td> 0,02 ± 0,01 </td></tr><tr><td> Ninguna </td><td> 0 </td><td> -0.01 ± 0 </td></tr></tbody></table> Tabla 2. Las cantidades de aplicar el adhesivo. Espesor de adhesivo media (masa seca) aplicada sobre un cuadrado de 9x9 cm bajo diferentes condiciones de pulverización. N = 10.

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Using Adhesive Patterning to Construct 3D Paper Microfluidic Devices

Se demuestra el uso de adhesivos de aerosol estampadas para la construcción de dispositivos de microfluidos de papel 3D. Este método de las formas de aplicación de adhesivos enlaces semipermanentes entre capas, permitiendo que los dispositivos de un solo uso para ser desmontado después de su uso y facilitar estructuras no planas de plegado complejas de forma no destructiva.

El uso de adhesivo Patrones para construir dispositivos de microfluidos de papel 3D

We demonstrate the use of patterned aerosol adhesives to construct both planar and nonplanar 3D paper microfluidic devices. By spraying an aerosol ...

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Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Bioengineering

7.5K vistas.  University of California, Riverside.  Se demuestra el uso de adhesivos de aerosol estampadas para la construcción de dispositivos de microfluidos de papel 3D. Este método de las formas de aplicación de adhesivos enlaces semipermanentes entre capas, permitiendo que los dispositivos de un solo uso para ser desmontado después de su uso y facilitar estructuras no planas de plegado complejas de forma no destructiva. 

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Origami Inspired Self-assembly of Patterned and Reconfigurable Particles

There are numerous techniques such as photolithography, electron-beam lithography and soft-lithography that can be used to precisely pattern two dimensional (2D) structures. These technologies are mature, offer high precision and many of them can be implemented in a high-throughput manner. We leverage the advantages of planar lithography and combine them with self-folding methods1-20 wherein physical forces derived from surface tension or residual stress, are used to curve or fold planar structures into three dimensional (3D) structures. In doing so, we make it possible to mass produce precisely patterned static and reconfigurable particles that are challenging to synthesize.
In this paper, we detail visualized experimental protocols to create patterned particles, notably, (a) permanently bonded, hollow, polyhedra that self-assemble and self-seal due to the minimization of surface energy of liquefied hinges21-23 and (b) grippers that self-fold due to residual stress powered hinges24,25. The specific protocol described can be used to create particles with overall sizes ranging from the micrometer to the centimeter length scales. Further, arbitrary patterns can be defined on the surfaces of the particles of importance in colloidal science, electronics, optics and medicine. More generally, the concept of self-assembling mechanically rigid particles with self-sealing hinges is applicable, with some process modifications, to the creation of particles at even smaller, 100 nm length scales22, 26 and with a range of materials including metals21, semiconductors9 and polymers27. With respect to residual stress powered actuation of reconfigurable grasping devices, our specific protocol utilizes chromium hinges of relevance to devices with sizes ranging from 100 &mu;m to 2.5 mm. However, more generally, the concept of such tether-free residual stress powered actuation can be used with alternate high-stress materials such as heteroepitaxially deposited semiconductor films5,7 to possibly create even smaller nanoscale grasping devices.

We describe experimental details of the synthesis of patterned and reconfigurable particles from two dimensional (2D) precursors. This methodology can be used to create particles in a variety of shapes including polyhedra and grasping devices at length scales ranging from the micro to centimeter scale.

Origami Inspired autoensamblaje de partículas modeladas y Reconfigurable

There are numerous techniques such as photolithography, electron-beam lithography and soft-lithography that can be used to precisely pattern two ...

Investigación

Química

Creating Adhesive and Soluble Gradients for Imaging Cell Migration with Fluorescence Microscopy

Cells can sense and migrate towards higher concentrations of adhesive cues such as the glycoproteins of the extracellular matrix and soluble cues such as growth factors. Here, we outline a method to create opposing gradients of adhesive and soluble cues in a microfluidic chamber, which is compatible with live cell imaging. A copolymer of poly-L-lysine and polyethylene glycol (PLL-PEG) is employed to passivate glass coverslips and prevent non-specific adsorption of biomolecules and cells. Next, microcontact printing or dip pen lithography are used to create tracks of streptavidin on the passivated surfaces to serve as anchoring points for the biotinylated peptide arginine-glycine-aspartic acid (RGD) as the adhesive cue. A microfluidic device is placed onto the modified surface and used to create the gradient of adhesive cues (100% RGD to 0% RGD) on the streptavidin tracks. Finally, the same microfluidic device is used to create a gradient of a chemoattractant such as fetal bovine serum (FBS), as the soluble cue in the opposite direction of the gradient of adhesive cues.

A method for the assembly of adhesive and soluble gradients in a microscopy chamber for live cell migration studies is described. The engineered environment combines antifouling surfaces and adhesive tracks with solution gradients and therefore allows one to determine the relative importance of guidance cues.

Creación de degradados adhesivas y soluble para la migración celular con imágenes de microscopía de fluorescencia

Cells can sense and migrate towards higher concentrations of adhesive cues such as the glycoproteins of the extracellular matrix and soluble cues such as ...

Bioingeniería

Cell Patterning on Photolithographically Defined 
Parylene-C: SiO2 Substrates

Cell patterning platforms support broad research goals, such as construction of predefined in vitro neuronal networks and the exploration of certain central aspects of cellular physiology. To easily combine cell patterning with Multi-Electrode Arrays (MEAs) and silicon-based &#8216;lab on a chip&#8217; technologies, a microfabrication-compatible protocol is required. We describe a method that utilizes deposition of the polymer parylene-C on SiO2&#160;wafers. Photolithography enables accurate and reliable patterning of parylene-C at micron-level resolution. Subsequent activation by immersion in fetal bovine serum (or another specific activation solution) results in a substrate in which cultured cells adhere to, or are repulsed by, parylene or SiO2 regions respectively. This technique has allowed patterning of a broad range of cell types (including primary murine hippocampal cells, HEK 293 cell line, human neuron-like teratocarcinoma cell line, primary murine cerebellar granule cells, and primary human glioma-derived stem-like cells). Interestingly, however, the platform is not universal; reflecting the importance of cell-specific adhesion molecules. This cell patterning process is cost effective, reliable, and importantly can be incorporated into standard microfabrication (chip manufacturing) protocols, paving the way for integration of microelectronic technology.

Cell Patterning on Photolithographically Defined 
Parylene-C: SiO2 Substrates

This protocol describes a microfabrication-compatible method for cell patterning on SiO2. A predefined parylene-C design is photolithographically printed on SiO2 wafers. Following incubation with serum (or other activation solution) cells adhere specifically to (and grow according to the conformity of) underlying parylene-C, whilst being repulsed by SiO2 regions.

Patrones celular en fotolitográficamente Definido Parylene-C: SiO<sub&gt; 2</sub&gt; Sustratos

Cell patterning platforms support broad research goals, such as construction of predefined in vitro neuronal networks and the exploration of certain ...

Microfluidic Genipin Deposition Technique for Extended Culture of Micropatterned Vascular Muscular Thin Films

The chronic nature of vascular disease progression requires the development of experimental techniques that simulate physiologic and pathologic vascular behaviors on disease-relevant time scales. Previously, microcontact printing has been used to fabricate two-dimensional functional arterial mimics through patterning of extracellular matrix protein as guidance cues for tissue organization. Vascular muscular thin films utilized these mimics to assess functional contractility. However, the microcontact printing fabrication technique used typically incorporates hydrophobic PDMS substrates. As the tissue turns over the underlying extracellular matrix, new proteins must undergo a conformational change or denaturing in order to expose hydrophobic amino acid residues to the hydrophobic PDMS surfaces for attachment, resulting in altered matrix protein bioactivity, delamination, and death of the tissues.
Here, we present a microfluidic deposition technique for patterning of the crosslinker compound genipin. Genipin serves as an intermediary between patterned tissues and PDMS substrates, allowing cells to deposit newly-synthesized extracellular matrix protein onto a more hydrophilic surface and remain attached to the PDMS substrates. We also show that extracellular matrix proteins can be patterned directly onto deposited genipin, allowing dictation of engineered tissue structure. Tissues fabricated with this technique show high fidelity in both structural alignment and contractile function of vascular smooth muscle tissue in a vascular muscular thin film model. This technique can be extended using other cell types and provides the framework for future study of chronic tissue- and organ-level functionality.

We present a method for microfluidic deposition of patterned genipin and fibronectin on PDMS substrates, allowing extended viability of vascular smooth muscle cell-dense tissues. This tissue fabrication method is combined with previous vascular muscular thin film technology to measure vascular contractility over disease-relevant time courses.

Microfluidic genipina Deposición Técnica de Cultura extendido de micropatterned vasculares musculares Thin Films

The chronic nature of vascular disease progression requires the development of experimental techniques that simulate physiologic and pathologic vascular ...

Construction of Modular Hydrogel Sheets for Micropatterned Macro-scaled 3D Cellular Architecture

Hydrogels can be patterned at the micro-scale using microfluidic or micropatterning technologies to provide an in vivo-like three-dimensional (3D) tissue geometry. The resulting 3D hydrogel-based cellular constructs have been introduced as an alternative to animal experiments for advanced biological studies, pharmacological assays and organ transplant applications. Although hydrogel-based particles and fibers can be easily fabricated, it is difficult to manipulate them for tissue reconstruction. In this video, we describe a fabrication method for micropatterned alginate hydrogel sheets, together with their assembly to form a macro-scale 3D cell culture system with a controlled cellular microenvironment. Using a mist form of the calcium gelling agent, thin hydrogel sheets are easily generated with a thickness in the range of 100 - 200 &#181;m, and with precise micropatterns. Cells can then be cultured with the geometric guidance of the hydrogel sheets in freestanding conditions. Furthermore, the hydrogel sheets can be readily manipulated using a micropipette with an end-cut tip, and can be assembled into multi-layered structures by stacking them using a patterned polydimethylsiloxane (PDMS) frame. These modular hydrogel sheets, which can be fabricated using a facile process, have potential applications of in vitro drug assays and biological studies, including functional studies of micro- and macrostructure and tissue reconstruction.

We describe the fabrication of micropatterned hydrogel sheets using a simple process, which can be assembled and manipulated in a freestanding form. Using these modular hydrogel sheets, a simple macro-scaled 3D cell culture system can be generated with a controlled cellular microenvironment.

Construcción de Hojas modular de hidrogel para la arquitectura celular 3D a escala macro micropatterned

Hydrogels can be patterned at the micro-scale using microfluidic or micropatterning technologies to provide an in vivo-like three-dimensional (3D) tissue ...

Micropatterning and Assembly of 3D Microvessels

In vitro platforms to study endothelial cells and vascular biology are largely limited to 2D endothelial cell culture, flow chambers with polymer or glass based substrates, and hydrogel-based tube formation assays. These assays, while informative, do not recapitulate lumen geometry, proper extracellular matrix, and multi-cellular proximity, which play key roles in modulating vascular function. This manuscript describes an injection molding method to generate engineered vessels with diameters on the order of 100 &#181;m. Microvessels are fabricated by seeding endothelial cells in a microfluidic channel embedded within a native type I collagen hydrogel. By incorporating parenchymal cells within the collagen matrix prior to channel formation, specific tissue microenvironments can be modeled and studied. Additional modulations of hydrodynamic properties and media composition allow for control of complex vascular function within the desired microenvironment. This platform allows for the study of perivascular cell recruitment, blood-endothelium interactions, flow response, and tissue-microvascular interactions. Engineered microvessels offer the ability to isolate the influence from individual components of a vascular niche and precisely control its chemical, mechanical, and biological properties to study vascular biology in both health and disease.

This manuscript presents an injection molding method to engineer microvessels that recapitulate physiological properties of endothelium. The microfluidic-based process creates patent 3D vascular networks with tailorable conditions, such as flow, cellular composition, geometry, and biochemical gradients. The fabrication process and examples of potential applications are described.

Micropatterning y Montaje de Microvasos 3D

In vitro platforms to study endothelial cells and vascular biology are largely limited to 2D endothelial cell culture, flow chambers with polymer or glass ...

Patterning of Microorganisms and Microparticles through Sequential Capillarity-assisted Assembly

Controlled patterning of microorganisms into defined spatial arrangements offers unique possibilities for a broad range of biological applications, including studies of microbial physiology and interactions. At the simplest level, accurate spatial patterning of microorganisms would enable reliable, long-term imaging of large numbers of individual cells and transform the ability to quantitatively study distance-dependent microbe-microbe interactions. More uniquely, coupling accurate spatial patterning and full control over environmental conditions, as offered by microfluidic technology, would provide a powerful and versatile platform for single-cell studies in microbial ecology. 
This paper presents a microfluidic platform to produce versatile and user-defined patterns of microorganisms within a microfluidic channel, allowing complete optical access for long-term, high-throughput monitoring. This new microfluidic technology is based on capillarity-assisted particle assembly and exploits the capillary forces arising from the controlled motion of an evaporating suspension inside a microfluidic channel to deposit individual microsized objects in an array of traps microfabricated onto a polydimethylsiloxane (PDMS) substrate. Sequential depositions generate the desired spatial layout of single or multiple types of micro-sized objects, dictated solely by the geometry of the traps and the filling sequence. 
The platform has been calibrated using colloidal particles of different dimensions and materials: it has proven to be a powerful tool to generate diverse colloidal patterns and perform surface functionalization of trapped particles. Furthermore, the platform was tested on microbial cells, using Escherichia coli cells as a model bacterium. Thousands of individual cells were patterned on the surface, and their growth was monitored over time. In this platform, the coupling of single-cell deposition and microfluidic technology allows both geometric patterning of microorganisms and precise control of environmental conditions. It thus opens a window into the physiology of single microbes and the ecology of microbe-microbe interactions, as shown by preliminary experiments.

We present a technology that uses capillarity-assisted assembly in a microfluidic platform to pattern micro-sized objects suspended in a liquid, such as bacteria and colloids, into prescribed arrays on a polydimethylsiloxane substrate.

Modelado de microorganismos y micropartículas a través del ensamblaje secuencial asistido por capilaridad

Controlled patterning of microorganisms into defined spatial arrangements offers unique possibilities for a broad range of biological applications, ...

Ingeniería

Fabrication of Three-dimensional Paper-based Microfluidic Devices for Immunoassays

Paper wicks fluids autonomously due to capillary action. By patterning paper with hydrophobic barriers, the transport of fluids can be controlled and directed within a layer of paper. Moreover, stacking multiple layers of patterned paper creates sophisticated three-dimensional microfluidic networks that can support the development of analytical and bioanalytical assays. Paper-based microfluidic devices are inexpensive, portable, easy to use, and require no external equipment to operate. As a result, they hold great promise as a platform for point-of-care diagnostics. In order to properly evaluate the utility and analytical performance of paper-based devices, suitable methods must be developed to ensure their manufacture is reproducible and at a scale that is appropriate for laboratory settings. In this manuscript, a method to fabricate a general device architecture that can be used for paper-based immunoassays is described. We use a form of additive manufacturing (multi-layer lamination) to prepare devices that comprise multiple layers of patterned paper and patterned adhesive. In addition to demonstrating the proper use of these three-dimensional paper-based microfluidic devices with an immunoassay for human chorionic gonadotropin (hCG), errors in the manufacturing process that may result in device failures are discussed. We expect this approach to manufacturing paper-based devices will find broad utility in the development of analytical applications designed specifically for limited-resource settings.

We detail a method to fabricate three-dimensional paper-based microfluidic devices for use in the development of immunoassays. Our approach to device assembly is a type of multilayer, additive manufacturing. We demonstrate a sandwich immunoassay to provide representative results for these types of paper-based devices.

La fabricación de dispositivos de microfluidos basados ​​en papel tridimensional para inmunoensayos

Paper wicks fluids autonomously due to capillary action. By patterning paper with hydrophobic barriers, the transport of fluids can be controlled and ...

A Versatile Method of Patterning Proteins and Cells

Substrate and cell patterning techniques are widely used in cell biology to study cell-to-cell and cell-to-substrate interactions. Conventional patterning techniques work well only with simple shapes, small areas and selected bio-materials. This article describes a method to distribute cell suspensions as well as substrate solutions into complex, long, closed (dead-end) polydimethylsiloxane (PDMS) microchannels using negative pressure. This method enables researchers to pattern multiple substrates including fibronectin, collagen, antibodies (Sal-1), poly-D-lysine (PDL), and laminin. Patterning of substrates allows one to indirectly pattern a variety of cells. We have tested C2C12 myoblasts, the PC12 neuronal cell line, embryonic rat cortical neurons, and amphibian retinal neurons. In addition, we demonstrate that this technique can directly pattern fibroblasts in microfluidic channels via brief application of a low vacuum on cell suspensions. The low vacuum does not significantly decrease cell viability as shown by cell viability assays. Modifications are discussed for application of the method to different cell and substrate types. This technique allows researchers to pattern cells and proteins in specific patterns without the need for exotic materials or equipment and can be done in any laboratory with a vacuum.

This report describes a simple, easy to perform technique, using low pressure vacuum, to fill microfluidic channels with cells and substrates for biological research.

Un método versátil de Patterning proteínas y células

Substrate and cell patterning techniques are widely used in cell biology to study cell-to-cell and cell-to-substrate interactions. Conventional patterning ...

Fabricación en microrelieve de dispositivos analíticos basados en papel de nanocelulosa  

Microembossing: A Convenient Process for Fabricating Microchannels on Nanocellulose Paper-Based Microfluidics

Nanopaper, derived from nanofibrillated cellulose, has generated considerable interest as a promising material for microfluidic applications. Its appeal lies in a range of excellent&#160;qualities, including an exceptionally smooth surface, outstanding optical transparency, a uniform nanofiber matrix with nanoscale porosity, and customizable chemical properties. Despite the rapid growth of nanopaper-based microfluidics, the current techniques used to create microchannels on nanopaper, such as 3D printing, spray coating, or manual cutting and assembly, which are crucial for practical applications, still possess certain limitations, notably susceptibility to contamination. Furthermore, these methods are restricted to the production of millimeter-sized channels. This study introduces a straightforward process that utilizes convenient plastic micro-molds for simple microembossing operations to fabricate microchannels on nanopaper, achieving a minimum width of 200 &#181;m. The developed microchannel outperforms existing approaches, achieving a fourfold improvement, and can be fabricated within 45 min. Furthermore, fabrication parameters have been optimized, and a convenient quick-reference table is provided for application developers. The proof-of-concept for a laminar mixer, droplet generator, and functional nanopaper-based analytical devices (NanoPADs) designed for Rhodamine B sensing using surface-enhanced Raman spectroscopy was demonstrated. Notably, the NanoPADs exhibited exceptional performance with improved limits of detection. These outstanding results can be attributed to the superior optical properties of nanopaper and the recently developed accurate microembossing method, enabling the integration and fine-tuning of the NanoPADs.

Autor destacado: Revolucionando la microfluídica a través de la fabricación de microcanales en nanopapel 

This protocol describes a straightforward process that utilizes convenient plastic micro-molds for simple microembossing operations to fabricate microchannels on nanofibrillated cellulose paper, achieving a minimum width of 200 &#181;m.

Microestampado: un proceso conveniente para la fabricación de microcanales en microfluídica basada en papel de nanocelulosa

Nanopaper, derived from nanofibrillated cellulose, has generated considerable interest as a promising material for microfluidic applications. Its appeal ...

El uso de adhesivo Patrones para construir dispositivos de microfluidos de papel 3D

Resumen

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Origami Inspired autoensamblaje de partículas modeladas y Reconfigurable

Creación de degradados adhesivas y soluble para la migración celular con imágenes de microscopía de fluorescencia

Patrones celular en fotolitográficamente Definido Parylene-C: SiO

Microfluidic genipina Deposición Técnica de Cultura extendido de micropatterned vasculares musculares Thin Films

Construcción de Hojas modular de hidrogel para la arquitectura celular 3D a escala macro micropatterned

Micropatterning y Montaje de Microvasos 3D

Modelado de microorganismos y micropartículas a través del ensamblaje secuencial asistido por capilaridad

La fabricación de dispositivos de microfluidos basados en papel tridimensional para inmunoensayos

Un método versátil de Patterning proteínas y células

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