We would like to acknowledge the funding contributions of the Canadian Surgical Research Fund, the Edmonton Civic Employees Research Assistance Fund, and the Alberta IBD Consortium through a grant from Alberta Innovates.

وتمت الموافقة على البروتوكولات استخدام الحيوانات من قبل لجنة رعاية الحيوان واستخدام العلوم الصحية في جامعة ألبرتا. 1. إعداد الآلات، الحيوانات والإعداد المنطوق <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نقل الحيوانات إلى جديد، نظيف غائبة قفص من جميع المواد الغذائية الصلبة 24 ساعة قبل الإجراء. قد تكون لديهم حرية الوصول إلى المياه، والنظام الغذائي السائل ليب الإعلانية حتى وقت الإجراء. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الأوتوكلاف جميع الأدوات اللازمة لإجراء العملية. تنظيف سطح التشغيل ومخروط الأنف مخدر مع الايثانول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إعداد سطح التشغيل مع مجهر التشغيل، آلة التخدير واللوازم بطريقة غير مريحة للجراح التشغيل. وينبغي أن يسمح المرفقين الجراح للراحة مريح على طاولة العمليات، مع اليدين والذراعين دون عائق من قبل الأجهزة. يجب وضع الصكوك، والخيوط الجراحية، ومسحات القطن، وحقنة 10 مل في موقع يسمح بسهولة أثناء العملية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> نصبمصابيح الحرارة العلوية لتوفير الدفء سواء للحيوان أثناء الإجراء والضوء لسطح التشغيل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ملء أنبوب مخروطي 50 مل مع 0.9٪ محلول ملحي، وأنبوب 1.5 مل مع الفازلين ومكان بالقرب من سطح التشغيل. ملاحظة: تعقيم جميع الأدوات الجراحية. لأنه مقطوع الأمعاء، الإجراء في حد ذاته ليس العقيمة. يعتبر نظيفة الملوثة. اتخاذ التدابير اللازمة لتجنب إدخال مصادر خارجية للعدوى. </li></ol> 2. استئصال اللفائفي القولوني مع التحام <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحريض التخدير عن طريق إعطاء 4٪ الأيزوفلورين مع معدل تدفق الأوكسجين من 2 لتر / دقيقة عن طريق مخروط الأنف من المرذاذ الأيزوفلورين حتى يبطئ الحيوانات معدل التنفس إلى ما يقرب من 30-40 الأنفاس / دقيقة. ممارسة الضغط المعتدل في القدم الخلفية من الماوس لضمان عدم وجود استجابة الألم قبل البدء في الإجراء. عند هذه النقطة، رفض الأيزوفلورين إلى 2٪، وتدفق الأكسجين إلى 0.5 لتر / دقيقة. بشكل متقطعتحقق استجابة الألم أثناء العملية وضبط معدل تدفق الأيزوفلورين وفقا لذلك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تطبيق الفازلين على العينين لمنع جفاف أثناء الجراحة، ولشل حركة الماوس في موقف ضعيف مع أطرافه المضمون باستخدام الشريط الشفاف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تنظيف البطن بمحلول povodine / اليود، وتغيير في قفازات معقمة جديدة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل شق الجلد 1.5 سم في خط الوسط العلوي من البطن باستخدام مقص تشريح نقطة حادة لفضح اللفافة والغشاء البريتوني. فتح طبقة فافي / البريتوني بطريقة مماثلة خلال ألبا الخط لكشف محتويات البريتوني. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وعلى النقيض من البشر، وعادة ما وجد الأعور الماوس في الربع العلوي الأيسر من البطن. وبمجرد تحديدها، فهم بلطف الأعور مع ملقط وتسليمها من خلال شق. استخدام قطعة قطن مبللة لمروحة من حوالي 3 سم من محطة الدقاق تمتد من الأعور على شاش معقم رايات على السطح البطني (الشكل 1A).ضمان أن يظل الأمعاء تتعرض رطبة مع 0.9٪ المالحة خلال مجمل العملية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تحديد الشريان اللفائفية المتفرعة من الشريان المساريقي العلوي على طول القولون (الشكل 1A) باستخدام مجهر التشغيل. تشريح الأنسجة من اوعائي المجاورة للشريان اللفائفية، وتطويق الشريان ligate بالتعادل 5-0 الحرير. المقبل، وتحديد وصول الدم الإقليمي لمحطة الدقاق واختيار نقطة transection 1.5-2 سم الأقرب إلى تقاطع اللفائفية. Ligate فروع هذا القسم من الدقاق على النحو الوارد أعلاه. تقسم الشرايين الصغيرة مع مقص تشريح. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تقسيم الأجزاء الدماغية من اللفائفي والقولون ضمان عدم وصول الدم الكافي للانتهاء مقطوع (الشكل 1B). غالبا ما يكون من المفيد أن يستلوق؛ يمزج بالملوق الدقاق بتقسيمه بزاوية 30 درجة لزيادة قطر التجويف بحيث يتوافق بشكل وثيق القولون. مرة واحدة تمت إزالة جزء من الأمعاء اللفائفية، محاذاةيتم محاذاة نهايات مقطوع من اللفائفي والقولون على الشاش، وضمان حدود كل المساريقي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بناء مفاغرة عن طريق تقريب نهاية مقطوع من الدقاق إلى نهاية مقطوع من القولون باستخدام توقف 8-0 خيوط البولي بروبلين (الشكل 1C). يتم وضع غرزة الأول على الحدود المساريقي، مع الغرز اللاحقة وضعت كل 0.5 مم حتى مفاغرة اللفائفي القولوني هو ماء. عند تمرير إبرة خياطة من خلال الدقاق والقولون، تأكد من أن قطع الحافة لا تدحرجت، ولدغ إبرة هم 0.5 ملم من قطع حواف الأمعاء. وهناك مفاغرة نموذجية يتطلب 14 إلى 16 الغرز توقف. اختبار سلامة والمباح من مفاغرة عند الانتهاء من قبل المتداول الداني إلى القاصي مسحة القطن على الدقاق لإجبار محتويات من خلال مفاغرة. يجب أن محتويات الأمعاء الصغيرة تمر بحرية في القولون دون تسرب توصيلي. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف الأمعاء يتعرض مع 3-4 مل من المياه المالحة 0.9٪ من حقنة 10 ملليغسل البراز من سطح الأمعاء، وتقديم الأمعاء مرة أخرى في التجويف البريتوني. باستخدام 2 مل من 0.9٪ المالحة مسح التجويف البريتوني، ومن ثم استنزاف هذا السائل من خلال تطبيق ضغط لطيف على جدار البطن أفقيا. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إغلاق شق مع 3-0 خياطة الحرير التوالي، ووقف تدفق الأيزوفلورين. إدارة 0.1 ملغ / كغ من الأفيون طويل المفعول -buprenorphine- تحت الجلد للسيطرة على الألم بعد العمليات الجراحية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الحيوانات تحت مصباح الحرارة حتى أنهم المحمول ثم نقلها إلى قفص تحسنت باستمرار. </li></ol> العناية والمراقبة 3. مرحلة ما بعد المنطوق <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الحيوانات في قفص تحسنت باستمرار بحثا عن علامات الضيق للفترة المتبقية من اليوم. نقل الحيوانات إلى مرفق رعاية الحيوان في قفص معقم جديد مع الوصول إلى النظام الغذائي السائل وعفوي المياه. ويمكن إيواء الحيوانات في مجموعات من 3-4. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء فحص على الحيوانات بعد العملية في صباح اليوم التالي،ضمان لا تظهر حيوانات في محنة. تغذية حمية سائلة الوحيد. إذا كانت تبدو غير مريحة (أي الموقف منحنية أو الحد الأدنى من النشاط) إدارة جرعة إضافية من البوبرينورفين تحت الجلد. اطمئنان على الحيوانات مرة أخرى في فترة ما بعد الظهر في يوم 1 بعد العمليات الجراحية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في صباح يوم 2 بعد العملية يجب أن تظهر الحيوانات تعافى تماما. الأدلة على استهلاك الأغذية وstooling دلائل إيجابية على الانتعاش. الآن، واستئناف اتباع نظام غذائي طعام صلبة للحيوانات. ملاحظة: تشمل علامات الضائقة الموقف منحنية، قلة النظافة، والحد الأدنى من النشاط. إذا علامات الضائقة بارزة يجب أن يتم التخلص من الحيوانات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الموت ببطء الحيوانات عن طريق إحداث التخدير العميق مع 4٪ الأيزوفلورين بمعدل تدفق O 2 من 2 لتر / دقيقة حتى الحيوانات لا تستجيب لضغط القدم. أداء خلع عنق الرحم، ومراعاة لعلامات euthanization السليم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المبادئ التوجيهية تختلف، لذلك الرجوع إلى توصيات المؤسسات بشأن مؤشراتلوالأساليب المناسبة لeuthanization في الفئران. </li></ol>

<ol>
	<li>Hallet, J., Zih, F. S., Lemke, M., Milot, L., Smith, A. J., Wong, C. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Neo-adjuvant+chemoradiotherapy+and+multivisceral+resection+to+optimize+R0+resection+of+locally+recurrent+adherent+colon+cancer.">Neo-adjuvant chemoradiotherapy and multivisceral resection to optimize R0 resection of locally recurrent adherent colon cancer.</a> European Journal of Surgical Oncology. 40 (6), (2014).</li><li>Rutgeerts, P., Geboes, K., Vantrappen, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Natural+history+of+recurrent+Crohn&#39;s+disease+at+the+ileocolonic+anastomosis+after+curative+surgery.">Natural history of recurrent Crohn&#39;s disease at the ileocolonic anastomosis after curative surgery.</a> Gut. 25 (6), 665-672 (1984).</li><li>Davis, D., Rivadeneira, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Complications+of+colorectal+anastomoses:+leaks,+strictures,+and+bleeding.">Complications of colorectal anastomoses: leaks, strictures, and bleeding.</a> The Surgical clinics of North America. 93 (1), 61-87 (2013).</li><li>Helmrath, M. A., VanderKolk, W. E., Can, G., Erwin, C. R., Warner, B. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intestinal+adaptation+following+massive+small+bowel+resection+in+the+mouse.">Intestinal adaptation following massive small bowel resection in the mouse.</a> Journal of the American College of Surgeons. 183 (5), 441-449 (1996).</li><li>Dekaney, C. M., Fong, J. J., Rigby, R. J., Lund, P. K., Henning, S. J., Helmrath, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Expansion+of+intestinal+stem+cells+associated+with+long-term+adaptation+following+ileocecal+resection+in+mice.+American+journal+of+physiology.">Expansion of intestinal stem cells associated with long-term adaptation following ileocecal resection in mice. American journal of physiology.</a> Gastrointestinal and liver physiology. 293 (5), (2007).</li><li>Speck, K. E., De Cruz, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Inflammation+enhances+resection-induced+intestinal+adaptive+growth+in+IL-10+null+mice.">Inflammation enhances resection-induced intestinal adaptive growth in IL-10 null mice.</a> The Journal of surgical research. 168 (1), 62-69 (2011).</li><li>Rigby, R. J., Hunt, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+animal+model+of+postsurgical+bowel+inflammation+and+fibrosis:+the+effect+of+commensal+microflora.">A new animal model of postsurgical bowel inflammation and fibrosis: the effect of commensal microflora.</a> Gut. 58 (8), 1104-1112 (2009).</li><li>Kostic, A. D., Xavier, R. J., Gevers, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Microbiome+in+Inflammatory+Bowel+Disease:+Current+Status+and+the+Future+Ahead.">The Microbiome in Inflammatory Bowel Disease: Current Status and the Future Ahead.</a> Gastroenterology. , 1-11 (2014).</li><li>Gevers, D., Kugathasan, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Treatment-Naive+Microbiome+in+New-Onset+Crohn&#39;s+Disease.">The Treatment-Naive Microbiome in New-Onset Crohn&#39;s Disease.</a> Cell host &amp; microbe. 15 (3), 382-392 (2014).</li><li>Ahmed, T., Rieder, F., Fiocchi, C., Achkar, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pathogenesis+of+postoperative+recurrence+in+Crohn&#39;s+disease.">Pathogenesis of postoperative recurrence in Crohn&#39;s disease.</a> Gut. 60 (4), 553-562 (2011).</li><li>Borowiec, A., Sydora, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Small+bowel+fibrosis+and+systemic+inflammatory+response+after+ileocolonic+anastomosis+in+IL-10+null+mice.">Small bowel fibrosis and systemic inflammatory response after ileocolonic anastomosis in IL-10 null mice.</a> Journal of Surgical Research. 178 (1), 147-154 (2012).</li><li>Devine, A. A., Gonzalez, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Impact of Ileocecal Resection and Concomitant Antibiotics on the Microbiome of the Murine Jejunum and Colon. 8 (8), (2013).</li><li>Bij, G. J., Oosterling, S. J., Beelen, R. H. J., Meijer, S., Coffey, J. C., van Egmond, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+perioperative+period+is+an+underutilized+window+of+therapeutic+opportunity+in+patients+with+colorectal+cancer.">The perioperative period is an underutilized window of therapeutic opportunity in patients with colorectal cancer.</a> Annals of surgery. 249 (5), (2009).</li><li>Scott, A. D., Uff, C., Phillips, R. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Suppression+of+macrophage+function+by+suture+materials+and+anastomotic+recurrence+of+Crohn&#39;s+disease.">Suppression of macrophage function by suture materials and anastomotic recurrence of Crohn&#39;s disease.</a> The British journal of surgery. 80 (3), (1993).</li><li>Kiernan, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intestinal+anastomosis+in+the+rat+facilitated+by+a+rapidly+digested+internal+splint+and+indigestible+but+absorbable+sutures.">Intestinal anastomosis in the rat facilitated by a rapidly digested internal splint and indigestible but absorbable sutures.</a> Journal of Surgical Research. 45, 427-431 (1988).</li><li>Andersen, T. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Action+of+matrix+metalloproteinases+at+restricted+sites+in+colon+anastomosis+repair:+an+immunohistochemical+and+biochemical+study.">Action of matrix metalloproteinases at restricted sites in colon anastomosis repair: an immunohistochemical and biochemical study.</a> Surgery. 140 (1), 72-82 (2006).</li><li>Thompson, S. K., Chang, E. Y., Jobe, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+review:+Healing+in+gastrointestinal+anastomoses,+Part+I.">Clinical review: Healing in gastrointestinal anastomoses, Part I.</a> Microsurgery. 26 (3), 131-136 (2006).</li></ol>

The authors have nothing to disclose

وICR الفئران هو نموذج القوية التي يمكن أن تستخدم لدراسة آثار عملية جراحية في أمراض الأمعاء. توضح هذه المقالة طريقة لأداء مجلس النواب في الفئران مع نسبة نجاح 95٪ وأي مشاكل مع فشل النمو كما يتجلى في أوزان ثابتة تصل إلى 28 يوما بعد العملية. وتشمل أهم التحديات لنجاح ICR تجنب العوائق الأمعاء في مفاغرة والتسريبات المفاغرة. وتهدف العناصر الفنية لعملية جراحية لمنع انسداد في تعظيم قطر التجويف في مفاغرة. استلواق؛ مزج بالملوق من الدقاق عند نقطة transection يزيد من قطر التجويف بقسمة الأمعاء بزاوية 30 درجة كما هو مبين في الشكل 1A. عندما أخذ لدغات من الأنسجة المعوية مع إبرة خياطة، فمن الضروري أن انبسط حواف الأمعاء وتمرير الإبرة حوالي 0.5 ملم من قطع الحافة. مفرط لدغات كبيرة من الأنسجة وتضييق التجويف. خيار AVOID تضييق اللمعية عند بناء مفاغرة هو لتوظيف استخدام دعامة قابلة للهضم كما وصفها كيرنان وآخرون 15. وتشمل الجوانب غير الفنية لتجنب عرقلة تختار خياطة صغيرة بما فيه الكفاية 4 وتجنب محتويات اللمعية ضخمة عن طريق تغذية الحيوانات على حمية سائلة يوم واحد قبل الجراحة و2 أيام بعد الجراحة. السبب الثاني الأكثر شيوعا للوفيات بعد العملية هو تسرب توصيلي. تجنب هذا التعقيد يتطلب الالتزام الصارم بمبادئ مفاغرة الأمعاء. وكونها أول إمدادات الدم الكافية. بعد الاوعية الدموية التي تمد الدم إلى المنطقة من الأمعاء التي تم مقطوعة و ligated، الأمعاء يجب أن يتم فحص بصريا قبل transection. وهذا الجزء من نقص تروية الأمعاء تظهر داكن. هذا ينبغي إزالتها تماما وترك حواف صحية. من المهم أن تصور كمية صغيرة من النزف من قطع الحواف من الأمعاء المتبقية. وأنس ضيق المياهtomosis هو أيضا ضروري لتجنب تسرب محتويات اللمعية مما يؤدي إلى التسمم. ويتحقق هذا عن طريق تجنب فجوات كبيرة بين الخيوط الجراحية، والتأكد من أن جميع طبقات الأمعاء مدرجة في غرزة (الشكل 3). وتضاءلت قوة الجرح كثيرا في اليومين الأولى بعد العملية، وبالتالي الغرز وضعها بشكل صحيح ضرورية لتوفير قوة 16،17. وهناك شرك محتمل هو قصد فقط بما في ذلك الغشاء المخاطي كما الغشاء المخاطي يمكن تجعد من تجويف القولون مقطوع. هذا يمكن تجنبها من خلال وضع تصور لخفض حافة المصلية والحد من الغشاء المخاطي هابط مرة أخرى في التجويف مع ملقط بلطف. وينبغي النظر في الضوابط الجراحية صورية في التصميم التجريبي من الدراسات باستخدام نموذج ICR للسيطرة على الآثار المحتملة للالتباس الإجهاد الجراحي، والتلاعب في الأمعاء، و / أو فقدان صمام اللفائفية. اختيار الإجراء خدعة سيعتمد على السؤال الأساسي الذي يطرح فيالدراسة. على سبيل المثال، إذا كان هدف البحث هو تقييم استجابة المضيف بعد خسارته صمام اللفائفية، فإنه سيكون من الحكمة أن تشمل مجموعة الجراحة الزائفة التي يتم إجراء مفاغرة معوية مع ترك صمام اللفائفية في المكان. وعادة ما يتم ذلك عن طريق transecting الأمعاء الدقيقة دون استئصال ثم يؤدون ومفاغرة الأمعاء الصغيرة في نفس منوال مفاغرة اللفائفية القولونية 7،11. هذا من شأنه أن تسمح للمحققين التعليق تحديدا على آثار فقدان الصمام اللفائفي الأعوري عن طريق التحكم عن آثار مفاغرة الأمعاء. بدلا من ذلك، إذا كان الهدف هو فقط لدراسة الآثار المترتبة على استئصال الأمعاء ومفاغرة دون التعليق تحديدا على فقدان صمام اللفائفية، ثم جراحة صورية يجب أن تتضمن البطن، وينبغي أن يعامل الأمعاء كما أنه سيكون لمجلس النواب، ولكن من دون transection ومفاغرة. وهذا من شأنه السيطرة على الإجهاد الجراحي والتلاعب في الأمعاء. التقنيات الموضحة فيبروتوكول أعلاه يمكن أن تتكيف بسهولة لأداء إجراءات صورية. يصف هذا البروتوكول لاستئصال اللفائفي القولوني، الذي يزيل 1.5-2 سم من محطة الدقاق ومجمل الأعور، ويحاكي عن كثب عملية تنفيذ كثير من الأحيان في المرضى الذين يعانون من مرض كرون اللفائفي القولوني. وقد استخدمت إجراءات مشابهة في IL-10 - نموذج التهاب القولون وبعد ذلك وضعت الفئران التهاب عفوية وتليف في الأمعاء الدقيقة مماثلة لتكرار مرض كرون 7،11 - /. قد يتم تطبيق مبادئ هذا الإجراء أيضا إلى نماذج أخرى من المرض. عن طريق إزالة 50٪ من الأمعاء الدقيقة مع مفاغرة اللفائفية القولونية، وقد استخدمت نماذج الماوس للتحقيق في استجابة نمو الأمعاء التكيف في متلازمة الأمعاء القصيرة 4-6. في المستقبل قد تصبح أيضا نموذجا مفيدا لدراسة الآثار النظامية والمحلية الجراحة في سرطان القولون والمستقيم.

Ileocolic resection (ICR) is a common procedure performed in both emergent and elective situations for a variety of illnesses. Crohn&#8217;s disease and colon cancers are the two most common indications for ICR. In both illnesses, recurrence in the bowel at the site of surgery represents a major clinical problem. Local recurrence rates for colon cancer remain an issue even with the most aggressive resections1. Following ICR in Crohn&#8217;s disease, the disease most frequently (in up to 80%) recurs in the neo-terminal ileum at 1 year after surgery2. Given the impact of these two illnesses and their recurrence after surgery, it is important to understand local intestinal factors after ICR, which may have intrinsic influences on the natural history of these diseases. Further, it is also important to consider anastomotic healing after ICR. In the early post-operative period, anastomotic leaks can have devastating consequences for patients resulting in repeat surgeries, stoma creations, significant morbidity, and even mortality3. Despite the importance of this topic, our current understanding of anastomotic healing remains in its infancy as a subject of research. Animal models of ICR, in particular mice, are an excellent platform for studying the intestinal and anastomotic healing following surgery.
A mouse model of ICR was initially developed by Helmrath et al. to be used as a model of short gut syndrome4. The authors experimented with various diet regiments and suture sizes to optimize animal survival following ICR. They concluded that feeding with liquid diet in the perioperative period and using 9-0 monofilament sutures resulted in an optimal post-operative survival of 88%. Since this initial publication, ICR in mice removing 50% of the small bowel has been used in several studies to explore the dynamics of massive small bowel resection and the adaptive growth response in attempt to develop new therapies for short gut syndrome5,6.
The first application of the ICR mouse model to Crohn&#8217;s disease used the IL-10-/- mouse model, which spontaneously develops colitis7. The authors found that after ICR these animals developed inflammation in the neo-terminal ileum similar to that seen in post-operative Crohn&#8217;s disease patients, and that this inflammation was dependent on the presence of bacteria7. More recently, this model was used to explore bacterial changes induced by ICR. In Crohn&#8217;s disease there is an associated dysbiosis with relative decreases in bacteria known to have anti-inflammatory properties and increases in invasive species of bacteria8,9. The association holds true in cases of post-operative recurrence10. Two studies sought to identify microbial changes resulting from ICR. The first used IL-10 null mice, and performed denaturing gel electrophoresis to compare bacterial similarity between the small bowel and colon after ICR11. This study demonstrated that bacterial populations became similar in the small intestine and colon following ICR. A subsequent study used wild type mice and 16s pyrosequencing for phylogenetic classification of bacterial species post-operatively. This study demonstrated a marked shift in bacterial species resulting from surgery alone with Clostridium species becoming dominant as well as an increase in &#978;-proteobacteria. The results also confirmed the findings of the previous study with similar populations found in the small bowel and colon after ICR12. 
ICR is a common procedure for patients with colon cancer involving the cecum and ascending colon, and it is becoming increasingly recognized that the host-response to surgery likely contributes to both local and distant tumor recurrence13. Despite this observation, models of ICR have not been utilized for the study of colorectal cancer and post-operative recurrence. Understanding both the systemic and local immunologic changes resulting from ICR will be important in investigating future therapies. Potential pathways involved in cancer recurrence post ICR include up regulation of growth factors, which may rescue cells from apoptosis and stimulate proliferation, mechanical tumor disruption with cell shedding, and loss of immune surveillance through post-operative immunosuppression13,14. 
Mouse models of ICR have the potential to be a powerful tool for the investigation of short bowel syndrome, Crohn&#8217;s disease, and colon cancer. They may also provide lessons on how to prevent early post-operative anastomotic complications by further defining the cellular and biochemical pathways involved in healing the newly constructed anastomosis. A major barrier in utilizing the murine ICR model is the technical difficulty. The intestinal anastomosis requires the use of 8-0 or 9-0 suture, an operating microscope, and training in microsurgical techniques. The goal of this article is to provide clear instructions on how to perform ICR in mice with the goal of utilizing this procedure in models of disease.

<table><tbody><tr><td>LD101 liquid rodent diet</td><td>testdiet.com</td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.9% NaCl</td><td>Baxter</td><td>FKE1324</td><td>Injection quality saline</td></tr><tr><td>Operating Microscope</td><td>Ziess</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane Anesthetic Vaporizer</td><td>Harvard Apparatus</td><td>34-0483</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbott&amp;nbsp;</td><td>05260-05</td><td></td></tr><tr><td>Glass plate</td><td></td><td></td><td>For operating surface</td></tr><tr><td>Cotton swabs</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Micro Castroviejo Needle holder, curved</td><td>World Precision Instruments</td><td>503377</td><td></td></tr><tr><td>Castroviejo straight scissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>555530S</td><td></td></tr><tr><td>Dissecting Scissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>15922</td><td></td></tr><tr><td>Dressing Forceps x 2</td><td>World Precision Instruments</td><td>500363</td><td></td></tr><tr><td>5-0 silk pre-cut sutures</td><td>Ethicon</td><td>A182H</td><td>For vessel ligation</td></tr><tr><td>8-0 Prolene on BV130-5 needle</td><td>Ethicon</td><td>8732H</td><td>For anastomosis</td></tr><tr><td>3-0 Silk on FS-2 needls</td><td>Ethicon</td><td>8665G</td><td>For abdominal wall closure</td></tr><tr><td>Petroleum Jelly</td><td>Vaseline</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 ml syringe</td><td>BD biosciences</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Povidone-iodine 7.5% surgical Scrub</td><td>&lt;a href=&quot;http://betadine.com&quot;&gt;betadine.com&lt;/a&gt;</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heat lamps</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>buprenorphine 0.3 mg/ml</td><td>Reckitt Benckiser Healthcare Ltd.&amp;nbsp;</td><td>PL36699/0006</td><td></td></tr></tbody></table>

murine ileocolic bowel resection with primary anastomosis

Intestinal resections are frequently required for treatment of diseases involving the gastrointestinal tract, with Crohn&#8217;s disease and colon cancer being two common examples. Despite the frequency of these procedures, a significant knowledge gap remains in describing the inherent effects of intestinal resection on host physiology and disease pathophysiology. This article provides detailed instructions for an ileocolic resection with primary end-to-end anastomosis in mice, as well as essential aspects of peri-operative care to maximize post-operative success. When followed closely, this procedure yields a 95% long-term survival rate, no failure to thrive, and minimizes post-operative complications of bowel obstruction and anastomotic leak. The technical challenges of performing the procedure in mice are a barrier to its wide spread use in research. The skills described in this article can be acquired without previous surgical experience. Once mastered, the murine ileocolic resection procedure will provide a reproducible tool for studying the effects of intestinal resection in models of human disease.

معدلات الوفيات وتغير الوزن بعد العملية. معدلات وفيات التالية النواب في 129S1 الفئران النوع البري عموما ~ 5٪. السبب الأكثر شيوعا للأخلاق هو انسداد الأمعاء في مفاغرة. وتشمل الأسباب الأخرى للوفيات تسرب تفاغري وفتق داخلي مما يؤدي إلى انسداد الأمعاء. ويمكن رؤية فقدان الوزن تصل إلى 14 أيام بعد العملية، ولكن عموما غير مهم. الفئران تميل إلى استعادة كامل الوزن قبل العملية من قبل بعد الجراحة يوم 28 (الشكل 2). إمكانية نقل التقنية كان يدرس للطالب خريج جديد (BM) لتنفيذ الإجراء النواب لتحديد ما إذا كان المشغل مع أي تدريب الجراحي السابق يمكن أن تتعلم هذه التقنية. وبدأ التدريب مع تعلم كيفية تنفيذ الغرز انقطاع واحدة مماثلة لتلك المستخدمة في مفاغرة باستخدام النايلون 8-0 خياطة. تم إجراء الغرز لإغلاق شق جعلت عبر بالشبكة اللاتكسهاء. بعد BM كان قادرا على وضع الخيوط الجراحية بكفاءة من خلال القفازات دون تمزق، أنهم لاحظوا ثلاثة إجراءات كاملة قبل محاولة واحدة. بعد الانتهاء من الإجراء الأول، ثم أنها لاحظت إجراء آخر وحاول اثنين آخرين. الحيوانات أتم ثلاثة، ذهب الماضيين على البقاء على قيد الحياة وتزدهر. كان الموت الرحيم للحيوان الأول بسبب مضاعفات في مفاغرة. <img alt="الشكل 1" src="/files/ftp_upload/52106/52106fig1highres.jpg" /> الشكل 1. مراحل استئصال اللفائفي القولوني ومفاغرة. (A) المنطقة اللفائفية من الأمعاء سلمت من البطن. السهام السوداء تشير إلى أن السفن و ligated، وتشير الخطوط المتقطعة نقاط transection لالقولون ومحطة الدقاق. (ب) المنطقة اللفائفية إزالتها، ويتم محاذاة الغايات قطع من الأمعاء، ويتجلى المتبقية امدادات الدم عن طريق السهام السوداء. (C) الانتهاء أنس اللفائفية القولونيةtomosis. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52106/52106fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.</a> <img alt="الرقم 2" src="/files/ftp_upload/52106/52106fig2highres.jpg" /> الشكل 2. أوزان الحيوانات في الأساس، يوم بعد العمليات الجراحية 14 وبعد العمليات الجراحية يوم 28. لم يلاحظ أي تغييرات كبيرة في أوزان ما بعد الإجراء على النحو الذي يحدده الاختبار الإحصائي مان ويتني U. مجلس النواب (اللفائفي القولوني مجموعة بتر)، التحكم (الضوابط غير المنطوق). <img alt="الرقم 3" src="/files/ftp_upload/52106/52106fig3highres.jpg" /> الشكل 3. مسار الممثل من الغرز من خلال أنسجة الأمعاء. H &amp; E الملون أقسام نسيجية من الدقاق (يمين) والقولون (يسار) واصطف لإظهار مسار شمال شرق خياطةedle من خلال الأنسجة (خط متقطع) ابتداء من النقطة (أ) إلى نقطة (ب). يجب أن يكون عقد قرانه في نقطة (ج). لاحظ أن أقل الغشاء المخاطي يتم تضمينها في مفاغرة من الأنسجة الأخرى. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52106/52106fig3large.jpg" target="_blank">يرجى النقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Murine Ileocolic Bowel Resection with Primary Anastomosis at JoVE.com

Murine Ileocolic Bowel Resection with Primary Anastomosis

Ileocolic resection is commonly performed in several human diseases; however, little is known regarding the impact of intestinal resection on surgical illnesses. This article provides instruction on executing the procedure in mice with high success, providing a means to study the effects of ileocolic resection in models of disease.

الفئران اللفائفي القولوني استئصال الأمعاء مع التحام الابتدائي

Intestinal resections are frequently required for treatment of diseases involving the gastrointestinal tract, with Crohn&#8217;s disease and colon cancer ...

murine-ileocolic-bowel-resection-with-primary-anastomosis

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

16.4K Views.  University of Alberta. Ileocolic resection is commonly performed in several human diseases; however, little is known regarding the impact of intestinal resection on surgical illnesses. This article provides instruction on executing the procedure in mice with high success, providing a means to study the effects of ileocolic resection in models of disease.

Video: Murine Ileocolic Bowel Resection with Primary Anastomosis

Small Bowel Transplantation In Mice

Since 1990, the development of tacrolimus-based immunosuppression and improved surgical techniques, the increased array of potent immunosuppressive medications, infection prophylaxis, and suitable patient selection helped improve actuarial graft and patient survival rates for all types of intestine transplantation. Patients with irreversible intestinal failure and complications of parenteral nutrition should now be routinely considered for small intestine transplantation. However, Survival rates for small intestinal transplantation have been slow to improve compares increasingly favorably with renal, liver, heart and lung. The small bowel transplantation is still unsatisfactory compared with other organs. Further progress may depend on better understanding of immunology and physiology of the graft and can be greatly facilitated by animal models. A wider use of mouse small bowel transplantation model is needed in the study of immunology and physiology of the transplantation gut as well as efficient methods in diagnosing early rejection. However, this model is limited to use because the techniques involved is an extremely technically challenging. We have developed a modified technique. When making anastomosis of portal vein and inferior vena cava, two stay sutures are made at the proximal apex and distal apex of the recipient s inferior vena cava with the donor s portal vein. The left wall of the inferior vena cava and donor s portal vein is closed with continuing sutures in the inside of the inferior vena cava after, after one knot with the proximal apex stay suture the right wall of the inferior vena cava and the donor s portal vein are closed with continuing sutures outside the inferior vena cave with 10-0 sutures. This method is easier to perform because anastomosis is made just on the one side of the inferior vena cava and 10-0 sutures is the right size to avoid bleeding and thrombosis.  In this article, we provide details of the technique to supplement the video.

The mouse small bowel transplantation model has been recognized as an important tool to study mechanismes of immune rejection and screen new immunosuppressive drugs. However, this model is limited to use because the techniques involved is an extremely technically challenge. Now we introduce the modified technique.

زرع الأمعاء الصغيرة في الفئران

Since 1990, the development of tacrolimus-based immunosuppression and improved surgical techniques, the increased array of potent immunosuppressive ...

Biology

Ileectomy-induced Bile Overaccumulation in Mouse Intestine

Intestinal resection is a common therapeutic approach for human diseases such as obesity, inflammatory bowel disease, Crohn's disease, and colon cancer that often results in severe short bowel syndrome-like adverse effects including bile acid diarrhea, dehydration, electrolyte disturbances, and nutrient malabsorption. Here we introduce a murine ileal resection model, termed ileectomy, to evaluate tissue communication and the maintenance of systemic homeostasis. After ileal resection, circulating blood is permanently devoid of the ileum-specific endocrine hormone fibroblast growth factor 15 (FGF15), which releases its endocrinal inhibition of bile acid synthesis in the liver. In combination with the increased production and abolished reabsorption of bile acids after removing the ileum, mice that underwent surgery suffer from bile salt overaccumulation in the intestine and associated diarrhea, morbidity, and mortality. Novel usage of the surgery model introduced in this study may provide mechanistic and functional insights into ileal control of systemic metabolic regulation in physiology and disease.

Small intestine-dependent bile acid reabsorption and feedback inhibition of hepatic bile acid synthesis is important for systemic homeostasis and health. In this study, we describe a mouse model for ileal resection to evaluate ileectomy-induced bile malabsorption, overaccumulation, and toxicity in mouse intestine.

أوفيراككوموليشن الناجمة عن إيليكتومي الصفراوية في الأمعاء الماوس

Intestinal resection is a common therapeutic approach for human diseases such as obesity, inflammatory bowel disease, Crohn's disease, and colon cancer ...

Murine Distal Colostomy, A Novel Model of Diversion Colitis in C57BL/6 Mice

Diversion colitis (DC) is a frequent clinical condition occurring in patients with bowel segments excluded from the fecal stream as a result of a diverting enterostomy. The etiology of this disease remains ill-defined but appears to differ from that of classical inflammatory bowel diseases such as Crohn's disease and ulcerative colitis. Research aimed to decipher the pathophysiological mechanisms leading to the development of this disease has been severely hampered by the lack of an appropriate murine model. This protocol generates a murine model of DC that facilitates the study of the immune system's role and its interaction with the microbiome in the development of DC. In this model using C57BL/6 animals, distal parts of the colon are excluded from the fecal stream by creating a distal colostomy, triggering the development of mild to moderate inflammation in the excluded bowel segments and reproducing the hallmark lesions of human DC with a moderate systemic inflammatory response. In contrast to the rat model, a large number of genetically-modified murine models on the C57BL/6 background are available. The combination of these animals with our model allows the potential roles of individual cytokines, chemokines, or receptors of bioactive molecules (e.g., interleukin (IL)-17; IL-10, chemokine CXCL13, chemokine receptors CXCR5 and CCR7, and the sphingosine-1-phosphate receptor 4) to be assessed in the pathogenesis of DC. The availability of congenic mouse strains on the C57BL/6 background largely facilitates transfer experiments to establish the roles of distinct cell types involved in the etiology of DC. Finally, the model offers the opportunity to assess the influences of local interventions (e.g., modification of the local microbiome or local anti-inflammatory therapy) on mucosal immunity in affected and non-affected bowel segments and the on systemic immune homeostasis.

Murine distal colostomy provides a murine model for human diversion colitis, a predominantly lymphocytic colitis in colon segment excluded from the fecal stream.

مورين كولوستومي القاصي، نموذجا جديداً من تسريب التهاب القولون في الفئران C57BL/6

Diversion colitis (DC) is a frequent clinical condition occurring in patients with bowel segments excluded from the fecal stream as a result of a ...

Creation of Colonic Anastomosis in Mice

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of colonic surgeries and can occur in up to 26% of surgical anastomoses, with mortality being up to 39% for patients with such a leak. Currently, there remains a paucity of data detailing the cellular mechanisms of anastomotic healing. Devising preventative strategies and treatment modalities for anastomotic leak could be greatly potentiated by a better understanding of appropriate anastomotic healing.
A murine model is ideal as previous studies have shown that the murine anastomosis is the most clinically similar to the human case as compared with other animal models. We offer an easily reproducible murine model of colonic anastomosis in mice that will allow for further illustration of anastomotic healing.

Anastomotic leak or breakdown after surgery is a major cause of postoperative morbidity and mortality. Our surgery for creating a colonic anastomosis is a reliable and reproducible method for studying the healing mechanisms of anastomoses.

إنشاء ملامسة Colonic في الفئران

Intestinal anastomoses are commonly performed in both elective and emergent operations. Even so, anastomotic leaks are a highly feared complications of ...

Robotic Radical Cystectomy, Pelvic Lymph Node Dissection, and Intracorporeal Ileal Conduit Urinary Diversion

The robotic approach to radical cystectomy is compelling because of its oncologic equivalence to open radical cystectomy (ORC), its association with lower surgical blood loss, its potential association with shorter hospital stay after surgery. These factors suggest that the robotic approach to radical cystectomy may be an important component of enhanced recovery programs aimed at reducing surgical morbidity. This paper describes the importance of the cranial placement of robotic trocars, the use of Cadiere forceps for atraumatic bowel grasping, pelvic lymph node dissection (PLND), and utero-enteric anastomoses. Also discussed are steps that are critical for the successful outcome of RARC. In spite of the increased operating times and associated costs and the costs of robotic surgical platforms and equipment, adoption of the robotic technique by bladder cancer surgeons has increased. This paper describes a systematic and reproducible method that details robotic extended pelvic lymph node dissection, cystectomy/cystoprostatectomy, and intracorporeal ileal conduit urinary diversion.

<meta charset="utf8"></head><body>استئصال المثانة الجذري الروبوتي ، وتشريح العقدة الليمفاوية في الحوض ، وتحويل القناة اللفائفية داخل الجسم

This paper describes robotic radical cystectomy, pelvic lymph node dissection, and intracorporeal ileal conduit urinary diversion.

استئصال المثانة الجذري الروبوتي ، وتشريح العقدة الليمفاوية في الحوض ، وتحويل القناة اللفائفية داخل الجسم

The robotic approach to radical cystectomy is compelling because of its oncologic equivalence to open radical cystectomy (ORC), its association with lower ...

<meta charset="utf8"></head><body>نموذج الفئران لدراسة العلوص بعد الجراحة من خلال التلاعب المعوي

Postoperative Ileus Murine Model

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI is a consequence of mechanical damage during surgery, resulting in disruption of motility in the gastrointestinal tract. The mechanisms of POI are related to aberrant neuronal sensitivity, impaired epithelial barrier function, and increased local inflammation. However, the details remain enigmatic. Therefore, experimental murine models are crucial for elucidating the pathophysiology and mechanism of POI injury and for the development of novel therapies.
Here, we introduce a murine model of POI generated via intestinal manipulation (IM) that is similar to clinical surgery; this is achieved by mechanical damage to the small intestine by massaging the abdomen 1-3 times with a cotton swab. IM delayed gastrointestinal transit 24 h after surgery, as assessed by FITC-dextran gavage and fluorescence detection of the segmental digestive tract. Moreover, tissue swelling of the submucosa and immune cell infiltration were investigated by hematoxylin and eosin staining and flow cytometry. Proper pressure of the IM and a hyperemic effect on the intestine are critical for the procedure. This murine model of POI can be utilized to study the mechanisms of intestinal damage and recovery after abdominal surgery.

<meta charset="utf8"></head><body>نموذج العنقوص بعد الجراحة

We describe a murine model of postoperative ileus generated via intestinal manipulation. Gastrointestinal transit function, pathologic changes, and immune cell activation were assessed 24 h after surgery.

نموذج العنقوص بعد الجراحة

Most patients experience postoperative ileus (POI) after surgery, which is associated with increased morbidity, mortality, and hospitalization time. POI ...

Immunology and Infection

Robot-assisted Total Mesorectal Excision and Lateral Pelvic Lymph Node Dissection for Locally Advanced Middle-low Rectal Cancer

Since their approval for clinical use, da Vinci surgical robots have shown great advantages in gastrointestinal surgical operations, especially in complex procedures. The high-quality 3-D visual, multijoint arm and natural tremor filtration allow the surgeon to expose and dissect more accurately with minimal invasion. Total mesorectal excision is the standard surgical technique for the treatment of resectable rectal cancer. To reduce the lateral recurrence rate, lateral pelvic lymph node dissection can be performed, as it is a safe and feasible procedure for locally advanced middle-low rectal cancer with a high possibility of metastasis to the lateral lymph nodes. However, the complexity of the anatomic structures and the high postoperative complication rate limit its application. Recently, several surgeons have increasingly used robotic techniques for total mesorectal excision and lateral pelvic lymph node dissection. Compared with open and laparoscopic surgery, the robotic technique has several advantages, such as less blood loss, fewer blood transfusions, minimal trauma, shorter postoperative hospitalization, and quicker recovery. A robotic approach is generally regarded as a reasonable alternative for complicated procedures such as lateral pelvic lymph node dissection, although there are a limited number of high-quality prospective randomized controlled studies reporting direct evidence. Here, we provide the detailed steps of robot-assisted total mesorectal excision and lateral pelvic lymph node dissection performed at the First Affiliated Hospital of Xi&#39;an Jiaotong University.

The robotic technique described herein aims to detail a stepwise approach to robot-assisted total mesorectal excision and lateral pelvic lymph node dissection for locally advanced (T3/T4) rectal cancer located below the peritoneal reflection.

استئصال إجمالي متوسطي بمساعدة الروبوت وتشريح العقدة الليمفاوية الحوضية الجانبية لسرطان المستقيم المتوسط المنخفض المتقدم محليا

Since their approval for clinical use, da Vinci surgical robots have shown great advantages in gastrointestinal surgical operations, especially in complex ...

الفئران اللفائفي القولوني استئصال الأمعاء مع التحام الابتدائي

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

زرع الأمعاء الصغيرة في الفئران

أوفيراككوموليشن الناجمة عن إيليكتومي الصفراوية في الأمعاء الماوس

مورين كولوستومي القاصي، نموذجا جديداً من تسريب التهاب القولون في الفئران C57BL/6

إنشاء ملامسة Colonic في الفئران

استئصال المثانة الجذري الروبوتي ، وتشريح العقدة الليمفاوية في الحوض ، وتحويل القناة اللفائفية داخل الجسم

استئصال المثانة الجذري الروبوتي ، وتشريح العقدة الليمفاوية في الحوض ، وتحويل القناة اللفائفية داخل الجسم

نموذج العنقوص بعد الجراحة

نموذج العنقوص بعد الجراحة

نموذج العنقوص بعد الجراحة

استئصال إجمالي متوسطي بمساعدة الروبوت وتشريح العقدة الليمفاوية الحوضية الجانبية لسرطان المستقيم المتوسط المنخفض المتقدم محليا