Prior work with regard to susceptibility testing of dalbavancin has been valuable in development of a standardized methods and acknowledgement for this work is given to JMI Laboratories, Robert Rennie and Beth Goldstein.

Hinweis: Lesen Sie CLSI Dokumenten M7-A10 und M100-S25 und / oder ISO / FDIS 20776-1 für weitere Informationen des Referenz Bouillon-Mikroverdünnungsverfahren für antimikrobielle Empfindlichkeit 2, 3, 4 Die Referenzmethoden ermöglichen die Optionen in einigen der. spezifischen Inokulumzubereitung und MIC-Panel-Produktion Verfahren das gleiche Endergebnis zu erzielen. Die hier gezeigten Verfahren bezieht sich auf ein antimikrobielles Mittel, Dalbavancin und einige der Schritte stellen eine potentiell mehrere Möglichkeiten der Referenzverfahren durchgeführt werden kann. Enden Sicherheitsvorkehrungen (im Einklang mit der biologischen Sicherheitsstufe 2) sollten genutzt 10 werden. Die MIC-Panel-Format für die Zwecke dieses Video Publikation ist in Tabelle 1 dargestellt. 1. Bewahren Dalbavancin Powder <ol><li> Nach Erhalt der Diagnosegrad Dalbavancin Pulver, bei -20 ° C in einem trockenen Umgebung in einer nicht-Abtauen Gefrierfach. Vor der Verwendung sollte das Pulver äquilibrierenerreichen RT vor dem Öffnen. </li></ol> 2. Bereiten Sie MIC Steuerung Verdünnungen <ol><li> Bereiten Sie eine Stammlösung nicht höher als 1.600 &amp; mgr; g / ml Dalbavancin in saubere (reine) DMSO in sterile Glas- oder Kunststoffröhrchen, und verwenden Sie am selben Tag der Vorbereitung oder bei -20 bis -60 ° C oder darunter für die zukünftige Verwendung in ein nicht-Abtauen Gefrierfach. Berücksichtigen Sie die Potenz Dalbavancin wie auf der mit dem Pulver erhielt Dokumentation, bei der Abwägung des Pulvers (siehe Gleichung 1 beispielsweise 800 &amp; mgr; g / ml Stoffaufbereitung). </li><li> Von der Stamm Verdünnung ähnlich dem Schema wie in Spalte 1 (&quot;Source Konzentration&quot;) in der Tabelle 2 mit reinem DMSO in sterile Glas- oder Kunststoffröhrchen dargestellt ist. Verwenden Sie eine Pipette zur Messung Verdünnungsmittel und andere Pipette für das Hinzufügen der ersten Dalbavancin Lager mit dem ersten Rohr. Für jede nachfolgende Dalbavancin Stammkonzentration verwenden Sie eine neue Pipette. </li><li> Bereiten 100X endgültigen MIC Panel concentRation Verdünnungen (Zwischen Konzentrationen) mit reinem DMSO. Wie dies in den Spalten 2-4 der Tabelle 2 gezeigt, zu verbinden und geeignete Mengen von Quelle und DMSO in gewünschte Zwischenkonzentration zu erreichen (um verwendet wird, hängt Anzahl von MIC Platten abhängen Volumina vorgenommen werden). </li><li> Bereiten 0,004% P80: Bereiten Sie eine frische Arbeitsstammlösung von 2% P80 durch Zugabe von 0,1 ml bis 4,9 ml P80 dH 2 O Sterilisiert, indem sie durch ein 0,22-Mikron-Filter und Gebrauchslösung am gleichen Tag der Herstellung. Vorbereitung 0,004% P80 Verdünnungsmittel, indem eine 1: 500-Verdünnung von 2% P80 (zB 0,3 ml 2% P80 149,7 ml CAMHB). </li><li> Weiter verdünnen die mittleren Konzentrationen in Schritt 2.2 1 hergestellt: 100 in Kation eingestellt Mueller Hinton-Brühe (CAMHB) mit 0,004% ergänzt (v / v) Polysorbat 80 (P-80) P-80 und / oder LHB (Streptokokken) hinzugefügt 2 Verdünnung: mit der doppelten Endkonzentration weil Zugabe von Impfgut (Schritt 4.3) werden in einem 1 führen. Siehe Spalten 6 und 7 in Tabelle 2 </strong&gt;. </li></ol> 3. Bereiten Sie MIC Panels <ol><li> Geben Sie 50 ul jeder in Schritt 2.3 vorbereitet Dalbavancin Lösung in die entsprechenden Wells der MIC-Panel und schließen Medien nur in einem gut (Wachstumskontrolle). Ein Mehrkanal-Pipette mit einer sterilen Pipettenspitzen können für diesen Schritt verwendet werden. </li><li> Verwenden Platten sofort oder Dichtung mit Kunststofffolie, in Plastiktüten und sofort in einem nicht-Abtauen Gefrierfach legen bei ≤-20 ° C (vorzugsweise bei ≤-60 ° C), bis sie benötigt. Wenn gefrorene Platten verwendet werden, entfernen Sie Dichtungen und legen einzelnen Platten auf Labortisch für 15-30 min (bis weit Inhalts aufgetaut werden), bevor Sie mit Panel Inokulation. </li></ol> 4. Impfen MIC Panels, Führen Reinheit und Setup Koloniezahl <ol><li> Wählen Sie mehrere gut isolierte Kolonien von einer 18-24 h Blutagar oder andere nicht-selektiven Agar-Platte. Tippen Sie auf die oben auf jeder Kolonie mit einer sterilen Schleife oder Tupfer und Transfer zum 1-5 ml CAMHB oder saline bis eine Trübung entspricht einem 0,5-McFarland-Standard. Beurteilen Trübung durch visuellen Vergleich mit dem 0,5 McFarland oder mit einem photometrischen Gerät. </li><li> Innerhalb von 15-30 min Vorbereitungs verdünnt das Inoculum 1: 100 in CAMHB (100 ul in 10 ml CAMHB). Für die meisten Bakterien, gegen Dalbavancin getestet, mit der Ausnahme von S. pneumoniae wird diese Verdünnung einen Abschluss gut Konzentration von 5 × 10 5 CFU / ml (akzeptierbare Bereich 2-8 × 10 5 CFU / ml). Für S. pneumoniae ist die bakterielle Konzentration basierend auf dem Vergleich der Trübung, um eine 0,5 McFarland typischerweise wesentlich weniger daher verdünnt das Inokulum 1.25 (400 ul in 10 ml CAMHB + 10% + LHB). </li><li> Innerhalb von 15 Minuten nach der Inokulumzubereitung, Transfer 50 ul der endgültige Inokulum in jede Vertiefung (mit Ausnahme der Sterilitätskontrolle auch) der MIC-Panel in Schritt 3 vorbereitet Ein Mehrkanal-Pipetten mit sterilen Spitzen können für diesen Schritt verwendet werden. </li><li> Führen Sie eine Reinheitskontrolledurch die Übertragung und Verbreitung einer 1-10 ul-Aliquot aus der positiven Wachstumskontroll-Vertiefung mit einer sterilen Schleife zu einer nicht-selektiven Agar (zB Trypticase-Soja-Agar mit 5% Schafblut). </li><li> Setup-Koloniezahl, indem 10 &amp; mgr; l aus der Wachstumskontrolle mit einem einzigen Kanal Pipette und sterile Spitze und Transfer in 10 ml Kochsalzlösung (1: 1000 Verdünnung). Mischen Sie und Transfer 100 ul mit einem Einkanal-Pipette und sterile Spitze an eine geeignete, nicht-selektiven Agar-Medium (zB Trypticase-Soja-Agar mit 5% Schafblut) und über die gesamte Agaroberfläche verteilt mit einer sterilen Schleife, wiederholen zweimal in verschiedenen Richtungen um eine gleichmßige Verteilung des Inokulums (1:10 Verdünnung) zu gewährleisten. </li></ol> 5. Inkubieren MIC Panels, Koloniezählung und Reinheit Teller <ol><li> Dichten Sie jeden MIC Tafel oder Stapel von nicht mehr als 4 Platten in einem Plastikbeutel, mit Kunststoffband oder mit einem eng anliegenden Kunststoffabdeckung vor der Inkubation. Alternativ platzieren leere MIC-Panel auf der top der Stapel von nicht mehr als 4 MIC-Panels, legen Sie einen feuchten Papiertuch in einem Kunststoffbehälter, Ort, MIC-Panels in den Kunststoffbehälter und in der Nähe Behälter sicher mit Deckel. </li><li> MIC Platten in einem Umgebungsluft-Inkubator bei 35 ° C ± 2 ° C für 16-20 h (Staphylokokken und Enterokokken) und 20-24 h (Streptokokken) innerhalb von 30 min der Inokulation. Inkubieren Sie die Koloniezahl und Reinheit Platten unter den gleichen Bedingungen, außer Inkubat Streptokokken in einer 5% CO 2 Inkubator. </li></ol> 6. Lesen Sie den MIC und Colony Count Plates; Überprüfen Reinheit Teller <ol><li> Lesen des MIC als die niedrigste Konzentration, die vollständig hemmt das Wachstum von Bakterien in den Vertiefungen durch das bloße Auge erkannt. </li><li> Graf Kolonien auf der Koloniezahl Platte. Multiplizieren jede Kolonie durch Verdünnungsfaktor (1: 10.000) (zB 50 Kolonien äquivalent zu 5 x 10 &amp; sup5; CFU / ml). Ein akzeptabler Bereich 20-80 Kolonien (2-8 x 10 5 CFU / ml) und wird als ein appro verwendetximate Leitlinie. </li><li> Überprüfen Sie die Reinheit Platte. Wenn alle Kolonien ähnlich wie die in Schritt 4.1 verwendet Kolonien sind, dann können das Inokulum als rein angesehen werden. Wenn es irgendwelche anderen vorhandenen Kolonien, dann gibt es Potenzial für eine Verunreinigung in dem MIC-Panel vorhanden sein, und der Test sollte wiederholt werden. </li></ol> 7. Prüfen Ergebnisse der Qualitätskontrolle. <ol><li> Siehe Tabelle 3 für die erwarteten Bereiche der CLSI Qualitätskontrollstämme. Nur Bericht Ergebnisse der Test-Isolaten, wenn Dalbavancin MIC-Ergebnisse für die Qualitätskontrolle Organismus (en) sind im erwarteten Bereich. </li><li> Wenn eine MIC von ≥0.25 ug / ml für jede klinische S erhalten aureus zu isolieren, wiederholen Sie den Dalbavancin MIC-Tests und / oder zu senden an ein Referenzlabor für die Prüfung. </li></ol>

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Poster 132.</a> ASM. , (2012).</li><li>Fritsche, T. R., Rennie, R. P., Goldstein, B. P., Jones, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+dalbavancin+MIC+values+determined+by+Etest+(AB+BIODISK)+and+reference+dilution+methods+using+gram-positive+organisms.">Comparison of dalbavancin MIC values determined by Etest (AB BIODISK) and reference dilution methods using gram-positive organisms.</a> Journal of clinical microbiology. 44, 2988-2990 (2006).</li><li>Mushtaq, S., Warner, M., Johnson, A. P., Livermore, D. 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Sandra McCurdy ist Mitarbeiter von Durata Therapeutics; Laboratory Specialists, Inc., Arbeitgeber von Laura Koeth und Jeanna Fisher, wurde von Durata Therapeutics unter Vertrag, das Manuskript vorzubereiten. Publikationskosten für diesen Artikel wurden vom Labor Specialists, Inc. bezahlt

Die folgenden Verfahren Details werden für zusätzliche Überlegungen bei der Vorbereitung für Dalbavancin MHK-Bestimmung. Das Design des MIC Panel wird abhängig von der Anzahl von antimikrobiellen Mitteln zu prüfenden (das heißt., Dalbavancin allein oder mehrere Agenten) und die Bakterienspezies getestet werden kann. Die Dalbavancin Konzentrationen sollten die interpretative Haltepunkte für alle für mindestens eine QC-Stamm erwartet Bakterienarten getestet werden und den gesamten Bereich der Verdünnungen zu umfassen. Die antimikrobielle Verdünnungsreihe entweder in Zeilen oder Spalten, je nach Anzahl antimikrobieller Mittel und / oder isoliert / Platte und das Verfahren der Inokulation durchgeführt werden. Das Volumen des Pulvers und Dalbavancin Brühe berechnet werden sollte, um sicherzustellen, daß optimale Mengen produziert und Abfall ist gering. Für die in dieser Publikation verwendeten Beispiel werden die Umsätze auf Herstellung von zwei MIC-Panels basiert. Kation eingestellt Mueller-Hinton-Brühe sollte nach Mann vorbereitet und autoklavierbarsteller Anweisungen und Sterilität der Medien überprüft. MIC-Panels hergestellt und am selben Tag der Herstellung verwendet werden oder sie können mit entsprechenden Qualitätskontrollorganismen und der validierten Platten gefroren gelagert für die zukünftige Verwendung zu prüfen. Es ist wichtig, sterile Techniken in dem Verfahren zu verwenden. Es gibt keine strengen Kriterien für die Überprüfung der Inokulumkonzentration mit Koloniezahlen. Koloniezählungen kann zunächst für jede getestete und / oder in regelmäßigen Abständen, um den Verdünnungsschritt in Schritt 4.2 durchgeführt zu validieren Arten überprüft werden. Es ist wichtig, dass die Gültigkeit des 0,5 McFarland Standard wird auch routinemäßig mit E. geprüft coli ATCC 25922 mit einem Verfahren ähnlich wie in Schritt 4.5. Wenn die Ergebnisse nicht gleichwertig sind 1-2 x 10 8 KBE / ml, ein neuer 0,5-McFarland-Standard sollte erhalten werden. Wenn die Koloniezählungen von MIC Vertiefungen außerhalb des akzeptablen Bereichs (2-8 × 10 5 CFU / ml und MIC-Ergebnisse für die klinische Isolat (e) variieren von the erwarteten Normalverteilung (z. 0,03 bis 0,12 ug / ml für S. aureus) und / oder MIC-Ergebnisse für die Qualitätskontrolle Isolat (n) außerhalb des erwarteten Bereiche ist Validierungstests notwendig und Verfahren Änderung gerechtfertigt sein. Es wird vorgeschlagen, dass eine validierte 0,5 McFarland-Standard verwendet, um die Koloniezahl (n) zu wiederholen und wenn die Ergebnisse wieder außerhalb der erwarteten Ergebnisse sollte das Inokulum Verdünnung wie in Schritt 4.2 durchgeführt entsprechend angepasst werden, und die MIC wiederholt. Beachten Sie, dass eine Reinheitskontrolle ist notwendig, auch wenn eine Koloniezahl wird durchgeführt, weil die Koloniezahl Prozedur verwendet eine verdünnte Volumen, das nicht unbedingt niedrigere Konzentrationen von kontaminierenden Organismen erkennen kann. Für eine MIC-Test als gültig betrachtet werden, müssen akzeptablen Wachstum in der Wachstumskontrolle erfolgen. Für die meisten Bakterien, die gegen Dalbavancin getestet werden (dh., Staphylokokken, Streptokokken und Enterokokken, Wachstum wird als Schaltfläche (in der Regel&gt; 2 mm) und weniger fr gesehen werdenequently kann das Wachstum als Trübung in der gut angezeigt. Im Gegensatz zu einigen antimikrobiellen Mitteln, die zeigen können nachlaufende Wirkung wie Konzentrationen zu erhöhen, werden Dalbavancin Endpunkte in der Regel gut definiert. Es gibt verschiedene Betrachtungsvorrichtungen vorgesehen, um das Lesen microdilution Tests zu erleichtern, die verwendet werden, um Dalbavancin enthaltenden Platten, solange es keinen Kompromiss in der Fähigkeit, das Wachstum in den Vertiefungen zu erkennen gelesen werden kann. Die kritischen Schritte im Rahmen des Protokolls sind die Teile des Verfahrens, das zur Löslichkeit Dalbavancin und Zugabe von P80 verbunden sind verwandt. Wichtig ist, daß die maximale Konzentration des Dalbavancin verwendet nicht größer ist als 1,600 &amp; mgr; g / ml, dass DMSO als Lösungsmittel, bevor die Brühe Verdünnungen verwendet wird und daß Zwischenkonzentrationen werden in DMSO hergestellt, daß die Endkonzentration von DMSO in dem MIC Platte Vertiefungen nicht größer ist als 1%. DMSO ist hygroskopisch und daher der Einsatz von älteren Flaschen DMSO war consideratIonen hinsichtlich Dalbavancin Löslichkeit. Doch während ein kleiner BMD-Studie mit Qualitätskontrollstämme hat gezeigt, nicht auf eine wichtige Variable sein (siehe Ergebnisteil), ist es gute Praxis, um neue oder kürzlich eröffnete Flaschen DMSO zu verwenden. Es ist auch wichtig, dass P80 ist mit der Brühe in dem letzten Schritt des Arzneimittelverdünnung Herstellung zugesetzt und in einer Endkonzentration von 0,002% in der MIC gut. Die BMD-Verfahren, die hier verwendet Vorbereitung der MIC-Panels mit 50 ul / Vertiefung in Dalbavancin und P-80-Konzentrationen zweimal die endgültige Konzentration und Zugabe von Impfgut mit 50 ul / Vertiefung, so dass Endvolumen / Vertiefung 100 ul. Dieses Verfahren ermöglicht eine MIC Tafelformat für das Testen von sowohl S. hergestellt werden aureus und S. pneumoniae weil die lysiertem Pferdeblut kann das Inokulum hinzugefügt. Alternative Methoden zur Herstellung von MIC Platten mit 100 ul / Vertiefung unter Zusatz von bis zu 10 ul / Vertiefung in der beschriebenenCLSI und ISO-Verfahren. Die Dalbavancin anfällig Haltepunkt für S. aureus ist ≤0.12 ug / ml (FDA Packungsbeilage). Wie es in den letzten Überwachungs gezeigt, sind die Mehrzahl der Isolate Dalbavancin in Konzentrationen von 0,06 ug / ml 15 gehemmt. Mit einem anfälligen Haltepunkt in der Nähe des modalen MIC kann jede Variation MIC infolge Verfahren Unterschiede Suszeptibilität Raten auswirken. Da der BMD Verfahren für Dalbavancin enthält einige einzigartige Schritte (genauer gesagt, die Verwendung von DMSO in Vorbereitung der Lager und Zwischenwirkstoffverdünnungen und 0,002% P80 in der MIC gut, ist es unerlässlich, dass das Verfahren genau befolgt werden. Die S. aureus QC Organismus (ATCC 29213) mit einer sehr klaren Dalbavancin modalen MIC von 0,06 ug / ml, ist ein guter Indikator für die Verfahrensvariante und sollte routinemäßig verwendet, um die BMD Methode zu bestätigen. Wenn MIC Ergebnisse werden mit dem erwarteten Bereich von 0,03-0,12 g / ml, sind aber tendiert entweder an den niedrigen oder high Seite dieses Bereichs liegt, wird eine weitere Validierung der Methode gerechtfertigt. Die Zugabe von 0,002% P80 wird für alle relevanten grampositive Organismen empfohlen (staphylococcci, Enterokokken und Streptokokken.) Es ist jedoch bemerkenswert, dass es wurde gezeigt, dass Pferdeblut lysiert wirkt ähnlich wie P-80, bezogen auf seine Anti-Bindungs Fähigkeit und daß die Zugabe von P-80 bis + CAMHB LHB keinen zusätzlichen Effekt auf Dalbavancin Streptokokken MIC-Ergebnisse. Es gibt derzeit keine Plattendiffusionsverfahren zum Testen Dalbavancin und wegen der schlechten Korrelation von BMD und AD Ergebnisse, Empfindlichkeitsprüfung von Dalbavancin mit dem AD-Verfahren wird nicht empfohlen, 12, 14. Der BMD-Methode sollte für die Zukunft Einschätzung Dalbavancin Anfälligkeit verwendet werden und als Goldstandard für die Entwicklung der kommerziellen antimikrobielle Empfindlichkeitstests.

Dalbavancin ist ein halbsynthetisches lipoglycopeptide die von der FDA Mai 2014 für die Behandlung von akuten bakteriellen Haut- und Hautstruktur-Infektionen durch grampositive Organismen 1 verursacht genehmigt wurde. Das primäre Ziel der Detaillierung diese Methode in einer Video-Format ist es, klare Leitlinien zu den klinischen Labors und Wissenschaftler für die Prüfung und Berichterstattung über genaue und reproduzierbare Dalbavancin Anfälligkeit Ergebnisse zu liefern. Die Bestimmung eines antimikrobiellen Mittels MIC durch kommerzielle Verfahren routinemßig in klinischen Laboratorien zur Beurteilung der in-vitro-Aktivität des Agenten gegen pathogene Bakterien durchgeführt. Die hier beschriebene Methode ist die Bouillon-Mikroverdünnungsverfahren, wie durch CLSI und ISO 2,3,4 empfohlen. Seit Dalbavancin kommerziellen Anfälligkeit Verfahren sind derzeit nicht erhältlich (zum Zeitpunkt dieser Veröffentlichung) und Disk Diffusion und Agar-Verdünnungsverfahren sind derzeit nicht empfohlen foder Dalbavancin, sind Referenzbouillonverdünnungsverfahren die gegenwärtigen Möglichkeiten 12,14. Da diese Referenzmethode ist keine kommerzielle und FDA in vitro-Diagnoseverfahren, klinische Labors in den USA, die dieses Verfahren für die Patiententests verwenden müssen von regulatorischen Anforderungen für ein Labor entwickelten Tests (LDT) einzuhalten. Es wird erwartet, dass, wie die Dalbavancin Nutzung steigt, mehr Labors wird eine Notwendigkeit, diese Verbindung zu testen. Vancomycin Testen als Ersatz für die Bestimmung der Empfänglichkeit von S. Dalbavancin aureus wurde validiert 5. Jedoch kann Dalbavancin gegen Vancomycin Zwischen S. aktiv sein aureus (VISA) und daher kann Kliniker Dalbavancin MIC Ergebnisse verlangen. Zusätzlich kann MIC-Ergebnisse für andere Bakterienarten angefordert werden. Die FDA anfällig Haltepunkt für Dalbavancin gegen S. aureus wurde auf ≤0.12 ug / ml festgestellt. FDA zugeordnet nur susceptible Kategorie, da der Mangel an Daten über resistente Isolate. Die normalen MIC Verteilung unter den Wildtyp-S aureus-Isolaten ist zwischen 0,03 bis 0,12 ug / ml, mit einem klaren modalen MIC von 0,06 ug / ml. Eine leichte Veränderung der MIC Ergebnisse durch Verfahren Differenz, zusätzlich zu der inhärenten BMD Variation ± eine Verdünnung, die möglicherweise haben könnte erhebliche Auswirkungen auf die Anfälligkeit Raten. 6 Ähnlich wie bei anderen lipoglycopeptide Mittel, können Dalbavancin Empfindlichkeitsprüfung anspruchs als Folge sein der Löslichkeit und der relativ großen Grße des Moleküls und seine Bindungseigenschaften 7.8.9. Die hier beschriebenen Referenz BMD Verfahren umfasst zwei spezifische Schritte, die einzigartig für unlösliche Wirkstoffe und / oder lipoglycopeptide Mittel sind: (1) die Verwendung von DMSO zur Herstellung von Stammlösungen und (2) Zugabe von 0,002% P-80 in der endgültigen MIC Panel Verdünnungen. Das Ziel dieser Veröffentlichung ist die Video Klarheit in den Dalbavancin BMD Verfahren und Spezifika bereitzustellenlly konzentrieren sich auf diese wichtigen Schritte, um genaue und reproduzierbare MIC Ergebnisse zu gewährleisten.

<table><tbody><tr><td>Dalbavancin</td><td>Metrics, Inc.</td><td>Greenville, NC</td><td>BI-397</td></tr><tr><td>Vancomycin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>St. Louis, MO</td><td>C5793</td></tr><tr><td>Cation Adjusted Mueller Hinton Broth</td><td>Becton Dickinson</td><td>Sparks, MD</td><td>212322</td></tr><tr><td>Lysed horse blood</td><td>Cleveland Scientific</td><td>Bath, OH</td><td></td></tr><tr><td>Dose-it peristaltic pump</td><td>Integra Biosciences</td><td>Hudson, NH</td><td></td></tr><tr><td>Multi-channel pipet (Viaflo II)</td><td>Integra</td><td>Hudson, NH</td><td>4164</td></tr><tr><td>12 channel pipet (Matrix)</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>Single channelpPipets (Ovation 10 &amp;micro;l - 100 &amp;micro;l)</td><td>VistaLab</td><td>Brewster, NY</td><td></td></tr><tr><td>96 well microplate</td><td>Greiner Bio-one</td><td>Monroe, NC</td><td>650161</td></tr><tr><td>50 ml flat cap conical bottom centrifuge tubes</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>16x125 mm disposable glass tubes</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>12x17 mm snap cap, polystyrene tubes</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>16 ml centrifuge tubes</td><td>BioExpress</td><td>Kaysville, UT</td><td>C-3394-2</td></tr><tr><td>Reagent reservoirs</td><td>Integra Biosciences</td><td>Hudson, NH</td><td>4312</td></tr><tr><td>Disposable sterilelLoops (1 &amp;micro;l &amp;amp; 10 &amp;micro;l)</td><td>Biologix</td><td>Lenexa, KA</td><td>65-0001,65-0010</td></tr><tr><td>Tryptic soy agar + 5% sheep blood</td><td>Becton Dickinson</td><td>Sparks, MD</td><td></td></tr><tr><td>Incubator (ambient)</td><td>Sanyo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Incubator (5% CO2)</td><td>Sanyo</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Analytical balance&amp;nbsp;</td><td>ThermoFisher Scientific</td><td>Waltham, MA</td><td></td></tr><tr><td>Gloves</td><td>Kimberly-Clark</td><td></td><td>52817</td></tr><tr><td>Lab coats</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

a reference broth microdilution method for dalbavancin in vitro susceptibility testing of bacteria that grow aerobically

Antimikrobielle Empfindlichkeitstests (AST) ausgeführt, um die in vitro-Aktivität von Antibiotika gegen verschiedene Bakterien zu beurteilen. AST-Ergebnisse, die als minimale Hemmkonzentration (MHK), ausgedrückt werden, werden in der Forschung zur Entwicklung und Überwachung antimikrobielle Resistenzentwicklung und bei der klinischen Einstellung für die antimikrobielle Therapie Führung verwendet. Dalbavancin ist ein halbsynthetisches lipoglycopeptide antimikrobielle Mittel, die Mai 2014 von der Food and Drug Administration (FDA) für die Behandlung von akuten bakteriellen Haut- und Hautstruktur-Infektionen durch Gram-positive Organismen verursacht genehmigt wurde. Der Vorteil Dalbavancin über aktuelle Anti-Staphylokokken-Therapien ist die lange Halbwertszeit, die für die Dosierung einmal pro Woche erlaubt. Dalbavancin eine Aktivität gegen Staphylococcus aureus (einschließlich Methicillin-empfindlichen S. aureus [MSSA] und Methicillin-resistente S. aureus [MRSA]), Koagulase-negative Staphylokokken, <em&gt; Streptococcus pneumoniae, Streptococcus anginosus Gruppe, β-hämolytischen Streptokokken und Enterokokken Vancomycin empfindlich. Ähnlich wie bei anderen bisherigen lipoglycopeptide Mittel, Optimierung CLSI und ISO Brühe Empfindlichkeits-Testverfahren umfaßt die Verwendung von Dimethylsulfoxid (DMSO) als Lösungsmittel bei der Herstellung von Stammlösungen und Polysorbat 80 (P80), um die Haftung des Mittels an Kunststoff zu vermindern. Vor den klinischen Studien und in der Anfangsphase der Entwicklung Dalbavancin wurden Anfälligkeit Studien nicht mit der Verwendung von P-80 durchgeführt und die MIC-Ergebnisse tendenziell 2-4-fach höher und entsprechend höheren MIC Ergebnisse wurden mit dem Agar-Verdünnungs Suszeptibilität Verfahren erhalten. Dalbavancin wurde erstmals im CLSI-Bouillon-Mikroverdünnungsmethode Tische im Jahr 2005 aufgenommen und im Jahr 2006 geändert, um die Verwendung von DMSO und P-80 zu klären. Die Brühe microdilution (BMD) hier gezeigte Verfahren ist spezifisch für Dalbavancin und ist in Übereinstimmung mit den CLSI und ISO-Verfahren, mit Schritt-für-Schritt-Detail und focuns auf die kritischen Schritte hinzugefügt für Klarheit.

Standardisiert MIC Methoden sind, um die Resistenzentwicklung, ein wichtiges Ziel der verschiedenen antimikrobiellen Überwachungsprogramme überwachen notwendig. Dalbavancin MIC Ergebnisse für Isolate in Europa und USA im Zeitraum 2011-2013 gesammelt wurden &lt;0,25 ug / ml für 99,9% der S. aureus und 100% der Streptokokken (Tabelle 4). Um die Bedeutung der Verwendung von frischem (versiegelt) DMSO, dreifacher Prüfung von Dalbavancin BMD MICs für QC-Stämme S. bewerten aureus ATCC 29213 und E. faecalis ATCC 29212 und Dublettenprüfung für S. pneumoniae ATCC 49619 wurde unter Verwendung von (1) DMSO von versiegelten Ampullen, (2) DMSO aus einer 1 l-Flasche, die in dem Ablaufdatum war und zuvor für 2 Jahre und verwendet worden (3) ein Aliquot des DMSO aus dem gleichen 1 l Flasche (Probe 2), der erlaubt wurde, in einem offenen Becherglas für 72 Stunden vor der Verwendung zu sitzen. Dalbavancin MIC Ergebnisse mit Platten mit allen drei DMSO Proben hergestellt waren ähnlich und wnnerhalb die akzeptablen QC Bereiche (Tabelle 5). Der Verlust Dalbavancin Aktivität nach Exposition der Stammlösung auf Kunststoff und ohne die Zugabe von P-80 wurde gut dokumentiert. 7 In 2 weiteren Studien wurde die Zugabe von P-80 in den anfänglichen und mittleren Stammlösungen (Tabelle 6) und die Verwendung von Glas oder Kunststoffrohre für die Herstellung der anfänglichen und mittleren Stammlösungen (Tabelle 7) keine Auswirkung auf haben die Dalbavancin MIC Ergebnisse. Es gab auch keinen Einfluss auf Dalbavancin MIC Ergebnisse, wenn Polypropylen und Polystyrol-Platten von drei Herstellern wurden verwendet (Tabelle 7). Die Anwesenheit von lysiertem Pferdeblut in die Brühe Medien zur Prüfung von Streptokokken wurde gezeigt, dass ein oberflächenaktives Mittel-artige Aktivität, vergleichbar mit P-80 7, 8 haben. Die Dalbavancin Referenzmethode für Streptokokken nicht schließen sowohl P-80 und mit lysiertem Pferdeblut .Jedoch anders als Staphylokokken und Enterokokken Dalbavancin MIC-Ergebnisse für Streptokokken sind ähnlich (innerhalb +/- 1 Verdünnung) mit und ohne die Zugabe von P-80. Wie zuvor dargestellt worden und in Figur 1 gezeigt, Dalbavancin Agarverdünnung (AD) MICs sind typischerweise 2-8 mal höher im Vergleich zum derzeitigen BMD Bezugszeichen 12, 13, 14. Im Gegensatz zu BMD, die Zugabe von 0,002% P-80 nicht beeinflussen Dalbavancin AD MIC führt 12. <img alt="Gleichung 1" src="/files/ftp_upload/53028/53028eq1.jpg" /> Gleichung 1: Beispiel für Dalbavancin Stammlösung Vorbereitung Vorbereitung Schritte für 25 ml von 800 ug / ml Dalbavancin Lösung.. <img alt="Abbildung 1" src="/files/ftp_upload/53028/53028fig1.jpg" /> Abbildung 1. Vergleich der Dalbavancin und Vancomycin BMD AD. Die Ergebnisse der Studie, die im Vergleich dalbavancin und Vancomycin BMD und AD MIC Ergebnisse für ausgewählte Gram-positive bakterielle Isolate. Durchschnittlich (A) Dalbavancin und (B) Vancomycin Broth Mikrodilution und Agar-Verdünnungs MIC Ergebnisse in pg / ml für 15 Staphylococcus aureus, 8 Koagulase negative Staphylokokken (CNS), 5 Enterococcus faecalis und 14 Streptokokken (Gruppen A, B und C). <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53028/53028fig1highres.jpg" target="_blank">Bitte klicken Sie hier, um eine größere Version dieser Figur zu sehen.</a> <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td></td><td> 1 </td><td> 2 </td><td> 3 </td><td> 4 </td><td> 5 </td><td> 6 </td><td> 7 </td><td> 8 </td><td> 9 </td><td> 10 </td><td> 11 </td><td> 12 </td></tr><tr><td> EIN </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL; 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> B </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> C </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> D </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> E </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td&gt; <td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> F </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> G </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td> H </td><td> DAL 0,002 </td><td> DAL 0,004 </td><td> DAL 0,008 </td><td> DAL 0,015 </td><td> Dal 0,03 </td><td> DAL 0,06 </td><td> DAL 0,12 </td><td> DAL 0,25 </td><td> DAL 0.5 </td><td> DAL 1 </td><td> DAL 2 </td><td> Pos Ctrl. </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td></td><td> DAL </td><td colspan="2"> Dalbavancin </td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td></td><td&gt; </td><td></td></tr><tr><td></td><td colspan="12"> Konzentrationen sind in ug / ml nach 50 ul / Vertiefung angegeben Inokulation </td></tr></tbody></table> Tabelle 1 MIC-Platte-Format. Die 96-Well-Plattenformat, die Position der Dalbavancin Verdünnungen und positiven Kontrollvertiefungen als Beispiel in diesem Video-Veröffentlichung verwendet <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 1 </td><td> 2 </td><td> 3 </td><td> 4 </td><td> 5 </td><td> 6 </td><td> 7 </td><td> 8 </td></tr><tr><td> Quelle Conc. (ug / ml) </td><td> Volume Quelle (ml) </td><td> Volumen DMSO (ml) </td><td> Zwischen Conc. in DMSO (ug / ml) </td><td> Volume Intermediate Conc. (ml) </td><td> Volumen CAMHB + 0,004% P80 * (ml) </td><td> 2X Conc. Nach dem 1: 100 Verdünnung in CAMHB (ug / ml) </td><td> Schlusssteuerung Conc. Nach der Inokulation (ug / ml) </td></tr><tr><td> 800 </td><td> 1.0 </td><td>1.0 </td><td> 400 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 4 </td><td> 2 </td></tr><tr><td> 400 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td><td> 200 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 2 </td><td> 1 </td></tr><tr><td> 400 </td><td> 0,5 </td><td> 15 </td><td> 100 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 1 </td><td> 0,5 </td></tr><tr><td> 400 </td><td> 0,5 </td><td> 3.5 </td><td> 50 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,5 </td><td> 0,25 </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td><td> 25 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,25 </td><td> 0,125 </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 0,5 </td><td> 15 </td><td> 12,5 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,125 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 50 </td><td> 0,5 </td><td> 3.5 </td><td> 6.25 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 6.25 </td><td> 0,5 &lt;/ td&gt; <td> 0,5 </td><td> 3.13 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 6.25 </td><td> 0,5 </td><td> 15 </td><td> 15 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td></tr><tr><td> 6.25 </td><td> 0,5 </td><td> 3.5 </td><td> 0.8 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,008 </td><td> 0,004 </td></tr><tr><td> 0.8 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td><td> 0,4 </td><td> 0,02 </td><td> 1.98 </td><td> 0,004 </td><td> 0,002 </td></tr><tr><td colspan="5"> Diese Tabelle wurde von CLSI M100-S25, Tabelle 8B 3 geändert worden </td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table> Tabelle 2. Schema zur Herstellung von Verdünnungen von wasserunlöslichen Antimicrobial Agents in Broth Verdünnungen Empfindlichkeitsprüfung angewendet werden. Volumes von Dalbavancin Arbeitslösungen und Verdünnungsmittel zur Herstellung der endgültigen MICDalbavancin Lösungen von 0,002-2 ug / ml. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Qualitätskontrollstamm </td><td> Erwartete Dalbavancin MIC (ug / ml) </td></tr><tr><td> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 0,03-0,12 </td></tr><tr><td> E. faecalis ATCC 29212 </td><td> 0,03-0,12 </td></tr><tr><td> S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 0,008-0,03 </td></tr></tbody></table> Tabelle 3. Erwartete Dalbavancin MIC Ergebnisse für die Qualitätskontrolle Stämme 3, 11. CLSI Ergebnisse der Qualitätskontrolle für die vorgeschlagenen Stämme zusammen mit klinischen Isolaten, um die richtige Methode geprüft werden, ob <img alt="Tabelle 4" src="/files/ftp_upload/53028/53028table4.jpg" /> Tabelle 4. Verteilung Dalbavancin MIC Ergebnisse (Anzahl an jedem MIC) aus den USA und Europa 2011-2013 Surveillance Study 15. Dalbavancin MIC Ergebnisse aus einer veröffentlichten Studie von neuen klinischen Isolate als Indikator der aktuellen Dalbavancin in vitro Aktivität. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><colgroup></colgroup><tbody><tr><td rowspan="2"> Isolieren # </td><td colspan="3"> Dalbavancin MIC (ug / ml) </td></tr><tr><td> DMSO 1 </td><td> DMSO 2 </td><td> DMSO 3 </td></tr><tr><td rowspan="3"> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 0,12 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,12 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td rowspan="3"> E. faecalis ATCC 29212 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td rowspan="2"><em&gt; S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td colspan="4"> DMSO 1 = Ungeöffnete Flamme versiegelt 10 ml Ampullen </td></tr><tr><td colspan="2"> DMSO 2 = häufig geöffnet 1L Flasche </td><td></td><td></td></tr><tr><td colspan="4"> DMSO 3 = häufig geöffnet 1L bottle - saß auf der Bank im unbedeckten Becherglas 72 Stunden </td></tr></tbody></table> Tabelle 5. Dalbavancin MIC Ergebnisse (ug / ml) unter Verwendung von DMSO Lizenz und Intermediate Verdünnungen Vorbereitung mit DMSO aus 3 Quellen. Ergebnisse einer Dalbavancin MIC Studie, die Wirkung der Verwendung von verschiedenen DMSO Lösungsmittel bei der Herstellung der Dalbavancin Lager und Zwischen Verdünnungen verglichen. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td rowspan="2"> Isolieren Anzahl </td><td rowspan="2"> Replizieren Anzahl </td><td colspan="2"> Dalbavancin MIC (ug / ml) </td></tr><tr><td> DALB w / P80 in DMSO </td><td> DALB W / O-P80 in DMSO </td></tr><tr><td rowspan="4"> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> S. aureus klinischen DP80-002SA </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> S. aureus ATCC 700699 </td><td> 1 </td><td> 0,5 </td><td> 0,5 </td></tr><tr><td rowspan="4"> S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> 4 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td>S. pyogenes klinischen: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DP80-004PY </td><td> 1 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> DP80-005PY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-006PY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> DP80-007PY </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-008PY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,015 </td></tr><tr><td> S. agalactiae klinischen: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DP80-009AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,12 </td></tr><tr><td> DP80-010AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-011AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> DP80-012AG </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> S. dysgalactiae clinical DP80-013DY </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> S. pneumoniae klinisch: </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td> DP80-014SP </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> DP80-015SP </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-016SP </td><td> 1 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> DP80-017SP </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td></tr></tbody></table> Tabelle 6. Dalbavancin MIC Ergebnisse unter Verwendung von DMSO Lizenz und Intermediate Verdünnungen Vorbereitung mit und ohne 0,002% P-80. Ergebnisse einer Dalbavancin MIC Studie, die Wirkung der Zugabe von 0,002% P-80 auf Lager und Zwischenverdünnungen Dalbavancin verglichen. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td rowspan="3"> Isolieren </td><td rowspan="3"> Replizieren Anzahl </td&gt; <td colspan="4" rowspan="2"> Auf Verdünnungsröhrchen </td><td colspan="4"> Mikrotiterplatte (Kunststoff Art) </td></tr><tr><td rowspan="2"> Poly-Propylen, Greiner </td><td colspan="3"> Polystyrol </td></tr><tr><td> Scheibe </td><td> Plastic </td><td> Kunststoff 1 Stunde </td><td> Kunststoff 1 Std / 1 Std Intermediate </td><td> Greiner </td><td> Corning </td><td> Nunc </td></tr><tr><td rowspan="3"> S. aureus ATCC 29213 </td><td> 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td rowspan="3"> E. faecalis ATCC 29212 </td><td&gt; 1 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td> 3 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td><td> 0,03 </td><td> 0,06 </td><td> 0,03 </td></tr><tr><td rowspan="2"> S. pneumoniae ATCC 49619 </td><td> 1 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td></tr><tr><td> 2 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td><td> 0,015 </td><td> 0,008 </td><td> 0,008 </td></tr><tr><td colspan="10"> Glass = Anfangsbestand in der Glasflasche hergestellt, verwendet sofort auf Zwischen Konzentration machens in Kunststoffröhrchen, sofort verwendet werden, um Brühe Verdünnungen zu machen. </td></tr><tr><td colspan="10"> Plastic = Anfangsbestand in Zentrifugenröhrchen aus Kunststoff hergestellt, sofort verwendet werden, um Zwischenkonzentrationen in Kunststoffröhrchen, sofort verwendet werden, um Brühe Verdünnungen zu machen. </td></tr><tr><td colspan="10"> Kunststoff 1 hr = Anfangsbestand in Zentrifugenröhrchen aus Kunststoff hergestellt, lassen Sie sich auf der Bank für 1 h dann verwendet, um Zwischenkonzentrationen in Kunststoffröhrchen, sofort verwendet werden, um Konzentrationen in der Brühe zu machen. </td></tr><tr><td colspan="10"> Kunststoff 1 h / Mittelstufe 1 hr = Anfangsbestand in Zentrifugenröhrchen aus Kunststoff hergestellt, lassen Sie sich auf der Bank für 1 h dann verwendet, um Zwischenkonzentrationen in Kunststoffrohren zu machen, lassen Sie sich auf der Bank für 1 h dann verwendet, um Konzentrationen in der Brühe zu machen. </td></tr></tbody></table> Tabelle 7. Dalbavancin MIC Ergebnisse unter Verwendung von Lizenz Verdünnungen Herstellung in Kunststoff und Glas-Tubes und MIC-Platte Kunststoff-Typen. Ergebnisse ofa Dalbavancin MIC-Studie, die Wirkung der Verwendung von Kunststoff- oder Glasrohren bei der Herstellung der Stammlösungen und Effekt der Verwendung von verschiedenen Quellen und Arten von Kunststoff für Mikrotiterplatten verglichen.

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A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically

Here, we present a protocol for determination of dalbavancin susceptibility of clinically relevant Gram-positive bacteria using a broth microdilution reference methodology.

Eine Referenz Broth Mikrodilutionsverfahren für Dalbavancin<em&gt; In-vitro-</em&gt; Empfindlichkeitsprüfung von Bakterien, die wachsen aerob

Antimicrobial susceptibility testing (AST) is performed to assess the in vitro activity of antimicrobial agents against various bacteria. The AST results, ...

a-reference-broth-microdilution-method-for-dalbavancin-vitro

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically

28.9K Aufrufe.  Laboratory Specialists, Inc. Here, we present a protocol for determination of dalbavancin susceptibility of clinically relevant Gram-positive bacteria using a broth microdilution reference methodology. 

Serie: A Reference Broth Microdilution Method for Dalbavancin In Vitro Susceptibility Testing of Bacteria that Grow Aerobically

Antimicrobial Susceptibility Testing of Mycobacterium Tuberculosis Complex for First and Second Line Drugs by Broth Dilution in a Microtiter Plate Format

The rapid detection of antimicrobial resistance is important in the effort to control the increase in resistant Mycobacterium 
tuberculosis (Mtb). Antimicrobial susceptibility testing (AST) of Mtb has traditionally been performed by the agar method of proportion or by 
macrobroth testing on an instrument such as the BACTEC (Becton Dickinson, Sparks, MD), VersaTREK (TREK Diagnostics, Cleveland, OH) or BacT/ALERT (bioM&eacute;rieux, Hazelwood, MO). The agar proportion method, while considered the &#x201C;gold&#x201D; standard of AST, is labor intensive and requires calculation of resistance by performing colony counts on drug-containing agar as compared to drug-free agar. If there is &ge;1% growth on the drug-containing medium as compared to drug-free medium, the organism is considered resistant to that drug. The macrobroth methods require instrumentation and test break point ("critical") drug concentrations for the first line drugs (isoniazid, ethambutol, rifampin, and pyrazinamide). The method described here is commercially available in a 96 well microtiter plate format [MYCOTB (TREK Diagnostics)] and contains increasing concentrations of 12 antimicrobials used for treatment of tuberculosis including both first (isoniazid, rifampin, ethambutol) and second line drugs (amikacin, cycloserine, ethionamide, kanamycin, moxifloxacin, ofloxacin, para-aminosalicylic acid, rifabutin, and streptomycin). Pyrazinamide, a first line drug, is not included in the microtiter plate due to its need for acidic test conditions. Advantages of the microtiter system include both ease of set up and faster turn around time (14 days) compared with traditional agar proportion (21 days). In addition, the plate can be set up from inoculum prepared using either broth or solid medium. Since the microtiter plate format is new and since Mtb presents unique safety challenges in the laboratory, this protocol will describe how to safely setup, incubate and read the microtiter plate.

Antimicrobial susceptibility testing of Mycobacterium tuberculosis is challenging but critical for patient care. This microtiter plate format offers testing of 12 antimycobacterial drugs and provides minimum inhibitory concentration (MIC) values, which will aid in appropriate treatment.

Antimikrobielle Empfindlichkeitsprüfung von Mycobacterium tuberculosis-Komplexes für die First und Second Line Drugs von Bouillon Verdünnung in einem Mikrotiterplatten-Format

The rapid detection of antimicrobial resistance is important in the effort to control the increase in resistant Mycobacterium 
tuberculosis (Mtb). ...

Forschung

Immunologie und Infektion

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

There is growing concern about the relevance of in vitro antimicrobial susceptibility tests when applied to isolates of P. aeruginosa from cystic fibrosis (CF) patients. Existing methods rely on single or a few isolates grown aerobically and planktonically. Predetermined cut-offs are used to define whether the bacteria are sensitive or resistant to any given antibiotic1. However, during chronic lung infections in CF, P. aeruginosa populations exist in biofilms and there is evidence that the environment is largely microaerophilic2. The stark difference in conditions between bacteria in the lung and those during diagnostic testing has called into question the reliability and even relevance of these tests3.
 Artificial sputum medium (ASM) is a culture medium containing the components of CF patient sputum, including amino acids, mucin and free DNA. P. aeruginosa growth in ASM mimics growth during CF infections, with the formation of self-aggregating biofilm structures and population divergence4,5,6. The aim of this study was to develop a microtitre-plate assay to study antimicrobial susceptibility of P. aeruginosa based on growth in ASM, which is applicable to both microaerophilic and aerobic conditions.
 An ASM assay was developed in a microtitre plate format. P. aeruginosa biofilms were allowed to develop for 3 days prior to incubation with antimicrobial agents at different concentrations for 24 hours. After biofilm disruption, cell viability was measured by staining with resazurin. This assay was used to ascertain the sessile cell minimum inhibitory concentration (SMIC) of tobramycin for 15 different P. aeruginosa isolates under aerobic and microaerophilic conditions and SMIC values were compared to those obtained with standard broth growth. Whilst there was some evidence for increased MIC values for isolates grown in ASM when compared to their planktonic counterparts, the biggest differences were found with bacteria tested in microaerophilic conditions, which showed a much increased resistance up to a &gt;128 fold, towards tobramycin in the ASM system when compared to assays carried out in aerobic conditions.
 The lack of association between current susceptibility testing methods and clinical outcome has questioned the validity of current methods3. Several in vitro models have been used previously to study P. aeruginosa biofilms7, 8. However, these methods rely on surface attached biofilms, whereas the ASM biofilms resemble those observed in the CF lung9 . In addition, reduced oxygen concentration in the mucus has been shown to alter the behavior of P. aeruginosa2 and affect antibiotic susceptibility10. Therefore using ASM under microaerophilic conditions may provide a more realistic environment in which to study antimicrobial susceptibility.

Use of Artificial Sputum Medium to Test Antibiotic Efficacy Against Pseudomonas aeruginosa in Conditions More Relevant to the Cystic Fibrosis Lung

Current diagnostic antimicrobial susceptibility testing relies on the planktonic growth of isolates in nutrient rich, aerobic conditions. Here, we employ an alternative artificial sputum medium to study antimicrobial susceptibility of Pseudomonas aeruginosa biofilms under both aerobic and microaerophilic conditions more representative of the cystic fibrosis lung.

Einsatz von künstlichen Sputum Mittlere bis antibiotische Wirkung gegen die getestet<em&gt; Pseudomonas aeruginosa</em&gt; AGB in einen engeren Bezug zu den Mukoviszidose-Lunge

There  is growing concern about the relevance of in vitro antimicrobial  susceptibility tests when applied to isolates of P. aeruginosa from  cystic ...

Visualization of the Charcoal Agar Resazurin Assay for Semi-quantitative, Medium-throughput Enumeration of Mycobacteria

There is an urgent need to discover and progress anti-infectives that shorten the duration of tuberculosis (TB) treatment. Mycobacterium tuberculosis, the etiological agent of TB, is refractory to rapid and lasting chemotherapy due to the presence of bacilli exhibiting phenotypic drug resistance. The charcoal agar resazurin assay (CARA) was developed as a tool to characterize active molecules discovered by high-throughput screening campaigns against replicating and non-replicating M. tuberculosis. Inclusion of activated charcoal in bacteriologic agar medium helps mitigate the impact of compound carry-over, and eliminates the requirement to pre-dilute cells prior to spotting on CARA microplates. After a 7-10 day incubation period at 37 &#176;C, the reduction of resazurin by mycobacterial microcolonies growing on the surface of CARA microplate wells permits semi-quantitative assessment of bacterial numbers via fluorometry. The CARA detects approximately a 2-3 log10 difference in bacterial numbers and predicts a minimal bactericidal concentration leading to &#8805;99% bacterial kill (MBC&#8805;99). The CARA helps determine whether a molecule is active on bacilli that are replicating, non-replicating, or both. Pilot experiments using the CARA facilitate the identification of which concentration of test agent and time of compound exposure require further evaluation by colony forming unit (CFU) assays. In addition, the CARA can predict if replicating actives are bactericidal or bacteriostatic.

The charcoal agar resazurin assay (CARA) is a semi-quantitative, medium-throughput method to assess activity of test agents against mycobacteria that are replicating, non-replicating, or both. The CARA permits rapid evaluation of time- and concentration-dependent activity and identifies parameters to pursue by colony forming unit (CFU) assays.

Visualisierung des Charcoal Agar Resazurin-Assay für Semi-quantitative, Mitteldurch Auszählung von Mykobakterien

There is an urgent need to discover and progress anti-infectives that shorten the duration of tuberculosis (TB) treatment. Mycobacterium tuberculosis, the ...

Antimicrobial Synergy Testing by the Inkjet Printer-assisted Automated Checkerboard Array and the Manual Time-kill Method

As rates of multidrug-resistant (MDR) pathogens continue to rise, outpacing the development of new antimicrobials, novel approaches to treatment of MDR bacteria are increasingly becoming a necessity. One such approach is combination therapy, in which two or more antibiotics are used together to treat an infection against which one or both of the drugs may be ineffective alone. When two drugs, in combination, exert a greater than additive effect, they are considered synergistic. In vitro investigation of synergistic activity is an important first step in evaluating the possible efficacy of drug combinations. Two main in vitro synergy testing methods have been developed: the checkerboard array and the time-kill study. In this paper, we present an automated checkerboard array method that makes use of inkjet printing technology to increase the efficiency and accuracy of this technique, as well as a standard manual time-kill synergy method. The automated checkerboard array can serve as a high-throughput screening assay, while the manual time-kill study provides additional, complementary data on synergistic activity and killing.
The checkerboard array is a modification of standard minimum inhibitory concentration (MIC) testing, in which bacteria are incubated with antibiotics at different concentration combinations and evaluated for growth inhibition after overnight incubation. Manual performance of the checkerboard array requires a laborious and error-prone series of calculations and dilutions. In the automated method presented here, the calculation and dispensing of required antibiotic stock solution volumes are automated through the use of inkjet printer technology. In the time-kill synergy assay, bacteria are incubated with the antibiotics of interest, both together and individually, and sampled at intervals over the course of 24 h for quantitative culture. The results can determine whether a combination is synergistic and whether it is bactericidal, and provide data on inhibition and killing of bacteria over time.

Antimicrobial synergy testing is used to evaluate the effect of two or more antibiotics used in combination and is typically performed by one of two methods: the checkerboard array or the time-kill assay. Here, we present an automated, inkjet printer-assisted checkerboard array synergy technique and a classic time-kill synergy study.

Antimikrobielle Synergie Tests durch Tintenstrahldrucker-gestützte, automatisierte schachbrettartige Anordnung und die manuelle Zeit-Kill-Methode

As rates of multidrug-resistant (MDR) pathogens continue to rise, outpacing the development of new antimicrobials, novel approaches to treatment of MDR ...

Deferred Growth Inhibition Assay to Quantify the Effect of Bacteria-derived Antimicrobials on Competition

Competitive exclusion can occur in microbial communities when, for example, an inhibitor-producing strain outcompetes its competitor for an essential nutrient or produces antimicrobial compounds that its competitor is not resistant to. Here we describe a deferred growth inhibition assay, a method for assessing the ability of one bacterium to inhibit the growth of another through the production of antimicrobial compounds or through competition for nutrients. This technique has been used to investigate the correlation of nasal isolates with the exclusion of particular species from a community. This technique can also be used to screen for lantibiotic producers or potentially novel antimicrobials. The assay is performed by first culturing the test inhibitor-producing strain overnight on an agar plate, then spraying over the test competitor strain and incubating again. After incubation, the extent of inhibition can be measured quantitatively, through the size of the zone of clearing around the inhibitor-producing strain, and qualitatively, by assessing the clarity of the inhibition zone. Here we present the protocol for the deferred inhibition assay, describe ways to minimize variation between experiments, and define a clarity scale that can be used to qualitatively assess the degree of inhibition.

The deferred growth inhibition assay can be used to assess the competition effect by one bacterial isolate on another. Inhibition is quantified by measuring the zone of clearing around the inhibitor-producing isolate, or qualitatively assessed by determining the visible extent of inhibition.

Latente Growth Inhibition Assay zur Quantifizierung der Wirkung von Bakterien abgeleitete Antimikrobielle auf Wettbewerb

Competitive exclusion can occur in microbial communities when, for example, an inhibitor-producing strain outcompetes its competitor for an essential ...

Biologie

Broth Microdilution In Vitro Screening: An Easy and Fast Method to Detect New Antifungal Compounds

Fungal infections have become an important medical condition in the last decades, but the number of available antifungal drugs is limited. In this scenario, the search for new antifungal drugs is necessary. The protocol reported here details a method to screen peptides for their antifungal properties. It is based on the broth microdilution susceptibility test from the Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) M27-A3 guidelines with modifications to suit the research of antimicrobial peptides as potential new antifungals. This protocol describes a functional assay to evaluate the activity of antifungal compounds and may be easily modified to suit any particular class of molecules under investigation. Since the assays are performed in 96-well plates using small volumes, a large-scale screening can be completed in a short amount of time, especially if carried out in an automation setting. This procedure illustrates how a standardized and adjustable clinical protocol can help the bench-work pursuit of new molecules to improve the therapy of fungal diseases.

Broth Microdilution In Vitro Screening: An Easy and Fast Method to Detect New Antifungal Compounds

An easy and adaptable broth microdilution method for screening antifungal compounds and extracts.

Brühe Microdilution In Vitro Screening: eine einfache und schnelle Methode, um neue Antimykotika Verbindungen erkennen

Fungal infections have become an important medical condition in the last decades, but the number of available antifungal drugs is limited. In this ...

Rapid Antimicrobial Susceptibility Testing by Stimulated Raman Scattering Imaging of Deuterium Incorporation in a Single Bacterium

To slow and prevent the spread of antimicrobial resistant infections, rapid antimicrobial susceptibility testing (AST) is in urgent need to &#65279;quantitatively determine the &#65279;antimicrobial effects on pathogens. &#65279;It typically takes days to complete the AST by conventional methods based on the long-time culture, and they do not work directly for clinical samples. Here, we report a rapid AST &#65279;method enabled by stimulated Raman scattering (SRS) imaging of deuterium oxide (D2O) metabolic incorporation. Metabolic incorporation of D2O into biomass and the metabolic activity inhibition upon exposure to antibiotics at the single bacterium level are monitored by SRS imaging. The&#65279; single-cell metabolism inactivation concentration (SC-MIC) of bacteria upon exposure to antibiotics can be obtained after a total of 2.5 h of sample preparation and detection. Furthermore, this rapid AST method is directly applicable to bacterial samples in complex biological environments, such as urine or whole blood. SRS metabolic imaging of deuterium incorporation is transformative for rapid single-cell phenotypic AST in the clinic.

This protocol presents rapid antimicrobial susceptibility testing (AST) assay within 2.5 h by single-cell-stimulated Raman scattering imaging of D2O metabolism. This method applies to bacteria in the urine or whole blood environment, which is transformative for rapid single-cell phenotypic AST in the clinic.

Schnelle antimikrobielle Empfindlichkeitstests durch stimulierte Raman-Streubildgebung des Deuteriumeinbaus in ein einzelnes Bakterium

To slow and prevent the spread of antimicrobial resistant infections, rapid antimicrobial susceptibility testing (AST) is in urgent need to ...

Evaluating the Effectiveness of a Test Compound against Mycobacteria in Broth

Source: Zheng, X., et al. <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/55273">System for Efficacy and Cytotoxicity Screening of Inhibitors Targeting Intracellular Mycobacterium tuberculosis.</a> J. Vis. Exp. (2017)
This video demonstrates an in-broth assay to determine antibiotic efficacy against Mycobacterium tuberculosis. The bacterial culture is incubated with different concentrations of a bactericidal antibiotic. The bactericidal efficacy is measured by assessing the presence of viable bacteria using a resazurin assay.

Bewertung der Wirksamkeit eines Testpräparats gegen Mykobakterien in Brühe

1. Bacterial Strain and Growth Medium

	Make albumin dextrose and salt stock solution (ADS) by solubilizing 25 g of bovine serum albumin, 10.0 g of ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Immunology

Immunodiagnostics

Specialized Assays

A Deferred Growth Inhibition Assay to Evaluate the Effect of Bacteria-Derived Antimicrobial Compounds

Source: Moran, J. C. et al., <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/54437">Deferred Growth Inhibition Assay to Quantify the Effect of Bacteria-derived Antimicrobials on Competition.</a> J. Vis. Exp.&#160;(2016)
This video showcases the deferred growth inhibition assay, used to investigate how antimicrobial compounds produced by one type of bacteria affect another competing bacterial strain.

Ein Assay zur verzögerten Wachstumshemmung zur Bewertung der Wirkung von antimikrobiellen Verbindungen aus Bakterien

The following method is adapted&#160;to test competitor strains with inhibitor-producing strains.
NOTE: This protocol involves aerosol generation with ...

A Microtiter Plate Method to Assess the Minimum Inhibitory Concentration of an Antibiotic

Source: Ketelboeter, L. M., et al. <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/53105">Methods to Inhibit Bacterial Pyomelanin Production and Determine the Corresponding Increase in Sensitivity to Oxidative Stress.</a> J. Vis. Exp. (2015).
This video demonstrates a microtiter plate-based method for determining the Minimum Inhibitory Concentration (MIC) of test antibiotics against bacteria. Upon adding a suspension of the bacterial pathogen Pseudomonas aeruginosa to a microtiter plate containing serial dilutions of a test antibiotic, and an inhibitor of the production of pyomelanin by the bacteria, the optical density of the wells is measured to compute the minimum inhibitory concentration of the antibiotic, and the impact of the pyomelanin production inhibitor the antibiotic sensitivity of the bacteria.

Eine Mikrotiterplattenmethode zur Bestimmung der minimalen Hemmkonzentration eines Antibiotikums

1. Antibiotic Minimum Inhibitory Concentration (MIC) Assay in 96-well Plates

	Set up overnight cultures of the strains to be tested in LB (Luria-Bertani) ...

Eine Referenz Broth Mikrodilutionsverfahren für Dalbavancin

Zusammenfassung

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