Method Article
هنا نحن تصف طرق بسيطة لإعداد الحويصلات، والتغليف من النسخ وآلات الترجمة، ورصد إنتاج البروتين. نظم خالية من الخلايا الناتجة يمكن استخدامها كنقطة انطلاق من خلالها لبناء يقلد الخلوية تزداد تعقيدا.
كما التحولات الفائدة من الجزيئات الفردية لأنظمة الجزيئات، وقد سعى عدد متزايد من مختبرات لبناء من أسفل إلى أعلى يقلد الخلوية التي تمثل أفضل تعقيد الحياة الخلوية. حتى الآن هناك عددا من المسارات التي يمكن اتخاذها لبناء يقلد الخلوية مجزأة، بما في ذلك استغلال مستحلبات الماء في الزيت، وأجهزة ميكروفلويديك، والحويصلات. كل واحد من الخيارات المتاحة لديها مزايا وعيوب محددة. على سبيل المثال، مستحلبات الماء في الزيت تعطي كفاءة عالية التغليف ولكن لا تحاكي جيدا حاجز نفاذية الخلايا الحية. الميزة الأساسية من الطرق الموصوفة هنا هو أنها كلها سهلة ورخيصة لتنفيذ. يتم تغليف آلات النسخ الترجمة داخل الحويصلات فوسفورية خلال العملية التي تستغل الأجهزة المشتركة، مثل المبخر الطرد المركزي والطارد. ويتم رصد ردود الفعل من قبل مضان الطيفي. بروتوكولو يمكن تكييفها لالمؤتلف تعبير البروتين، وبناء يحاكي الخلوية، واستكشاف متطلبات الحد الأدنى للحياة الخلوية، أو الجمعية من الدوائر الجينية.
خالية من الخلايا، في المختبر التفاعلات النسخ الترجمة وتوليد الحويصلات من الدهون الاصطناعية ليست شيئا جديدا. ومع ذلك، والجمع بين اثنين الى الخلوية تقليد هو أكثر بكثير challenging1-6. E. مقتطفات الخلية القولونية مع أو بدون T7 RNA البلمرة يمكن استخدامها كمصدر للآلات النسخ، ترجمة 7،8. فائدة مقتطفات خلية من وجود المكونات الخلوية الإضافية التي يمكن أن تسهل تعبير البروتين وقابلة للطي. بدلا من ذلك، مزيج من حدة تنقية الحمض النووي الريبي وجزيئات البروتين، أي نظام PURE 9، ويمكن استخدامها للتوسط intravesicular تخليق البروتين 4،10-14. نظام PURE يسمح لبناء يقلد الخلوية محددة تماما ولا يعاني من النشاط نوكلياز وجدت في مقتطفات الخلية. عمليا، هذا يعني أنه مطلوب قالب الحمض النووي أقل من ذلك بكثير، مما يسهل عمليات مع انخفاض كفاءة التغليف 11 . وإن كانت أقل استخداما، ويمكن أن يبنى يقلد الخلوية مع مقتطفات الخلية المستمدة من cells15 حقيقية النواة. حتى الآن، تم الإبلاغ عن شلالات مغلفة المشفرة وراثيا ويقلد الخلوية التي الإحساس بالبيئة 16-18.
إن أبسط طريقة لرصد ردود الفعل النسخ الترجمة هو قياس مضان أو التلألؤ من عناصر المشفرة وراثيا. عادة، luciferase يراعة 19 أو GFP تستخدم، على الرغم من أن في المختبر غالبا ما تقاس ردود الفعل من قبل radiolabeling. الكشف عن مضان يسمح أيضا لرصد السكان من الحويصلات 20،21 من خلال الطرق المعتمدة على الخلوي، مما يوفر بعض التبصر في طبيعة العشوائية من العمليات البيولوجية مثل. وقد استخدمت هذه الأساليب الرصد لتحديد مجموعة صغيرة من قواعد التصميم ومكتبة من أجزاء من خلالها بناء من، بما في ذلك مجموعة من البروتينات الفلورية التي تتوافق مع طن النسخ المختبر الترجمة 22، وتأثير منظمة الجيني على التعبير 22، النشاط من العوامل سيجما 16، وكفاءة الإنهاء النسخي 23. ومع ذلك، لا يزال هناك الكثير الذي يتعين القيام به لزيادة القدرة على بناء يمكن التنبؤ بها في المختبر والأجهزة المشفرة وراثيا.
هناك العديد من الأساليب المتاحة لجعل الحويصلات. الأساليب الأكثر شيوعا تعتمد على جيل من فيلم الدهون رقيقة على سطح الزجاج تليها إعادة تعليق في solution24 مائي. إذا كان محلول مائي يحتوي على آلات النسخ، الترجمة، على سبيل المثال، ثم جزء من الحويصلات شكلت شأنه أن يحتوي على العناصر اللازمة لإنتاج البروتين. ومع ذلك، فإن كفاءة التغليف من هذه الأساليب هو منخفض، وهذا يعني أنه ليس هناك سوى نسبة ضئيلة من الحويصلات نشطة. العديد من الطرق البديلة التي تتسم أعلى من ذلك بكثير EFF التغليفiciency استغلال التحويل من قطرات الماء في مستحلب النفطية إلى حويصلات. في حين أنه من المرجح أن مثل هذه الأساليب سوف تكون أمرا شائعا في المستقبل، في الوقت الراهن هذه الأساليب يعانون من الحاجة إلى المعدات المتخصصة وإعطاء الحويصلات مع التراكيب غشاء تتغير 25. ميزة واضحة من المياه في النفط إلى أساليب حويصلة هو القدرة على السيطرة lamellarity الغشاء. وتستند هذه الطريقة الموصوفة هنا على بروتوكول فيلم الدهون رقيقة وصفها من قبل المختبر Yomo 11 مع تعديلات طفيفة بما في ذلك خطوة التجانس إضافية. هذه الطريقة سهلة ورخيصة، ويعطي الحويصلات قوية مناسبة تماما لتغليف آلات النسخ، الترجمة.
1. إعداد قالب الحمض النووي
2. إعداد فيلم الدهن رقيقة
3. إعادة تعليق الدهون والتجانس الحويصلة
4. النتوء حويصلة وتجفيد
5. التغليف ماكينات النسخ الترجمة
6. المجهر
مضان المجهري يكشف لوحظ أن مضان فقط داخل الحويصلات، وذلك لأن مادة extravesicular هو المتدهورة إنزيمي (الشكل 3). للتعبير عن mVenus، يبدأ intravesicular مضان التي يجب مراعاتها بعد 1.5 ساعة عند 37 درجة مئوية وتصل أقصى كثافة مضان في غضون 6 ساعة. درجة الحرارة المثلى وفترة حضانة يمكن أن تختلف تبعا للبنيات المحددة المستخدمة. على سبيل المثال، البروتينات الفلورية مختلفة تنضج بشكل مختلف تماما في درجة الحرارة بطريقة تعتمد. وبعبارة أخرى، فإن المراقبة من إنتاج البروتين لا تعتمد فقط على تخليق البروتين وقابلة للطي ولكن أيضا على تشكيل حامل اللون. ويمكن زيادة تخليق البروتين الكلي من خلال دمج المسام بروتين الغشاء للسماح لتدفق المكونات اللازمة لالمنضب النسخ والترجمة 27.
فمن المستحسن لإجراء مماثل النسخ، transla رد فعل نشوئها في غياب حويصلات لضمان بناء الوراثية استغلال وظيفي. ويتم رصد رد الفعل هذا التحكم بسهولة أكبر عن طريق التحليل الطيفي مضان بدلا من المجهري. الشكل 4 يظهر في رد فعل النسخ المختبر-ترجمة لmVenus ترميز بناء. ردود الفعل Unencapsulated تعطي أعلى بكثير مجموع كثافة مضان من ردود الفعل intravesicular مماثلة. هذا يرجع إلى كفاءة التغليف ولأن إجمالي حجم intravesicular هو أقل بكثير من حجم extravesicular (أي تأثير التخفيف).
الشكل 1. المبخر الدوار ومضخة فراغ. انقر هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .
FO: المحافظة على together.within الصفحات = "دائما">
الشكل 2. وترد السكن وأجزاء من الطارد بشكل منفصل. من اليسار إلى اليمين، حقنة، الجوز التجنيب، تفلون واضعة، الغشاء الداخلي يدعم مع الأسود O-الخواتم التي تواجه بعضها البعض، الطارد الغلاف الخارجي، وحقنة ثانية. انقر هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .
الشكل 3 صور الإسفار من إنتاج البروتين mVenus في الجسيمات الشحمية A و C:. الصور مجال مشرق من الحويصلات الصفاحات بعد 1.5 ساعة و 2.5 ساعة وB &# 160؛ D: إنتاج mVenus هو تصور من قبل مضان (اللون الأخضر) بعد 1.5 و 2.5 ساعة على التوالي. شريط النطاق هو 20 ميكرون. انقر هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .
الشكل 4. وفي رد فعل السيطرة المختبر من عديم المحفظة في المختبر النسخ والترجمة من mVenus. وقد تم قياس كثافة مضان كل 5 دقائق أكثر من 4 ساعة. تم الحصول على البيانات بأداة PCR الوقت الحقيقي. انقر هنا لمشاهدة صورة بشكل اكبر .
على الرغم من أن البيولوجيا الاصطناعية خالية من الخلايا لا يزال في مراحله الأولى، قد وضعت أساسا من التقدم الذي نظم مثل الخلية التي تزداد تعقيدا ويمكن إجراء. كان إعادة تشكيل آلات النسخ، الترجمة من يعرف تماما مكونات 9 داخل الحويصلات 28 أهمية خاصة في تسهيل جهود لاحقا في بناء اصطناعية تستجيب للبيئة cells17، 18. وبالمثل، وقد استخدمت دراسات الخلية الاصطناعية لبحث العمليات التطورية 4،29،30، وتفاصيل الآلية من RNA وتخليق البروتين 22،31، وتأثيرات أيضية load32، 33، والجمعية من الجسيمات الفيروسية 34. الأهم من ذلك، ما يكفي من المعرفة موجود الآن يمكن أن يعاد تشكيل تلك الوظيفة الخلوية الأساسية داخل الحويصلات في المختبر بعد هذه التقارير السابقة والبروتوكولات المذكورة في هذه الوثيقة.
بالإضافة إلى كونه سهل، والتغليف وصفها العلاقات العامةocedure له فوائد عدة. على سبيل المثال، يمكن إجراء العديد من فارغة، مأخوذة حويصلة مجفف بالتجميد في وقت مبكر وتخزينها في -20 درجة مئوية لاستخدامها لاحقا. بروتوكول يفعل الجزيئات البيولوجية لا تخضع للمذيبات العضوية، والتغيرات في درجات الحرارة جذرية، أو فترات طويلة من غسيل الكلى. ونحن نتوقع أن دماثة الإجراء سيسهل دمج مكونات إضافية حسب الحاجة. ونحن أيضا لم يلاحظ الآثار السلبية لتغير تكوين الدهون في غشاء على التغليف أو كفاءة النسخ الترجمة. ولذلك، والدهون أكثر استعدادا لإدراج بروتينات الغشاء، الأشكال التضاريسية محددة، أو التصور يمكن تصور أن تستغل.
فإن القيود الرئيسية من الطريقة الموضحة هو أن الحويصلات الناتجة ليست متجانسة في الحجم أو lamellarity. للعديد من التطبيقات، هذه الصعوبات لا تتعارض مع تفسير البيانات. ومع ذلك، إذا لزم الأمر، ويمكن إدراج خطوات إضافية لال ضيقتوزيع حجم البريد وتقلل من طبقات من الأغشية، مثل جولات أخرى من قذف بعد التغليف، وتجميد ذوبان الجليد، أو غسيل الكلى 35. وسيتم تطوير طرق أفضل مما لا شك فيه أن الالتفاف على هذه المشاكل وغيرها. حتى ذلك الحين، نجد بروتوكول الموصوفة هنا لتكون مناسبة تماما لبناء يقلد الخلوية.
الكتاب ليس لديهم ما يكشف.
الكتاب نعترف مؤسسة Armenise-هارفارد، وماري كوري ترينتينو COFUND (ACS)، المقاطعة المتمتعة بالحكم الذاتي من ترينتو (Ecomm)، وCIBIO للحصول على التمويل.
Name | Company | Catalog Number | Comments |
Quick Spin Mini-prep kit | Qiagen | 27104 | |
Spectrometer | NanoDrop 1000 | NDB767ND | |
POPC | Avanti Polar Lipids | 770557 | MW 760 g/mol Transition Temp -2 °C CAS# 26853-31-6 |
Ethanol | Sigma Aldrich | 459836 | Anhydrous, >99.5% |
Phenol-choloroform-isoamyl alcohol 25:24:1, for molecular biology use | Sigma Aldrich | P3803-100mL | Saturated with 10 mM Tris, pH 8.0, 1 mM EDTA |
Chloroform | Biotech Grade Fluka | 496189-1L | Contain ethanol at 0.5-1.0% v/v as stabilizer |
Brown amber glass bottles | VWR | 89043-518 | 55X 48 mm |
Rotary evaporator | Buchi Rotovapor R-210/Sigma | Z563846EU-1EA | With jack and water bath, 29/32 joint 240 V |
Analog vortex mixer | VWR | 945300 | Speed 1,000-3,200 rpm |
Homogenizer | IKA T10 Basic Ultra-Turbax | 3420000 | |
Mini-extruder | Avanti Polar Lipids | 610020 | |
Extruder filters | Whatman | 610014 | drain disc 10 mm |
Extruder polycarbonate membrane 400 nm | Whatman | 61007 | nuclepore polycarbonate |
Speed vacuum | Labconco | 7970011 | Centritrap DNA concentrator |
PURExpress kit | New England Biolabs | NRM #E6800S | |
RNAse inhibitor (40,000 U/ml) | New England Biolabs | #M0307S | |
Proteinase K (20.2 mg/ml) | Fermentas | #EO0491 | |
Microscope | Zeiss Observer Z1with a AxioCam MRm camera | ||
RealTime | CFX96 Real time PCR Detection System (Biorad) | ||
Silicon press to seal -Molecular Probe | Life Technologies | P18174 | Resistant from -25-30 °C |
Siliconized glass circle cover slides | Hampton Research | HR3-231 | Diameter= 22 mm |
ImageJ | NIH |
Request permission to reuse the text or figures of this JoVE article
Request PermissionThis article has been published
Video Coming Soon
Copyright © 2025 MyJoVE Corporation. All rights reserved