Name: protocol for microplastics sampling on the sea surface and sample analysis
Uploaded: 2016-12-16T15:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 16 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Protocol for Microplastics Sampling on the Sea Surface and Sample Analysis at JoVE.com

Die Entwicklung dieses Protokoll wurde von IPA Adria grenzüberschreitende Kooperationsprogramm gegründet 2007-2013, innerhalb des DeFishGear Projekt (1 ° str / 00010).

1. Die Probenahme von Mikroplastik auf der Meeresoberfläche <ol><li> Stellen Sie das manta Netz von der Seite des Schiffes einen Spinnakerbaum oder »A-Frame« mit Linien und Karabinern verwenden. </li><li> Stellen Sie das manta Netz aus dem wake Zone (ca. 3 -. 4 m Abstand vom Boot aus), um zu verhindern, dass Wasser durch Turbulenzen in der Folge Zone betroffen zu sammeln. </li><li> Schreiben Sie die ersten GPS-Koordinaten nach unten und die Anfangszeit im Datenblatt. </li><li> Beginnen Sie in einer geraden Richtung mit einer Geschwindigkeit von ca. bewegen. 2 - 3 Knoten für 30 Minuten und die Zeitmessung beginnen. </li><li> Nach 30 Minuten das Boot stoppen und letzten GPS-Koordinaten aufschreiben, die Länge der Strecke (der richtige Weg ist, um die Länge von der GPS-Koordinaten zu berechnen) und die durchschnittliche Bootsgeschwindigkeit in das Datenblatt und heben Sie den manta Netz aus das Wasser. </li><li> Spülen Sie die manta Netz gründlich von außen des Netzes mit Meerwasser eine Tauchpumpe oder Wasser aus dem Boot wa mitter Reservoir. Spülen Sie in der Richtung von der manta Mund zum Steert, um alle Teilchen zu dem Netz in den Steert eingehalten zu konzentrieren. Hinweis: Niemals spülen Sie die Probe durch die Öffnung des Netzes, um eine Verunreinigung zu verhindern. </li><li> Sicher das Steert entfernen und die Probe im Kabeljau Sieb mit einer 300 &amp; mgr; m Maschenweite Sieb oder weniger am Ende durch. </li><li> Spülen Sie den Steert gründlich von außen und gießen Sie den Rest der Probe durch das Sieb. Wiederholen Sie diesen Schritt, bis es nicht mehr irgendwelche Partikel im Inneren des Steert sind. </li><li> Konzentrieren Sie das gesamte Material auf dem Sieb in einem Teil des Siebes. </li><li> Mit der Verwendung eines Trichters, spülen Sie das Sieb in ein Glas-Glas oder Plastikflasche mit 70% Ethanol. </li><li> Schließen Sie die Flasche, wischen Sie sie mit Papiertüchern und den Deckel beschriften und außerhalb des Gefäßes mit dem Sample-Namen und das Datum mit wasserdichten Marker (Sie können auch ein zweites Etikett geschrieben mit einem Bleistift auf Velum Papier in einem Glas setzen sollte den möglichen Verlust zu vermeiden vonder Probenname auf dem Glas auf dem gelöschten Etikett wegen). Übertragen markierte Plastikflasche in die Kühlbox. Hinweis für die allgemeine Probennahmebedingungen: Die Windgeschwindigkeit nicht mehr als 2 Beaufort sein sollte, da die Wellen zu hoch sind und das Netz ist nicht stabil auf der Meeresoberfläche. Es ist wichtig, einen stetigen linearen Verlauf mit einer konstanten Geschwindigkeit während der Schleppnetzen aufrechtzuerhalten. Die Hälfte der manta Netzöffnung sollte während der Probenahme untergetauchte werden. Dauer der Probenahme sollte ca. 30 Minuten (in den Fällen, in denen es eine große Menge an natürlichen Material, zB Planktonblüte, die Dauer der Probenahme kann kürzer sein). Vermeiden Sie die Verwendung von Kunststoff-Werkzeuge und Behälter. Vermeiden Sie synthetische Kleidung (zB Vlies), Seile und Kontakt von Mantas Netz mit Gefäß Kontamination der Probe zu verhindern. Seien Sie sehr vorsichtig, nicht die manta Netz oder den Bootsrumpf zu beschädigen, während die Bereitstellung und die Erfassung der Netz. </li></ol> 2. Trennung von Mikroplastik von der Meeresoberfläche Proben <ol><li> Wenn die Probe nicht enthältalle Elemente, die größer als 25 mm und wird mit Schritt 3 direkt sauber, auch weiterhin sein. </li><li> Gießen Probe durch das Sieb (≤300 um Maschenweite) und entfernen Sie alle natürlichen oder künstlichen Wurf Objekte mit einer Größe&gt; 5 mm (Makro und Mezzo Wurf) aus der Probe, unter Verwendung von visuellen Identifikation und Pinzette. Achten Sie darauf, jede entfernt Objekt sorgfältig mit destilliertem Wasser, um zu spülen jede Mikroplastik Wurf daran haften zu entfernen. Speichern Sie alle natürlichen und künstlichen Wurf Objekte in getrennten Behältern. Trocknen Sie alle natürlichen und künstlichen Wurf Objekte in einem Exsikkator (oder im Freien, sondern in einer geschlossenen Schale) und gewogen. Identifizieren Sie alle Streu Objekte&gt; 25 mm (Makro Wurf) nach dem Master - Liste der Kategorien von Litter Artikel 16. </li><li> Nachdem alle größeren Objekten zu entfernen, konzentrieren alle verbleibenden Stücke in einem Teil des Siebes mit Sprühflaschen oder Leitungswasser. Die Probe wird in einen Glasbehälter, eine Mindestmenge von 70% igem Ethanol mit Hilfe eines funn Verwendungel. Anmerkung: In diesem Schritt die Verwendung von 70% Ethanol ist entscheidend, um die Probe zu erhalten. Auch in dem Schritt der visuellen Inspektion der Probe, Ethanol hilft, die Organismen und bunte Kunststoffe daher leichter zu finden, zu verfärben. </li><li> Nehmen Sie eine kleine Menge der Probe (Substichprobe) und in eine Petrischale aus Glas gießen. Analysieren Sie die Probe mit der Verwendung eines Stereomikroskops (20 - 80x Zoom) und die Suche nach Mikroplastikpartikel. </li><li> Jeder Mikroplastikpartikel sollte in eine der in Tabelle 1 und in eine Petrischale oder andere Glasfläschchen mit einem Kategorienamen markiert setzen aufgeführten Kategorien eingeteilt werden. Die Petrischale muss jederzeit geschlossen werden. Hinweis: Bei der Trennung von Mikroplastik aus Ihrer Probe konservativ sein und wählen Sie eher mehr als weniger Partikel für die Analyse. Die eigentliche chemische Struktur von Partikeln wird später noch bestimmt werden. Achten Sie darauf, größere Objekte von allen Seiten zu analysieren, wie Mikroplastik geklebt werden kann und daher unter größere Gegenstände versteckt.Es kann auch hilfreich sein, bereits analysierten Objekte an einer Seite der Petrischale zu bewegen. </li><li> Legen Sie die Petrischale unter dem Mikroskop mit Messtechnik (okulare Lineal durch den Mikrometer Folie oder Bildanalyse-Software kalibriert) und messen Sie die Größe der einzelnen Partikel (messen die längste Diagonale), außer Fäden, und seine Farbe beachten. Jede Teilprobe sollte von einer anderen Person überprüft werden. Seien Sie vorsichtig, um die Glasbehälter mit der Probe zu spülen, damit alle Partikel an den Glaswänden haften in die Schale Petri gewaschen werden. </li><li> Wiegen Sie die mikroplastische Partikel jeder Kategorie separat durch die Verwendung von analytischen Maßstab. Mikroplastikpartikel müssen vor dem Wiegen getrocknet werden. Die geschlossene Petrischale in einem Exsikkator oder die Proben genommen werden kann gelassen werden, um eine geschlossene Schale trocknen, bis Teilchen trocken wurde (das Gewicht der verschlossenen Petrischale mit Partikeln ist konstant). </li><li> Identifizieren Mikro Wurf. Wenn eine Probe auf der Suche nach Mikroplastik Analyse, beachten Sie bitte, dasseinige Partikel leicht sichtbar (Farbe, Form, Größe) sein, während andere schwieriger zu finden sein können. Unten sind ein paar Features, die Mikroplastikpartikel in der Probe identifizieren: Zum Beispiel, keine Zellstruktur, uneben, scharf, krumme Kanten, gleichmäßige Dicke, markante Farben (blau, grün, gelb, etc.). </li></ol> 3. Chemische Identifizierung von Mikroplastik <ol><li> ATR-FTIR - Spektroskopie <ol><li> Vor der Analyse reinigen das Detektionssystem mit Alkohol und einem fusselfreien Tuch. </li><li> Nehmen Sie ein Hintergrundspektrum. Legen Sie die Probe auf dem Probenhalter und sammeln die Spektren. Identifizieren Sie die erhaltenen ATR- FTIR-Spektren eines automatisierten Vergleich des erhaltenen Spektrums mit Spektren in einer Datenbank. </li></ol></li><li> Micro ATR-FTIR - Spektroskopie <ol><li> Vor der Analyse reinigen das Detektionssystem mit Alkohol und einem fusselfreien Tuch. </li><li> Legen Sie die Probe auf einem Glasfilter. Hinweis: Weitere Filter können unsed aber ihre Polymer Natur kann sich mit der Charakterisierung stören. </li><li> Setzen Sie den Filter mit der Probe auf dem automatischen Scantisch und verwenden Sie den Joystick, um die Probe zu lokalisieren. </li><li> Nehmen Sie ein optisches Bild und markieren einen Bereich (zB 20 bis 20 &amp; mgr; m), wo die Probe charakterisiert werden. </li><li> Nehmen Sie ein Hintergrundspektrum. </li><li> Legen Sie die Probe auf dem Probenhalter und sammeln die Spektren in der vordefinierten Stelle. </li><li> Identifizieren Sie die erhaltenen Mikro ATR-FTIR Spektren einen automatisierten Vergleich des erhaltenen Spektrums mit Spektren in einer Datenbank. </li></ol></li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

Mikroplastik Probenahme an der Meeresoberfläche von Mantas net ist eine weit verbreitete Methode für die Probenahme von Mikroplastik auf der Meeresoberfläche, aber es hat bisher keine einheitliche Methodik gewesen. Ein großes Volumen an Wasser kann durch den manta Netz gefiltert werden, so dass die Möglichkeit, eine entsprechende Anzahl von Mikroplastik des Einfangens ist hoch, und die Ergebnisse werden wahrgenommen als zuverlässig. Die Vergleichbarkeit der Ergebnisse zwischen den verschiedenen Proben wird durch Normalisierung gewährleistet. In unserem Fall wurden die Konzentrationen auf das abgetastete Bereich im Zusammenhang mit Schleppabstand durch die horizontale Breite der Netzöffnung multipliziert wird. Eine weitere Möglichkeit ist es, einen Durchflussmesser zu verwenden, an der Netzöffnung befestigt. Die Verwendung eines Strömungsmessers ist möglich, da die manta Netz mit seinen seitlichen Flügel auf der Meeresoberfläche sehr stabil ist und daher auf den Wellen-Hopping ist minimal. Ein Durchflussmesser erfasst das Volumen des gefilterten Wassers und ermöglicht somit die Normalisierung der Ergebnisse pro Volumen von abgetasteten Wasser 16. <p class="jove_content"&gt; Die am häufigsten verwendeten manta Netze haben etwa 300 &amp; mgr; m Maschenweite und 3-4,5 m lang. Diese Abmessungen wurden optimiert Verstopfen des Netzes zu vermeiden und um das Abtasten eines Wassermenge so groß wie möglich zu ermöglichen. Trawling Geschwindigkeit wird empfohlen, zwischen 2 bis - 3 Knoten, aber es ist abhängig von Wellenhöhe, Windgeschwindigkeit und Meeresströmungen. Es ist sehr wichtig, dass die manta Netz unter Aufsicht ist die ganze Zeit während der Probenahme und wenn es Hopping beginnt, muss die Geschwindigkeit Schleppen reduziert werden. Die Schleppzeit wird empfohlen etwa 30 min zu sein, sondern hängt von seston Konzentrationen. Es kann vorkommen, dass seston manchmal die manta Netz verstopft. In diesem Fall hat der Schlepp sofort gestoppt werden, da sonst die Mikroplastikpartikel verloren gehen kann und das Netz beschädigt werden kann. Manta net ist, die am häufigsten von der Seite des Schiffes befestigt. Dies ist auch der am besten geeignete Option, während der manta Netz sicher aus der Wake Zone ist. In einigen Umfragen wurde manta Netz aus dem Heck des Schiffes befestigt17, 18, aber in diesem Fall , dass Sie sicher sein , haben , dass das Netz aus dem Wach - Zone ist. Der Abstand, auf dem das Schleppnetz wird für die Abtastung eingestellt, sollte individuell festgelegt werden, da die Zone der Turbulenz durch den Behälter verursacht variiert von der Größe des Behälters und von der Geschwindigkeit des Bootes 19, 20. Die Trennung von Mikroplastikpartikel von der Meeresoberfläche Proben wird meist nur durch eine visuelle Identifizierung 21 getan. Partikel größer als 1 mm durch das bloße Auge leicht identifiziert werden, während Teilchen kleiner als 1 mm die Verwendung eines Stereomikroskops erforderlich. die Möglichkeit der Verwechslung der nicht-Kunststoff-Teilchen mit solche aus Kunststoff zu reduzieren, wird die Polarisationslicht auf Stereomikroskopen mit empfohlen. Die Möglichkeit einer falschen Identifizierung von Kunststoffpartikeln wird mit kleineren Partikeln höher. Somit Partikel&gt; 0,5 mm nur visuell 21, durch die Verwendung von Stereomikroskop identifiziert werden. Für Partikel, die kleiner als 0,5 mmeine zusätzliche, genauere Methode ist zB Mikro ATR-FTIR - Spektroskopie 21 erforderlich. Während des Prozesses der Mikroplastik Trennung von der Probe die Möglichkeit einer Probenverunreinigung mit den airborne Filamente ist sehr hoch. Aus diesem Grund kontrollieren Petrischalen auf dem Arbeitstisch offen gelassen werden für die Identifizierung von potentiellen Kontaminanten Schwebeteilchen dringend empfohlen. Nämlich hängt die Qualität der Daten stark von: 1) die Genauigkeit der Person mit der Probe arbeiten, 2) die Qualität und die Vergrößerung des Stereomikroskops und 3) die Menge an organischer Substanz in der Probe 16. Nach visuelle Identifizierung wird dringend empfohlen , die sortierten Partikel mit einer der verfügbaren Techniken zur chemischen Identifizierung des Materials 8 zu analysieren. Es gibt mehrere Verfahren für die Polymer Identifizierung, unter denen die FTIR-Spektroskopie und Raman-Spektroskopie die meisten frequen sindtly 22 verwendet. FTIR und Raman-Spektroskopie sind ergänzende Techniken und ihre Genauigkeit ist ähnlich. In unserem Protokoll, das FTIR und Mikro FTIR-Spektroskopie mit &quot;abgeschwächte Totalreflexion&quot; (ATR) vorgestellt. Sie sind einfach zu bedienen und sie ermöglichen eine schnelle und präzise Ergebnisse. Kunststoffpolymere besitzen hochspezifischen Infrarot (IR) Spektren mit unterschiedlichen Bandmuster, wodurch die IR - Spektroskopie eine optimale Technik zur Identifizierung von Mikroplastik 21. Die Energie des IR - Strahlung regt eine spezifische molekulare Schwingung , wenn sie mit einer Probe in Wechselwirkung, die die Messung von charakteristischen IR - Spektren 22 ermöglicht. FTIR - Spektroskopie können auch zusätzliche Informationen über Partikel liefern, wie der Intensität der Oxidation 23 und Abbaugrad 24. Während ATR-FTIR zur chemischen Identifizierung von größeren Teilchen (&gt; 0,5 mm), Mikro ATR-FTIR-Spektroskopie geeignet ist, kann &amp; # Informationen über die chemische Struktur von Partikeln bereitzustellen60; 0,5 mm, da es die Funktion eines Mikroskops und einem Infrarot-Spektrometer kombiniert. Vor der Verwendung von FTIR und Mikro FTIR - Spektroskopie, haben Mikroplastikpartikel zuvor getrocknet zu werden, da Wasser stark IR - Strahlung 22 und gereinigt, im Falle absorbiert werden sie mit Biofilmen bedeckt und / oder anderen organischen und anorganischen Haft-, welche die IR - Spektren beeinflussen können. Die meisten nicht-invasive Weise Proben zu reinigen ist durch Rühren und Spülen mit Frischwasser 25. Ist dies nicht genug ist, dann ist die Verwendung von 30% igem Wasserstoffperoxid zu empfehlen. Alle anderen Methoden können negative Auswirkungen auf die Mikroplastikpartikel (zB Ultraschallreinigung kann weiter Partikel brechen, stark sauren oder alkalischen Lösungen können mehrere Kunststoff-Polymere beschädigen, etc.) und damit deren Verwendung wird nicht empfohlen. Versprechender ist die Verwendung eines sequenziellen enzymatischen Verdau als Kunststoff freundlichen Reinigungsschritt. Die Reinigung verschiedener technischer Enzyme (zB Lipase, einmylase, Proteinase, Chitinase, Cellulase, Proteinase-K) wurde zur Reduktion einer biologischen Matrix von Plankton erfolgreich angewendet und erwies sich somit als eine wertvolle Technik zu sein Matrix - Artefakte während der FTIR - Spektroskopie - Messungen 22 zu minimieren. Die Trennung von Mikroplastik durch visuelle Identifizierung und chemische Identifizierung von ausgewählten Teilchen sind beide extrem zeitaufwändige Prozesse. Diese Arbeit muss durch eine genaue und geduldige Person durchgeführt werden, die Erfahrung mit Stereomikroskopen hat, nicht nur die Kunststoffpartikel zu erkennen, sondern auch biologische Materie zu erkennen. Selbst ein erfahrener Mensch kann nicht alle möglichen Mikroplastikpartikel eindeutig aus Chitin oder Diatomeen - Fragmente 22 unterscheiden. Daher reicht die Fehlerrate der visuellen Sortierung von 20% 26-70% 21 und nimmt mit abnehmender Korngröße.

Microplastic pollution in the sea represents a growing concern to contemporary society, due to the constant increase in plastic production and its subsequent disposal and accumulation in the marine environment1. Even if plastic macro litter would no longer enter the seas, microplastic pollution would continue to grow due to fragmentation of already existing plastic litter in the sea2. The majority of microplastic pollution studies were carried out in marine and fresh water ecosystems and mainly addressed sea surface pollution3.
The term microplastic refers to plastic particles smaller than 5 mm in size4. This term describes a heterogeneous mixture of particles, which can differ in size (from a few microns to several millimeters), color and shape (from very different shapes of fragments to long fibers). Microplastic particles can be of a primary or secondary origin5. Microplastic of primary origin is manufactured as small particles used in the cosmetics industry (pilling cr&#232;me etc.) or chemical industry as precursor for other plastic products (e.g. plastic pellets used in plastic industry). Microplastic of secondary origin arise via the degradation of larger plastic pieces in the environment due to physical and chemical processes, induced by light, heat, oxygen, water and organisms6. In 2015, four types of microplastic sources were defined: larger plastic litter, cleaning products, medicines and textiles6. The main source (80 %) of larger plastic litter is assumed to be land based7. Microplastic from cosmetic products, medicines and textile enters water ecosystems through sewage and storm waters6. Microplastic particles most frequently found in water ecosystems are fragments from larger plastic litter and textile fibers8. 
Microplastics have several negative effects on the environment. Their small size allows them to enter the food web through ingestion by marine organisms9, 10. Ingested particles can cause physical damage or block the digestive system of animals11. Particles can also be carriers of persistent organic pollutants (POPs). Their hydrophobic surface and favorable ratio of large surface area to small volume, enables POPs to adsorb onto the microplastics12. In the environment or digestive systems of animals who ingest them, POPs and other plastic additives can be leached from microplastic particles13. 
Previous studies reported the ubiquitous presence of microplastics in the marine environment3, from the water column to the bottom sediments. The threat of microplastic pollution was already identified by the Marine Strategy Framework Directive in the EU and, consequently, mandatory monitoring of microplastics was advised14. Accordingly, the EU Technical Subgroup on Marine Litter (TSG-ML) prepared recommendations for monitoring of microplastics in the European seas15. Thus, the video guidelines for microplastics sampling are of high importance, as they support comparative monitoring and a coherent management process all over the world.
This protocol was developed within the DeFishGear project for the first monitoring of microplastic pollution in the Adriatic Sea. Recommendations from the document "Guidance on Monitoring of Marine Litter in European Seas" by TSG-ML15 were taken into account. This protocol describes the methodology for microplastics sampling on the sea surface, separation of microplastics from the samples, and chemical analysis of microplastic particles to confirm that particles are from plastic material and to identify the type of plastic. Sampling was done by the use of a manta net, which is the most suitable equipment for sampling in calm waters16. Separation of microplastics from the samples was carried out by visual identification using a stereomicroscope. Isolated particles were later chemically identified using Fourier transform infrared (FTIR) spectroscopy and micro FTIR spectroscopy.

<table><tbody><tr><td>In this protocol no specific equipment or reagents were used.</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

protocol for microplastics sampling on the sea surface and sample analysis

Microplastic pollution in the marine environment is a scientific topic that has received increasing attention over the last decade. The majority of scientific publications address microplastic pollution of the sea surface. The protocol below describes the methodology for sampling, sample preparation, separation and chemical identification of microplastic particles. A manta net fixed on an &#187;A frame&#171; attached to the side of the vessel was used for sampling. Microplastic particles caught in the cod end of the net were separated from samples by visual identification and use of stereomicroscopes. Particles were analyzed for their size using an image analysis program and for their chemical structure using ATR-FTIR and micro FTIR spectroscopy. The described protocol is in line with recommendations for microplastics monitoring published by the Marine Strategy Framework Directive (MSFD) Technical Subgroup on Marine Litter. This written protocol with video guide will support the work of researchers that deal with microplastics monitoring all over the world.

Das erste Ergebnis des beschriebenen Protokolls sind Mikroplastikpartikel in sechs Kategorien eingeteilt nach ihren visuellen Merkmalen (Tabelle 1). Die erste Kategorie, und in der Regel die am reichlichsten ein, sind Fragmente (Abbildung 1). Sie sind steif, dick, mit scharfen schiefen Kanten und eine unregelmäßige Form. Sie können in einer Vielzahl von verschiedenen Farben sein. Die zweite Kategorie sind Filme (Abbildung 2). Sie erscheinen auch in unregelmäßiger Form, aber im Vergleich mit Fragmenten, sie sind dünn und flexibel und in der Regel transparent. Die dritte Kategorie sind Pellets (Abbildung 3), in der Regel aus der Kunststoffindustrie stammen. Sie sind unregelmäßig, runde Formen und normalerweise größer in der Größe etwa 5 mm im Durchmesser. Sie sind in der Regel auf der einen Seite flach und kann in verschiedenen Farben sein. Die vierte Kategorie sind Granulate (Abbildung 4). Im Vergleich zu Pellets, sie haben einen regelmäßigen runden Form und in der Regel eine kleinere Größe, etwa 1 mm im Durchmesser. Sie erscheinen in den natürlichen Farben(Weiß, beige, braun). Die fünfte Kategorie sind Filamente (Abbildung 5). Sie sind, neben Fragmente, die am häufigsten vorkommende Art von Mikroplastikpartikel. Sie können kurz oder lang sein, mit unterschiedlichen Stärken und Farben. Die letzte Kategorie sind Schäume (Abbildung 6). Sie am häufigsten kommen aus großen Partikeln aus Styropor. Sie sind eine weiche, unregelmäßige Form und weiß bis gelb in der Farbe. Das Hauptergebnis der Mikroplastik Probenahme und Probenanalyse ist die Anzahl der Mikroplastikpartikel pro Probe. Diese Daten können weiter normalisiert werden pro km 2. Die Formel für die Normalisierung verwendet wird: Mikroplastikpartikel pro Probe / Probefläche, (; 7 Tabellen 2, 3), wo Probefläche wird durch Multiplikation Abtastweg durch die Breite der Öffnung des manta Netz berechnet. Darüber hinaus können Partikel mit im analysiert werden,Altersanalyse-Software. Die Ergebnisse sind: maximale Länge und Fläche jedes Teilchens (Tabelle 4). 8a zeigen Teilchen vor der Bildanalyse und 8b ist nach der Bildanalyse, wobei jedes Teilchen gemessen und gezählt. Schließlich wird eine chemische Analyse der gesamten oder höchstmögliche Anzahl von Teilchen pro Probe empfohlen. Verwendung von Fourier-Transformation-Infrarot-Spektroskopie ein Spektrum des ausgewählten Partikels erfaßt wird, wie auf der Abbildung 9. dann mit den Spektren von der Software-Bibliothek (10) verglichen wird Dieses Spektrum gezeigt. Das endgültige Ergebnis wird zeigen, ob ein bestimmtes Teilchen Kunststoff ist oder nicht, und geben Sie die Art von Kunststoff aus der chemischen Struktur. <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> 1 </td><td> Fragmente </td></tr><tr><td> 2 </td><td> Filme </td></tr><tr><td> 3 </td><td> Pellets </td></tr><tr><td> 4 </td><td> Granulat </td></tr><tr><td> 5 </td><td> Filaments </td></tr><tr><td> 6 </td><td> Schaum<html> s </td></tr></tbody></table> Tabelle 1: Kategorien der Mikroplastikpartikel. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig1.jpg" /> Abbildung 1: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Fragmente. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig1large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig1large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig2.jpg" /> Abbildung 2: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Filme. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig2large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig2large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> /55161fig3.jpg &quot;/&gt; Abbildung 3: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Pellets. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig3large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig3large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Abbildung 4" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig4.jpg" /> Abbildung 4: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Granulat. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig4large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig4large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="Abbildung 5" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig5.jpg" /> Abbildung 5: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Filaments. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig5large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig5large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> Abbildung 6: Beispiel von Partikeln aus der Kategorie: Foams. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig6large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig6large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Sampling Entfernung [km] </td><td> 2 </td></tr><tr><td> Manta Breite [km] </td><td> 0,0006 </td></tr><tr><td> Sampling - Bereich [km 2] </td><td> 0,0012 </td></tr></tbody></table> Tabelle 2: Beispiel für Daten aus Umfrage, für die Berechnung der Mikroplastikpartikel pro km 2. <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td></td><td> Nein </td><td> Nein / km 2 </td></tr><tr><td>Fragmente </td><td> 301 </td><td> 250833 </td></tr><tr><td> Filme </td><td> 45 </td><td> 37500 </td></tr><tr><td> Pellets </td><td> 15 </td><td> 12500 </td></tr><tr><td> Granulat </td><td> 8 </td><td> 6667 </td></tr><tr><td> Schäume </td><td> 33 </td><td> 27500 </td></tr><tr><td> Filamente </td><td> 223 </td><td> 185833 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3: Beispiel der Ergebnisse aus der Umfrage, wo die klassifizierten Daten in 6 Gruppen gezählt werden und normalisiert pro km 2 (Nein - Anzahl der Teilchen). <img alt="7" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig7.jpg" /> Abbildung 7: Beispiel für repräsentative Ergebnisse nach visuellen Kategorisierung von pArtikel (Nein - Anzahl der Teilchen). <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig7large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig7large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> Index Region </td><td> Fläche [mm²] </td><td> Maximale Länge [mm] </td></tr><tr><td> 1 </td><td> 8,010 </td><td> 5,506 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 10,517 </td><td> 5,628 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 12,185 </td><td> 5,429 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 3,367 </td><td> 3,367 </td></tr><tr><td> 5 </td><td> 2,475 </td><td> 2,155 </td></tr><tr><td> 6 </td><td> 1,809 </td><td> 2,943 </td></tr><tr><td> 7 </td><td> 6,604 </td><td> 5,238 </td></tr><tr><td> 8 </td><td> 5,779 </td><td> 4,037 </td></tr><tr><td> 9 </td><td> 4,472 </td><td> 3,791 </td></tr><html><tr><td> 10 </td><td> 16,907 </td><td> 5,355 </td></tr><tr><td> 11 </td><td> 7,246 </td><td> 3,733 </td></tr><tr><td> 12 </td><td> 7,867 </td><td> 4,622 </td></tr><tr><td> 13 </td><td> 6,411 </td><td> 5,056 </td></tr><tr><td> 14 </td><td> 3,281 </td><td> 3,070 </td></tr><tr><td> 15 </td><td> 12,937 </td><td> 5,554 </td></tr><tr><td> 16 </td><td> 6,709 </td><td> 3,716 </td></tr></tbody></table> Tabelle 4: Beispiel für Bildanalyseergebnisse in dem Bereich [mm 2] und die maximale Länge [mm] jedes Teilchens gemessen werden. <img alt="Abbildung 8" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig8.jpg" /> Abbildung 8: Beispiel für das Bild erworben a) vor und b) nach der Bildanalyse von Teilchen mit Bildanalysesoftware.ecsource.jove.com/files/ftp_upload/55161/55161fig8large.jpg &quot;target =&quot; _ blank &quot;&gt; Bitte hier klicken, um eine größere Version dieser Figur zu sehen. <img alt="9" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig9.jpg" /> Abbildung 9: Beispiel eines Spektren auf einem ausgewählten Partikels gemessen mit markierten Peaks und deren Wellenlängen [cm -1]. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig9large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig9large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <img alt="10" src="/files/ftp_upload/55161/55161fig10.jpg" /> Abbildung 10: Beispiel für den Vergleich der aufgenommenen Spektren von ausgewählten Teilchen auf beste Übereinstimmung aus der ATR-FTIR Spektrenbibliothek. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig10large.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier</a> , um <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55161/55161fig10large.jpg" target="_blank">eine größere Version dieses f anzuzeigen</a>ild.

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Protocol for Microplastics Sampling on the Sea Surface and Sample Analysis

Das Protokoll unten beschreibt die Methodik für: Mikroplastik Probenahme auf der Meeresoberfläche, die Trennung von mikro und chemische Identifizierung von Partikeln. Dieses Protokoll ist in Einklang mit den Empfehlungen für Mikroplastik Überwachung durch die MSFD Technical Subgroup am Marine Litter veröffentlicht.

Protokoll für die Mikroplastik Probenahme auf der Meeresoberfläche und Probenanalyse

Microplastic pollution in the marine environment is a scientific topic that has received increasing attention over the last decade. The majority of ...

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Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Environment

49.3K Aufrufe.  Institute for water of the Republic of Slovenia.  Das Protokoll unten beschreibt die Methodik für: Mikroplastik Probenahme auf der Meeresoberfläche, die Trennung von mikro und chemische Identifizierung von Partikeln. Dieses Protokoll ist in Einklang mit den Empfehlungen für Mikroplastik Überwachung durch die MSFD Technical Subgroup am Marine Litter veröffentlicht. 

Serie: Protocol for Microplastics Sampling on the Sea Surface and Sample Analysis

Unraveling the Unseen Players in the Ocean - A Field Guide to Water Chemistry and Marine Microbiology

Here we introduce a series of thoroughly tested and well standardized research protocols adapted for use in remote marine environments. The sampling protocols include the assessment of resources available to the microbial community (dissolved organic carbon, particulate organic matter, inorganic nutrients), and a comprehensive description of the viral and bacterial communities (via direct viral and microbial counts, enumeration of autofluorescent microbes, and construction of viral and microbial metagenomes). We use a combination of methods, which represent a dispersed field of scientific disciplines comprising already established protocols and some of the most recent techniques developed. Especially metagenomic sequencing techniques used for viral and bacterial community characterization, have been established only in recent years, and are thus still subjected to constant improvement. This has led to a variety of sampling and sample processing procedures currently in use. The set of methods presented here provides an up to date approach to collect and process environmental samples. Parameters addressed with these protocols yield the minimum on information essential to characterize and understand the underlying mechanisms of viral and microbial community dynamics. It gives easy to follow guidelines to conduct comprehensive surveys and discusses critical steps and potential caveats pertinent to each technique.

Here, we present a comprehensive protocol to assess the organic and inorganic nutrient availability and the abundance and structure of microbial and viral communities in remote marine environments.

Entwirren der unsichtbaren Spieler im Ozean - ein Feld Führer zu Wasserchemie und Marine Mikrobiologie

Here we introduce a series of thoroughly tested and well standardized research protocols adapted for use in remote marine environments. The sampling ...

Forschung

Umwelt

Clean Sampling and Analysis of River and Estuarine Waters for Trace Metal Studies

Most of the trace metal concentrations in ambient waters obtained a few decades ago have been considered unreliable owing to the lack of contamination control. Developments of some techniques aiming to reduce trace metal contamination in the last couple of decades have resulted in concentrations reported now being orders of magnitude lower than those in the past. These low concentrations often necessitate preconcentration of water samples prior to instrumental analysis of samples. Since contamination can appear in all phases of trace metal analyses, including sample collection (and during preparation of sampling containers), storage and handling, pretreatments, and instrumental analysis, specific care needs to be taken in order to reduce contamination levels at all steps. The effort to develop and utilize "clean techniques" in trace metal studies allows scientists to investigate trace metal distributions and chemical and biological behavior in greater details. This advancement also provides the required accuracy and precision of trace metal data allowing for environmental conditions to be related to trace metal concentrations in aquatic environments.
This protocol that is presented here details needed materials for sample preparation, sample collection, sample pretreatment including preconcentration, and instrumental analysis. By reducing contamination throughout all phases mentioned above for trace metal analysis, much lower detection limits and thus accuracy can be achieved. The effectiveness of "clean techniques" is further demonstrated using low field blanks and good recoveries for standard reference material. The data quality that can be obtained thus enables the assessment of trace metal distributions and their relationships to environmental parameters.

Special care using "clean techniques" is required to properly collect and process water samples for trace metal studies in aquatic environments. A protocol for sampling, processing, and analytical procedures with the aim of obtaining reliable environmental monitoring data and results with high sensitivity for detailed trace metal studies is presented.

Saubere Probenahme und Analyse von River und Estuarine Waters für Spurenmetallforschung

Most of the trace metal concentrations in ambient waters obtained a few decades ago have been considered unreliable owing to the lack of contamination ...

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and detritus, and excreting particulate and dissolved compounds, they serve as important agents for benthic-pelagic coupling. Accurately measuring the compounds removed and excreted by suspension feeders (such as sponges, ascidians, polychaetes, bivalves) is crucial for the study of their physiology, metabolism, and feeding ecology, and is fundamental to determine the ecological relevance of the nutrient fluxes mediated by these organisms. However, the assessment of the rate by which suspension feeders process particulate and dissolved compounds in nature is restricted by the limitations of the currently available methodologies. Our goal was to develop a simple, reliable, and non-intrusive method that would allow clean and controlled water sampling from a specific point, such as the excurrent aperture of benthic suspension feeders, in situ. Our method allows simultaneous sampling of inhaled and exhaled water of the studied organism by using minute tubes installed on a custom-built manipulator device and carefully positioned inside the exhalant orifice of the sampled organism. Piercing a septum on the collecting vessel with a syringe needle attached to the distal end of each tube allows the external pressure to slowly force the sampled water into the vessel through the sampling tube. The slow and controlled sampling rate allows integrating the inherent patchiness in the water while ensuring contamination free sampling. We provide recommendations for the most suitable filtering devices, collection vessel, and storing procedures for the analyses of different particulate and dissolved compounds. The VacuSIP system offers a reliable method for the quantification of undisturbed suspension feeder metabolism in natural conditions that is cheap and easy to learn and apply to assess the physiology and functional role of filter feeders in different ecosystems.

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

We introduce the VacuSIP, a simple, non-intrusive, and reliable method for clean and accurate point sampling of water. The system was developed and evaluated for the simultaneous collection of the water inhaled and exhaled by benthic suspension feeders in situ, to cleanly measure removal and excretion of particulate and dissolved compounds.

VACUSIP eine verbesserte Inex Methode für<em&gt; In Situ</em&gt; Messung von partikulären und gelösten Verbindungen, die durch Active Suspension Feeders Verarbeitet

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and ...

Extraction of Organochlorine Pesticides from Plastic Pellets and Plastic Type Analysis

Plastic resin pellets, categorized as microplastics (&#8804;5 mm in diameter), are small granules that can be unintentionally released to the environment during manufacturing and transport. Because of their environmental persistence, they are widely distributed in the oceans and on beaches all over the world. They can act as a vector of potentially toxic organic compounds (e.g., polychlorinated biphenyls) and might consequently negatively affect marine organisms. Their possible impacts along the food chain are not yet well understood. In order to assess the hazards associated with the occurrence of plastic pellets in the marine environment, it is necessary to develop methodologies that allow for rapid determination of associated organic contaminant levels. The present protocol describes the different steps required for sampling resin pellets, analyzing adsorbed organochlorine pesticides (OCPs) and identifying the plastic type. The focus is on the extraction of OCPs from plastic pellets by means of a pressurized fluid extractor (PFE) and on the polymer chemical analysis applying Fourier Transform-InfraRed (FT-IR) spectroscopy. The developed methodology focuses on 11 OCPs and related compounds, including dichlorodiphenyltrichloroethane (DDT) and its two main metabolites, lindane and two production isomers, as well as the two biologically active isomers of technical endosulfan. This protocol constitutes a simple and rapid alternative to existing methodology for evaluating the concentration of organic contaminants adsorbed on plastic pieces.

Microplastics act as vector of potentially toxic organic contaminants with unpredictable effects. This protocol describes an alternative methodology for assessing the levels of organochlorine pesticides adsorbed on plastic pellets and identifying the polymer chemical structure. The focus is on pressurized fluid extraction and attenuated total reflectance Fourier transform infrared spectroscopy.

Extraktion von Organochlor-Pestiziden aus Kunststoff-Pellets und Kunststoff-Typ-Analyse

Plastic resin pellets, categorized as microplastics (&#8804;5 mm in diameter), are small granules that can be unintentionally released to the environment ...

An Ultra-clean Multilayer Apparatus for Collecting Size Fractionated Marine Plankton and Suspended Particles

The distributions of many trace elements in the ocean are strongly associated with the growth, death, and re-mineralization of marine plankton and those of suspended/sinking particles. Here, we present an all plastic (Polypropylene and Polycarbonate), multi-layer filtration system for collection of suspended particulate matter (SPM) at sea. This ultra-clean sampling device has been designed and developed specifically for trace element studies. Meticulous selection of all non-metallic materials and utilization of an in-line flow-through procedure minimizes any possible metal contamination during sampling. This system has been successfully tested and tweaked for determining trace metals (e.g., Fe, Al, Mn, Cd, Cu, Ni) on particles of varying size in coastal and open ocean waters. Results from the South China Sea at the South East Asia Time-Series (SEATS) station indicate that diurnal variations and spatial distribution of plankton in the euphotic zone can be easily resolved and recognized. Chemical analysis of size-fractionated particles in surface waters of the Taiwan Strait suggests that the larger particles (&#62;153 &#181;m) were mostly biologically derived, while the smaller particles (10 - 63 &#181;m) were mostly composed of inorganic matter. Apart from Cd, the concentrations of metals (Fe, Al, Mn, Cu, Ni) decreased with increasing size.

Plankton and suspended particles play a major role in the biogeochemical cycles in the ocean. Here, we provide an ultra-clean, low stress method for the collection of various sizes of particles and plankton at sea with the capability of handling large volumes of seawater.

Eine Ultra-clean Multilayer Vorrichtung zum Sammeln von Größe fraktioniert Meeresplankton und Schwebeteilchen

The distributions of many trace elements in the ocean are strongly associated with the growth, death, and re-mineralization of marine plankton and those ...

Sampling, Sorting, and Characterizing Microplastics in Aquatic Environments with High Suspended Sediment Loads and Large Floating Debris

The ubiquitous presence of plastic debris in the ocean is widely recognized by the public, scientific communities, and government agencies. However, only recently have microplastics in freshwater systems, such as rivers and lakes, been quantified. Microplastic sampling at the surface usually consists of deploying drift nets behind either a stationary or moving boat, which limits the sampling to environments with low levels of suspended sediments and floating or submerged debris. Previous studies that employed drift nets to collect microplastic debris typically used nets with &#8805;300 &#181;m mesh size, allowing plastic debris (particles and fibers) below this size to pass through the net and elude quantification. The protocol detailed here enables: 1) sample collection in environments with high suspended loads and floating or submerged debris and 2) the capture and quantification of microplastic particles and fibers &lt;300 &#181;m. Water samples were collected using a peristaltic pump in low-density polyethylene (PE) containers to be stored before filtering and analysis in the lab. Filtration was done with a custom-made microplastic filtration device containing detachable union joints that housed nylon mesh sieves and mixed cellulose ester membrane filters. Mesh sieves and membrane filters were examined with a stereomicroscope to quantify and separate microplastic particulates and fibers. These materials were then examined using a micro-attenuated total reflectance Fourier transform infrared spectrometer (micro ATR-FTIR) to determine microplastic polymer type. Recovery was measured by spiking samples using blue PE particulates and green nylon fibers; percent recovery was determined to be 100% for particulates and 92% for fibers. This protocol will guide similar studies on microplastics in high velocity rivers with high concentrations of sediment. With simple modifications to the peristaltic pump and filtration device, users can collect and analyze various sample volumes and particulate sizes.

Most microplastic research to date has occurred in marine systems where suspended solid levels are relatively low. Focus is now shifting to freshwater systems, which may feature high sediment loads and floating debris. This protocol addresses collecting and analyzing microplastic samples from aquatic environments that contain high suspended solid loads.

Probenahme, Sortieren und Charakterisierung Mikroplastik in aquatischen Umgebungen mit hohen abgehängte Sedimentfracht und große schwimmende Trümmer

The ubiquitous presence of plastic debris in the ocean is widely recognized by the public, scientific communities, and government agencies. However, only ...

Data Collection on Marine Litter Ingestion in Sea Turtles and Thresholds for Good Environmental Status

The following protocol is intended to respond to the requirements set by the European Union&#39;s Marine Strategy Framework Directives (MSFD) for the D10C3 Criteria reported in the Commission Decision (EU), related to the amount of litter ingested by marine animals. Standardized methodologies for extracting litter items ingested from dead sea turtles along with guidelines on data analysis are provided. The protocol starts with the collection of dead sea turtles and classification of samples according to the decomposition status. Turtle necropsy must be performed in authorized centers and the protocol described here explains the best procedure for gastrointestinal (GI) tract isolation. The three parts of the GI (esophagus, stomach, intestine) should be separated, opened lengthways and contents filtered using a 1 mm mesh sieve. The article describes the classification and quantification of ingested litter, classifying GI contents into seven different categories of marine litter and two categories of natural remains. The quantity of ingested litter should be reported as total dry mass (weight in grams, with two decimal places) and abundance (number of items). The protocol proposes two possible scenarios to achieve the Good Environmental Status (GES). First: &#34;There should be less than X% of sea turtles having Y g or more plastic in the GI in samples of 50-100 dead turtles from each sub-region&#34;, where Y is the average weight of plastic ingested and X% is the percentage of sea turtles with more weight (in grams) of plastic than Y. The second one, which considers the food remain versus plastic as a proxy of individual health, is: &#34;There should be less than X% of sea turtles having more weight of plastic (in grams) than food remains in the GI in samples of 50-100 dead turtles from each sub-region&#34;.

The protocol focuses on the collection of sea turtle samples, describing all the steps from the animal recovery and necropsy to the classification and quantification of ingested marine litter. Moreover, the representative results show how to use the collected data to elaborate the possible thresholds for Good Environmental Status.

Datenerhebung über Meeresmüll in Meeresschildkröten und Scheren für guten Umweltstatus

The following protocol is intended to respond to the requirements set by the European Union&#39;s Marine Strategy Framework Directives (MSFD) for the ...

Seawater Sampling and Collection

This video documents methods for collecting coastal marine water samples and processing them for various downstream applications including biomass concentration, nucleic acid purification, cell abundance, nutrient and trace gas analyses. For today's demonstration samples were collected from the deck of the HMS John Strickland operating in Saanich Inlet. An A-frame derrick, with a multi-purpose winch and cable system, is used in combination with Niskin or Go-Flo water sampling bottles. Conductivity, Temperature, and Depth (CTD) sensors are also used to sample the underlying water mass. To minimize outgassing, trace gas samples are collected first.  Then, nutrients, water chemistry, and cell counts are determined. Finally, waters are collected for biomass filtration. The set-up and collection time for a single cast is ~1.5 hours at a maximum depth of 215 meters. Therefore, a total of 6 hours is generally needed to complete the collection series described here.

This video documents methods for collecting coastal marine water samples and processing them for various downstream applications including biomass concentration, nucleic acid purification, cell abundance, nutrient and trace gas analyses.

Meerwasser Probenahme und Sammlung

This video documents methods for collecting coastal marine water samples and processing them for various downstream applications including biomass ...

Biologie

Small Volume (1-3L) Filtration of Coastal Seawater Samples

The workflow begins with the collection of coastal marine waters for downstream microbial community, nutrient and trace gas analyses. For today s demonstration samples were collected from the deck of the HMS John Strickland operating in Saanich Inlet. This video documents small volume (~1 L) filtration of microbial biomass from the water column. The protocol is an extension of the large volume sampling protocol described earlier, with one major difference: here, there is no pre-filtration step, so all size classes of biomass are collected down to the 0.22 &mu;m filter cut-off. Samples collected this way are ideal for nucleic acid analysis. The set-up, filtration, and clean-up steps each take about 20-30 minutes. If using two peristaltic pumps simultaneously, up to 8 samples may be filtered at the same time. To prevent biofilm formation between sampling trips, all filtration equipment must be rinsed with dilute HCl and deionized water and autoclaved immediately after use.

Small Volume 1-3L Filtration of Coastal Seawater Samples

This video documents small volume (~1 L) filtration of microbial biomass from the water column.

Small Volume (1-3L) Filtration von Coastal Meerwasser Proben

The workflow begins with the collection of coastal marine waters for downstream microbial community, nutrient and trace gas analyses. For today s ...

Sampling, Identification and Characterization of Microplastics Release from Polypropylene Baby Feeding Bottle during Daily Use

Microplastics (MPs) are becoming a global concern due to the potential risk to human health. Case studies of plastic products (i.e., plastic single-use cups and kettles) indicate that MP release during daily use can be extremely high. Precisely determining the MP release level is a crucial step to identify and quantify the exposure source and assess/control the corresponding risks stemming from this exposure. Though protocols for measuring MP levels in marine or freshwater has been well developed, the conditions experienced by household plastic products can vary widely. Many plastic products are exposed to frequent high temperatures (up to 100 &#176;C) and are cooled back to room temperature during daily use. It is therefore crucial to develop a sampling protocol that mimics the actual daily-use scenario for each particular product. This study focused on widely used polypropylene-based baby feeding bottles to develop a cost-effective protocol for MP release studies of many plastic products. The protocol developed here enables: 1) prevention of the potential contamination during sampling and detection; 2) realistic implementation of daily-use scenarios and accurate collection of the MPs released from baby feeding bottles based on WHO guidelines; and 3) cost-effective chemical determination and physical topography mapping of MPs released from baby feeding bottles. Based on this protocol, the recovery percentage using standard polystyrene MP (diameter of 2 &#181;m) was 92.4-101.2% while the detected size was around 102.2% of the designed size. The protocol detailed here provides a reliable and cost-effective method for MP sample preparation and detection, which can substantially benefit future studies of MP release from plastic products.

This study detailed a reliable and cost-effective protocol for microplastics collection and detection from the daily use of plastic products.

Probenahme, Identifizierung und Charakterisierung von Mikroplastik, das aus der Babyflasche aus Polypropylen während des täglichen Gebrauchs frei wird

Microplastics (MPs) are becoming a global concern due to the potential risk to human health. Case studies of plastic products (i.e., plastic single-use ...