Name: automated 90sr separation and preconcentration in a lab-on-valve system at ppq level
Uploaded: 2018-06-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 53 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Automated 90Sr Separation and Preconcentration in a Lab-on-Valve System at Ppq Level at JoVE.com

Die Autoren möchte wurden Kollegen und Menschen die verschiedenen Schritte des Projektes beteiligt. Die Kollegen in der GFS-Karlsruhe Konstruktionsbüro, Herren Dietrich Knoche und Volkmar Ernest in der JRC Karlsruhe Workshop Herren Christian Diebold und Joachim Küst für die Konstruktion und Fertigung der Übungseinheit am Ventil (LOV) Krümmer und Ringwald GmbH für die Software-Implementierung der gestoppt-Flow Erkennung Modus Technik.

Hinweis: Lösungen wurden von Reinstwasser (18,2 MΩ cm) mit Geräten zur Ultratrace Analyse vorbereitet. Salpetersäure gereinigt mit einem Quarz Sub kochendem Destillationsanlage wurde. Die Wasseraufbereitungsanlage und Sub-kochende Destillationseinheit wurden in einem sauberen Raum betrieben.
Achtung: 90Sr ist akut giftig und karzinogen. Geeignete Sicherheitsmaßnahmen sind unerlässlich bei der Durchführung der Experimente, darunter technische Kontrollsysteme und persönliche Schutzausrüstung.
1. Experiment Vorbereitung
Hinweis: Eine ausführliche Beschreibung über die Software-Architektur und seine Funktionen kann an anderer Stelle23gefunden werden.
<ol><li>Verbinden Sie den modularen Ventilstellung Ausfahrt Port für den Anschluss des Radio-Fluss-Detektors.</li>
	<li>Verbinden Sie die Trigger-Linie mit ausgewählten Detektor.</li>
	<li>Sicherstellen Sie, dass die LOV-Ports richtig angeschlossen sind. Sicherzustellen Sie, dass ausreichende Mengen an funktionierende Lösungen für das gesamte Protokoll zur Verfügung stehen und flüssigen Probenahme Schlauch unter Wasser bleiben.</li>
	<li>Sicherzustellen, dass der Autosampler auf, starten Sie die Software Autosampler und über die Softwareschnittstelle Initialisieren des Autosamplers. Klicken Sie auf die Schaltfläche " initialisieren ", um die Kommunikation zwischen dem Gerät und dem PC zu generieren.</li>
	<li>Sicherzustellen Sie, dass die AutoRAD Software gestartet wurde, überprüfen Sie die Kommunikations-Ports mithilfe der Registerkarte "Optionen" und initialisieren Sie die Software über das User-Interface zu. Siehe Diskussion Abschnitt für mehr Details über die grafische Benutzeroberfläche.</li>
	<li>Sicherstellen Sie, dass die Analyse-Sequenz in den Detektor Software programmiert wird. Vew Programmabläufe mithilfe der Methodeneditor Registerkarte in der AutoRAD Software durch Eingabe der Anzahl der erforderlichen Schritte und die Aufgaben und die Geschwindigkeit für jedes Gerät. Hinweis: Eine detaillierte Beschreibung der Software-Bedienung finden Sie in vorherigen Veröffentlichung23.</li>
	<li>Wenden Sie sich an den lokalen Strahlenschutz-Offizier und beschäftigen Sie die Strahlenschutz Messungen benötigt für die komplette Prozedur mit 90Sr.</li>
</ol>2. System Reinigung
<ol><li>Laden Sie 10 mL 18,2 MΩ cm Wasser aus der Flasche in die Spritze bei 90 mL·min-1. Stellen Sie sicher, dass die Spritze Ventilstellung die In Position für diesen Schritt ist. In dieser Position tritt Laden direkt an der Spritze und nicht durch das LOV.</li>
	<li>Fallen Sie das Wasser mit dem Müll über die Holding-Spule mit einer Durchflussrate von 90 mL·min-1.</li>
	<li>Laden Sie 3 mL Ethanol zur Abhaltung Spule bei einer Durchflussmenge von 3 mL·min-1. Legen Sie die Spritze Ventilposition mit sich.</li>
	<li>Legen Sie das Ethanol auf die Detektor-Spule an einer Durchflussmenge von 3 mL·min-1.</li>
</ol>3. Laden Sie Harz, das LOV
<ol><li>Unter ständigem Rühren die Harz-Suspension in Wasser (12 Mg·mL-1), 3 mL über das LOV abholen. Legen Sie den Fluss auf 3 mL·min-1
</li>
	<li>Drop der Harz-Suspension in der Spalte Kanal mit einer Durchflussrate von 1,2 mL·min-1
</li>
	<li>Reinigen der Holding-Spule und legen Sie die Harz-Rückstände auf der Spalte Kanal. Hierzu laden Sie 9 mL 18,2 MΩ cm Wasser aus der Flasche an der Spritze mit einer Durchflussrate von 90 mL·min-1. Sicherstellen Sie, dass die Spritze Ventilstellung In Position. Legen Sie das Wasser zum Abfall über die Holding-Spule mit einer Durchflussrate von 3 mL·min-1.</li>
</ol>4. Analyse Sequenz
<ol><li>Spalte-Klimaanlage<ol>
<li>Laden Sie 2 mL Druckaufschluss3 (4 M) über das LOV der Holding-Spule. Die Strömung auf 6 mL·min-1gesetzt.</li>
		<li>Fallen Sie der Druckaufschluss-3 auf die Säule mit einer Durchflussrate von 1,2 mL·min-1.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Probenbeladung und Beseitigung von Störungen<ol>
<li>Laden Sie Probe (1,3 mL) aus der Autosampler mit der Holding-Spule bei einer Durchflussmenge von 6 mL·min-1.</li>
		<li>Legen Sie die Probe auf die Säule mit einer Durchflussrate von 1,2 mL·min-1.</li>
		<li>0,5 mL Druckaufschluss3 (4 M) mit der Holding-Spule bei einer Durchflussmenge von 6 mL·min-1zu laden.</li>
		<li>Spülen Sie die Spalte mit 0,5 mL Druckaufschluss3 (4 M), Matrix-Störungen mit einer Durchflussrate von 1,2 mL·min-1eluieren.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Elution der Probe und Messung<ol>
<li>Laden Sie 5 mL 18,2 MΩ cm Wasser zur Abhaltung Spule bei einer Durchflussmenge von 6 mL·min-1.</li>
		<li>Den Melder ausgelöst. Legen Sie den Durchfluss der Flüssigkeit funkeln auf 2 mL·min-1 in die Software des Melders. Legen Sie die Verweildauer auf 10 s. Die Probe-Spule hat ein Volumen von 2 mL.</li>
		<li>Spülen Sie die Spalte.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Spülen der Sonde Probe und halten Spule<ol>
<li>Laden Sie 0,6 mL Druckaufschluss3 (1 %) der Holding-Spule bei einer Durchflussmenge von 6 mL·min-1.</li>
		<li>Laden Sie 0,6 mL Luft an die Holding-Spule bei einer Durchflussmenge von 6 mL·min-1.</li>
		<li>Entlastung 1,2 mL des Gemisches mit dem Müll.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Harz-Ersatz<ol>
<li>Laden Sie 0,2 mL Ethanol zur Abhaltung Spule bei einer Durchflussmenge von 3 mL·min-1.</li>
		<li>Spülen Sie die Spalte mit 0,2 mL Ethanol mit einer Durchflussrate von 1,2 mL·min-1.</li>
		<li>Spülen Sie die Spalte Kanal mit 0,5 mL Wasser bei einer Durchflussrate von 0,45 mL·min-1.</li>
		<li>Das verwendete Harz mit dem Müll zu entladen.</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Zapata-Garc&#237;a, D., Wershofen, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+radiochemical+analysis+strategies+for+decommissioning+activities.">Development of radiochemical analysis strategies for decommissioning activities.</a> Applied Radiation and Isotopes. 126, 204-207 (2017).</li><li>Hou, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Radiochemical+analysis+of+radionuclides+difficult+to+measure+for+waste+characterization+in+decommissioning+of+nuclear+facilities.">Radiochemical analysis of radionuclides difficult to measure for waste characterization in decommissioning of nuclear facilities.</a> Journal of Radioanalytical and Nuclear Chemistry. 273 (1), 43-48 (2007).</li><li>Chung, K. 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W., Strebin, R., Janata, J., Egorov, O., Ruzicka, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+Analysis+of+Radionuclides+in+Nuclear+Waste:+Rapid+Determination+of+90Sr+by+Sequential+Injection+Analysis.">Automated Analysis of Radionuclides in Nuclear Waste: Rapid Determination of 90Sr by Sequential Injection Analysis.</a> Analytical Chemistry. 68 (2), 333-340 (1996).</li><li>Holmgren, S., Tovedal, A., Bj&#246;rnham, O., Rameb&#228;ck, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Time+optimization+of+90Sr+measurements:+Sequential+measurement+of+multiple+samples+during+ingrowth+of+90Y.">Time optimization of 90Sr measurements: Sequential measurement of multiple samples during ingrowth of 90Y.</a> Applied Radiation and Isotopes. 110, 150-154 (2016).</li><li>Kavasi, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+90Sr+in+soil+samples+affected+by+the+Fukushima+Daiichi+Nuclear+Power+Plant+accident.">Measurement of 90Sr in soil samples affected by the Fukushima Daiichi Nuclear Power Plant accident.</a> Journal of Radioanalytical and Nuclear Chemistry. 303 (3), 2565-2570 (2015).</li><li>Ko&#322;aci&#324;ska, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automation+of+sample+processing+for+ICP-MS+determination+of+90Sr+radionuclide+at+ppq+level+for+nuclear+technology+and+environmental+purposes.">Automation of sample processing for ICP-MS determination of 90Sr radionuclide at ppq level for nuclear technology and environmental purposes.</a> Talanta. 169, 216-226 (2017).</li><li>Lazare, L., Crestey, C., Bleistein, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measurement+of+90Sr+in+primary+coolant+of+pressurized+water+reactor.">Measurement of 90Sr in primary coolant of pressurized water reactor.</a> Journal of Radioanalytical and Nuclear Chemistry. 279 (2), 633-638 (2009).</li><li>Mola, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determination+of+90Sr+and+210Pb+in+sludge+samples+using+a+LOV-MSFIA+system+and+liquid+scintillation+counting.">Determination of 90Sr and 210Pb in sludge samples using a LOV-MSFIA system and liquid scintillation counting.</a> Applied Radiation and Isotopes. 86, 28-35 (2014).</li><li>Plionis, A. 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W., Ruzicka, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automation+of+radiochemical+analysis+by+flow+injection+techniques:+Am-Pu+separation+using+TRU-resin&#8482;+sorbent+extraction+column.">Automation of radiochemical analysis by flow injection techniques: Am-Pu separation using TRU-resin&#8482; sorbent extraction column.</a> Journal of Radioanalytical and Nuclear Chemistry. 234 (1), 231-235 (1998).</li><li>Rodr&#237;guez, R., Avivar, J., Leal, L. O., Cerd&#224;, V., Ferrer, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Strategies+for+automating+solid-phase+extraction+and+liquid-liquid+extraction+in+radiochemical+analysis.">Strategies for automating solid-phase extraction and liquid-liquid extraction in radiochemical analysis.</a> TrAC Trends in Analytical Chemistry. 76, 145-152 (2016).</li><li>Mir&#243;, M., Oliveira, H. M., Segundo, M. 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O., Cerd&#224;, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automated+total+and+radioactive+strontium+separation+and+preconcentration+in+samples+of+environmental+interest+exploiting+a+lab-on-valve+system.">Automated total and radioactive strontium separation and preconcentration in samples of environmental interest exploiting a lab-on-valve system.</a> Talanta. 96, 96-101 (2012).</li><li>Rodr&#237;guez, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automation+of+99Tc+extraction+by+LOV+prior+ICP-MS+detection:+Application+to+environmental+samples.">Automation of 99Tc extraction by LOV prior ICP-MS detection: Application to environmental samples.</a> Talanta. 133, 88-93 (2015).</li><li>Villar, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Automatic+and+Simple+Method+for+99Tc+Determination+Using+a+Selective+Resin+and+Liquid+Scintillation+Detection+Applied+to+Urine+Samples.">Automatic and Simple Method for 99Tc Determination Using a Selective Resin and Liquid Scintillation Detection Applied to Urine Samples.</a> Analytical Chemistry. 85 (11), 5491-5498 (2013).</li><li>L'Annunziata, M. 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A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Limits+for+qualitative+detection+and+quantitative+determination.+Application+to+radiochemistry.">Limits for qualitative detection and quantitative determination. Application to radiochemistry.</a> Analytical Chemistry. 40 (3), 586-593 (1968).</li></ol>

Die Autoren haben nichts preisgeben.

Radiologische Charakterisierung und Schutz sind die kritischen Punkte in allen Phasen des Lebenszyklus einer Atomanlage. Das Bedürfnis nach Radionuklid-Bestimmung bei der Stilllegung von kerntechnischen Anlagen erfordert kontinuierliche Verbesserung der analytischen Verfahren. Dazu gehört die Verbesserung der Selektivität und Empfindlichkeit und Verkürzung der Analyse. Der AUTORAD Prototyp erfüllt diese Anforderungen. Darüber hinaus wird der Prototyp ist portabel und ermöglicht die vor-Ort-Bestimmung. Die vorgeschlagene automatisierte Online-Methode wurde erfolgreich für die Bestimmung von 90Sr Aktivität in wässrigen Proben eingesetzt.
Abbildung 1 zeigt eine schematische Darstellung des AutoRAD Systems. Kommunikation mit dem Prototyp wurde mit der kommerziellen grafischen Programmiersprache LabVIEW 2014 erreicht. Der Virtual Instrument Software Architektur (VISA) Modus für Konfiguration, Programmierung und controlling Schnittstellen bereitgestellt wurde. Abbildung 2 zeigt die grafische Schnittstelle Bildschirm wo die Port-Konfiguration vor der Initialisierung des Systems überprüft werden kann. Der VISA-Modus ist unabhängig von Betriebssystem und Programmumgebung, so dass es außergewöhnliche Vielseitigkeit bietet. Die grundlegende Struktur und Funktionen der entwickelten Software wurden in früheren Publikation24weithin diskutiert. Verbesserungen wurden durch die Kontrolle der Büretten durch den PC über eine RS232-Schnittstelle, so dass verstärkte Kontrolle der beiden Büretten gleichzeitig und die Möglichkeit zur Durchführung von Messungen in Stop-Flow-Modus erreicht. Im Gegensatz dazu reagiert die RS232 Verbindung schnell steigt der System-Gegendruck. Dies kann zu Systemfehler und Messung stoppen. Besonderes Augenmerk muss daher bei der Harz laden und Ionenstärke der Proben zu entrichten.
Die Optimierung der Versuchsbedingungen wurde in einer Reihe von Experimenten mit Strontium stabiler Isotope 86Sr als Surrogat für die radioaktive 90Sr und durch das AUTORAD Kupplungssystem eine ICP-MS, anstatt ein Beta-Detctcor erreicht. System. Abbildung 3 zeigt die ICP-MS 86Sr Elution Profile. Die erhaltenen 86subtrahiert Sr Elution Profile sind in voller Übereinstimmung mit zuvor berichteten Ergebnisse für insgesamt Strontium mit Niederdruck Trennung Geräte25, und leer gewesen. Lineare Regression Methode der kleinsten Quadrate wurde verwendet, um einen Sitz für die Ziel-Kurve zu erzeugen, die eine zusätzliche Unsicherheit-Komponente keine einführt. Die Linearität erreicht wurde 0.995, mit p-Werten kleiner als das Signifikanzniveau. Das LOD 2 Pg·g-1wurde durch wiederholte Messungen des Rohlings laut Currie26bestimmt. Die Reproduzierbarkeit der Methode, basierend auf die relative Standardabweichung von Peak berechnet auf der Grundlage von drei wiederholter läuft, wurde immer weniger als 4 % im Bereich von 10 bis 120 Pg·g-1. Die Schulter erlebt in den Profilen der Elution ist höchstwahrscheinlich ein Artefakt durch nicht optimale Verpackung der Spalte in der automatisierten AUTORAD Konfiguration.
Abbildung 4 zeigt die 90Sr Profil mit der Radio-Fluss-Detektor. Das AUTORAD-System ist in der Lage, effektiv 90Sr in wässrigen Proben zu trennen.
Abbildung 5 zeigt, dass die Abhängigkeit von den 90Sr-Konzentration mit dem Signal linear im Bereich von Interesse ist. Die abgeleiteten Nachweisgrenze liegt in der fg. g-1 -Reihe, aktivieren, ohne weitere Modifikation, die Bestimmung der Radiostrontium in nukleare Rückbau und Entsorgung Charakterisierung Proben. Reproduzierbarkeit der Methode, mit der Strömung Funkeln Detektor und basierend auf die relative Standardabweichung von Peak, liegt bei etwa 30 % im untersuchten Konzentrationsbereich. Das aktuelle Setup des Prototyps, begrenzt jedoch seine Anwendung auf Umweltproben, im Wesentlichen aufgrund der kurzen Zeit im Detektor zählen. Darüber hinaus können komplexe Matrizen das Harz in der Mini-Spalte sättigen.
Die gestoppt-Flow-Technik, wo Hamilton und Radio Strömungspumpe Detektor werden während der Messung gestoppt, wird umgesetzt. Diese Funktion verbessert die Empfindlichkeit durch die Verlängerung der Verweilzeit im größten Teil der Probe Zone innerhalb der Messzelle. Somit ist ein statistisch sinnvolle Signal Acculated, bevor die Probe den Detektor verlässt. Dieser Ansatz wird die Zählung Statistiken und die Nachweisgrenzen verbessern. Darüber hinaus wird eine neue Anwendung einschließlich einer zusätzlichen Ionenaustausch Mini-Spalte für die Entfernung der Matrix-Komponenten, die die Beibehaltung beeinflussen könnten und Trennung der verschiedenen Radionuklide in komplexen matrik Proben entwickelt.

Etwa 150 kommerzielle Kernkraftwerke (KKW) sind in der Stilllegung, aber die Gesamtzahl der kerntechnischen Anlagen ist viel größer, wenn Forschung und Wiederaufbereitungsanlagen in Erwägung1gezogen werden. Rückbau kerntechnischer Anlagen ist sehr kostspielig und beinhaltet Transport und off Site Messung von kontaminiertem Material. Einsparungen sind möglich durch die Annahme der Messung vor Ort und flexible Techniken1. Es ist daher ein dringender Bedarf an Rapid auf Website Analysemethoden unterstützen die Stilllegung der alten kerntechnischer Anlagen. Gamma-Strahler einfach und gezielt ermittelt werden mit Gamma-Spektroskopie, aber es gibt ein Mangel in vor-Ort-analytischen Methoden für die schwer zu messen (HTM) Radionuklide2. HTM zählt 90Sr von großem Interesse aufgrund seiner Toxizität und hochenergetische Emission. Seine Entschlossenheit ist zeitaufwendig und erfordert die Trennung von Interferenzen und Quantifizierung mit LSC oder spektroskopischen Methoden3,4,5,6,7, 8,9,10,11,12,13.
Radiochemische Standardmethoden sind zeitaufwendig und erfordern oft Wiederholungen, eine angemessene Rendite von Strontium zu erhalten. Deshalb ein dringender Bedarf an schneller und präzise Methoden. Neben der standard Trennung Protokolle gelten Fluss Injektionstechniken in der Reinigung und/oder Vorkonzentrierung von Radioisotopen5,14,15. Lab-Valve (LOV) Geräte sind eine Weiterentwicklung im Fluss Techniken. Sie sind programmierbar, Flow-basierte Plattformen mit verschiedenen Kupplung Modi und weisen hohe Vielseitigkeit16. Solche Geräte ermöglichen die automatische Trennung und Pre-Konzentration des Analyten vor der Erkennung, wodurch Reproduzierbarkeit und Wiederholbarkeit8,17,18,19. LOV-Systeme gekoppelt mit multisyringe Flow-Pumpen haben weithin für die Erkennung von Radionukliden durch die Minimierung von den Reagenzienverbrauch und Abfall Generation8,10,17, 18 , 19 , 20. dennoch berichtet Studien zum Thema Online-Erkennung bei Ultra-Trace-Levels sind spärlich8,17.
Vor-Ort-Messungen der radioaktiven Materialien haben viele Vorzüge und Vorteile, aber es gibt keine Anwendung der Fluss funkeln auf 90Sr Überwachung. Im Grunde geschieht mit Hilfe eines Online-Detektors, der mischt sich das Eluat aus dem LOV-Gerät mit dem funkelnden cocktail11,21,22Quantifizierung. Die Mischung wird dann durch die Zählung Zelle gepumpt und Messung erfolgt über gekoppelten Photomultiplier. Aufgrund des geringen Volumens der Zelle ist die Messzeit in der Sekunden-Skala.
Das Ziel dieser Forschung ist die Entwicklung einer vollautomatischen Methode für Online-Strontium-Nachweis über einen großen Arbeitsbereich, für beide umweltrelevanten Konzentrationen und auch diejenigen in der Atomindustrie Abfallströme gefunden. Die Plattform ist mobil und kann in einem Fahrzeug, vor-Ort-Analyse der wässrigen Proben durchzuführen montiert werden.

<table><tbody><tr><td>microLAB 600 series</td><td>Hamilton</td><td>ML600EE6910</td><td>Two dual syringe pump system, equiped with two 10 mL glass syringes. The instruments are interconnected using the CAN port (daisy chain).</td></tr><tr><td>FlowLogic U</td><td>LabLogic</td><td>SG-BXX-05</td><td>Liquid scintillator with high flash point</td></tr><tr><td>&amp;szlig;-RAM 5</td><td>LabLogic</td><td></td><td>flow detector, 2000 &amp;mu;L coiled Teflon flow cell.Software Laura 4.2.8 (LabLogic, England) run on desktop PC and connected to the detector via USB</td></tr><tr><td>SC-&amp;mu; DX Autosampler</td><td>Elemental Scientific Instruments (ESI)</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cheminert selector</td><td>Valco Instruments Co. Inc.</td><td></td><td>in-house made Lab-on-Valve has been mounted on this selector</td></tr><tr><td>Modular Valve&lt;br/&gt; Positioner (MVP)</td><td>Hamilton</td><td></td><td></td></tr><tr><td>mini magnetic stirrer</td><td>IKA</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nitric Acid Suprapur 65%</td><td>Merck</td><td>1.00441.1000</td><td>purified using quartz sub-boiling distillation unit</td></tr><tr><td>Sr-resin</td><td>Eichchrom Tecnologies, Inc</td><td>SR-B100-A</td><td>particle size 100-150 &amp;micro;m</td></tr><tr><td>Water system Elix 3 in combination with Mili-Q Element A10</td><td>Millipore</td><td></td><td>high-purity water (18.2 M&amp;Omega; cm)</td></tr><tr><td>Sr-90 standard</td><td>Eckert &amp;amp; Ziegler</td><td>7090</td><td>Sr-90 concentration 1.915 kBq/g &amp;plusmn; 3.0%, reference date 15-May-2016 12:00 PST</td></tr><tr><td>MLS quartz sub-boiling distillation unit</td><td>MLS GmbH</td><td></td><td>Subboiling unit for the purification of HCl and nitric acid</td></tr></tbody></table>

automated 90sr separation and preconcentration in a lab-on-valve system at ppq level

Eine schnelle, automatisierte und tragbares System zur Trennung und Bestimmung von Radiostrontium in wässrigen Proben, mit Sr-Harz und Multi sequentiellen Ablauf Injektion Analyse, wurde entwickelt. Die Konzentrationen von radioaktivem Strontium wurden durch Strömung Funkeln zählen, bestimmt für Online- und auch vor-Ort-Bestimmung ermöglicht. Das vorgeschlagene System kann radioaktives Strontium auf industrielle relevanten Ebenen ohne weitere Modifikation mit insgesamt Analysendauer von weniger als 10 min pro wässrige Probe bestimmen. Die Nachweisgrenze ist 320 Fg·g-1 (1,7 Bq/g).

Die vollautomatische AUTORAD Plattform betrieben von hausgemachten LabVIEW basierende Software wurde entwickelt und umgesetzt (Abbildung 1). Die Software ermöglicht flexibel genug für den täglichen Betrieb in einer benutzerfreundlichen Umgebung (Abbildung 2). Die Vielseitigkeit der Plattform wurde ebenfalls nachgewiesen, indem man es an verschiedene Detektoren (Abbildung 3). Die Anwendbarkeit der Methode wurde in wässrigen Proben, gespickt mit einem 90Sr standard (Abbildung 4) nachgewiesen. Die Parameter Linearität, linearen Bereich, Begrenzung der Nachweisgrenze (LOD) und Wiederholbarkeit wurden ausgewertet (Abbildung 5).
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57722/57722fig1.jpg"> Abbildung 1: Schematische Darstellung des AutoRAD Systems zeigt die Portkonfiguration und Reagenzien verwendet. Der zentrale Hafen ist verbunden, die Spritzenpumpe über die Holding-Spule (10 mL); Methacrylat LOV wurde im eigenen Haus hergestellt. <a href="/files/ftp_upload/57722/57722fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57722/57722fig2.jpg"> Abbildung 2: Menü Optionen AutoRAD Software. Bereich unten rechts zeigt die zugewiesenen Ports. Über die Scroll down-Menü kann der Benutzer die Zuordnung vorzunehmen. <a href="/files/ftp_upload/57722/57722fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57722/57722fig3.jpg"> Abbildung 3. 86 SR Elution Gipfel mit einem induktiv gekoppelten Plasma-Massenspektrometrie (ICP-MS) als Detektor. Strontium ist quantitativ von der Säule eluiert, während der ersten 100 s von der Elution. <a href="/files/ftp_upload/57722/57722fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57722/57722fig4.jpg"> Abbildung 4. 34.5 ± 1 Bq 90Sr (6,6 Pg·g-1) Elution Gipfel mit ß-RAM 5 als Detektor. Die Verweilzeit in der Spule betrug 40 s. Die Gesamtrate der Wiederherstellung der vorgeschlagenen Methodik für 90Sr beträgt 70 % ± 5 %. <a href="/files/ftp_upload/57722/57722fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57722/57722fig5.jpg"> Abbildung 5. Eichkurve für die Zählrate im Vergleich zu der Konzentration der Radiostrontium. Eine gute Linearität erreicht wurde (R2 = 0.997). Die Nachweisgrenze wurde durch drei Punkt drei Mal Standardabweichung des Rohlings als 320 Fg·g-1 ± 5 (1,7 Bq) berechnet. <a href="/files/ftp_upload/57722/57722fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier für eine größere Version dieser Figur.</a>

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Automated 90Sr Separation and Preconcentration in a Lab-on-Valve System at Ppq Level

Automatisierte 90Sr Trennung und Anreicherung in einem Labor-Valve System auf Ppq-Ebene

Hier präsentieren wir Ihnen die tragbaren AutoRAD Plattform für schnelle radiometrische Trennung und Bestimmung von 90Sr, ein wichtiger Kernspaltung Produkt für Atommüll hoch relevant.

A quick, automated and portable system for the separation and determination of radiostrontium in aqueous samples, using Sr-resin and multi sequential flow ...

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Serie: Automated 90Sr Separation and Preconcentration in a Lab-on-Valve System at Ppq Level

Deep Proteome Profiling by Isobaric Labeling, Extensive Liquid Chromatography, Mass Spectrometry, and Software-assisted Quantification

Many exceptional advances have been made in mass spectrometry (MS)-based proteomics, with particular technical progress in liquid chromatography (LC) coupled to tandem mass spectrometry (LC-MS/MS) and isobaric labeling multiplexing capacity. Here, we introduce a deep-proteomics profiling protocol that combines 10-plex tandem mass tag (TMT) labeling with an extensive LC/LC-MS/MS platform, and post-MS computational interference correction to accurately quantitate whole proteomes. This protocol includes the following main steps: protein extraction and digestion, TMT labeling, 2-dimensional (2D) LC, high-resolution mass spectrometry, and computational data processing. Quality control steps are included for troubleshooting and evaluating experimental variation. More than 10,000 proteins in mammalian samples can be confidently quantitated with this protocol. This protocol can also be applied to the quantitation of post translational modifications with minor changes. This multiplexed, robust method provides a powerful tool for proteomic analysis in a variety of complex samples, including cell culture, animal tissues, and human clinical specimens.

We present a protocol to accurately quantitate proteins with isobaric labelling, extensive fractionation, bioinformatics tools, and quality control steps in combination with liquid chromatography interfaced to a high-resolution mass spectrometer.

Tiefen Proteom Profilierung durch isobare Kennzeichnung, umfangreiche Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie und softwaregestützte Quantifizierung

Many exceptional advances have been made in mass spectrometry (MS)-based proteomics, with particular technical progress in liquid chromatography (LC) ...

Forschung

Biochemie

Radiolabeling and Quantification of Cellular Levels of Phosphoinositides by High Performance Liquid Chromatography-coupled Flow Scintillation

Phosphoinositides (PtdInsPs) are essential signaling lipids responsible for recruiting specific effectors and conferring organelles with molecular identity and function. Each of the seven PtdInsPs varies in their distribution and abundance, which are tightly regulated by specific kinases and phosphatases. The abundance of PtdInsPs can change abruptly in response to various signaling events or disturbance of the regulatory machinery. To understand how these events lead to changes in the amount of PtdInsPs and their resulting impact, it is important to quantify PtdInsP levels before and after a signaling event or between control and abnormal conditions. However, due to their low abundance and similarity, quantifying the relative amounts of each PtdInsP can be challenging. This article describes a method for quantifying PtdInsP levels by metabolically labeling cells with 3H-myo-inositol, which is incorporated into PtdInsPs. Phospholipids are then precipitated and deacylated. The resulting soluble 3H-glycero-inositides are further extracted, separated by high-performance liquid chromatography (HPLC), and detected by flow scintillation. The labeling and processing of yeast samples is described in detail, as well as the instrumental setup for the HPLC and flow scintillator. Despite losing structural information regarding acyl chain content, this method is sensitive and can be optimized to concurrently quantify all seven PtdInsPs in cells.

Phosphoinositides are signaling lipids whose relative abundance rapidly changes in response to various stimuli. This article describes a method to measure the abundance of phosphoinositides by metabolically labeling cells with 3H-myo-inositol, followed by extraction and deacylation. Extracted glycero-inositides are then separated by high-performance liquid chromatography and quantified by flow scintillation.

Radiomarkierung und Quantifizierung von Cellular Ebenen Phosphoinositide von High Performance Liquid Chromatography-gekoppelten Durchflussscintilla

Phosphoinositides (PtdInsPs) are essential signaling lipids responsible for recruiting specific effectors and conferring organelles with molecular ...

Chemie

Preparation of Human Tissues Embedded in Optimal Cutting Temperature Compound for Mass Spectrometry Analysis

Sphingolipids are cellular components that have well-established roles in human metabolism and disease. Mass spectrometry can be used to determine whether sphingolipids are altered in a disease and investigate whether sphingolipids can be targeted clinically. However, properly powered prospective studies that acquire tissues directly from the surgical suite can be time consuming, and technically, logistically, and administratively challenging. In contrast, retrospective studies can take advantage of cryopreserved human specimens already available, usually in large numbers, at tissue biorepositories. Other advantages of procuring tissues from biorepositories include access to information associated with the tissue specimens including histology, pathology, and in some instances clinicopathological variables, all of which can be used to examine correlations with lipidomics data. However, technical limitations related to the incompatibility of optimal cutting temperature compound (OCT) used in the cryopreservation and mass spectrometry is a technical barrier for the analysis of lipids. However, we have previously shown that OCT can be easily removed from human biorepository specimens through cycles of washes and centrifugation without altering their sphingolipid content. We have also previously established that sphingolipids in human tissues cryopreserved in OCT are stable for up to 16 years. In this report, we outline the steps and workflow to analyze sphingolipids in human tissue specimens that are embedded in OCT, including washing tissues, weighing tissues for data normalization, the extraction of lipids, preparation of samples for analysis by liquid chromatography electrospray ionization tandem mass spectrometry (LC-ESI-MS/MS), mass spectrometry data integration, data normalization, and data analysis.

Sphingolipids are bioactive metabolites with well-established roles in human disease. Characterizing alterations in tissues with mass-spectrometry can reveal roles in disease etiology or identify therapeutic targets. However, the OCT-compound used for cryopreservation in biorepositories interferes with mass-spectrometry. We outline methods to analyze sphingolipids in human tissues embedded in OCT with LC-ESI-MS/MS.

Vorbereitung von menschlichem Gewebe, eingebettet in die optimale Schnitttemperaturmischung für die massenspektrometrische Analyse

Sphingolipids are cellular components that have well-established roles in human metabolism and disease. Mass spectrometry can be used to determine whether ...

Krebsforschung

Preparing an Isotopically Pure 229Th Ion Beam for Studies of 229mTh

A methodology is described to generate an isotopically pure 229Th ion beam in the 2+ and 3+ charge states. This ion beam enables one to investigate the low-lying isomeric first excited state of 229Th at an excitation energy of about 7.8(5) eV and a radiative lifetime of up to 104 seconds. The presented method allowed for a first direct identification of the decay of the thorium isomer, laying the foundations to study its decay properties as prerequisite for an optical control of this nuclear transition. High energy 229Th ions are produced in the &#945;&#160;decay of a radioactive 233U source. The ions are thermalized in a buffer-gas stopping cell, extracted and subsequently an ion beam is formed. This ion beam is mass purified by a quadrupole-mass separator to generate a pure ion beam. In order to detect the isomeric decay, the ions are collected on the surface of a micro-channel plate detector, where electrons, as emitted in the internal conversion decay of the isomeric state, are observed.

Preparing an Isotopically Pure 229Th Ion Beam for Studies of 229mTh

We present a protocol for the generation of an isotopically purified low-energy 229Th ion beam from a 233U source. This ion beam is used for the direct detection of the 229mTh ground-state decay via the internal-conversion decay channel. We also measure the internal conversion lifetime of 229mTh as well.

Vorbereitung eines isotopisch reinen 229Th Ion Beam für Studien von 229mTh

A methodology is described to generate an isotopically pure 229Th ion beam in the 2+ and 3+ charge states. This ion beam enables one to investigate the ...

Ingenieurwesen

A Microfluidic Platform for Precision Small-volume Sample Processing and Its Use to Size Separate Biological Particles with an Acoustic Microdevice

A major advantage of microfluidic devices is the ability to manipulate small sample volumes, thus reducing reagent waste and preserving precious sample. However, to achieve robust sample manipulation it is necessary to address device integration with the macroscale environment. To realize repeatable, sensitive particle separation with microfluidic devices, this protocol presents a complete automated and integrated microfluidic platform that enables precise processing of 0.15&#8211;1.5 ml samples using microfluidic devices. Important aspects of this system include modular device layout and robust fixtures resulting in reliable and flexible world to chip connections, and fully-automated fluid handling which accomplishes closed-loop sample collection, system cleaning and priming steps to ensure repeatable operation. Different microfluidic devices can be used interchangeably with this architecture. Here we incorporate an acoustofluidic device, detail its characterization, performance optimization, and demonstrate its use for size-separation of biological samples. By using real-time feedback during separation experiments, sample collection is optimized to conserve and concentrate sample. Although requiring the integration of multiple pieces of equipment, advantages of this architecture include the ability to process unknown samples with no additional system optimization, ease of device replacement, and precise, robust sample processing.

This protocol describes a system architecture for performing automated small volume (0.15&#8211;1.5 ml) particle separations using a microfluidic device, and discusses methods to optimize acoustofluidic device performance and operation.

Einem mikrofluidischen Plattform für Präzisions-Kleinvolumen Probenbearbeitung und seine Verwendung zur Größe Separate biologische Partikel mit einem Acoustic Microdevice

A major advantage of microfluidic devices is the ability to manipulate small sample volumes, thus reducing reagent waste and preserving precious sample. ...

Biotechnik

Carrier-assisted One-pot Sample Preparation for Targeted Proteomics Analysis of Small Numbers of Human Cells

Protein analysis of small numbers of human cells is primarily achieved by targeted proteomics with antibody-based immunoassays, which have inherent limitations (e.g., low multiplex and unavailability of antibodies for new proteins). Mass spectrometry (MS)-based targeted proteomics has emerged as an alternative because it is antibody-free, high multiplex, and has high specificity and quantitation accuracy. Recent advances in MS instrumentation make MS-based targeted proteomics possible for multiplexed quantification of highly abundant proteins in single cells. However, there is a technical challenge for effective processing of single cells with minimal sample loss for MS analysis. To address this issue, we have recently developed a convenient protein carrier-assisted one-pot sample preparation coupled with liquid chromatography (LC) - selected reaction monitoring (SRM) termed cLC-SRM for targeted proteomics analysis of small numbers of human cells. This method capitalizes on using the combined excessive exogenous protein as a carrier and low-volume one-pot processing to greatly reduce surface adsorption losses as well as high-specificity LC-SRM to effectively address the increased dynamic concentration range due to the addition of exogeneous carrier protein. Its utility has been demonstrated by accurate quantification of most moderately abundant proteins in small numbers of cells (e.g., 10-100 cells) and highly abundant proteins in single cells. The easy-to-implement features and no need for specific devices make this method readily accessible to most proteomics laboratories. Herein we have provided a detailed protocol for cLC-SRM analysis of small numbers of human cells including cell sorting, cell lysis and digestion, LC-SRM analysis, and data analysis. Further improvements in detection sensitivity and sample throughput are needed towards targeted single-cell proteomics analysis. We anticipate that cLC-SRM will be broadly applied to biomedical research and systems biology with the potential of facilitating precision medicine.

A protein carrier-assisted one-pot sample preparation coupled with liquid chromatography (LC) - selected reaction monitoring (SRM) termed cLC-SRM is a convenient method for multiplexed targeted proteomics analysis of small numbers of cells, including single cells. It capitalizes on using excessive exogenous protein as a carrier and high-specificity LC-SRM for targeted quantification.

Protein analysis of small numbers of human cells is primarily achieved by targeted proteomics with antibody-based immunoassays, which have inherent ...

Technical Aspect of the Automated Synthesis and Real-Time Kinetic Evaluation of [11C]SNAP-7941

Positron emission tomography (PET) is an essential molecular imaging technique providing insights into pathways and using specific targeted radioligands for in vivo investigations. Within this protocol, a robust and reliable remote-controlled radiosynthesis of [11C]SNAP-7941, an antagonist to the melanin-concentrating hormone receptor 1, is described. The radiosynthesis starts with cyclotron produced [11C]CO2 that is subsequently further reacted via a gas-phase transition to [11C]CH3OTf. Then, this reactive intermediate is introduced to the precursor solution and forms the respective radiotracer. Chemical as well as the radiochemical purity are determined by means of RP-HPLC, routinely implemented in the radiopharmaceutical quality control process. Additionally, the molar activity is calculated as it is a necessity for the following real-time kinetic investigations. Furthermore, [11C]SNAP-7941 is applied to MDCKII-WT and MDCKII-hMDR1 cells for evaluating the impact of P-glycoprotein (P-gp) expression on cell accumulation. For this reason, the P-gp expressing cell line (MDCKII-hMDR1) is either used without or with blocking prior to experiments by means of the P-gp substrate (&#177;)-verapamil and the results are compared to the ones observed for the wildtype cells. The overall experimental approach demonstrates the importance of a precise time-management that is essential for every preclinical and clinical study using PET tracers radiolabelled with short-lived nuclides, such as carbon-11 (half-life: 20 min).

Technical Aspect of the Automated Synthesis and Real-Time Kinetic Evaluation of [11C]SNAP-7941

Here, we represent a protocol for the fully automated radiolabelling of [11C]SNAP-7941 and the analysis of the real-time kinetics of this PET-tracer on P-gp expressing and non-expressing cells.

Technischer Aspekt der automatisierten Synthese und Echtzeit-Kinetik-Evaluierung von [11C]SNAP-7941

Positron emission tomography (PET) is an essential molecular imaging technique providing insights into pathways and using specific targeted radioligands ...

Automated Preparation of [68Ga]Ga-3BP-3940 on a Synthesis Module for PET Imaging of the Tumor Microenvironment

A fast, efficient method has been developed on the GAIA synthesis module for automated gallium-68 radiolabeling of 3BP-3940, a molecular imaging probe targeting the fibroblast activation protein for positron emission tomography imaging of the tumor microenvironment. The reaction conditions involved acetate buffer (final concentration: 0.1 M), methionine as an anti-radiolysis agent (final concentration: 5.4 mg/mL), and 30 &#181;g of 3BP-3940, with heating for 8 min at 98 &#176;C. A final purification step on a C18 cartridge was necessary to obtain a radiolabeled product of high purity. In contrast, the generator-produced 68Ga was used directly without a concentration step on a cation exchange cartridge. The production of three validation batches confirmed the method&#39;s reliability, allowing the synthesis of [68Ga]Ga-3BP-3940 in 22.3 &#177; 0.6 min with high radiochemical purity (RCP), as determined by both radio-HPLC (99.1% &#177; 0.1%) and radio-TLC (99.2% &#177; 0.1%). The average radiochemical yield, based on RCP values measured by radio-HPLC, was 74.4% &#177; 3.3%. The stability of the radiolabeled product was demonstrated for up to 4 h after preparation. This protocol provides a reliable, rapid, and efficient methodology for the preparation of [68Ga]Ga-3BP-3940, which can easily be transposed to a clinical setting.

This research describes the automated process for [68Ga]Ga-3BP-3940 production with the GAIA V2 synthesizer, for PET imaging of fibroblast activation protein. The results of quality control tests performed on three test batches are also presented.

Automatisierte Präparation von [68Ga]Ga-3BP-3940 auf einem Synthesemodul für die PET-Bildgebung der Tumormikroumgebung

A fast, efficient method has been developed on the GAIA synthesis module for automated gallium-68 radiolabeling of 3BP-3940, a molecular imaging probe ...

A Strategy for Sensitive, Large Scale Quantitative Metabolomics

Metabolite profiling has been a valuable asset in the study of metabolism in health and disease. However, current platforms have different limiting factors, such as labor intensive sample preparations, low detection limits, slow scan speeds, intensive method optimization for each metabolite, and the inability to measure both positively and negatively charged ions in single experiments. Therefore, a novel metabolomics protocol could advance metabolomics studies. Amide-based hydrophilic chromatography enables polar metabolite analysis without any chemical derivatization. High resolution MS using the Q-Exactive (QE-MS) has improved ion optics, increased scan speeds (256 msec at resolution 70,000), and has the capability of carrying out positive/negative switching. Using a cold methanol extraction strategy, and coupling an amide column with QE-MS enables robust detection of 168 targeted polar metabolites and thousands of additional features simultaneously.&#160; Data processing is carried out with commercially available software in a highly efficient way, and unknown features extracted from the mass spectra can be queried in databases.

Metabolite profiling has been a valuable asset in the study of metabolism in health and disease. Utilizing normal-phased liquid chromatography coupled to high-resolution mass spectrometry with polarity switching and a rapid duty cycle, we describe a protocol to analyze the polar metabolic composition of biological material with high sensitivity, accuracy, and resolution.

Eine Strategie für einfühlsam, Large Scale Quantitative Metabolomics

Metabolite profiling has been a valuable asset in the study of metabolism in health and disease. However, current platforms have different limiting ...

Biologie

Prion Safety Laboratory Swipe Test

Transmission of iatrogenic prion disease has occurred from contaminated neurosurgical tools, transplant materials, and occupational exposure to prion-contaminated laboratory tools. Prions cause disease by the templated misfolding of the normal cellular form of the prion protein, PrPC, into the misfolded and pathogenic form PrPSc and are invariably fatal. Reducing iatrogenic and occupational prion transmission is challenging. First, prions can bind to and persist on surfaces for long periods of time. Second, prions are highly resistant to inactivation. Given this, surfaces can retain infectivity for long periods of time following ineffective decontamination. Not only can this pose a potential occupational risk for prion laboratory workers, but it could potentially cross-contaminate laboratory experiments utilizing sensitive prion amplification techniques. The protocol described here for a prion safety laboratory swipe test includes steps for the identification and documentation of high-traffic laboratory areas, recommended swabbing controls to ensure the validity of results, steps to identify proper responses to positive surface swabbing sites, representative results from prion swipe testing, as well as potential artifactual results. Overall, the prion safety laboratory swipe test can be implemented as part of a broader prion safety program to assess decontamination of surfaces, monitor common spaces for prion contamination, and implement the documentation of prion decontamination status.

A method to assess commonly used areas in laboratory settings for prion contamination and effective decontamination is lacking. The protocol described here provides key fundamentals for implementing a laboratory prion safety swipe test that can easily be modified to meet the individual needs of specific laboratories.

Automatisierte ⁹⁰Sr Trennung und Anreicherung in einem Labor-Valve System auf Ppq-Ebene

Zusammenfassung

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Tiefen Proteom Profilierung durch isobare Kennzeichnung, umfangreiche Flüssigchromatographie-Massenspektrometrie und softwaregestützte Quantifizierung

Radiomarkierung und Quantifizierung von Cellular Ebenen Phosphoinositide von High Performance Liquid Chromatography-gekoppelten Durchflussscintilla

Vorbereitung von menschlichem Gewebe, eingebettet in die optimale Schnitttemperaturmischung für die massenspektrometrische Analyse

Vorbereitung eines isotopisch reinen ²²⁹Th Ion Beam für Studien von ^229mTh

Einem mikrofluidischen Plattform für Präzisions-Kleinvolumen Probenbearbeitung und seine Verwendung zur Größe Separate biologische Partikel mit einem Acoustic Microdevice

Carrier-assisted One-pot Sample Preparation for Targeted Proteomics Analysis of Small Numbers of Human Cells

Technischer Aspekt der automatisierten Synthese und Echtzeit-Kinetik-Evaluierung von [¹¹C]SNAP-7941

Automatisierte Präparation von [⁶⁸Ga]Ga-3BP-3940 auf einem Synthesemodul für die PET-Bildgebung der Tumormikroumgebung

Eine Strategie für einfühlsam, Large Scale Quantitative Metabolomics

Prion Safety Laboratory Wischtest