Mehr als die Hälfte der Herzinsuffizienzfälle weltweit werden als Herzinsuffizienz mit erhaltener Blutejektionsfraktion oder HFpEF klassifiziert. In diesem Video wird ein schrittweises Verfahren zur Modellierung von HFpEF-Minischweinen sowie Echokardiographie-Techniken zur Beurteilung der Herzfunktion vorgestellt. Dieses Modell verfügt über einen einzelnen prädisponierenden Filter.
Es liegt eine Aortenverengung vor, eine induzierte Drucküberlastung. Daher ist das Modell hilfreich für die Untersuchung einer bestimmten Art von HFpEF. Neben der Operationstechnik pro Operationsplanung sind die Qualitätskontrolle der Tiere und die Versorgung der Tiere nach der Operation entscheidende Schritte.
Die biochemischen Tests und die Elektrokardiographie helfen bei der Überwachung der Gesundheit des Tieres und der Veränderungen seiner Struktur und Funktion. Xiaohui Li, ein klinischer Herzchirurg. Weijiang Tan, ausgebildeter Tierchirurg.
Xiang Li, ein ausgebildeter Anästhesist für diese Operation. Shuang Chen, eine ausgebildete OP-Krankenschwester. Und Honghua Chen, eine ausgebildete OP-Krankenschwester, wird das Verfahren vorführen.
Beginnen Sie mit der Akklimatisierung der Tiere für 14 Tage vor der Operation. Bereiten Sie den Operationssaal und die Geräte vor. Halten Sie das Minischwein fest und legen Sie es in die richtige seitliche Liegeposition auf den OP-Tisch.
Schalten Sie die Heizung ein, um die Körpertemperatur des Tieres aufrechtzuerhalten. Führen Sie die Echokardiographie durch und entnehmen Sie eine Blutprobe von zwei Millilitern. Initiieren Sie die Beatmung mit acht Millilitern pro Kilogramm Atemzugvolumen und 30 Atemzügen pro Minute.
Legen Sie eine intravenöse Kanülierung mit einem peripheren intravenösen Katheter aus einer Ohrvene an. Schließen Sie das Tier dann an einen tierärztlichen Monitor an. Rasieren Sie den linken Brustbereich.
Tragen Sie 0,7 % Jod und 75 % Alkohol auf, um die Haut vom Schulterblatt bis zum Zwerchfell aseptisch vorzubereiten. Legen Sie sterile Abdecktücher über den Operationsbereich. Markieren Sie einen etwa 15 Zentimeter langen Schnitt entlang des vierten Zwischenrippenraums.
Machen Sie dann den Hautschnitt mit Elektrokauter. Öffnen Sie den Brustkorb mit einer Kombination aus Kauter und stumpfer Dissektion des Muskels und des Bindegewebes. Verwenden Sie einen Rippenaufroller, um die Rippen zu spreizen.
Lokalisieren Sie das thorakale absteigende Aortasegment und bestimmen Sie die Verengungsstelle und verwenden Sie zwei chirurgische OTT-Nähte, um das Segment zweimal zu umschlingen. Richten Sie Druckmesseinheiten ein. Um den Grad der Verengung zu bestimmen, ziehen Sie die chirurgische Naht um das absteigende Aortensegment allmählich an, um den gewünschten Verengungsgrad zu erreichen.
Lassen Sie die Druckwerte 20 Minuten lang stabilisieren und ziehen Sie die chirurgischen Knoten dauerhaft fest. Verwenden Sie einen Drainageschlauch, um die Luft und überschüssige Flüssigkeiten in der Brusthöhle zu evakuieren. Überwachen Sie das Blinzeln der Augen und die Bewegung der Gliedmaßen des Tieres.
Trennen Sie das Beatmungsgerät, aber verlassen Sie den Endotrachealtubus und überwachen Sie das Vorhandensein von Spontanatmung. Legen Sie das Tier in eine mobile Rückhalteeinheit mit einer Planenabdeckung. Rasieren Sie die linke Brust des Tieres.
Legen Sie die Finger auf die linke Mitte der Brust, um den epischen Puls zu fühlen. Tragen Sie das Ultraschallgel auf die Umgebung auf. Platzieren Sie den Phased-Array-Schallkopf des Ultraschallsystems im dritten Interkostalraum.
Bewegen Sie den Schallkopf in eine vordere oder hintere Richtung und stellen Sie den Kerbwinkel ein. Identifizieren Sie die Vorhöfe, Ventrikel und Aorta und nehmen Sie die Bilder der perasteralen Längsachse im B- und M-Modus auf. Identifizieren Sie als Nächstes in der parasternalen Kurzachsenansicht das interventrikuläre Septum, die linksventrikuläre Hinterwand und den Papillarmuskel und zeichnen Sie die Bilder des B- und M-Modus auf.
Verwenden Sie die vom Hersteller des Ultraschallsystems zur Verfügung gestellte Workstation, um die Struktur und Funktion des Herzens zu beurteilen. Die kardiale Struktur- und Funktionsauswertung zeigte die angezeigten B-Mode- und M-Mode-Aufnahmen der perasteralen Kurzachse. Die Dicke des Ventrikelseptums nahm in den absteigenden Aortenkonstriktionsherzen zu, während die hintere Wanddicke während des Beobachtungszeitraums zu- und wieder abnahm, was auf den hypertrophen Umbau im linken Ventrikel der absteigenden Aortenkonstriktionsminischweine hindeutet.
Die linksventrikuläre innere Dimension am Ende der Diastole nahm in der vierten und sechsten Woche ab und nahm dann nach der achten Woche allmählich zu, was darauf hindeutet, dass die Ventrikel vor der Dilatation eine konzentrische Hypertrophie durchliefen. Die linksventrikuläre Ejektionsfraktion der Modellherzen wurde während der 12 Wochen bei mehr als 50% gehalten. Im Vergleich zu Scheinherzen wurde eine Vergrößerung der absteigenden Aortenkonstriktionsherzen beobachtet.
Der Herzinsuffizienzmarker, das kardiale Troponin I, war in den Wochen 4, 8 und 12 in der absteigenden Aortenkonstriktionsgruppe signifikant höher als in der Scheingruppe zu den entsprechenden Zeitpunkten. Kardiomyozyten in den Vorhöfen, dem ventrikulären Septum und den Ventrikeln zeigten eine Hypertrophie mit Pignose. Die Muskelschichten in der Endometriumklappe waren reduziert und in der Aorta wurde eine vaskuläre endotheliale Hyperplasie beobachtet.
Darüber hinaus induzierte die absteigende Aortenkonstriktion eine ausgedehnte Fibrose im Myokard der Minischweine, begleitet von einer Infiltration von Entzündungszellen in den linken Ventrikeln, dem rechten Vorhof und den Aortenwänden. Dieses Modell ist ein leistungsfähiges Werkzeug zur Untersuchung von Gewebeschäden, Fibrose, Entzündungen und konzentrischer Dysfunktion bei drucküberlastungsinduzierter HFpEF.
