Name: cochlear implantation in the guinea pig
Uploaded: 2018-06-15T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 56 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implantation in the Guinea Pig at JoVE.com

الكتاب أريد أن أشكر بيرتش ساندرا العناية بالحيوانات وبييت نويلاني الكتابة الطبية. هو العرفان بدعم مالي من صندوق العلوم النمساوية (FWF منحة ف 24260-B19) والنمسا ميد-ش.

جميع التجارب على الحيوانات أقرتها اللجنة رعاية الحيوانات المحلية والوزارة الاتحادية النمساوية للعلوم والأبحاث والاقتصاد.
1. إعداد المعدات والإعداد المطلوبة لإجراء عملية جراحية
<ol><li>ضع المجهر الجراحي، الحفر، لوحة تدفئة ونبض التاكسج للسماح بسهولة وكفاءة معالجة أثناء الجراحة. التحقق من وظيفة الأجهزة استناداً إلى الدليل الخاص بالشركة المصنعة. تأكد من أن يتم تعيين لوحة تدفئة في 38 درجة مئوية من أجل حماية الحيوان من انخفاض درجة حرارة الجسم أثناء الجراحة.</li>
	<li>وضعت على غطاء وقناع.</li>
	<li>إجراء التعقيم الجراحي اليد. غسل اليدين بالصابون دقة. الجاف لليدين وثم استخدام منظف يد كحولية لتطهير اليدين. وضع قفازات بعد الأيدي جافة.</li>
	<li>إعداد تعقيم الأدوات الجراحية والمعدات اللازمة لزرع cochlear. انظر الجدول للمواد للأدوات الجراحية والمعدات المستخدمة لغرس CI خنزير غينيا في هذا البروتوكول.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياس إمكانات العمل المركب (CAP)، إعداد قطعة سم طوله حوالي 3.5 من أسلاك الذهب تفلون--بمعزل عن طريق إزالة أجزاء من العزل بعناية من كلا الطرفين ملقط الصغير (حوالي 3 من طرف واحد و 5 ملم من استخدام الطرف الآخر). إعداد قطعة ثانية من أسلاك الذهب (حوالي 2.5 سم) مع نهايات الأغلفة لحوالي 5 مم-مكان الأسلاك المعدة في الكحول أو المطهرات.</li>
</ol>2-التخدير والأدوية وإعداد الحيوانات
<ol><li>وزن الحيوان. ملاحظة: الحيوانات المستخدمة خنازير غينيا ألبينو دانكن-هارتلي الإناث. وزن الحيوانات المستخدمة، وحوالي 4-6 أسابيع من العمر، يتراوح من 300 إلى 400 غرام.</li>
	<li>تعد المسكنات والأدوية اللازمة لإجراء عملية جراحية استناداً إلى وزن الحيوان. إعداد 0.72 مل المخلوط مخدر، تتألف من الكيتامين 0.06 مل (100 مغ/مل)، ميديتوميديني مل 0.18 (1 ملغ/مل)، 0.12 مل من الميدازولام (5 ملغ/ملليلتر) و 0.36 مل من شيفتشنكو (50 ميكروغرام/مل) لإجراء عملية جراحية على خنزير غينيا 400 غرام. انظر الجدول 1 لجرعات على أساس الوزن المسكنات.</li>
	<li>حقن الخليط من الكيتامين، ميديتوميديني، الميدازولام وشيفتشنكو تحت الجلد إلى منصة الدهون في رقبة الحيوان باستخدام إبرة ز 27. انظر الجدول 1 للوزن على أساس جرعات من المسكنات. تغطية القفص وترك الحيوان في مكان هادئ لمدة 10 دقائق قبل المتابعة.</li>
	<li>تليين عيون الحيوان وإبقائهم مشحم خلال الإجراء بأكمله. حلق رأس الحيوان، مع التركيز على منطقة ريترووريكولار للسماح وصول جراحي كاف للفقاعة.</li>
	<li>ضع الحيوان على لوحة تدفئة في موقف المعرضة والتأكد من أن الحيوان ليس في اتصال مباشر مع لوحة تدفئة لمنع الحروق الحرارية. مكان المسبار التاكسج نبض سيرا على أقدام للحيوان. ثم افتح الفم للحيوان بعناية مع المنظار صغيرة والنظيفة تقع تجويف الفم كاملة من الأغذية باستخدام مصاصة.</li>
	<li>تبقى فم الحيوان فتحت المنظار. إدراج أنبوب المعدة بعناية في المريء الحيوان، ودفع ببطء في اتجاه المعدة حتى تشعر بمقاومة.<ol>
<li>مراقبة س2-تشبع الحيوان للتأكد من أن أنبوب المعدة ليس في القصبة الهوائية. إزالة أنبوب المعدة إذا كان هناك انخفاض في س2 التشبع وحاول مرة أخرى بعد أن يتم تهوية الحيوان تماما.</li>
	</ol>
</li>
	<li>حقن خليط من المحلول الملحي الفسيولوجي وجلوكوز 5% وانروفلوكساسين في لوحة الدهون في رقبة الحيوان باستخدام إبرة ز 23.</li>
	<li>استخدام منظف اليد الكحولية لتطهير الأيدي مرة أخرى. وضع قفازات نظيفة جديدة.</li>
	<li>إعداد الحقل الجراحي مع التناوب دعك إيثانول البوفيدون اليود و 70 في المائة، وتغطي الحيوان. استخدام الستائر ذاتية اللصق أو المشابك منشفة للتأكد من أن الحقل الجراحي فقط يبقى اكتشفت أثناء الإجراء.</li>
	<li>تحت الجلد حقن 0.1 مل من محلول ليدوكائين 2% في مجال شق المخططة للتخدير الموضعي كافية ووضع الحيوان جانبية.</li>
	<li>إعادة جرعة الحيوان مع ربع الجرعة الأولى من المخلوط مخدر كل 30 دقيقة بعد الحقن الأول للمحافظة على التخدير كافية.</li>
</ol>3. زرع cochlear
<ol><li>القيام شق الجلد 2-3 سم تقريبا 3-5 مم الخلفي إلى بينا استخدام مشرط. استخدام الكي القطبين عند الضرورة للتقليل من النزيف. ملاحظة: ينبغي تأكيد عمق مخدر بعدم سحب دواسة قبل الشق الأول. يجب تكرار هذا الاختبار كل 15-20 دقيقة لرصد عمق مخدر طوال فترة الإجراءات.</li>
	<li>قص العضلات في منطقة ريترووريكولار بعناية بعد بالباتينج الفقاعة السمعية باستخدام 15 مشرط أو مقص جراحي. ملاحظة: جس الفقاعة السمعية كمكانة تحت العضلات.</li>
	<li>تشريح العضلات من الفقاعة بالضغط عليها برفق جانبا باستخدام راسباتوري أو برعم القطن. استخدام ضام لكشف كامل طول الشق وبلا عراقيل الوصول إلى الفقاعة.</li>
	<li>استخدام تلميح مشرط 15 لحفر حفرة في الفقاعة. تدوير دون مشرط بعناية حتى العظم هو مثقب للسماح بالتفتيش من بنيات الإذن الوسطى.</li>
	<li>تكبير الصورة بولوستومي حسب الحاجة للتأكد من أن تشغيل القاعدية للقوقعة، ويمكن تصور مكانة نافذة جولة على نحو كاف. ضع رأس الحيوان في وضع مقوس من أجل الوصول إلى هذه الهياكل. تغطي منطقة بولوستومي مع قطعة صغيرة من ضغط لمنع الدم والسوائل خارج الخلية من التشغيل للإذن الوسطى. ملاحظة: موقف مقوس الرأس قد تعيق مجرى الهواء للحيوان. ولذلك، تشبع الأكسجين الحيوان يحتاج إلى مراجعة كثيرا.</li>
	<li>ضع الحيوان في موقف المعرضة. كشف ذروة الحيوان عن طريق إجراء شق مستطيل وإزالة الجلد. تشريح في السمحاق وتنظيف العظام من أي نوع آخر من الأنسجة أو الدم باستخدام مشرط.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، الانتهاء من إعداد 3.5 سم تفلون معزول الأسلاك الذهبية بتشكيل هوك صغيرة مع ملقط الصغير في نهاية السلك، التي كانت من الأغلفة عن 3 مم.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، دليل نهاية الأسلاك الذهبية، التي كانت من الأغلفة عن 5 مم، تحت الجلد إلى الذروة من خلال ز 18 طرفية قسطرة وريدية استخدام ملقط الصغير. استخدام الملقط الصغير آخر باليد الأخرى لتوجيه نهاية السلك بعناية في التوصيل إلى الإذن الوسطى.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، لوي رئيس الحيوان لتصور مجال مكانة نافذة جولة من خلال بولوستومي. استخدام اليد الأخرى لربط سلك الذهب إلى بروز عظمى من مكانة نافذة جولة باستخدام ملقط الصغير.</li>
	<li>الإبقاء على التوتر لطيف في سلك الذهب وإصلاحه على حافة الجمجمة بولوستومي مع 10-15 ميليلتر من الغراء الأنسجة باستخدام حقنه 1 مل بواسطة إبرة ز 27. تجنب تشريد غراء في الإذن الوسطى. انظر الشكل 1 عن صورة المضاعفات من ناحية الإطار جولة مع سلك الذهب في الموقع.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، قم بتوصيل الطرف الأغلفة أسلاك الذهب والمعدات المستخدمة لقياس الإمكانات السمعية وإجراء قياسات غطاء أساسية. انظر هونيدير et al., 2016، وصفاً مفصلاً للقياسات كاب المنجز بشكل روتيني في المختبر. 12
</li>
	<li>ضع الحيوان في موقف المعرضة. حفر ثقوب 2 1 مم عرفت خياطة لامدا باستخدام لدغ 1-مم دون التسبب في الأضرار التي لحقت بلده دوراً. زرع مسامير الفولاذ المقاوم للصدأ 2 مم 2 في الجمجمة. ملاحظة: المسامير تخدم كنقاط التثبيت للموصل بالقطب. التكيف مع المسافة بين المسامير فيما يتعلق بحجم الموصل.</li>
	<li>استخدام قسطرة وريدية طرفية ز 18 لتوجيه مسرى من الموصل إلى الفقاعة في طبقة نسيج قريبة من جمجمة قدر الإمكان.</li>
	<li>يخلط مسحوق الأسمنت الأسنان السائل لمسحوق الأسمنت الأسنان باستخدام ملعقة وفقا للدليل الخاص بالشركة المصنعة.</li>
	<li>مكان 0.5-0.7 مل أسمنت الأسنان سيميفلويد بين المسامير باستخدام ملعقة. موقف الموصل الكهربائي بين المسامير.</li>
	<li>الاحتفاظ بالموصل في الموقف حتى يتم تصلب الأسمنت الأسنان. تأكد من أن المسامير هي المغطى بالأسمنت للسماح لتثبيت الاستقرار من الموصل.</li>
	<li>ضع الحيوان جانبية. حفر بعناية كوتشليوستومي 1 مم من مكانة نافذة جولة استخدام لدغ الماس 0.5 مم بمعدل دوران من 5000 طلقة في الدقيقة الواحدة.</li>
	<li>عناية إدراج مسرى في بحبل سكالا إلى عمق 4 مم. سحب مسرى وتكرار الإدراج. انظر الشكل 2 لمسرى المستخدمة لزرع cochlear خنزير غينيا.</li>
	<li>باستخدام إبرة مستقيمة، ختم منطقة كوتشليوستومي مع قطعة صغيرة من العضلات. إصلاح مسرى على وشك بولوستومي الجمجمة مع 10 ميليلتر من الغراء الأنسجة باستخدام حقنه 1 مل بواسطة إبرة ز 27.</li>
	<li>إعداد الأسمنت الأسنان كما هو مذكور في 3.14. إغلاق بولوستومي مع حوالي 0.3 مل أسمنت الأسنان بعناية باستخدام ملعقة. إغلاق شق ريترووريكولار استخدام خيوط قابلة للامتصاص 5-0.</li>
	<li>تحويل الحيوان إلى الموقف الذي عرضه.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، الاستيلاء على الحافة الخلفية من شق مستطيل في ذروة الحيوان باستخدام ملقط أنسجة. استخدام مقص باليد الأخرى لجعل نفق تحت الجلد بطول 2 سم تقريبا في رقبة الحيوان.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، زرع أسلاك الذهب 2.5 سم تحت الجلد في عنق الحيوان باستخدام ملقط. لحام الأغلفة نهاية أقصر إلى طرف معين موصل على ذروة الحيوان.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، اللحيم الكهربائي مكانة نافذة جولة (سلك الذهب) الرقم المناسب من الموصل في ذروة الحيوان.</li>
	<li>تطبيق مبلغ إضافي للإسمنت الأسنان العلوي الموصل لتغطية الدبابيس معزول ومسرى.</li>
	<li>عندما يقصد بها قياسات غطاء، إجراء قياسات بعد العملية الجراحية ووفقا لبروتوكول البحث.</li>
</ol>4-بعد العملية الجراحية الرعاية
<ol><li>تطبيق أتيباميزولي وفلومازينيل تحت الجلد بعد الجراحة والقياسات من أجل استعداء التخدير.</li>
	<li>تطبيق المحلول الملحي الفسيولوجي كاستبدال السوائل لدعم انتعاش الحيوان من الجراحة.</li>
	<li>وضع الحيوان تحت مصباح تدفئة حتى تعافي تماما من التخدير ويبدأ التحرك داخل القفص.<ol>
<li>منع hyperthermia أو حرق بوضع المصباح تدفئة حوالي 50 سم للحيوان. تأكد من أن درجة حرارة جسم الحيوان دائماً بين 37.5 درجة مئوية و 39 درجة مئوية.</li>
	</ol>
</li>
	<li>تحقق من هذا الحيوان لأعراض الإصابة الدهليزية مثل رأرأة، الدوران أو التدحرج. 13 , 14
</li>
	<li>تطبيق البوبرينورفين للتسكين مرتين في يوم لاثنين أكثر أيام ما بعد الجراحة. ملاحظة: قبل التطبيق الأول لجراحة البوبرينورفين بعد التأكد من أن الحيوان قد تعافي تماما وقد تنفس مستقرة. قد يؤدي تطبيق هذا الدواء بينما الحيوان لا تزال تحت التخدير للتنفس.</li>
	<li>وزن الحيوان أثناء الجراحة بعد 3 أيام الأولى للكشف عن فقدان الوزن الممكن كعلامة حرف مركب من الشدة أثناء هذا الوقت. ملاحظة: يمكن توقع فقدان الوزن من حوالي 10% خلال 3 أيام الأولى بعد الجراحة وينبغي النظر الشائعة. هذا الوزن مؤقت وسوف تسترد في غضون أيام قليلة.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Stevens, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Global+and+regional+hearing+impairment+prevalence:+an+analysis+of+42+studies+in+29+countries.">Global and regional hearing impairment prevalence: an analysis of 42 studies in 29 countries.</a> Eur J Public Health. 23 (1), 146-152 (2013).</li><li>Ciorba, A., Bianchini, C., Pelucchi, S., Pastore, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+impact+of+hearing+loss+on+the+quality+of+life+of+elderly+adults.">The impact of hearing loss on the quality of life of elderly adults.</a> Clin Interv Aging. 7, 159-163 (2012).</li><li>Arnoldner, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electric+acoustic+stimulation+in+patients+with+postlingual+severe+high-frequency+hearing+loss:+clinical+experience.">Electric acoustic stimulation in patients with postlingual severe high-frequency hearing loss: clinical experience.</a> Adv Otorhinolaryngol. 67, 116-124 (2010).</li><li>Kral, A., O'Donoghue, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Profound+deafness+in+childhood.">Profound deafness in childhood.</a> N Engl J Med. 363 (15), 1438-1450 (2010).</li><li>DeMason, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Electrophysiological+properties+of+cochlear+implantation+in+the+gerbil+using+a+flexible+array.">Electrophysiological properties of cochlear implantation in the gerbil using a flexible array.</a> Ear Hear. 33 (4), 534-542 (2012).</li><li>Eshraghi, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pattern+of+hearing+loss+in+a+rat+model+of+cochlear+implantation+trauma.">Pattern of hearing loss in a rat model of cochlear implantation trauma.</a> Otol Neurotol. 26 (3), 442-447 (2005).</li><li>Mistry, N., Nolan, L. S., Saeed, S. R., Forge, A., Taylor, R. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+in+the+mouse+via+the+round+window:+effects+of+array+insertion.">Cochlear implantation in the mouse via the round window: effects of array insertion.</a> Hear Res. 312, 81-90 (2014).</li><li>Wysocki, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Topographical+anatomy+of+the+guinea+pig+temporal+bone.">Topographical anatomy of the guinea pig temporal bone.</a> Hear Res. 199 (1-2), 103-110 (2005).</li><li>Heffner, H. E., Heffner, R. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hearing+ranges+of+laboratory+animals.">Hearing ranges of laboratory animals.</a> J Am Assoc Lab Anim Sci. 46 (1), 20-22 (2007).</li><li>Van Beek-King, J. M., Bhatti, P. T., Blake, D., Crawford, J., McKinnon, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Silicone-coated+thin+film+array+cochlear+implantation+in+a+feline+model.">Silicone-coated thin film array cochlear implantation in a feline model.</a> Otol Neurotol. 35 (1), 45-49 (2014).</li><li>Marx, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cochlear+implantation+feasibility+in+rhesus+macaque+monkey:+anatomic+and+radiologic+results.">Cochlear implantation feasibility in rhesus macaque monkey: anatomic and radiologic results.</a> Otol Neurotol. 34 (7), 76-81 (2013).</li><li>Honeder, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+sustained+release+dexamethasone+hydrogels+in+hearing+preservation+cochlear+implantation.">Effects of sustained release dexamethasone hydrogels in hearing preservation cochlear implantation.</a> Hear Res. , (2016).</li><li>Ris, L., Capron, B., de Waele, C., Vidal, P. P., Godaux, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dissociations+between+behavioural+recovery+and+restoration+of+vestibular+activity+in+the+unilabyrinthectomized+guinea-pig.">Dissociations between behavioural recovery and restoration of vestibular activity in the unilabyrinthectomized guinea-pig.</a> J Physiol. 500, 509-522 (1997).</li><li>Jin, Z., Mannstrom, P., Skjonsberg, A., Jarlebark, L., Ulfendahl, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Auditory+function+and+cochlear+morphology+in+the+German+waltzing+guinea+pig.">Auditory function and cochlear morphology in the German waltzing guinea pig.</a> Hear Res. 219 (1-2), 74-84 (2006).</li><li>Honeder, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+intraoperatively+applied+glucocorticoid+hydrogels+on+residual+hearing+and+foreign+body+reaction+in+a+guinea+pig+model+of+cochlear+implantation.">Effects of intraoperatively applied glucocorticoid hydrogels on residual hearing and foreign body reaction in a guinea pig model of cochlear implantation.</a> Acta Otolaryngol. 135 (4), 313-319 (2015).</li><li>Moteki, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Long-term+results+of+hearing+preservation+cochlear+implant+surgery+in+patients+with+residual+low+frequency+hearing.">Long-term results of hearing preservation cochlear implant surgery in patients with residual low frequency hearing.</a> Acta Otolaryngol. 137 (5), 516-521 (2017).</li><li>Eshraghi, A. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical,+surgical,+and+electrical+factors+impacting+residual+hearing+in+cochlear+implant+surgery.">Clinical, surgical, and electrical factors impacting residual hearing in cochlear implant surgery.</a> Acta Otolaryngol. 137 (4), 384-388 (2017).</li><li>Reiss, L. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Morphological+correlates+of+hearing+loss+after+cochlear+implantation+and+electro-acoustic+stimulation+in+a+hearing-impaired+Guinea+pig+model.">Morphological correlates of hearing loss after cochlear implantation and electro-acoustic stimulation in a hearing-impaired Guinea pig model.</a> Hear Res. 327, 163-174 (2015).</li><li>Chang, M. Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Effect+of+Systemic+Steroid+on+Hearing+Preservation+After+Cochlear+Implantation+via+Round+Window+Approach:+A+Guinea+Pig+Model.">The Effect of Systemic Steroid on Hearing Preservation After Cochlear Implantation via Round Window Approach: A Guinea Pig Model.</a> Otol Neurotol. 38 (7), 962-969 (2017).</li><li>Eshraghi, A. A., Yang, N. W., Balkany, T. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparative+study+of+cochlear+damage+with+three+perimodiolar+electrode+designs.">Comparative study of cochlear damage with three perimodiolar electrode designs.</a> Laryngoscope. 113 (3), 415-419 (2003).</li></ol>

كريستوف أرنولدنير وهونيدير كليمنس، المكلفين بمنحه بحثية من "النمسا" ميد-ش. وقدمت "النمسا" ميد-ش الأقطاب الكهربائية المستخدمة في هذا المنشور. الكتاب الباقية ليس لها علاقة بالكشف عن.

يصف البروتوكول المقدم كيفية إجراء زرع cochlear في نموذج خنزير غينيا. يمكن استخدام هذا البروتوكول لتقييم التدخلات المختلفة لآثارها على السمع المتبقية ورد فعل جسم غريب على مسرى CI. ينبغي اتخاذ احتياطات عدة للتوصل إلى إمكانية تكرار نتائج عالية ودقة من التجارب.
وينبغي قياس عتبات السمع الأساس لجميع خنازير غينيا تأهيلي باستخدام استجابات الدماغ السمعية مثلاً . بعض من خنازير غينيا المتاحة تجارياً يحمل فقدان السمع ذات صلة ولذلك لم يدرج في الفوج التجريبية. اعتماداً على طول الجراحة وبروتوكول يمكن إجراء هذا التقييم أما مباشرة قبل الجراحة أو زرع cochlear قبل بضعة أيام، مما يتيح للحيوان ما يكفي من الوقت للتعافي من التخدير.
عند إجراء عملية جراحية تحت التخدير العام في التنفس صورة عفوية سرعة الحيوان، المهم. لذلك، إعداد دقيق قبل الجراحة أمر أساسي، كما اختيار البروتوكول مخدر. استخدام الكيتامين، ميديتوميديني، الميدازولام وشيفتشنكو في تركيبة مع نتائج التخدير الموضعي في التخدير الكافي والتسكين، بينما وفي الوقت نفسه يستمر الحيوان على التنفس بصورة تلقائية. بالمقارنة مع استخدام الكيتامين وإكسيلازيني كثيرا ما توصف، نتائج هذا النظام في أفضل التسكين والمحيطة بالجراحة خفض معدلات الاعتلال والوفيات. من المهم لجميع الصكوك والأدوية (بما في ذلك الداعم للمسكنات) متاحة قبل وضع الحيوان إلى النوم.
بسبب التغييرات الموقف من الحيوانات أثناء الجراحة (تغيير من موقف المعرضة إلى موقف سيديوارد والعودة)، هناك خطر تطلع للمعدة المحتوى في أي وقت إلى الرئتين. ولهذا السبب، يتضمن البروتوكول أيضا تطبيق أنبوب المعدة، وطريقة سريعة وسهلة لحماية الحيوان من الطموح، والحد من الوفيات المحيطة بالجراحة.
للحفاظ على العقم خلال إعادة تحديد المواقع والمناطق حيث يكون الحيوان لمست الحاجة التي تغطيها الستائر العقيمة، قفازات تحتاج إلى تغيير بعد ذلك أو إعادة تحديد المواقع يحتاج إلى القيام به من شخص آخر غير معقمة.
O2-التشبع الرصد أيضا أهمية قصوى أثناء الجراحة. الموضع من الرأس المطلوب للتصور الرعن ومكانه نافذة جولة يمكن أن يسبب انسداد في مجرى الهواء، التي يمكن معالجتها بسهولة عند تحديد وقت كاف.
وعادة ما تفقد الحيوانات كمية كبيرة من سوائل الجسم (مثل الدم، السائل خارج الخلوي، والبول) أثناء الجراحة. ولذلك، البروتوكول استبدال السوائل في هذه المخطوطة يمثل أسلوب جيد التحمل استقرار الهليوكبتر الحيوانات ويعتمد على انتعاش سريع من التخدير.
لتجنب الأخطاء عند إجراء القياسات أوديوميتريكال، يوصي بالاتصال pin نفس الرابط قطب محددة أثناء كل عملية جراحية.
واحد الحد من هذا الأسلوب هو تباين مرتفعة نسبيا في نوبات عتبة السمع بعد العملية الجراحية، التي غالباً ما ترتبط كذلك بتصور الجراح. على الرغم من هذا التفاوت في النتائج يشبه الوضع في البشرية CI المتلقين مع السمع المتبقية، لا تماما ومن المعلوم ما أسباب نتائج متغير. 16 , 17 , 18 عموما، التباين تتناقص مع الوقت والخبرة المكتسبة من الجراح. من المهم تجنب إفراط القوات عند إدراج الكهربائي، الذي يمكن أن يتحقق بسرعة بطيئة إدراج. لأنه يمكن أن يؤدي الإدراج حذراً القطب CI فقط يصف فقدان السمع محدودة جداً، على البروتوكول المقدم من إدراج متكررة القطب، الذي يؤدي أعلى وأكثر قابلية للتنبؤ من فقدان السمع. هذا فقدان السمع بصورة أكثر وضوحاً في منطقة عالية التردد، بين 16 و 32 كيلو هرتز. الصدمة إينتراكوتشلير يعتمد على عمق الإدراج، مورفولوجية القوقعة والنهج (كوتشليوستومي مقابل الإدراج في إطار جولة) بحاجة إلى أن تؤخذ في الاعتبار. وقد استخدمت أيضا الإدراج القطب CI عبر غشاء النافذة جولة، عادة ما تؤدي في زرع cochlear الحفاظ على السمع البشري، في نموذج خنزير غينيا. 19 لأن الغشاء نافذة جولة مخفياً في خنزير غينيا والإدراج القطب من خلال نتائج غشاء النافذة جولة في زاوية إدراج غير مواتية، الحفر كوتشليوستومي يؤدي إلى تحولات عتبة السمع أكثر قابلية للتنبؤ. ويقترح هذا البروتوكول استخدام مشرط بدلاً من حفر لفتح الفقاعة tympanic، نظراً لأن هذه النتائج في تعرض تخفيض ضوضاء في الإذن يكون مزروع. تقييم النسيجي الأذنين الداخلية معالجة رد فعل جسم غريب على مسرى، كمية خلايا الشعر وخلايا العقدة دوامة، فضلا عن الصدمات النفسية لهياكل مثل الصفيحة دوامة العظمى، وينبغي أن يقوم القطب إزفاء معدلات في كل مزروع الأذنين، كما أن هذه النتائج تسهيل فهم أفضل للنتائج الفنية التي تقاس. 12 , 20

أكثر من 500 مليون شخص في العالم يعانون من فقدان السمع. 1 ارتبط ضعاف السمع بمعدل أعلى من الاكتئاب وانخفاض الثقة بالنفس ومشاعر أقل بالذات، مما يؤدي إلى انخفاض نوعية الحياة كافة. 2 حين السمع بطريقة كافية لاستعادة وظيفة حسية في حالات فقدان السمع معتدل، طريقة العلاج الأكثر فعالية للمرضى الذين يعانون من فقدان السمع العميق هو زرع cochlear (CI). بسبب نتائج ممتازة فيما يتعلق بتصور الكلام، معايير الترشيح لزرع cochlear الآن أيضا تشمل<s>s</s> المرضى الذين لديهم بقايا كبيرة الاستماع في منطقة منخفضة التردد، ولكن لا ينتفعون بالسمع. 3 أن هؤلاء المرضى يمكن الجمع بين استخدام التحفيز الكهربائي والصوتية في الإذن مزروع، الحفاظ على السمع وقد أصبحت قضية رئيسية للجراحين CI. خلال زرع cochlear، يتم إدراج صفيف قطب في حبل سكالا من القوقعة، حيث أنه يحفز كهربائياً العصب السمعي. 4 الصدمة الإدراج قطب كهربائي يشكل خطرا على السمع المتبقية ويستحث التليف، مما يزيد من ممانعات القطب واستهلاك البطارية للزرع. وهكذا، نماذج لدراسة التدخلات الدوائية التي يمكن أن تقلل من فقدان السمع والتليف الناجم عن إدخال مسرى ضرورية.
خنزير غينيا هو نموذج حيوان ملائمة ومريحة لرابطة الدول المستقلة، بسبب أسهل وأكثر الوصول الجراحي استنساخه للإذن الداخلية مقارنة اليرابيع، والجرذان أو الفئران. 5 , 6 , 7 , 8 وعلاوة على ذلك، جلسة استماع مجموعة من هذه الأنواع نسبيا مقارنة بالسمع البشري. 9 الأنواع الكبيرة مثل القطط أو القرود، التي استخدمت لمعالجة المسائل البحثية المحددة المتصلة برابطة الدول المستقلة، لا تمثل خياراً معقولاً لمعظم الدراسات CI نظراً للاعتبارات الأخلاقية والمالية على السواء. 10 , 11
وخلاصة القول، خنزير غينيا نموذج موثوق بها وفعالة من حيث التكلفة نسبيا لتقييم آثار التدخلات الدوائية في الإعداد لزرع cochlear.

<table><tbody><tr><td>Scale</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Oxygen insufflator</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Shaver</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sucker</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Povidone Iodine Solution</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Alcohol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Laryngoscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stomach tube&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Fr 06, Lg 80 cm</td></tr><tr><td>Surgical binocular microscope</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Drill</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.5 mm diamond burr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 mm diamond burr</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heating plate</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pulse oximeter</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue glue</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dental cement powder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fluid for dental cement powder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Bipolar cautery</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gauze compress</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cotton bud</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cement mixing bowl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Teflon insulated gold wire</td><td></td><td></td><td>99.99 % gold, diameter: 0.125 mm, isolation: 0,016 mm, PTFE (Polytetrafluoroethylen)&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Scalpel with blade No. 10</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scalpel with blade No. 15</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Scissors</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mosquito forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dressing forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tissue forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Delicate dressing forceps 2X</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro forceps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Screw driver</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Stainless steel screws</td><td></td><td></td><td>diameter: 1 mm</td></tr><tr><td>Retractor</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle probe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spatula</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle holder</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>5-0 absorbable sutures&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle 23G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Needle 27G</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medetomidine 1 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.36 mg/kg</td></tr><tr><td>Midazolam g mg/mL</td><td></td><td></td><td>1.2 mg/kg</td></tr><tr><td>Fentanyl 50 &amp;micro;g/mL</td><td></td><td></td><td>0.036 mg/kg</td></tr><tr><td>Ketamine 100 mg/mL</td><td></td><td></td><td>12 mg/kg</td></tr><tr><td>Lidocaine (local anesthesia)</td><td></td><td></td><td>4 mg/kg</td></tr><tr><td>Atipamezole 5 mg/mL</td><td></td><td></td><td>1 mg/kg</td></tr><tr><td>Flumazenil 0.1 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.1 mg/kg</td></tr><tr><td>Enrofloxacin 100 mg/mL</td><td></td><td></td><td>7 mg/kg</td></tr><tr><td>Buprenorphin&amp;nbsp; 0.3 mg/mL</td><td></td><td></td><td>0.05 mg/kg&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Physiological Saline (at body temperature)</td><td></td><td></td><td>12.5 mL/Kg (pre-surgery)</td></tr><tr><td>Glucose 5 % (preoperative, at body temperature)</td><td></td><td></td><td>12.5 mL/Kg</td></tr><tr><td>Physiological Saline (at body temperature)</td><td></td><td></td><td>25 mL/kg (post-surgery)</td></tr></tbody></table>

cochlear implantation in the guinea pig

عملية زرع cochlear هي أجهزة عالية الكفاءة التي يمكن استعادة السمع في الموضوعات مع فقدان السمع العميق. سبب خطاب تحسين إدراك النتائج، وتم توسيع معايير الترشيح على مدى العقود القليلة الماضية. وهذا يشمل مرضى السمع المتبقية الكبيرة التي تستفيد من التحفيز الكهربائية والصوتية من الإذن نفسها، الأمر الذي يجعل المحافظة على السمع أثناء زرع cochlear مسألة هامة. ممانعات القطب والمسألة المتعلقة باستهلاك الطاقة حقل بحثي رئيسي آخر، التقدم المحرز في هذا المجال يمكن أن تمهد الطريق للأطراف الاصطناعية السمعية القابلة للغرس تماما. ولمعالجة هذه القضايا بطريقة منهجية، نماذج حيوانية الكافية ضرورية. ولذلك، والهدف من هذا البروتوكول هو تقديم نموذج حيوان لزرع cochlear، التي يمكن استخدامها لمعالجة مختلف المسائل البحثية. سبب لها الفقاعة tympanic كبير، مما يتيح سهولة الوصول الجراحية للإذن الداخلية، فضلا عن نطاق السمع الذي يشبه نسبيا إلى نطاق السمع للبشر، خنزير غينيا أنواع الشائعة استخدام في البحوث السمعي. ويتم زرع cochlear في خنزير غينيا عن طريق اتباع نهج ريترووريكولار. من خلال بولوستومي حفر كوتشليوستومي ومسرى زرع cochlear يتم إدراجه في حبل سكالا. ثم يمكن استخدام هذا القطب للتحفيز الكهربائي وتحديد ممانعات الكهربائي وقياس إمكانات العمل المركب للعصب السمعي. وبالإضافة إلى هذه الطلبات، وزرع cochlear أقطاب يمكن أيضا استخدامها كأجهزة إيصال المخدرات، إذا كان القصد من عملية تسليم الموضعية لوكلاء الأدوية إلى خلايا أو سوائل من الإذن الداخلية.

عادة شفاء الجروح الجراحية سريعة ودون تعقيدات في نموذج خنزير غينيا والاتصالات للقياسات الكهربية بعد العملية الجراحية يبقى موجوداً بسهولة في ذروة الحيوان (الشكل 3). ويبين الشكل 4 قياس الغطاء فوق ما قبل وما بعد الجراحة حيوان الممثل. الإدراج قطب كهربائي أدى إلى تحول عتبة 16 ديسيبل (ديسيبل) (أرقام 4A و 4B). الشكل 4 ج يوضح ما قبل وبعد العملية الجراحية الخاصة بالتردد كاب عتبات الحيوان نفسه. عتبات كاب دون تغيير تقريبا في الترددات المنخفضة، بينما يتحقق تحول عتبة لما يقرب من 25 إلى 30 dB في منطقة عالية التردد، ابتداء من الساعة 8 كيلو هرتز.
القطب الإدراج يمكن أن يسبب صدمة للإذن الداخلية. بالإضافة إلى الصدمة الجراحية الحادة، أن رد فعل جسم غريب على مسرى يؤثر سلبا على أداء زرع cochlear. يوضح الشكل 5 كوكليا خنازير غينيا بعد الإدراج CI والإجراءات المختلفة لغذائها. في الشكل 5A الكهربائي، الذي وضع بشكل صحيح في حبل سكالا، تركت في الموقع، بينما في الشكل 5ب أزيل مسرى قبل workup النسيجي. في الشكل 5ألف تقريبا أي رد فعل جسم غريب مرئياً، بينما في الشكل 5ب مساحة كبيرة من حبل سكالا مليء بأنسجة تليفية. الشكل 5 ج يصور كسر الصفيحة دوامة العظمى بسبب الإدراج CI القطب، مما تسبب أيضا في فقدان خلايا العقدة دوامة في هذا الحيوان. يمكن أن تفسر هذه الكسور أعلى من عتبة المتوقع حدوث تحولات في بعض الحيوانات.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig1.jpg"> الشكل 1 : جولة ناحية الإطار مع سلك الذهب في الموقع. علامات نجمية في إطار جولة، بدوره القاعدية x من القوقعة. أسلاك الذهب يتسم سهم. مقياس بار-2 مم <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig2.jpg"> الشكل 2 : قطب زرع cochlear خنزير غينيا- يتم إدراج مسرى مع جهات اثنين عن 4 مم. قطر مسرى هو مدبب من 0.3 مم في التلميح إلى 0.5 مم. تدل الخطوط 0.5 ملم. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig2large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig3.jpg"> الشكل 3 : خنزير غينيا حوالي أسبوعين بعد زرع cochlear. مسرى CI في عين المكان والاتصالات للقياسات الكهربية بسهولة في ذروة الحيوان. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig4.jpg"> الشكل 4 : الممثل كاب عتبات (A) انقر فوق قبل الجراحة كاب عتبة حيوان الممثل. (ب) بوستوبيراتيفي فوق عتبة الباب للحيوان نفسه، نستعرض تحولاً عتبة 16 ديسيبل. تشير الخطوط إلى 10 dB. (ج) ما قبل وبعد العملية الجراحية الخاصة بالتردد كاب العتبات. بينما الترددات المنخفضة بدون تغيير تقريبا، ويمكن ملاحظة تحول عتبة dB 25-30 في نطاق الترددات من 8 إلى 32 كيلو هرتز. <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig4large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56829/56829fig5.jpg"> الشكل 5 : الآثار المحلية المحتملة للإدراج القطب CI. (أ) صورة مجهرية لدورة القاعدية من القوقعة خنزير غينيا مع CI قطب كهربائي في الموقع (#) وإلا رد فعل جسم غريب الحد الأدنى. وأجرى التحليل النسيجي تستخدم طحن وتلميع تقنية بعد تضمينها الراتنج وتلطيخ Giemsa. 15 سكليبر 100 ميكرومتر (ب) صورة مجهرية للقناة tympanic العليا القاعدية بدوره من القوقعة مع استجابة الأنسجة مرئية ترك قناة بعد إزالة القطب CI (#). سكليبر 100 ميكرومتر (ج) دورة القاعدية أقل من القوقعة مع كسر دوامة العظمى الصفيحة (سهم غامق) واستجابة النسيج المجاور: (ط) فقدان خلايا العقدة دوامة (سهم) في قناة (ثانيا) التليف روزنتال وأوستيونيوجينيسيس في القناة الدهليزية (●)، و ( ثالثا) فقدان كورتي من الجهاز (*). حفر حفرة للإدراج من CI (○) مع أوستيونيوجينيسيس المجاورة. سكليبر 500 ميكرومتر. الأرقام 5 باء وجيم 5 كانت ملطخة الهيماتوكسيلين (أزرق) وويوزين (أحمر). <a href="/files/ftp_upload/56829/56829fig5large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم-</a>

Watch this Scientific Journal Video about Cochlear Implantation in the Guinea Pig at JoVE.com

Cochlear Implantation in the Guinea Pig

والهدف من هذا البروتوكول هو تقديم نموذج حيوان لزرع cochlear، التي يمكن أن تستخدم لمعالجة العديد من الأسئلة البحثية. وتشمل التطبيقات المحتملة تقييم التدخلات الدوائية أو التحفيز الكهربائي لآثار مفيدة على عتبات السمع أو ممانعات القطب.

زرع cochlear في خنزير غينيا

Cochlear implants are highly efficient devices that can restore hearing in subjects with profound hearing loss. Due to improved speech perception ...

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

11.1K Views.  Medical University of Vienna. والهدف من هذا البروتوكول هو تقديم نموذج حيوان لزرع cochlear، التي يمكن أن تستخدم لمعالجة العديد من الأسئلة البحثية. وتشمل التطبيقات المحتملة تقييم التدخلات الدوائية أو التحفيز الكهربائي لآثار مفيدة على عتبات السمع أو ممانعات القطب.

Video: Cochlear Implantation in the Guinea Pig

Surgical Induction of Endolymphatic Hydrops by Obliteration of the Endolymphatic Duct

Surgical induction of endolymphatic hydrops (ELH) in the guinea pig by obliteration and obstruction of the endolymphatic duct is a well-accepted animal model of the condition and an important correlate for human Meniere's disease. In 1965, Robert Kimura and Harold Schuknecht first described an intradural approach for obstruction of the endolymphatic duct (Kimura 1965). Although effective, this technique, which requires penetration of the brain's protective covering, incurred an undesirable level of morbidity and mortality in the animal subjects. Consequently, Andrews and Bohmer developed an extradural approach, which predictably produces fewer of the complications associated with central nervous system (CNS) penetration.(Andrews and Bohmer 1989) 
The extradural approach described here first requires a midline incision in the region of the occiput to expose the underlying muscular layer. We operate only on the right side. After appropriate retraction of the overlying tissue, a horizontal incision is made into the musculature of the right occiput to expose the right temporo-occipital suture line. The bone immediately inferio-lateral the suture line (Fig 1) is then drilled with an otologic drill until the sigmoid sinus becomes visible. Medial retraction of the sigmoid sinus reveals the operculum of the endolymphatic duct, which houses the endolymphatic sac. Drilling medial to the operculum into the area of the endolymphatic sac reveals the endolymphatic duct, which is then packed with bone wax to produce obstruction and ultimately ELH. 
In the following weeks, the animal will demonstrate the progressive, fluctuating hearing loss and histologic evidence of ELH.

This video shows how to surgically obstruct the guinea pig's endolymphatic duct to produce endolymphatic hydrops.

الجراحية تحريض موه اللمف الباطن عن طريق محو القناة اللمف الباطن

Surgical induction of endolymphatic hydrops (ELH) in the guinea pig by obliteration and obstruction of the endolymphatic duct is a well-accepted animal ...

Biology

Cochlear Implant Surgery and Electrically-evoked Auditory Brainstem Response Recordings in C57BL/6 Mice

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of hearing. Improvement of the implant technology is needed if CI users are to perceive music and perform in more natural environments, such as hearing out a voice with competing talkers, reflections, and other sounds. Such improvement requires experimental animals to better understand the mechanisms of electric stimulation in the cochlea and its responses in the whole auditory system. The mouse is an increasingly attractive model due to the many genetic models available. However, the limited use of this species as a CI model is mainly due to the difficulty of implanting small electrode arrays. More details about the surgical procedure are therefore of great interest to expand the use of mice in CI research.
In this report, we describe in detail the protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in the C57BL/6 mouse strain. We demonstrate the functional efficacy of this procedure with electrically-evoked auditory brainstem response (eABR) and show examples of facial nerve stimulation. Finally, we also discuss the importance of including a deafening procedure when using a normally hearing animal. This mouse model provides a powerful opportunity to study genetic and neurobiological mechanisms that would be of relevance for CI users.

Animal models of cochlear implants can advance knowledge of the technological bases of treating permanent sensorineural hearing loss with electrical stimulation. This study presents a surgical protocol for acute deafening and cochlear implantation of an electrode array in mice as well as the functional assessment with auditory brainstem response.

جراحة زرع cochlear وتسجيلات استجابة جذع الدماغ السمعية أثارت كهربائياً في الفئران C57BL/6

Cochlear implants (CIs) are neuroprosthetic devices that can provide a sense of hearing to deaf people. However, a CI cannot restore all aspects of ...

Neuroscience

Subdural Soft Electrocorticography (ECoG) Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Neurological impairments and diseases can be diagnosed or treated using electrocorticography (ECoG) arrays. In drug-resistant epilepsy, these help delineate the epileptic region to resect. In long-term applications such as brain-computer interfaces, these epicortical electrodes are used to record the movement intention of the brain, to control the robotic limbs of paralyzed patients. However, current stiff electrode grids do not answer the need for high-resolution brain recordings and long-term biointegration. Recently, conformable electrode arrays have been proposed to achieve long-term implant stability with high performance. However, preclinical studies for these new implant technologies are needed to validate their long-term functionality and safety profile for their translation to human patients. In this context, porcine models are routinely employed in developing medical devices due to their large organ sizes and easy animal handling. However, only a few brain applications are described in the literature, mostly due to surgery limitations and integration of the implant system on a living animal.
Here, we report the method for long-term implantation (6 months) and evaluation of soft ECoG arrays in the minipig model. The study first presents the implant system, consisting of a soft microfabricated electrode array integrated with a magnetic resonance imaging (MRI)-compatible polymeric transdermal port that houses instrumentation connectors for electrophysiology recordings. Then, the study describes the surgical procedure, from subdural implantation to animal recovery. We focus on the auditory cortex as an example target area where evoked potentials are induced by acoustic stimulation. We finally describe a data acquisition sequence that includes MRI of the whole brain, implant electrochemical characterization, intraoperative and freely moving electrophysiology, and immunohistochemistry staining of the extracted brains.
This model can be used to investigate the safety and function of novel design of cortical prostheses; mandatory preclinical study to envision translation to human patients.

Subdural Soft Electrocorticography ECoG Array Implantation and Long-Term Cortical Recording in Minipigs

Here, we present a method for the long-term performance and safety assessment of soft subdural electrode arrays in a minipig model, describing surgical method and tools, postoperative magnetic resonance imaging, electrophysiology of the auditory cortex, electrochemical properties of the implant, and postmortem immunochemistry.

زرع مصفوفة تخطيط كهربية القشرية الرخوة تحت الجافية (ECoG) والتسجيل القشري طويل الأمد في الخنازير الصغيرة

Neurological impairments and diseases can be diagnosed or treated using electrocorticography (ECoG) arrays. In drug-resistant epilepsy, these help ...

Bioengineering

A Revised Surgical Approach to Induce Endolymphatic Hydrops in the Guinea Pig

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) remain unclear. In order to adequately study the attributes of endolymphatic hydrops, such as the origins of low-frequency hearing loss, a reliable model is needed. The guinea pig is a&#160;good model because it hears in the low-frequency regions that are putatively affected by endolymphatic hydrops. Previous research has demonstrated that endolymphatic hydrops can be induced surgically via intradural or extradural approaches that involve drilling on the endolymphatic duct and sac. However, whether it was possible to create an endolymphatic hydrops model using an extradural approach that avoided dangerous drilling on the endolymphatic duct and sac was unknown. The objective of this study was to demonstrate a revised extradural approach to induce experimental endolymphatic hydrops at 30 days post-operatively by obliterating the endolymphatic sac and injuring the endolymphatic duct with a fine pick. The sample size consisted of seven guinea pigs. Functional measurements of hearing were made and temporal bones were subsequently harvested for histologic analysis. The approach had a success rate of 86% in achieving endolymphatic hydrops. The risk of cerebrospinal fluid leak was minimal. No perioperative deaths or injuries to the posterior semicircular canal occurred in the sample. The presented method demonstrates a safe and reliable way to induce endolymphatic hydrops at a relatively quick time point of 30 days. The clinical implications are that the presented method provides a reliable model to further explore the origins of low-frequency hearing loss that can be associated endolymphatic hydrops.

This article demonstrates an extradural approach to obliterate the guinea pig endolymphatic sac and injure the endolymphatic duct with a fine pick in order to induce experimental endolymphatic hydrops.

نهج جراحي منقح للحث على هيدروكال الدم الانففاوتيك في خنزير غينيا

Endolymphatic hydrops is an enlargement of scala media that is most often associated with Meniere&#39;s disease, though the pathophysiologic mechanism(s) ...

Implantation of hiPSC-derived Cardiac-muscle Patches after Myocardial Injury in a Guinea Pig Model

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss of relevant amounts of heart muscle mass can lead to the heart failure. Besides heart transplantation, there is no curative treatment option for the end-stage heart failure. In times of organ donor shortage, organ independent treatment modalities are needed. Left-ventricular assist devices are a promising therapy option, however, especially as destination therapy, limited by its side-effects like stroke, infections and bleedings. In recent years, several cardiac repair strategies including stem cell injection, cardiac progenitors or myocardial tissue engineering have been investigated. Recent improvements in cell biology allow for the differentiation of large amounts of cardiomyocytes derived from human induced pluripotent stem cells (iPSC). One of the cardiac repair strategies currently under evaluation is to transplant artificial heart tissue. Engineered heart tissue (EHT) is a three-dimensional in vitro created cardiomyocyte network, with functional properties of native heart tissue. We have created EHT-patches from hiPSC derived cardiomyocytes. Here we present a protocol for the induction of left ventricular myocardial cryoinjury in a guinea pig, followed by implantation of hiPSC derived EHT on the left ventricular wall.

Here we present a protocol for the induction of left ventricular cryoinjury followed by the implantation of a cardiac muscle patch, derived from human iPS-cell cardiomyocytes in a guinea pig model.

غرس المستمدة من هيبسك بقع عضلة القلب بعد "إصابة احتشاء عضلة القلب" في "نموذج خنزير غينيا"

Due to the limited regeneration capacity of the heart in adult mammals, myocardial infarction results in an irreversible loss of cardiomyocytes. This loss ...

Pupillometry to Assess Auditory Sensation in Guinea Pigs

Noise exposure is a leading cause of sensorineural hearing loss. Animal models of noise-induced hearing loss have generated mechanistic insight into the underlying anatomical and physiological pathologies of hearing loss. However, relating behavioral deficits observed in humans with hearing loss to behavioral deficits in animal models remains challenging. Here, pupillometry is proposed as a method that will enable the direct comparison of animal and human behavioral data. The method is based on a modified oddball paradigm - habituating the subject to the repeated presentation of a stimulus and intermittently presenting a deviant stimulus that varies in some parametric fashion from the repeated stimulus. The fundamental premise is that if the change between the repeated and deviant stimulus is detected by the subject, it will trigger a pupil dilation response that is larger than that elicited by the repeated stimulus. This approach is demonstrated using a vocalization categorization task in guinea pigs, an animal model widely used in auditory research, including in hearing loss studies. By presenting vocalizations from one vocalization category as standard stimuli and a second category as oddball stimuli embedded in noise at various signal-to-noise ratios, it is demonstrated that the magnitude of pupil dilation in response to the oddball category varies monotonically with the signal-to-noise ratio. Growth curve analyses can then be used to characterize the time course and statistical significance of these pupil dilation responses. In this protocol, detailed procedures for acclimating guinea pigs to the setup, conducting pupillometry, and evaluating/analyzing data are described. Although this technique is demonstrated in normal-hearing guinea pigs in this protocol, the method may be used to assess the sensory effects of various forms of hearing loss within each subject. These effects may then be correlated with concurrent electrophysiological measures and post-hoc anatomical observations.

Pupillometry, a simple and non-invasive technique, is proposed as a method to determine hearing-in-noise thresholds in normal hearing animals and animal models of various auditory pathologies.

قياس الحدقة لتقييم الإحساس السمعي في خنازير غينيا

Noise exposure is a leading cause of sensorineural hearing loss. Animal models of noise-induced hearing loss have generated mechanistic insight into the ...

The Miniature Pig: A Large Animal Model for Cochlear Implant Research

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, no standard model exists for investigating the electrophysiology and histopathology in patients or animal models with a CI or for evaluating new models of electrode arrays. A large animal model with cochlea characteristics similar to those of humans may provide a research and evaluation platform for advanced and modified arrays before their use in humans. 
To this end, we established standard CI methods with Bama mini-pigs, whose inner ear anatomy is highly similar to that of humans. Arrays designed for human use were implanted into the mini pig cochlea through a round window membrane, and a surgical approach followed that was similar to that used for human CI recipients. Array insertion was followed by evoked compound action potential (ECAP) measurements to evaluate the function of the auditory nerve. This study describes the preparation of the animal, surgical steps, array insertion, and intraoperative electrophysiological measurements. 
The results indicated that the same CI used for humans could be easily implanted in mini-pigs via a standardized surgical approach and yielded similar electrophysiological outcomes as measured in human CI recipients. Mini-pigs could be a valuable animal model to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches before applying them to human beings.

Miniature pigs (mini-pigs) are an ideal large animal model for research into cochlear implants. Cochlear implantation surgery in mini-pigs can be utilized to provide initial evidence of the safety and potential performance of novel electrode arrays and surgical approaches in a living system similar to human beings.

الخنزير المصغر: نموذج حيواني كبير لأبحاث زراعة قوقعة الأذن

Cochlear implants (CI) are the most effective method to treat people with severe-to-profound sensorineural hearing loss. Although CIs are used worldwide, ...

Endoscopic Balloon Dilatation of the Eustachian Tube via the Soft Palate Approach in Miniature Pigs

The eustachian tube (ET) is one of the most complex organs in the human body, and its dysfunction may lead to a variety of diseases. In recent years, an increasing number of scholars have opted to conduct ET-related studies using large experimental animals such as miniature pigs or sheep, yielding promising results. Typically, conventional endoscopic procedures are performed through the nasal approach for large experimental animals. However, due to the elongated and narrow nasal cavity in these animals, transnasal surgeries are challenging. 
To address this issue, we explored an ET surgery approach via the soft palate. The animal was placed in a supine position. After endotracheal intubation under general anesthesia, a mouth opener was used to fully expose the upper palate. Local infiltration with diluted adrenal fluid was performed for anesthesia of the area. A sickle knife was then used to make a longitudinal soft palate incision at the junction of the soft and hard palates. After hemostasis, an endoscope was inserted into the nasopharynx cavity, allowing the visualization of the pharyngeal opening of the ET on the posterior lateral wall of the nasal cavity. 
Subsequently, a specialized pusher was used to insert a balloon into ET. The balloon was inflated, maintained at 10 bar for 2 min, and then removed. The incision in the soft palate was then sutured to ensure proper alignment. The soft palate healed well after the operation. This surgical approach is suitable for ET-related procedures in large experimental animals (e.g., miniature pigs, sheep, and dogs). The surgical procedure is simple, with a short surgical time, and wound healing is rapid. Under endoscopy, the pharyngeal opening of the ET is visible, and it is thus a good choice for procedures such as balloon dilation of the ET.

<meta charset="utf8"></head><body>توسيع البالون بالمنظار لأنبوب استاكيوس عبر نهج الحنك الرخو في الخنازير المصغرة

In this study, we present a protocol to explore an eustachian tube surgery approach via the soft palate in miniature pigs. The surgical procedure is simple, with short surgical time, and wound healing is rapid; it is thus a good choice for procedures such as balloon dilation of the eustachian tube.

توسيع البالون بالمنظار لأنبوب استاكيوس عبر نهج الحنك الرخو في الخنازير المصغرة

The eustachian tube (ET) is one of the most complex organs in the human body, and its dysfunction may lead to a variety of diseases. In recent years, an ...

خنزير غينيا جولة نافذة غشاء الزرع

Guinea Pig Round Window Membrane Explantation for Ex Vivo Studies

Efficient and minimally invasive drug delivery to the inner ear is a significant challenge. The round window membrane (RWM), being one of the few entry points to the inner ear, has become a vital focus of investigation. However, due to the complexities of isolating the RWM, our understanding of its pharmacokinetics remains limited. The RWM comprises three distinct layers: the outer epithelium, the middle connective tissue layer, and the inner epithelial layer, each potentially possessing unique delivery properties.
Current models for investigating transport across the RWM utilize in vivo animal models or ex vivo RWM models which rely on cell cultures or membrane fragments. Guinea pigs serve as a validated preclinical model for the investigation of drug pharmacokinetics within the inner ear and are an important animal model for the translational development of delivery vehicles to the cochlea. In this study, we describe an approach for explantation of a guinea pig RWM with surrounding cochlear bone for benchtop drug delivery experiments. This method allows for preservation of native RWM architecture and may provide a more realistic representation of barriers to transport than current benchtop models.

تسليط الضوء على المؤلف: استخراج غشاء النافذة المستديرة لخنزير غينيا لتسهيل أبحاث توصيل الأدوية في الأذن الداخلية

This protocol outlines a method for the explantation of the round window membrane from guinea pig temporal bones, providing a valuable resource for ex vivo studies.

خنزير غينيا جولة نافذة غشاء الزرع للدراسات خارج الجسم الحي

Efficient and minimally invasive drug delivery to the inner ear is a significant challenge. The round window membrane (RWM), being one of the few entry ...

زرع cochlear في خنزير غينيا

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

الجراحية تحريض موه اللمف الباطن عن طريق محو القناة اللمف الباطن

جراحة زرع cochlear وتسجيلات استجابة جذع الدماغ السمعية أثارت كهربائياً في الفئران C57BL/6

زرع مصفوفة تخطيط كهربية القشرية الرخوة تحت الجافية (ECoG) والتسجيل القشري طويل الأمد في الخنازير الصغيرة

نهج جراحي منقح للحث على هيدروكال الدم الانففاوتيك في خنزير غينيا

غرس المستمدة من هيبسك بقع عضلة القلب بعد "إصابة احتشاء عضلة القلب" في "نموذج خنزير غينيا"

قياس الحدقة لتقييم الإحساس السمعي في خنازير غينيا

الخنزير المصغر: نموذج حيواني كبير لأبحاث زراعة قوقعة الأذن

توسيع البالون بالمنظار لأنبوب استاكيوس عبر نهج الحنك الرخو في الخنازير المصغرة

توسيع البالون بالمنظار لأنبوب استاكيوس عبر نهج الحنك الرخو في الخنازير المصغرة

خنزير غينيا جولة نافذة غشاء الزرع للدراسات خارج الجسم الحي