Name: light/dark transition test for mice
Uploaded: 2006-11-13T00:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 35 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Light/dark Transition Test for Mice at JoVE.com

وأيد هذا البحث من خلال المنح التي تقدم للمساعدة للعلماء الشباب (A) (# 16680015) ، منحة في والمعونة للبحوث الاستكشافية (# 16653065) ، منحة في والمساعدات للأبحاث العلمية في المجالات ذات الأولوية (# 18023022 # 18016012 18053015 و#) من وزارة التربية والتعليم والثقافة والرياضة والعلوم والتكنولوجيا في اليابان ، والمنح التي تقدم للمساعدة من تعزيز الدراسات الأساسية في العلوم الصحية التابع للمعهد الوطني للابتكار الطبية الحيوية (NIBIO) ، في والمنح مساعدات من اليابان Neuroinformatics مركز (NIJC) ، بتبريد

<ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تألف جهاز يستخدم لاختبار الانتقال الضوء / الظلام من قفص (21x42x25 سم) مقسمة الى قسمين متساوية في الحجم من قبل قسم من الباب (أوهارا وشركاه ، طوكيو). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إيواء الفئران 3-4 في القفص في غرفة مع دورة الضوء / الظلام 12 ساعة (أضواء على الساعة 7:00 صباحا) بالمال وبالشهرة أيضا مع وصول الفريق الى الغذاء والماء. من الناحية المثالية ، ويضم عنصري تحكم المسوخ واثنين معا ، من خلال إعادة تنظيم الفئران بمجرد genotyped أنهم في وقت الفطام. يتم إجراء اختبارات سلوكية 9:00 حتي 6:00 يتم نقل جميع الأقفاص التي تحتوي على الفئران لاختبار سلوك غرفة و 30 دقيقة قبل أن تبدأ المحاكمة الأولى. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> غير مضاءة الزاهية غرفة واحدة بواسطة الثنائيات البيضاء (390 لوكس) ، في حين أن الآخر هو الغرفة المظلمة (2 لوكس). يتم وضع الفئران في الجانب المظلم ، وفتحت الباب تلقائيا بعد 3 ثوان يتم الكشف عن الماوس بواسطة كاميرا الأشعة تحت الحمراء. ويستخدم الباب حتى أن الفئران لا تدخل في دائرة الضوء بعد الافراج فورا مع دوافعهم للهروب من مجرب ، ومنذ زمن لدخول غرفة الخفيفة التي قد تكون بمثابة مؤشر للقلق مثل السلوك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ويسمح للفئران على التحرك بحرية بين الغرفتين مع الباب مفتوحا لمدة 10 دقيقة. ويستند التطبيق المستخدم للحصول على البيانات وتحليلها السلوكية (صورة LD4) على برنامج الملك العام J صورة (byWayne Rasband المتقدمة في المعهد الوطني للصحة العقلية والمتاحة في http://rsb.info.nih.gov/ij /) ، الذي عدل من قبل Miyakawa تسويوشي (المتاحة من خلال اوهارا وشركاه ، طوكيو ، اليابان). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> المسافة المقطوعة في كل غرفة ، فإن العدد الإجمالي من التحولات ، والوقت الذي يقضيه في كل غرفة ، والكمون لدخول الضوء chamberare التي سجلتها برنامج LD4 صورة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد كل محاكمة ، ويتم تنظيف جميع الغرف تحت الكلور مع الماء لمنع السوبر تحيز على أساس العظة الشمية. </li></ol>

<ol>
	<li>Austin, C. P., Aiba, A., Takao, K., Miyakawa, T., Takao, K., Yamasaki, N., Miyakawa, T., Crawley, J. N., Crawley, J. N., Crawley, J., Goodwin, F. K., Miyakawa, T., Crabbe, J. C., Wahlsten, D., Dudek, B. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+knockout+mouse+project.">The knockout mouse project.</a> Nat Genet. 36, 921-924 (2004).</li></ol>

وقد وافق جميع الإجراءات المتبعة في استخدام الحيوان والعناية اللجنة من جامعة كيوتو. ويرتبط تسويوشي Miyakawa مع الطيور والعلوم والتكنولوجيا وكالة اليابان ، سايتاما ، اليابان.

على الرغم من أنه تم تحديد كل من تسلسل جينوم الفأر ، ليست معروفة وظائف معظم هذه الجينات. الجينات التي تستهدف التقنيات ، ومع ذلك ، يمكن أن تستخدم لحذف أو التعامل مع جين معين في الفئران (أيبا ​​وآخرون ، 2007 ؛. أوستن وآخرون ، 2004). ويمكن بعد ذلك من تأثير جين معين على سلوك معين يتم تحديدها عن طريق إجراء التحاليل السلوكية للفئرانا معدلة وراثيا (تاكاو وMiyakawa ، 2006 ؛. تاكاو وآخرون ، 2007). كاختبار لphenotyping السلوكية للفئرانا معدلة وراثيا ، واختبار الانتقال الضوء / الظلام هي واحدة من أكثر الاختبارات المستخدمة على نطاق واسع لقياس القلق تشبه السلوك في الفئران (كراولي ، 2000). ويستند الاختبار على النفور من الفئران الطبيعية إلى مناطق مضيئة وبراقة على سلوكهم العفوي استكشافية في بيئات رواية (كراولي ، 1985). اختبار حساسة للعلاج بالعقاقير مزيل القلق (كراولي ، 1985). الجهاز يتكون من غرفة مظلمة وغرفة مضاءة الزاهية. وهناك فتحة المقيدة ، 3 سم ارتفاع بنسبة 5 سم ، يربط بين الغرفتين. ويسمح للفئران على التحرك بحرية بين الغرفتين. قضى عدد الإدخالات في غرفة مشرق ومدة من الزمن كما أن هناك مؤشرات على استخدام الفضاء مشرق القلق لدى الفئران. وضعت أصلا لاختبار الانتقال الضوء / الظلام بواسطة كراولي وزملاء (كراولي وغودوين ، 1980). هناك نوعان من الفروق بين النسخة الأصلية واختبار لدينا. أولا ، ضوء الغرفة أكبر من الغرفة المظلمة في النسخة الأصلية ، في حين أن حجم الغرفتين هو نفسه في نسختنا من الاختبار. الثاني ، في النص الأصلي ، وكان ضوء الغرفة جود سقف وجدران الغرفة الضوء والشفافية (كراولي وغودوين ، 1980) ، في حين نستخدم بلاستيكية بيضاء شفافة لسقف وجدران الغرفة الخفيفة. هذه الاختلافات ، وهما حجم والانفتاح في ضوء الغرفة ، والسماح للكشف في وقت واحد مشرق في الفضاء القلق فضلا عن فتح الفضاء القلق في النسخة الأصلية للاختبار. في المختبر لدينا ، ومع ذلك ، وفتح الفضاء هو اختبار للقلق مثل السلوك في الفئران في المتاهة قيمة مضافة مرتفعة. الجدران والسقف مبهمة ، وحجم الغرفة الضوء ، ومحددة لدينا ضوء / اختبار الانتقال بروتوكول الظلام هو أكثر تخصصا لاكتشاف الفضاء مشرق القلق بالمقارنة مع النص الأصلي. على الرغم من أن اختبار الانتقال الضوء / الظلام ومتاهة ارتفاع زائد على حد سواء المستخدمة لتقييم القلق مثل السلوك ، فإن النتائج ليست دائما متسقة. على سبيل المثال ، الدماغ الأمامي محددة الفئران خروج المغلوب الكالسينيورين (calcineurin) انخفض إنفاق مبلغ من الوقت في الغرفة ضوء في اختبار الانتقال الضوء / الظلام ، ولكن زيادة كمية من الوقت في بأذرع مفتوحة في متاهة زائد مرتفعة (Miyakawa وآخرون ، 2003) . افترضنا أن لدينا الضوء / الظلام والاختبارات اختبار الانتقال مرتفعة بالإضافة إلى متاهة تقييم جوانب مختلفة من القلق مثل السلوك ، مثل مشرق الفضاء القلق والفضاء المفتوح للقلق مثل السلوك. لاختبار هذه الفرضية ، استخدمنا بيانات تم جمعها باستخدام مجموعة كبيرة من الفئران نفسه في كل الاختبارات. في المختبر لدينا ، ونحن إجراء اختبار بطاريات السلوكية التي تغطي العديد من المجالات على الشاشة للحصول على أهمية الجينات السلوكية. البطارية اختبار يتطلب عدة أسابيع حتى يكتمل. أثناء فترة الاختبار ، يتم الاحتفاظ أقفاص الماوس على الرف في مصنعنا. إذا نقلت إلى الفئران المختبرية لدينا من المؤسسات الأخرى ، وأنهم اعتادوا على البيئة من منشأتنا لمدة لا تقل عن 1 في الاسبوع. بعد فترة التعود ، تتعرض الفئران لفحص الصحة العامة والعصبية الفرز (Miyakawa وآخرون ، 2003) ، وبعد هذه الامتحانات بسيطة ، يتعرض الفئران لاختبار الانتقال الضوء / الظلام. ويجرى الاختبار في غرفة إثبات الصوت التجريبي بعد 30 دقيقة من التعود إلى الغرفة التجريبية ، كما هو مبين في الفيلم. لقد قمنا بتقييم أكثر من 60 سلالات من الفئران المعدلة وراثيا الطافرة باستخدام بروتوكول يظهر في الفيلم وجود مجموعة كبيرة من البيانات الخام لأكثر من 3000 الفئران (بما في ذلك نوع البرية وفئرانا معدلة وراثيا). أجرينا تحاليل معامل للاستفادة من مجموعة كبيرة من البيانات الخام. في الواقع ، اكتشفنا عوامل مختلفة من كل اختبار (بيانات غير منشورة) ، بالرغم من وجود ارتباط كبير بين بعض المؤشرات (بيانات غير منشورة).. وسيتم الكشف عن هذه البيانات كجزء من قاعدة بيانات عامة أن نقوم ببناء الآن. في بطارية اختبار لدينا ، وتستخدم عادة من النوع البري تتزاحم كمجموعة تحكم. كما سلالة الخلفية ، ويشيع استخدام الفئران C57BL/6J. جمعنا البيانات من الفئران C57BL/6J تستخدم كعنصر تحكم من الفئران الطافرة في بطارية اختبار. وكانت المؤشرات التي تم الحصول عليها من الفئران في اختبار لدينا C57BL/6J انتقال الضوء / الظلام كما يلي (ن = 795 ؛ SEM الوسط) ؛ المسافة : 846.5 8.88 سم في ضوء الغرفة ، 1478.5 9.53 سم في غرفة مظلمة ؛ مدة من الوقت الذي يقضيه : 215.8 1.85 ليالي في ضوء ذلك ، ليالي 395.8 1.86 في الظلام ، وعدد من التحولات بين المقصورات : 30.52 0.43 ؛ الكمون لدخول غرفة ضوء : 64.94 2.40 ثانية. تم الكشف عن الحركة من الفئران حول مداخل الغرف بواسطة الكاميرا ويسجل والوقت الذي يقضيه في كل جhambers. وبسبب هذا ، أنفق هذا المبلغ لمدة من الوقت يعني في ضوء وذلك في حجرات مظلمة كان أكبر من ذلك لكامل مدة الاختبار (600 ق). في بروتوكول لدينا ، وضعت لأول مرة الماوس في غرفة مظلمة. ثلاث ثوان بعد وضع الماوس في غرفة مظلمة ، والباب بين الغرفتين تفتح تلقائيا والفأر يستطيع التحرك بحرية بين الغرفتين. الفئران C57BL/6J يمضون وقتا أقل في غرفة من الضوء في الغرفة المظلمة (ع &lt;0.0001 ، والمدة إذا كان الوقت الذي يقضيه في ضوء : 215.8 1.85 ثانية ، مدة من الوقت الذي يقضيه في الظلام : 316.3 2.11 ق [الوقت الذي يقضيه في الظلام لا لا تشمل الوقت الأولي قضى في الظلام قبل دخول غرفة الضوء للمرة الأولى] ، ن = 795 ، مقترن اختبار - T). هذا يشير إلى أن الفئران C57BL/6J تميل لتجنب ضوء الغرفة ، وبأن الوقت الذي يقضيه في ضوء هو مؤشر جيد للقلق مثل السلوك. تتم مقارنة النتائج التي تم الحصول عليها بسهولة من سلالات مختلفة من الفئران الطافرة ، لأن الحصول على كافة البيانات باستخدام بروتوكول نفسه. للحصول على نتائج phenotyping سلالة من الفئران الطافرة التي يمكن أن تتكرر بسهولة وبالمقارنة مع بيانات المسوخ أخرى ، ينبغي أن تكون طرق الاختبار السلوكية متطابقة ممكن بين المختبرات. اختبار كراب والزملاء التفاعل بين السلوك والبيئة الماوس المختبر باستخدام بالضبط نفس السلالات الفطرية وسلالة واحدة متحولة فارغة. في دراستهم ، كانت أجهزة وبروتوكولات الاختبار ، وكثير من المتغيرات البيئية الموحدة بشكل صارم. على الرغم من التوحيد ، وجدوا اختلافات منهجية في السلوك عبر المختبرات ، وعلى الرغم من أنها اكتشفت سلالة أيضا اختلافات في جميع السلوكيات (كراب وآخرون ، 1999). وذكرت ان المتغيرات لا يمكن السيطرة عليها والتجارب التي تميز المسوخ قد تسفر عن النتائج التي يتم الفقهي الى مختبر خاص. الاختلافات الإجرائية التي توجد بين مختبرات تجعل من الصعب تكرار أو مقارنة بين نتائج المختبرات. هنا ، ونحن لدينا بروتوكول الحالي لاختبار الانتقال الضوء / الظلام كفيلم بحيث يمكن البرهنة على تفاصيل البروتوكول. ووضع وثائق بصرية للبروتوكول تسهيل فهم أفضل لتفاصيل الإجراءات التجريبية ، والسماح لتوحيد البروتوكولات المستخدمة في المختبرات وإجراء مقارنات من الظواهر السلوكية للسلالات مختلفة من الفئران الطافرة المقررة باستخدام هذا الاختبار. حاليا الأفلام من البروتوكولات الأخرى ، مثل المتاهة زائد مرتفعة ، فتح الاختبار الميداني ، porsolt اختبار السباحة القسري ، وتكييف الخوف ، والتي نستخدمها في بطارية اختبار لدينا السلوكية التي تبذل من أجل نشر والمستقبل مقالات مجلة الفيديو.

light/dark transition test for mice

على الرغم من أنه تم تحديد كل من تسلسل جينوم الفأر ، ونحن لا نعرف حتى الآن وظائف معظم هذه الجينات. الجينات التي تستهدف التقنيات ، ومع ذلك ، يمكن أن تستخدم لحذف أو التعامل مع جين معين في الفئران. ويمكن بعد ذلك من تأثير جين معين على سلوك معين يتم تحديدها عن طريق إجراء التحاليل السلوكية للفئرانا معدلة وراثيا. كاختبار لphenotyping السلوكية للفئرانا معدلة وراثيا ، واختبار الانتقال الضوء / الظلام هي واحدة من أكثر الاختبارات المستخدمة على نطاق واسع لقياس القلق تشبه السلوك في الفئران. ويستند الاختبار على النفور من الفئران الطبيعية إلى مناطق مضيئة وبراقة على سلوكهم العفوي استكشافية في بيئات جديدة. اختبار حساسة للعلاج بالعقاقير مزيل القلق. الجهاز يتكون من غرفة مظلمة وغرفة مضاءة الزاهية. ويسمح للفئران على التحرك بحرية بين الغرفتين. قضى عدد الإدخالات في غرفة مشرق ومدة من الوقت هناك مؤشرات ساطعة الفضاء القلق لدى الفئران. للحصول على نتائج phenotyping سلالة من الفئران الطافرة التي يمكن أن تتكرر بسهولة ومقارنتها مع تلك المسوخ أخرى ، ينبغي أن تكون طرق الاختبار السلوكية متطابقة ممكن بين المختبرات. الاختلافات الإجرائية التي توجد بين المختبرات ، ومع ذلك ، تجعل من الصعب تكرار أو مقارنة بين نتائج المختبرات. هنا ، ونحن لدينا بروتوكول الحالي لاختبار الانتقال الضوء / الظلام كفيلم بحيث يمكن البرهنة على تفاصيل البروتوكول. في المختبر لدينا ، وقد قمنا بتقييم أكثر من 60 سلالات من الفئران الطافرة باستخدام بروتوكول يظهر في الفيلم. وسيتم الكشف عن هذه البيانات باعتبارها جزءا من قاعدة بيانات عامة أن نقوم ببناء الآن. والتصور للبروتوكول تيسير فهم تفاصيل الإجراء التجريبي كامل ، والسماح لتوحيد البروتوكولات المستخدمة في المختبرات ومقارنات بين الظواهر السلوكية للسلالات مختلفة من الفئران الطافرة المقررة باستخدام هذا الاختبار.

Watch this Scientific Journal Video about Light/dark Transition Test for Mice at JoVE.com

Light/dark Transition Test for Mice

اختبار الانتقال الضوء / الظلام هي واحدة من أكثر الاختبارات المستخدمة على نطاق واسع لقياس القلق تشبه السلوك في الفئران. هنا ، ونحن تقديم الفيلم الذي يعرض على إجراءات تفصيلية حول كيفية اجراء الاختبار.

الضوء / الظلام لاختبار الانتقال الفئران

Although all of the mouse genome sequences have been determined, we do not yet know the functions of most of these genes. Gene-targeting techniques, ...

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Biology

52.4K Views.  Graduate School of Medicine, Kyoto University. He did. So what?

Video: Light/dark Transition Test for Mice

Assessment of Sensorimotor Function in Mouse Models of Parkinson's Disease

Sensitive and reliable behavioral outcome measures are essential to the evaluation of potential therapeutic treatments in preclinical trials for many neurodegenerative diseases. In Parkinson's disease, sensorimotor tests sensitive to varying degrees of nigrostriatal dysfunction are fundamental for testing the efficacy of potential therapeutics. Reliable and quite elegant sensorimotor measures exist for rats, however many of these tests measure sensorimotor asymmetry within the rat and are not entirely suitable for the newer genetic mouse models of PD. We have put together a battery of sensorimotor tests inspired by the sensitive tests in rats and adapted for mice. The test battery highlighted in this study is chosen for a) its sensitivity in a wide variety of mouse models of PD, b) its ease in implementing into a study, and c) its low expense. These tests have proven useful in characterizing novel genetic mouse models of PD as well as in testing potential disease-modifying therapies.

In Parkinson's disease and movement disorders in general, sensitive and reliable behavioral assays are essential for testing novel potential therapeutics. Here, we describe a manageable battery of sensorimotor tests for mice that are sensitive to varying degrees of injury to the nigrostriatal system and useful for preclinical studies.

تقييم حسي حركي وظيفة في نماذج الماوس من مرض باركنسون

Sensitive and  reliable behavioral outcome measures are essential to the evaluation of  potential therapeutic treatments in preclinical trials for many  ...

Behavior

Automated, Quantitative Cognitive/Behavioral Screening of Mice: For Genetics, Pharmacology, Animal Cognition and Undergraduate Instruction

We describe a high-throughput, high-volume, fully automated, live-in 24/7 behavioral testing system for assessing the effects of genetic and pharmacological manipulations on basic mechanisms of cognition and learning in mice. A standard polypropylene mouse housing tub is connected through an acrylic tube to a standard commercial mouse test box. The test box has 3 hoppers, 2 of which are connected to pellet feeders. All are internally illuminable with an LED and monitored for head entries by infrared (IR) beams. Mice live in the environment, which eliminates handling during screening. They obtain their food during two or more daily feeding periods by performing in operant (instrumental) and Pavlovian (classical) protocols, for which we have written protocol-control software and quasi-real-time data analysis and graphing software. The data analysis and graphing routines are written in a MATLAB-based language created to simplify greatly the analysis of large time-stamped behavioral and physiological event records and to preserve a full data trail from raw data through all intermediate analyses to the published graphs and statistics within a single data structure. The data-analysis code harvests the data several times a day and subjects it to statistical and graphical analyses, which are automatically stored in the &#34;cloud&#34; and on in-lab computers. Thus, the progress of individual mice is visualized and quantified daily. The data-analysis code talks to the protocol-control code, permitting the automated advance from protocol to protocol of individual subjects. The behavioral protocols implemented are matching, autoshaping, timed hopper-switching, risk assessment in timed hopper-switching, impulsivity measurement, and the circadian anticipation of food availability. Open-source protocol-control and data-analysis code makes the addition of new protocols simple. Eight test environments fit in a 48 in x 24 in x 78 in&#160;cabinet; two such cabinets (16 environments) may be controlled by one computer.

Fully automated system for measuring physiologically meaningful properties of the mechanisms mediating spatial localization, temporal localization, duration, rate&#160;and probability estimation, risk assessment, impulsivity, and the accuracy and precision of memory, in order to assess the effects of genetic and pharmacological manipulations on foundational mechanisms of cognition in mice.

الآلي، الكمي المعرفي / الفحص السلوكية من الفئران: للحصول على الوراثة، الصيدلة، الإدراك الحيوانية والتعليمات الجامعية

We describe a high-throughput, high-volume, fully automated, live-in 24/7 behavioral testing system for assessing the effects of genetic and ...

Measuring Circadian and Acute Light Responses in Mice using Wheel Running Activity

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2. They are responsible for timing our sleep/wake cycles and hormone secretion. Since this timing is not precisely 24-hours, it is synchronized to the solar day by light input. This is accomplished via photic input from the retina to the suprachiasmatic nucleus (SCN) which serves as the master pacemaker synchronizing peripheral clocks in other regions of the brain and peripheral tissues to the environmental light dark cycle3-7. The alignment of rhythms to this environmental light dark cycle organizes particular physiological events to the correct temporal niche, which is crucial for survival8. For example, mice sleep during the day and are active at night. This ability to consolidate activity to either the light or dark portion of the day is referred to as circadian photoentrainment and requires light input to the circadian clock9. Activity of mice at night is robust particularly in the presence of a running wheel. Measuring this behavior is a minimally invasive method that can be used to evaluate the functionality of the circadian system as well as light input to this system. Methods that will covered here are used to examine the circadian clock, light input to this system, as well as the direct influence of light on wheel running behavior.

This article will review methods that can be used to determine circadian function and light responsiveness in mice.

قياس ردود الإيقاعية الخفيفة والحادة في الفئران باستخدام نشاط عجلة دوارة

Circadian rhythms are physiological functions that cycle over a period of approximately 24 hours (circadian- circa: approximate and diem: day)1, 2.  They ...

Neuroscience

Elevated Plus Maze for Mice

Although the mouse genome is now completely sequenced, the functions of most of the genes expressed in the brain are not known. The influence of a given gene on a specific behavior can be determined by behavioral analysis of mutant mice. If a target gene is expressed in the brain, behavioral phenotype of the mutant mice could elucidate the genetic mechanism of normal behaviors. The elevated plus maze test is one of the most widely used tests for measuring anxiety-like behavior. The test is based on the natural aversion of mice for open and elevated areas, as well as on their natural spontaneous exploratory behavior in novel environments. The apparatus consists of open arms and closed arms, crossed in the middle perpendicularly to each other, and a center area. Mice are given access to all of the arms and are allowed to move freely between them. The number of entries into the open arms and the time spent in the open arms are used as indices of open space-induced anxiety in mice. Unfortunately, the procedural differences that exist between laboratories make it difficult to duplicate and compare results among laboratories. Here, we present a detailed movie demonstrating our protocol for the elevated plus maze test. In our laboratory, we have assessed more than 90 strains of mutant mice using the protocol shown in the movie. These data will be disclosed as a part of a public database that we are now constructing.
Visualization of the protocol will promote better understanding of the details of the entire experimental procedure, allowing for standardization of the protocols used in different laboratories and comparisons of the behavioral phenotypes of various strains of mutant mice assessed using this test. 


The elevated plus maze test is one of the most widely used tests for measuring anxiety-like behavior in mice. Here, we present a movie showing the detailed procedures for conducting the test.

زائد المتاهة مرتفعة على الفئران

Although the mouse genome is now completely sequenced, the functions of most of the genes expressed in the brain are not known. The influence of a given ...

Light Preference Assay to Study Innate and Circadian Regulated Photobehavior in Drosophila Larvae

Light acts as environmental signal to control animal behavior at various levels. The Drosophila larval nervous system is used as a unique model to answer basic questions on how light information is processed and shared between rapid and circadian behaviors. Drosophila larvae display a stereotypical avoidance behavior when exposed to light. To investigate light dependent behaviors comparably simple light-dark preference tests can be applied. In vertebrates and arthropods the neural pathways involved in sensing and processing visual inputs partially overlap with those processing photic circadian information. The fascinating question of how the light sensing system and the circadian system interact to keep behavioral outputs coordinated remains largely unexplored. Drosophila is an impacting biological model to approach these questions, due to a small number of neurons in the brain and the availability of genetic tools for neuronal manipulation. The presented light-dark preference assay allows the investigation of a range of visual behaviors including circadian control of phototaxis.

Light Preference Assay to Study Innate and Circadian Regulated Photobehavior in Drosophila Larvae

Here we describe a light-dark preference test for Drosophila larva. This assay provides information about innate and circadian regulation of light sensing and processing photobehavior.

ضوء الفحص ميول لدراسة الساعة البيولوجية الفطرية وPhotobehavior الخاضعة للرقابة في<em&gt; ذبابة الفاكهة</em&gt; يرقات

Light acts as environmental signal to control animal behavior at various levels. The Drosophila larval nervous system is used as a unique model to answer ...

Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity to Modulate Behavior in Freely Moving Mice

Optogenetic modulation of neuronal circuits in freely moving mice affects acute and long-term behavior. This method is able to perform manipulations of single neurons and region-specific transmitter release, up to whole neuronal circuitries in the central nervous system, and allows the direct measurement of behavioral outcomes. Neurons express optogenetic tools via an injection of viral vectors carrying the DNA of choice, such as Channelrhodopsin2 (ChR2). Light is brought into specific brain regions via chronic optical implants that terminate directly above the target region. After two weeks of recovery and proper tool-expression, mice can be repeatedly used for behavioral tests with optogenetic stimulation of the neurons of interest.
Optogenetic modulation has a high temporal and spatial resolution that can be accomplished with high cell specificity, compared to the commonly used methods such as chemical or electrical stimulation. The light does not harm neuronal tissue and can therefore be used for long-term experiments as well as for multiple behavioral experiments in one mouse. The possibilities of optogenetic tools are nearly unlimited and enable the activation or silencing of whole neurons, or even the manipulation of a specific receptor type by light.
The results of such behavioral experiments with integrated optogenetic stimulation directly visualizes changes in behavior caused by the manipulation. The behavior of the same animal without light stimulation as a baseline is a good control for induced changes. This allows a detailed overview of neuronal types or neurotransmitter systems involved in specific behaviors, such as anxiety. The plasticity of neuronal networks can also be investigated in great detail through long-term stimulation or behavioral observations after optical stimulation. Optogenetics will help to enlighten neuronal signaling in several kinds of neurological diseases.

With optogenetic manipulation of specific neuronal populations or brain regions, behavior can be modified with high temporal and spatial resolution in freely moving animals. By using different optogenetic tools in combination with chronically implanted optical fibers, a variety of neuronal modulations and behavioral testing can be performed.

Optogenetic التلاعب بالنشاط العصبي لتعديل السلوك في الفئران تتحرك بحرية

Optogenetic modulation of neuronal circuits in freely moving mice affects acute and long-term behavior. This method is able to perform manipulations of ...

Investigating Migraine-Like Behavior Using Light Aversion in Mice

Migraine is a complex neurological disorder characterized by headache and sensory abnormalities, such as hypersensitivity to light, observed as photophobia. Whilst it is impossible to confirm that a mouse is experiencing migraine, light aversion can be used as a behavioral surrogate for the migraine symptom of photophobia. To test for light aversion, we utilize the light/dark assay to measure the time mice freely choose to spend in either a light or dark environment. The assay has been refined by introducing two critical modifications: pre-exposures to the chamber prior to running the test procedure and adjustable chamber lighting, permitting the use of a range of light intensities from 55 lux to 27,000 lux. Because the choice to spend more time in the dark is also indicative of anxiety, we also utilize a light-independent anxiety test, the open field assay, to distinguish anxiety from light-aversive behavior. Here, we describe a modified test paradigm for the light/dark and open field assays. The application of these assays is described for intraperitoneal injection of calcitonin gene-related peptide (CGRP) in two mouse strains and for optogenetic brain stimulation studies.

Rodents are not able to report migraine symptoms. Here, we describe a manageable test paradigm (light/dark and open field assays) to measure light aversion, one of the most common and bothersome symptoms in patients with migraines.

التحقيق في السلوك الشبيه بالصداع النصفي باستخدام النفور من الضوء في الفئران

Migraine is a complex neurological disorder characterized by headache and sensory abnormalities, such as hypersensitivity to light, observed as ...

<meta charset="utf8"></head><body>المقايسات السلوكية لاضطراب طيف التوحد في نماذج الفئران

Strategies for Assessing Autistic-Like Behaviors in Mice

Autism spectrum disorder (ASD) is a neurobiologically complex condition with a heterogeneous genetic etiology. Clinically, ASD is diagnosed by social communication impairments and restrictive or repetitive behaviors, such as hand flapping or lining up objects. These behavioral patterns can be reliably observed in mouse models with ASD-linked genetic mutations, making them highly useful tools for studying the underlying cellular and molecular mechanisms in ASD. Understanding how genetic changes affect the neurobiology and behaviors observed in ASD will facilitate the development of novel targeted therapeutic compounds to ameliorate core behavioral impairments. Our lab has employed several protocols encompassing well-described training and testing procedures that reflect a wide range of behavioral deficits related to ASD. Here, we detail two assays to study the core features of ASD in mouse models: self-grooming (a measure of repetitive behavior) and the three-chamber social interaction test (a measure of social interaction approach and preference for social novelty).

<meta charset="utf8"></head><body>استراتيجيات تقييم السلوكيات الشبيهة بالتوحد في الفئران

Rodent models are valuable tools for studying core behaviors related to autism spectrum disorder (ASD). In this article, we expound on two behavioral tests for modeling the core features of ASD in mice: self-grooming, which assesses repetitive behavior, and the three-chamber social interaction test, which documents social impairments.

استراتيجيات تقييم السلوكيات الشبيهة بالتوحد في الفئران

Autism spectrum disorder (ASD) is a neurobiologically complex condition with a heterogeneous genetic etiology. Clinically, ASD is diagnosed by social ...

الضوء / الظلام لاختبار الانتقال الفئران

Transcript

Summary

Explore More Videos

تقييم حسي حركي وظيفة في نماذج الماوس من مرض باركنسون

الآلي، الكمي المعرفي / الفحص السلوكية من الفئران: للحصول على الوراثة، الصيدلة، الإدراك الحيوانية والتعليمات الجامعية

قياس ردود الإيقاعية الخفيفة والحادة في الفئران باستخدام نشاط عجلة دوارة

زائد المتاهة مرتفعة على الفئران

ضوء الفحص ميول لدراسة الساعة البيولوجية الفطرية وPhotobehavior الخاضعة للرقابة في

Optogenetic التلاعب بالنشاط العصبي لتعديل السلوك في الفئران تتحرك بحرية

التحقيق في السلوك الشبيه بالصداع النصفي باستخدام النفور من الضوء في الفئران

استراتيجيات تقييم السلوكيات الشبيهة بالتوحد في الفئران

استراتيجيات تقييم السلوكيات الشبيهة بالتوحد في الفئران

استراتيجيات تقييم السلوكيات الشبيهة بالتوحد في الفئران