Yazarlar hiçbir katkıda bulunanlar var.

Hayvan çalışmaları yanı sıra ilkeleri laboratuvar hayvan bakım (Ulusal Sağlık Enstitüleri yayını derleyen 8, 2011) Alman mevzuatı tarafından yönetilen kuralları takip edildi. Toplum hayvan bakımı ofisinden (Landesamt für Natur, Umwelt und Verbraucherschutz Nordrhein-Westfalen, Recklinghausen, Almanya) resmi izni verilir.
1. hayvanlar
<ol><li>(25-30 kg ağırlıklı) dişi Alman landrace domuz açık kafeslerde yer alan kullanın.</li>
	<li>Grup (argon ve helyum) başına 5 hayvanlar kullanın.</li>
	<li>En az bir hafta önce deneyler için çevreye parkenizin hayvanlar izin. Hızlı hayvanlar su ücretsiz erişim ile ameliyat öncesi 24 h için.</li>
</ol>2. anestezi
<ol><li>Ketamin (15 mg/kg vücut ağırlığı [BW]), xylazine (10 mg/kg BW) ve atropin (0.1 mg/kg BW) bir kas içi enjeksiyon hayvanlarla 10 dk önce anestezi indüksiyon premedicate.</li>
	<li>Periferik venöz erişim bir 22'lik kanül yerleştirme bir kulak ven içine tarafından kurulmuştur.</li>
	<li>Genel anestezi propofol 2 mg/kg vücut ağırlığı damardan enjeksiyon tarafından ikna etmek.</li>
	<li>Hayvan sırtüstü pozisyonda yerleştirin ve bir boyuna cilt kesi şah oluk subkutan doku künt hazırlanması ile yerleştirme damar 2 cm. uzunluğunda üzerinden performans sağlar. Kanül, sonra Seldinger tel yerleştirin.</li>
	<li>Kanül geri çekmek ve kılavuz tel üzerinden 14 Fr. kateter takın. Kılavuzu geri çek. Kateter uzantısı için bağlanmak ve bir kayış veya dikiş kateter bağlayacaktın.</li>
	<li>Dilini ve düz Laringoskop ekleyin. Laringoskop ucu gırtlak kapağını çekmek için kullanın. Ses tellerini tüpten yerleştirin. Manşet altında glottis yerleştirin ve şişirmek.</li>
	<li>20-26 nefes/dak ve 10 ml/kg gelgit hacmi % 40 oksijen ile son gelgit kısmi karbon dioksit gerilimi 36 ve 42 mm Hg arasında tutmak için havalandırın.</li>
	<li>Anestezi isoflurane, 1-%1,5 konsantrasyon ve fentanil, 3-4 µg/kg/h bir konsantrasyon ile koruyun.</li>
	<li>Zil'ın laktat çözüm 4 mL/kg ilk bir oranda tedarik/s ve sonra laparotomi sürekli infüzyon hızı 8 mL/kg artırmak/s.</li>
</ol>3. cerrahi ve plazma koagülasyon
<ol><li>Hayvan standart bir cerrahi tablo bir sırtüstü pozisyonda yerleştirin.</li>
	<li>Standart cerrahi dezenfektan uygulayarak cilt dezenfekte (2-Propanol 45 g/100 g, 1-Propanol 10 g / 100g, Biphenyl-2-ol 0.2 g/100 g) için 3 kere cerrahi bir bez ile.</li>
	<li>Geniş orta hat laparatomi xiphoid işleminden bir neşter ile pubis için gerçekleştirin ve cerrahi ekartör yükleyin.</li>
	<li>Plazma koagülasyon cihazı yeniden açın, bağlı olarak kullanılan taşıyıcı gaz argon veya helyum gaz şişesi açmak. Gaz akışı için 3 L/dak Select koagülasyon aygıt çıkış gücü istediğiniz gibi ayarlayın. Not: Her iki asil gazlar, Argon veya helyum, plazma koagülasyon için kullanılabilir. Koagülasyon etkileri karşılaştırılabilir. Başvuru7 Ayrıntılar için bkz:.</li>
	<li>Plazma koagülasyon üzerinde karaciğer sol lob yukarıda açıklanan7olarak gerçekleştirin. Bir titanyum kalıp (kare diyafram 1 x 1 cm2) koagülasyon bölgesi standart hale getirmek için kullanın. Koyulaştırmak için 5 bir sonda mesafe 1 cm ile s. Farklı güç ayarları ile coagulations coagulations 5 mm (Şekil 1) arasında kısa bir mesafe ile yan yana gerçekleştirilebilir.</li>
	<li>Karaciğer hasat için tüm bağları bağlantıları karaciğere bölün. İzole ve portal ven ve ortak safra kanalını uzun bölümlerini bırakarak üstün duodenal kivrimi yukarıda hepatik Transpediküler bölün. Yukarıda ve aşağıda karaciğer caval ven bölmek ve organ almak.</li>
	<li>Karaciğer hasat sonrası, domuzlar 0,16 g/kg BW Fentobarbital damardan yönetimi tarafından euthanized.</li>
	<li>Patlama basınç deneyler için sol mediyal karaciğer lob yarısı ile keskin makas çıkarabileceğim. Plazma kesme koagüle yüzey (100W çıkış gücü) veya fibrin dolgu macunu (Şekil 2) ile kesme yüzeyi mühür.</li>
</ol>4. mikro ölçüm
Not: Lazer Doppler spektroskopisi doku Doppler kayması eritrositler hareketi tarafından neden ölçme yoluyla kan akışını belirleyebilirsiniz. Lazer sinyal hareketli eritrositler numarası ile karşılıklı olarak ilişkilendirir. Lazer Doppler spektroskopisi klinik kullanımda (örneğin nakli tıp) ve oldu birden çok kez15doğrulanmış.
<ol><li>Lazer Doppler akış ölçer ve spektrofotometre geçiş yapar. Düz bir sonda kullanın.</li>
	<li>Temel ölçü birimlerinin akışı ve hız için al. Kaydetmek veya değerleri not edin.</li>
	<li>Koagülasyon altında 3.5 açıklandığı gibi gerçekleştirin.</li>
	<li>Koagülasyon siteleri ve ölçü akışı ve hız düz sonda bir yer. Yine, kaydetmek veya değerleri not edin.</li>
	<li>Coagulator aygıt için tüm güç ayarlarını yineleyin.</li>
</ol>5. sıcaklık ölçümü
<ol><li>(Termografik kamera, dizüstü bilgisayar ve kızılötesi termometre) sistemde geçin ve ölçümler gerçekleştirmeden önce en az 1 h için çalışmasına izin.</li>
	<li>Odak ayarlamak ve koagülasyon sitede termografik kamera çerçeve görüntüleyin. Kızılötesi dizileri 20 büyük bir sıcaklık çözünürlük ile 1024 x 768 piksel çözünürlük kayma ile tespit mK. Göz önünde bu Koagülasyon ve çevreleyen doku — ısı transferi tarafından etkilenen — görünüm ortasında yer alır. Not: Bu en iyi bir uzaysal çözünürlük için mümkün olduğunca çok sayıda piksel çerçeve içermelidir.</li>
	<li>Termografik kamera 2 dk süre ile karaciğer yüzeyinde plazma coagulator ile kayıt koagülasyon işlemi.</li>
	<li>Görüntü sıralarıyla termografi analiz yazılımı analiz: bölgeleri ilgi tanımlamak. Not: Yazılım zaman içinde karşılık gelen ortalama sıcaklığı sahası hesaplar.</li>
</ol>6. koagülasyon derinlik ölçümü
<ol><li>Sol mediyal karaciğer lob keskin makas ile hasat.</li>
	<li>Koagülasyon siteleri 1 cm kalınlık ile tüketim. İçin daha fazla alay 3 mm kalınlığında boyuna bölümler halinde kesin.</li>
	<li>Düzeltme doku örnekleri gecede tarafsız % 10 ile 4 ° C'de formalin arabelleğe alınmış. Parafin erime noktası üzerinden 2 ° C ısı ve dilimleri embed. İşlem gecede.</li>
	<li>Hematoksilen eozin boyama gerçekleştirmek.<ol>
<li>Deparaffinize ve doku daha sonra 2'de daldırma tarafından hidrat x ksilen, % 100 etanol (alkol), % 95 alkol, %70 alkol, deiyonize H2O 2 dk için.</li>
		<li>Meyer'ın hematoksilen çözüm 3 dk ile doku örneği leke.</li>
		<li>Şimdi 5 min için musluk suyundaki durulayın.</li>
		<li>Eozin çözüm 3 dk dokuyla leke.</li>
		<li>2 x EtOH %95 ve o zaman ksilen 3 dk her durulayın. Standart Montaj orta ile bağlayın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Sistem (düşsel bilgisayar yazılımı mikroskop bağlı fotoğraf makinesinde) geçin. 40 X büyütme ile tüm bölümleri görüntüleyin.</li>
	<li>Bir nesne mikrometre görüntüsünü 40 X büyütme oranında al. Hedefleri penceresinde yapılan düğmesine basın. Manuel Kalibrasyon seçin. 100 µm. mm, iletişim kutusunda Enter 0,1 mikrometre görüntü üzerinde bir çizgi çizin ve OK tuşuna basın.</li>
	<li>Uzunluğu görünümünde seçin > analiz denetimleri > ek açıklamaları ve ölçümler pencere. Koagülasyon kenar boşluğuna fare ile karaciğer yüzeyden ölçmek. Verme veya sonuç not edin. Aynı slaytta yer alan başka bir yere ölçüm yineleyin. Not: Koagülasyon derinliği kolayca normal hepatosit kordonlar ve nekroz küçülmüş sitoplazma, pyknotic çekirdeği ve kanama bölgeler bölge arasında keskin farkla normal karaciğer dokusundan farklı.</li>
	<li>Dışarı iki ölçüm ortalamasını hesaplamak.</li>
</ol>7. patlama basınç ölçüm
<ol><li>Anahtarı (otomatik pompalar, basınç ölçer) üstünde belgili tanımlık sistem. Karaciğer örnekleri adım 3.7 göre hazırlayın. Not: bir 3-yol-stopcock yolu ile bağlı iki paralel pompa kullanın. 1500 mm Hg maksimal baskısı ile tek bir pompa alınamıyor.</li>
	<li>Portal ven, ortak hepatik arter ve safra kanalını haptic Transpediküler makasla izole etmek. Portal ven overholt forseps ile kelepçe ve monofil dikiş 4-0 ile ligate. Ortak hepatik arter overholt forseps klamp ve monofil dikiş 4-0 ile ligate.</li>
	<li>Ch-16 kateter ortak safra kanalını yerleştirin ve 2-0 ipek sütür ile ligate. Kateter otomatik pompalar bağlanmak, 3'lü stopcock olan basınç ölçer (Şekil 3) yükleyin.</li>
	<li>Serum perfüzyon şırıngaya doldur.</li>
	<li>Otomatik pompalar 99 mL/h teslimat oranı ile başlayın.</li>
	<li>Karaciğer kesme yüzeyi ve basınç ölçer patlama basınç kaçağı ve kayıt için izleyin. Not: sızıntı daha kolay tanınması için patent mavi serum (2 mL patent mavi + 18 mL serum fizyolojik) eklenebilir. Patlama basınç basınç ölçer üzerinde basınç kaybı saat fark tarafından gözlemlemek kolaydır.</li>
</ol>

<ol><li>Link, W. J., Incropera, F. P., Glover, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+plasma+scalpel%3A+comparison+of+tissue+damage+and+wound+healing+with+electrosurgical+and+steel+scalpels%5BTitle%5D)+AND+%22ArchSurg%22%5BJournal%5D)">A plasma scalpel: comparison of tissue damage and wound healing with electrosurgical and steel scalpels.</a> ArchSurg. 111, 392-397 (1976).</li>
<li>Kwon, A. H., Inui, H., Kamiyama, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Successful+laparoscopic+haemostasis+using+an+argon+beam+coagulator+for+blunt+traumatic+splenic+injury%5BTitle%5D)+AND+%22EurJSurg%22%5BJournal%5D)">Successful laparoscopic haemostasis using an argon beam coagulator for blunt traumatic splenic injury.</a> EurJSurg. 167, 316-318 (2001).</li>
<li>Frilling, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effectiveness+of+a+new+carrier-bound+fibrin+sealant+versus+argon+beamer+as+haemostatic+agent+during+liver+resection%3A+a+randomised+prospective+trial%5BTitle%5D)+AND+%22Langenbecks+ArchSurg%22%5BJournal%5D)">Effectiveness of a new carrier-bound fibrin sealant versus argon beamer as haemostatic agent during liver resection: a randomised prospective trial.</a> Langenbecks ArchSurg. 390, 114-120 (2005).</li>
<li>Raiser, J., Zenker, M. <a target="_blank" href="http://iopscience.iop.org/article/10.1088/0022-3727/39/16/S10/pdf">Argon plasma coagulation for open surgical and endoscopic applications: state of the art.</a> J Phys Appl Phys. 39 (16), 3520-3523 (2006).</li>
<li>Farin, G., Grund, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Technology+of+argon+plasma+coagulation+with+particular+regard+to+endoscopic+applications%5BTitle%5D)+AND+%22EndoscSurgAllied+Technol%22%5BJournal%5D)">Technology of argon plasma coagulation with particular regard to endoscopic applications.</a> EndoscSurgAllied Technol. 2, 71-77 (1994).</li>
<li>Grund, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argon+plasma+coagulation+%28APC%29%3A+ballyhoo+or+breakthrough%3F%5BTitle%5D)+AND+%22Endoscopy%22%5BJournal%5D)">Argon plasma coagulation (APC): ballyhoo or breakthrough?</a> Endoscopy. 29, 196-198 (1997).</li>
<li>Glowka, T. R., Standop, J., Paschenda, P., Czaplik, M., Kalff, J. C., Tolba, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argon+and+helium+plasma+coagulation+of+porcine+liver+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22J+Int+Med+Res%22%5BJournal%5D)">Argon and helium plasma coagulation of porcine liver tissue.</a> J Int Med Res. , (2017).</li>
<li>Dowling, R. D., Ochoa, J., Yousem, S. A., Peitzman, A., Udekwu, A. O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Argon+beam+coagulation+is+superior+to+conventional+techniques+in+repair+of+experimental+splenic+injury%5BTitle%5D)+AND+%22JTrauma%22%5BJournal%5D)">Argon beam coagulation is superior to conventional techniques in repair of experimental splenic injury.</a> JTrauma. 31, 717-720 (1991).</li>
<li>Go, P. M., Goodman, G. R., Bruhn, E. W., Hunter, J. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+argon+beam+coagulator+provides+rapid+hemostasis+of+experimental+hepatic+and+splenic+hemorrhage+in+anticoagulated+dogs%5BTitle%5D)+AND+%22JTrauma%22%5BJournal%5D)">The argon beam coagulator provides rapid hemostasis of experimental hepatic and splenic hemorrhage in anticoagulated dogs.</a> JTrauma. 31, 1294-1300 (1991).</li>
<li>Brand, C. U., Blum, A., Schlegel, A., Farin, G., Garbe, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+argon+plasma+coagulation+in+skin+surgery%5BTitle%5D)+AND+%22Dermatology%22%5BJournal%5D)">Application of argon plasma coagulation in skin surgery.</a> Dermatology. 197, 152-157 (1998).</li>
<li>Carus, T., Rackebrandt, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collateral+tissue+damage+by+several+types+of+coagulation+%28monopolar%2C+bipolar%2C+cold+plasma+and+ultrasonic%29+in+a+minimally+invasive%2C+perfused+liver+model%5BTitle%5D)+AND+%22ISRNSurg%22%5BJournal%5D)">Collateral tissue damage by several types of coagulation (monopolar, bipolar, cold plasma and ultrasonic) in a minimally invasive, perfused liver model.</a> ISRNSurg. , 518924(2011).</li>
<li>Bludau, M., Vallbohmer, D., Gutschow, C., Holscher, A. H., Schroder, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+measurement+of+gastric+mucosal+microcirculation+using+a+combined+laser+Doppler+flowmeter+and+spectrophotometer%5BTitle%5D)+AND+%22DisEsophagus%22%5BJournal%5D)">Quantitative measurement of gastric mucosal microcirculation using a combined laser Doppler flowmeter and spectrophotometer.</a> DisEsophagus. , (2008).</li>
<li>Beckert, S., Witte, M. B., Konigsrainer, A., Coerper, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+impact+of+the+Micro-Lightguide+O2C+for+the+quantification+of+tissue+ischemia+in+diabetic+foot+ulcers%5BTitle%5D)+AND+%22Diabetes+Care%22%5BJournal%5D)">The impact of the Micro-Lightguide O2C for the quantification of tissue ischemia in diabetic foot ulcers.</a> Diabetes Care. 27, 2863-2867 (2004).</li>
<li>Erdogan, D., de Graaf, W., van Gulik, T. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adhesive+strength+of+fibrinogen-coated+collagen+patch+or+liquid+fibrin+sealant+in+an+experimental+liver+resection+model+in+pigs%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+Surg+Res+Eur+Chir+Forsch+Rech+Chir+Eur%22%5BJournal%5D)">Adhesive strength of fibrinogen-coated collagen patch or liquid fibrin sealant in an experimental liver resection model in pigs.</a> Eur Surg Res Eur Chir Forsch Rech Chir Eur. 41 (3), 298-302 (2008).</li>
<li>Knobloch, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcirculation+of+the+sternum+following+harvesting+of+the+left+internal+mammary+artery%5BTitle%5D)+AND+%22ThoracCardiovascSurg%22%5BJournal%5D)">Microcirculation of the sternum following harvesting of the left internal mammary artery.</a> ThoracCardiovascSurg. 51, 255-259 (2003).</li>
<li>Kanzler, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recommendation+for+severity+assessment+following+liver+resection+and+liver+transplantation+in+rats%3A+Part+I%5BTitle%5D)+AND+%22Lab+Anim%22%5BJournal%5D)">Recommendation for severity assessment following liver resection and liver transplantation in rats: Part I.</a> Lab Anim. 50 (6), 459-467 (2016).</li>
<li>Pehböck, D., Dietrich, H., Klima, G., Paal, P., Lindner, K. H., Wenzel, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anesthesia+in+swine+optimizing+a+laboratory+model+to+optimize+translational+research%5BTitle%5D)+AND+%22Anaesthesist%22%5BJournal%5D)">Anesthesia in swine optimizing a laboratory model to optimize translational research.</a> Anaesthesist. 64 (1), 65-70 (2015).</li>
<li>Nykonenko, A., Vávra, P., Zonča, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Anatomic+Peculiarities+of+Pig+and+Human+Liver%5BTitle%5D)+AND+%22Exp+Clin+Transplant+Off+J+Middle+East+Soc+Organ+Transplant%22%5BJournal%5D)">Anatomic Peculiarities of Pig and Human Liver.</a> Exp Clin Transplant Off J Middle East Soc Organ Transplant. 15 (1), 21-26 (2017).</li>
<li>Fechner, G., von Pezold, J., Luzar, O., Hauser, S., Tolba, R. H., Müller, S. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modified+spectrometry+%28O2C+device%29+of+intraoperative+microperfusion+predicts+organ+function+after+kidney+transplantation%3A+a+pilot+study%5BTitle%5D)+AND+%22Transplant+Proc%22%5BJournal%5D)">Modified spectrometry (O2C device) of intraoperative microperfusion predicts organ function after kidney transplantation: a pilot study.</a> Transplant Proc. 41 (9), 3575-3579 (2009).</li>
<li>Patterson, E. J., Scudamore, C. H., Owen, D. A., Nagy, A. G., Buczkowski, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Radiofrequency+ablation+of+porcine+liver+in+vivo%3A+effects+of+blood+flow+and+treatment+time+on+lesion+size%5BTitle%5D)+AND+%22AnnSurg%22%5BJournal%5D)">Radiofrequency ablation of porcine liver in vivo: effects of blood flow and treatment time on lesion size.</a> AnnSurg. 227, 559-565 (1998).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

Kemirgen modelleri karaciğer ameliyatı için uzun süre16için kurulur. Yine de, büyük hayvan modeller belirli avantajlar sunuyor: mikrocerrahi hiçbir ekipman gibi insanlar için standart operatif ekipman uygulanabilir, cerrahi teknik klinik kullanım için karşılaştırılabilir ve standart klinik değerlendirme yöntemleri-ebilmek var olmak gerekli deneyler için transfer. Örneğin, standart klinik kan testleri için özel laboratuvar test yöntemleri (Şekil 10) gerek kalmadan yapılabilir.
Onların fizyolojisi çok insan17benzeyen domuz kardiyorespiratuvar araştırma için uygun Laboratuvar hayvanları şunlardır. Boyutu, gelen bir segmental yapısı ve histoloji benzerlik nedeniyle domuzlar da standart Laboratuvar hayvanlarının deneysel karaciğer ameliyatı18için vardır. Plazma koagülasyon domuz modelinde nedeniyle faydaları (benzerlik insan fizyolojisi ve standart klinik donanım değerlendirilmesi)7değerlendirilmiştir. Ameliyat tekniklerinin aksine anesthesiologic yönetimi kolayca yaygınlaştırılması olamaz. Özellikle hava yolu yönetimi zor17olabilir. Glottis kesici mesafe çok uzun ve anatomi orotracheal entübasyon için deneyimsiz araştırmacı zorlaştırır insanlar farklıdır. Buna ek olarak, kurtarma stratejileri (örneğin trakeostomi) mevcut olması gerekir maskesi havalandırma domuzlarda, neredeyse mümkün değildir.
Plazma koagülasyon benzer sonuçlar elde etmek için araştırmacı kesinlikle sonda mesafe ve pıhtılaşma süresi standartlaştırmak için dikkat almalısınız. O sonda mesafe Bakımı nispeten kolay olmakla birlikte, bir kronometre 5 saymak için kullanılabilir koagülasyon s. Plazma koagülasyon karaciğer yüzeyinde açıklanan tekniği plazma koagülasyon karaciğer vivo içinde7temel etkileri üzerinde temel araştırma kullanılmıştır. Domuz anestezi, ameliyat ve plazma koagülasyon yukarıda açıklanan teknikleri de büyük hepatik rezeksiyon incelemek ve bundan sonra sızdırmazlık kesme yüzeyi farklı teknikler karşılaştırmak için kullanılabilir.
Lazer Doppler akış ölçer ve spektrofotometre mikro ölçümler için bir standart klinik aracı19 ve dolaşım doğrudan organ parankimi üzerinde değerlendirilmesi için son derece yararlı olduğu ortaya çıktı. Kan akımı ve kan akım hızı değerleri olmayan invasivity avantajı ile hesaplanır. Doppler ölçümleri koagülasyon için objektif bir parametre ile ilişkili olabilir bu yüzden mikro parametreler yalnızca dolaylı koagülasyon etkisinin önlemlerdir. Bizim deneylerde histolojik koagülasyon derinlik korelasyon için kullanılır.
Bir eksiklik sıcaklık ölçüm plazma ışınını sıcaklığını her iki aygıtın üst eşiğin olduğundan koagülasyon sırasında plazma ışınını sıcaklığını ölçmek için yetersizlik olduğunu. Kızılötesi termometre termografik kamera Kur daha karmaşıktır, ancak daha hassas veri sağlar, ancak uygulamak kolaydır. Temel sıcaklık olmadan koagülasyon (domuz vücut sıcaklığı ~38.5 ° C17) beklenenden daha düşük vücut ısısı laparotomi yıkıcı etkilerini gösteren. Ölçülen sıcaklık sırasında ve sonrasında koagülasyon, karaciğer mükemmel perfüzyon gösteren artırmaz. Bu termal çalmak etkisi karaciğer radyo frekansı ablasyon20bilinir. Patlama basınç yönetim yapılan safra kanalını sistem yerine hepatik gemiler için basit bir nedeni: (fibrin dolgu macunları için olduğu gibi) daha büyük gemiler imzalamaya plazma coagulators için imkansız. Daha büyük gemiler rezeksiyon sırasında bakmaksızın iken her iki araçlarının ikincil hemostaz rezeke organ kesme yüzeyi kapatın. Patlama basınç deneylerimiz biraz bildirilen tekniği14' e göre modifiye edilmiştir. Kuruluş nedenlerle explanted organ patlama basıncı ölçülür. Bu kurallar kan basıncı dışarı etkileri ile ilgili ve çok daha derin kullanım veya In-vivo organları uygulamak daha kolaydır. Deneyler bu nedenle, farklılık gösterebilir basınç değerleri periosteum /In-vivo ölçümleri nedeniyle değişmiş karaciğer (genellikle yüksek basınç explanted organ) yapısı. Yukarıda açıklanan veri bloğu baskı tekniği de gerçekleştirilen In-vivoolabilir.

Argon plazma koagülasyon (APC) için üç yıl1,2' den daha fazla karın cerrahisinde bir yaygın olarak kullanılan alettir. Karaciğer mühürleyerek büyük hepatectomy daha sonra kanama3önlemek için yüzey kestikten sonra sekonder hemostaz başarı için standart bir tekniktir. Plazma koagülasyon iyonize gaz bir yay ile elektrik enerjisi teslim Radyofrekans elektrokoter özel bir şeklidir. Monopolar Elektrotermik hemostaz sağlayarak, bu aygıtlar teknik için doku4sopa elektrot önleme avantajına sahiptir. İyonize gaz ışın en düşük elektriksel direnç alanına otomatik olarak yönlendirilir ve direnç henüz kurumuş diğer bölgelerine kuruma nedeniyle doğduğunda uzakta etkinleşir. Bu bir üniforma sınırlı derinlik koagülasyon5,6üretir. Koagülasyon etkisi etkileyen faktörlerdir belgili tanımlık harekete geçirmek zaman, koagülasyon aygıt ve doku sonda mesafe güç ayarı. Helyum plazma koagülasyon7için kullanılabilir başka bir taşıyıcı gaz var. Histolojik ve fonksiyonel bulgular3,8,9, deneysel çalışmalar üzerine vitro araştırmalar10 odaklanmış iken yerine üzerine konsantre klinik sonuçlar son klinik çalışmalar veya izole organ periosteum11üzerinde deneyler.
Büyük bir hayvan modelinde standart insan domuzlar üzerinde kullanýlýyor klinik uygulama yakın plazma koagülasyon etkileri çalışmanın temel Protokolü sağlar: mikro lazer Doppler Flowmetre tarafından değerlendirildi noninvazif ve spektrofotometre, bu gösterge12,13standart bir klinik araçtır. Sıcaklık değişiklikleri koagülasyon sırasında bir kızılötesi termometre ve termografik kamera ile izlenir. Koagülasyon derinliği histolojik hematoksilen/eozin doku örnekleri hasat sonrası bölümleri lekeli ölçülür. Sekonder hemostaz için diğer araçlar ile karşılaştırma için patlama basınç deneyler yapılmaktadır. Yukarıda açıklanan teknikleri14aksine, Bunlar kan basıncı dışlamak için explanted organları yapılır ile ilgili etkileri. Yerel etkileri plazma koagülasyon açıklanan soruşturma ek olarak, standart kan testleri de domuz modelinde üstlenilen.

<table><tbody><tr><td>Xylazine 20 mg/mL</td><td>Vetoquinol GmbH</td><td>Xylapan</td><td></td></tr><tr><td>Ketamine 100 mg/mL</td><td>Ceva GmbH</td><td>Ceva Ketamine Injection</td><td></td></tr><tr><td>Atropine 100 mg / 10 mL</td><td>Dr. Franz K&amp;ouml;hler Chemie GmbH</td><td>Atropinsulfat K&amp;ouml;hler 100mg Amp.</td><td></td></tr><tr><td>Propofol</td><td>Fresenius Kabi GmbH</td><td>Propofol 1% MCT Fresenius</td><td></td></tr><tr><td>Fentanyl</td><td>KG Rotexmedica GmbH</td><td>Fentanyl 0,5mg Rotexmedica</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbot GmbH</td><td>Forene 100% (V/V) 250 mL</td><td></td></tr><tr><td>Ringer&#039;s lactate solution</td><td>Baxter Deutschland GmbH</td><td></td><td>sodium 131mmol/l, potassium 5 mmol/l, calcium 2 mmol/l, cloride 111 mmol/l, lactate 29 mmol/l</td></tr><tr><td>Surgical disinfactant</td><td>Sch&amp;uuml;lke &amp;amp; Mayr GmbH</td><td>Kodan Tinktur forte gef&amp;auml;rbt 1l 104804</td><td></td></tr><tr><td>Motorized microscope</td><td>Nikon Instruments Europe</td><td>Eclipse TE2000-E</td><td></td></tr><tr><td>Microscope camera</td><td>Nikon Instruments Europe</td><td>Digitalsight DS-Qi1Mc</td><td></td></tr><tr><td>Imaging software</td><td>Nikon Instruments Europe</td><td>NIS elements Vers. 4.40</td><td></td></tr><tr><td>Plasma coagulator</td><td>S&amp;ouml;ring GmbH</td><td>CPC-1000</td><td></td></tr><tr><td>Argon gas</td><td>Linde AG</td><td>Argon 4.8&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Helium gas</td><td>Linde AG</td><td>Helium 4.8</td><td></td></tr><tr><td>O2C</td><td>LEA Medizintechnik GmbH</td><td>O2C Version 1212</td><td>with LF-2 or LF-3 probe</td></tr><tr><td>Infrared thermometer</td><td>Voltcraft</td><td>VOLTCRAFT IR 260-8S</td><td></td></tr><tr><td>Thermographic camera</td><td>InfraTec GmbH</td><td>VarioCAM HD head 820</td><td></td></tr><tr><td>Thermographic analysis software</td><td>InfraTec GmbH</td><td>IRBIS 3</td><td></td></tr><tr><td>Mayer&#039;s Hematoxylin solution</td><td></td><td>Merck 1.09249</td><td></td></tr><tr><td>Eosin solution</td><td>VWR International GmbH</td><td>Merck 1.09844</td><td></td></tr><tr><td>Rollerpump Masterflex L/S easy Load</td><td>Cole-Parmer Instrument Company</td><td>model 7518-10</td><td></td></tr><tr><td>Perfusorpump</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td>Perfusor secura FT</td><td></td></tr><tr><td>Digital pressure meter</td><td>Greisinger electronic</td><td>GMH 3161</td><td></td></tr><tr><td>Perfusorsyringe, 50 mL</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td>REF 8728810 F</td><td></td></tr><tr><td>Perfusor line, Type IV Standard, PVC Luer lock</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td>REF 8722960</td><td></td></tr><tr><td>3-Way stopcock, Dicofix C35C</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td>REF 16494 C</td><td></td></tr><tr><td>Silk 2-0. 3 metric</td><td>Resorba</td><td>REF H5F</td><td></td></tr><tr><td>Vicryl 4-0 Sutupak</td><td>Ethicon</td><td>V1224H</td><td></td></tr><tr><td>NaCl 0.9 %</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

assessment of plasma coagulation on liver tissue in a large animal model in vivo

Plazma koagülasyon elektrokoter biçimi olarak yıllardır karaciğer ameliyatta kanama daha sonraki bir aşamada önlemek için büyük hepatectomy sonra geniş karaciğer kesme yüzeyi mühürlemek için kullanılır. Plazma koagülasyon karaciğer dokusu üzerinde tam etkileri sadece kötü incelenir. Bizim domuz modelinde, koagülasyon etkileri yakın klinik uygulama incelenebilir. Bir kombine lazer Doppler akış ölçer ve spektrofotometre belgeleri mikro koagülasyon 8 mm doku derinlikte sırasında noninvazif,-mek şartıyla hemostaz öznel klinik izlenim ötesinde ölçülebilir vukuf değiştirir. Koagülasyon sitesi sıcaklığında bir kızılötesi termometre rahip ve post Koagülasyon ve termografik kamera ile koagülasyon sırasında değerlendirilir, gaz ışın sıcaklık ölçüm aygıtları üst eşik nedeniyle mümkün değildir. Koagülasyon derinliği mikroskobik hematoksilen eozin/bölümler kalibrasyon sonra lekeli bir nesne mikrometre ile ölçülür ve güç ayarı-koagülasyon derinlik ilişkisi hakkında tam bir bilgi verir. Bir plazma coagulator büyük kan damarları imzalamaya mümkün değil gibi sızdırmazlık etkisi safra kanalları üzerinde incelenir. Patlama basınç deneylerde yürütülen dışarı explanted organlarda kan basıncı dışarı kural etkileri ile ilgili.

Mikro: Hemostazın plazma koagülasyon takip için tanı cihazı kullanan mikro değişikliklerden göstermiş olabilir. Kılcal kan akışı (rasgele birimleri (AU) görüntülenir) azalır 142.7 ± 76,08 bir temel değerinden AU 57.78 ± 49.57 48,5 ± 7.26 25 W aygıt çıkış gücü AU AU 50 W ve 5,04 ± 1,31 AU 100 W (Şekil 4).
Sıcaklığı: Koagülasyon siteleri sıcaklığında termografik kamera (Şekil 5) ile ölçüldü. Sadece önemsiz sıcaklık değişiklikleri bir kızılötesi termometre ile belgelenmiştir. Bir temel sıcaklık 32.42 ± gösterdi 2,27 ° C. 25 W ile koagülasyon sonra sıcaklık oldu 33.33 ± 1.81 ° C. Koagülasyon 50 W lazer ile vermiştir 31.17 ± sıcaklığını 2.13 ° C. 100 W maksimum güç ayarıyla birlikte koagülasyon sonra sıcaklık çoğunlukla değişmeden 30.17 ± 3.19 ° C (Şekil 6).
Koagülasyon derinliği: Plazma koagülasyon nekrozu yüzeysel bir bölge ile yapabilirsiniz oluşturur normal karaciğer parankimi (Şekil 7) kolayca ayırt edici olması. Nekroz derinliği birden çok bölüm ölçülebilir ve plazma coagulator yükselen güç seviyeleri ile değil tamamen doğrusal bir artış gösterir. Helyum plazma koagülasyon, koagülasyon derinliğidir 230.2 ± 57.83µm 25W adlı, 314.6 ± 87.39 µm 50 W, 75W adlı 292.2 ± 45.65 µm ve 412.9 ± 160.9 µm, 100 W aygıt çıkış gücü (Şekil 8). Cihazın çıkış gücü serbestçe seçilebilir ve koagülasyon derinlik7ile pozitif korelasyon açmadı.
Patlama basıncı: Patlama basınç ölçümleri explanted sol mediyal karaciğer lob gösterir kesilmiş yüzeyinde hiçbir fark helyum (1254±578.7 mmHg) veya argon (1003 ± 554.4 mmHg) plazma koagülasyon (Şekil 9) sonra yürütülen. Veri bloğu baskılar fibrin dolgu macunları7 ' ye kıyasla daha düşük ama klinik kullanım için uygun gibi görünüyor.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig1.jpg"> Şekil 1: argon plazma koagülasyon sonra sol mediyal karaciğer LOB. Sol mediyal karaciğer lob sekiz koagülasyon sitelerinde (üst soldan sağa yukarıdan aşağıya doğru: 10 W, W, W, W, W, 50 W, 75 W, 100 W 30 25 20 15). Kalıp ile standart koagülasyon ölçüde. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig2.jpg"> Şekil 2: patlama basınç ölçümleri için karaciğer nakli hazırlanması. Karaciğer lob yarısı rezeke ve karaciğer kesme yüzeyi fibrin dolgu macunu ile kilitlendi. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig3.jpg"> Şekil 3: patlama basınç ölçümleri için donatım. Otomatik pompa (şırınga serum dolu) ve basınç ölçer ile 3-yol-stopcock bağlı. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig4.jpg"> Şekil 4: mikro değişiklikleri. Önce değişiklikleri kan akışı (rasgele birimi olarak görüntülenir) ve 25 W argon plazma koagülasyon sonra 100 W aygıt ve 50 W çıkıș gücü (n = 3-6). * P= < 0,05, 1 yönlü ANOVA. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig5.jpg"> Şekil 5: koagülasyon siteleri sıcaklıkta ölçülen ile termografik kamera. Örnek resim helyum plazma koagülasyon 40W aygıt çıkış gücü ile sırasında termografik kamera ile. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 6" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig6.jpg"> Şekil 6: koagülasyon siteleri sıcaklıkta ölçülen bir kızılötesi termometre ile. Koagülasyon siteleri sıcaklıkta ölçülen bir kızılötesi termometre ile önce ve sonra argon plazma koagülasyon (n = 3-6). <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig6large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 7" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig7.jpg"> Şekil 7: yüzeysel nekroz helyum plazma koagülasyon takip bölgenin. Hematoksilen eozin karaciğer Bölüm 40 X büyütme, lekeli. Nekroz bölgenin bir kayıp hepatosit kordon mimarisinin hücreleri küçülmüş sitoplazma ve kanama bölgeleri gösterir. Oklar, koagülasyon iki farklı yerlerde derinliğini gösterir. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig7large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 8" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig8.jpg"> Şekil 8: helyum plazma koagülasyon takip koagülasyon derinlik. Farklı güç seviyeleri derinlikte koagülasyon (25W, 50W, 75W ve 100W, n = 6). * P= < 0,05, *** P= < 0.001, 1 yönlü ANOVA. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig8large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 9" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig9.jpg"> Şekil 9: patlama basıncı. Basınç ölçümleri argon veya helyum plazma koagülasyon takip kesim karaciğer yüzeyinde patlıyor. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig9large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 10" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57355/57355fig10.jpg"> Şekil 10: kan testi sonuçları. Klinik Biyokimya ve kan gazı sonuçları daha önce gösterilen ve aşağıdaki argon plazma koagülasyon parametreleri seçili. Koagülasyon sitesinde yerel değişiklikler için sınırlı plazma koagülasyon etkilerini gösteren herhangi bir önemli değişiklik oluşur. <a href="https://cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57355/57355fig10large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo at JoVE.com

Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo

Burada deneysel olarak karaciğer dokusu içinde vivoplazma koagülasyon değerlendirmek için bir protokol mevcut. Bir domuz modelinde mikro lazer Doppler tarafından incelenir, koagülasyon derinlik histolojik olarak ölçülür, koagülasyon sitesini kızılötesi termometre ve termografik kamera ve kanal etkisi sızdırmazlık sıcaklıkta patlama basıncı ile belgelenen deneyler.

Plazma koagülasyon büyük hayvan modeli Vivo içinde karaciğer dokusu üzerinde değerlendirilmesi

Plasma coagulation as a form of electrocautery is used in liver surgery for decades to seal the large liver cut surface after major hepatectomy to prevent ...

assessment-plasma-coagulation-on-liver-tissue-large-animal-model

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo

8.8K Görüntüleme.  University of Bonn. Burada deneysel olarak karaciğer dokusu içinde vivoplazma koagülasyon değerlendirmek için bir protokol mevcut. Bir domuz modelinde mikro lazer Doppler tarafından incelenir, koagülasyon derinlik histolojik olarak ölçülür, koagülasyon sitesini kızılötesi termometre ve termografik kamera ve kanal etkisi sızdırmazlık sıcaklıkta patlama basıncı ile belgelenen deneyler.

Video: Assessment of Plasma Coagulation on Liver Tissue in a Large Animal Model In Vivo

A Novel Surgical Technique As a Foundation for In Vivo Partial Liver Engineering in Rat

Organ engineering is a novel strategy to generate liver organ substitutes that can potentially be used in transplantation. Recently, in vivo liver engineering, including in vivo organ decellularization followed by repopulation, has emerged as a promising approach over ex vivo liver engineering. However, postoperative survival was not achieved. The aim of this study is to develop a novel surgical technique of in vivo selective liver lobe perfusion in rats as a prerequisite for in vivo liver engineering. We generate a circuit bypass only through the left lateral lobe. Then, the left lateral lobe is perfused with heparinized saline. The experiment is performed with 4 groups (n = 3 rats per group) based on different perfusion times of 20 min, 2 h, 3 h, and 4 h. Survival, as well as the macroscopically visible change of color and the histologically determined absence of blood cells in the portal triad and the sinusoids, is taken as an indicator for a successful model establishment. After selective perfusion of the left lateral lobe, we observe that the left lateral lobe, indeed, turned from red to faint yellow. In a histological assessment, no blood cells are visible in the branch of the portal vein, the central vein, and the sinusoids. The left lateral lobe turns red after reopening the blocked vessels. 12/12 rats survived the procedure for more than one week. We are the first to report a surgical model for in vivo single liver lobe perfusion with a long survival period of more than one week. In contrast to the previously published report, the most important advantage of the technique presented here is that perfusion of 70% of the liver is maintained throughout the whole procedure. The establishment of this technique provides a foundation for in vivo partial liver engineering in rats, including decellularization and recellularization.

A Novel Surgical Technique As a Foundation for In Vivo Partial Liver Engineering in Rat

We establish a novel surgical technique for an in vivo single liver lobe perfusion model in rat as a prerequisite for further studying in vivo partial liver engineering in the future.

Sıçan Vivo içinde kısmi karaciğer Dairesi'nde için bir temel olarak yeni bir cerrahi teknik

Organ engineering is a novel strategy to generate liver organ substitutes that can potentially be used in transplantation. Recently, in vivo liver ...

Biyomühendislik

Uncontrolled Hemorrhagic Shock Modeled via Liver Laceration in Mice with Real Time Hemodynamic Monitoring

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via a liver laceration that results in consistent blood loss, hemodynamic alterations, and survival.
Mice undergo a standardized resection of the left-middle lobe of the liver. They are allowed to bleed without mechanical intervention. Hemostatic agents can be administered as pre-treatment or rescue therapy depending on the interest of the investigator. During the time of hemorrhage, real-time hemodynamic monitoring via a left femoral arterial line is performed. Mice are then sacrificed, blood loss is quantified, blood is collected for further analysis, and organs are harvested for analysis of injury. Experimental design is described to allow for simultaneous testing of multiple animals.
Liver hemorrhage as a model of uncontrolled hemorrhage exists in the literature, primarily in rat and porcine models. Some of these models utilize hemodynamic monitoring or quantify blood loss but lack consistency. The present model incorporates quantification of blood loss, real-time hemodynamic monitoring in a murine model that offers the advantage of using transgenic lines and a high-throughput mechanism to further investigate the pathophysiologic mechanisms in uncontrolled hemorrhage.

Uncontrolled hemorrhage, an important cause of mortality among trauma patients, can be modeled using a standard liver laceration in a murine model. This model results in consistent blood loss, survival, and allows for testing hemostatic agents. This article provides the step-by-step process to perform this valuable model.

Gerçek Zamanlı Hemodinamik İzlemli Farelerde Karaciğer Yırtıklaması İle Kontrol Edilen Kontrolsüz Hemorajik Şok

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via ...

Tıp

Rat Model of the Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy (ALPPS) Procedure

Recent clinical data support an aggressive surgical approach to both primary and metastatic liver tumors. For some indications, like colorectal liver metastases, the amount of liver tissue left behind after liver resection has become the main limiting factor of resectability of large or multiple liver tumors. A minimal amount of functional tissue is required to avoid the severe complication of post-hepatectomy liver failure, which has high morbidity and mortality. Inducing liver growth of the prospective remnant prior to resection has become more established in liver surgery, either in the form of portal vein embolization by interventional radiologists or in the form of portal vein ligation several weeks prior to resection. Recently, it was shown that liver regeneration is more extensive and rapid, when the parenchymal transection is added to portal vein ligation in a first stage and then, after only one week of waiting, resection performed in a second stage (Associating Liver Partition and Portal vein ligation for Staged hepatectomy = ALPPS). ALPPS has rapidly become popular across the world, but has been criticized for its high perioperative mortality. The mechanism of accelerated and extensive growth induced by this procedure has not been well understood. Animal models have been developed to explore both the physiological and molecular mechanisms of accelerated liver regeneration in ALPPS. This protocol presents a rat model that allows mechanistic exploration of accelerated regeneration.

Rat Model of the Associating Liver Partition and Portal Vein Ligation for Staged Hepatectomy ALPPS Procedure

Inducing rapid liver hypertrophy using Associating Liver Partition and Portal vein ligation for a Staged hepatectomy (ALPPS) has been proposed for resection of borderline resectable liver tumors. This model may elucidate mechanisms involved in rapid hypertrophy and allows testing of drugs that promote or block the acceleration of regeneration.

Karaciğer bölümü ilişkilendirme ve Portal ven ligasyonu hazırlanmış Hepatectomy (ALPPS) yordamı için fare modeli

Recent clinical data support an aggressive surgical approach to both primary and metastatic liver tumors. For some indications, like colorectal liver ...

Invasive Hemodynamic Characterization of the Portal-hypertensive Syndrome in Cirrhotic Rats

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. Portal hypertension (PHT) due to cirrhosis is responsible for the most severe complications in patients with liver disease. The full picture of the portal hypertensive syndrome is characterized by increased portal pressure (PP) due to the increased intrahepatic vascular resistance (IHVR), hyperdynamic circulation, and increased splanchnic blood flow. Progressive splanchnic arterial vasodilation and increased cardiac output with elevated heart rate (HR) but low arterial pressure characterizes the portal hypertensive syndrome.
Novel therapies are currently being developed that aim to decrease PP by either targeting IHVR or increased splanchnic blood flow &#8212; but side effects on systemic hemodynamics may occur. Thus, a detailed characterization of portal venous, splanchnic, and systemic hemodynamic parameters, including measurement of PP, portal venous blood flow (PVBF), mesenteric arterial blood flow, mean arterial pressure (MAP), and HR is needed for preclinical evaluation of the efficacy of novel treatments for PHT. Our video article provides the reader with a structured protocol for performing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats. In particular, we describe the catheterization of the femoral artery and the portal vein via an ileocolic vein and the measurement of portal venous and splanchnic blood flow via perivascular Doppler-ultrasound flow probes. Representative results of different rat models of PHT are shown.

Here we describe a detailed protocol for invasive measurements of hemodynamic parameters including portal pressure, splanchnic blood flow, and systemic hemodynamics in order to characterize the portal hypertensive syndrome in rats.

Sirozlu fareleri Portal hipertansif sendromunda invaziv hemodinamik karakterizasyonu

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. ...

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been introduced as a method to evaluate and modify organ function. NEVLP has many advantages in comparison to hypothermic and subnormothermic perfusion including reduced preservation injury, restoration of normal organ function under physiologic conditions, assessment of organ performance, and as a platform for organ repair, remodeling, and modification. Both murine and porcine NEVLP models have been described. We demonstrate a rat model of NEVLP and use this model to show one of its important applications &#8212; the use of a therapeutic molecule added to liver perfusate. Catalase is an endogenous reactive oxygen species (ROS) scavenger and has been demonstrated to decrease ischemia-reperfusion in the eye, brain, and lung. Pegylation has been shown to target catalase to the endothelium. Here, we added pegylated-catalase (PEG-CAT) to the base perfusate and demonstrated its ability to mitigate liver preservation injury. An advantage of our rodent NEVLP model is that it is inexpensive in comparison to larger animal models. A limitation of this study is that it does not currently include post-perfusion liver transplantation. Therefore, prediction of the function of the organ post-transplantation cannot be made with certainty. However, the rat liver transplant model is well established and certainly could be used in conjunction with this model. In conclusion, we have demonstrated an inexpensive, simple, easily replicable NEVLP model using rats. Applications of this model can include testing novel perfusates and perfusate additives, testing software designed for organ evaluation, and experiments designed to repair organs.

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant liver donor shortage, and criteria for liver donors have been expanded. Normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been developed to evaluate and modify organ function. This study demonstrates a rat model of NEVLP and tests the ability of pegylated-catalase, to mitigate liver preservation injury.

Ex Vivo Normothermic karaciğer perfüzyon küçük bir hayvan Model

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, ...

Ferric Chloride-induced Canine Carotid Artery Thrombosis: A Large Animal Model of Vascular Injury

Occlusive arterial thrombosis leading to cerebral ischemic stroke and myocardial infarction contributes to ~13 million deaths every year globally. Here, we have translated a vascular injury model from a small animal into a large animal (canine), with slight modifications that can be used for pre-clinical screening of prophylactic and thrombolytic agents. In addition to the surgical methods, the modified protocol describes the step-by-step methods to assess carotid artery canalization by angiography, detailed instructions to process both the brain and carotid artery for histological analysis to verify carotid canalization and cerebral hemorrhage, and specific parameters to complete an assessment of downstream thromboembolic events by utilizing magnetic resonance imaging (MRI). In addition, specific procedural changes from the previously well-established small animal model necessary to translate into a large animal (canine) vascular injury are discussed.

Here, we present the modifications necessary to a well characterized and commonly used small animal ferric chloride-induced (FeCl3) carotid artery injury model for use in a large animal vascular injury model. The resulting model can be utilized for pre-clinical trial assessment of both prophylactic and thrombolytic pharmacological and mechanical interventions.

Ferrik klorid kaynaklı köpek karotid arter trombozu: Bir büyük hayvan modeli vasküler yaralanma

Occlusive arterial thrombosis leading to cerebral ischemic stroke and myocardial infarction contributes to ~13 million deaths every year globally. Here, ...

Murine Precision-Cut Liver Slices as an Ex Vivo Model of Liver Biology

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic fatty liver disease, metabolic liver disease, and liver cancer) requires experimental manipulation of animal models and in vitro cell cultures. Both techniques have limitations, such as the requirement of large numbers of animals for in vivo manipulation. However, in vitro cell cultures do not reproduce the structure and function of the multicellular hepatic environment. The use of precision-cut liver slices is a technique in which uniform slices of viable mouse liver are maintained in laboratory tissue culture for experimental manipulation. This technique occupies an experimental niche that exists between animal studies and in vitro cell culture methods. The presented protocol describes a straightforward and reliable method to isolate and culture precision-cut liver slices from mice. As an application of this technique, ex vivo liver slices are treated with bile acids to simulate cholestatic liver injury and ultimately assess the mechanisms of hepatic fibrogenesis.

This protocol provides a simple and reliable method for the production of viable precision-cut liver slices from mice. The ex vivo tissue samples can be maintained under laboratory tissue culture conditions for multiple days, providing a flexible model to examine liver pathobiology.

Karaciğer Biyolojisi Ex Vivo Modeli olarak Murine Precision-Cut Karaciğer Dilimleri

Understanding the mechanisms of liver injury, hepatic fibrosis, and cirrhosis that underlie chronic liver diseases (i.e., viral hepatitis, non-alcoholic ...

Porcine Liver Transplantation Without Veno-Venous Bypass As an Extended Criteria Donor Model

Liver transplantation is regarded as the gold standard for the treatment of a variety of fatal hepatic diseases. However, unsolved issues of chronic graft failure, ongoing organ donor shortages, and the increased use of marginal grafts call for the improvement of current concepts, such as the implementation of organ machine perfusion. In order to evaluate new methods of graft reconditioning and modulation, translational models are required. With respect to anatomical and physiological similarities to humans and recent progress in the field of xenotransplantation, pigs have become the main large animal species used in transplantation models. After the initial introduction of a porcine orthotopic liver transplant model by Garnier et al. in 1965, several modifications have been published over the past 60 years.
Due to specifies-specific anatomical traits, a veno-venous bypass during the anhepatic phase is regarded as a necessity to reduce intestinal congestion and ischemia resulting in hemodynamic instability and perioperative mortality. However, the implementation of a bypass increases the technical and logistical complexity of the procedure. Furthermore, associated complications such as air embolism, hemorrhage, and the need for a simultaneous splenectomy have been reported previously.
In this protocol, we describe a model of porcine orthotopic liver transplantation without the use of a veno-venous bypass. The engraftment of donor livers after static cold storage of 20 h - simulating extended criteria donor conditions - demonstrates that this simplified approach can be performed without significant hemodynamic alterations or intraoperative mortality and with regular uptake of liver function (as defined by bile production and liver-specific CYP1A2 metabolism). The success of this approach is ensured by an optimized surgical technique and a sophisticated anesthesiologic volume and vasopressor management.
This model should be of special interest for workgroups focusing on the immediate postoperative course, ischemia-reperfusion injury, associated immunological mechanisms, and the reconditioning of extended criteria donor organs.

In this protocol, a model of porcine orthotopic liver transplantation after static cold storage of donor organs for 20 h without the use of a veno-venous bypass during engraftment is described. The approach uses a simplified surgical technique with minimization of the anhepatic phase and sophisticated volume and vasopressor management.

Veno-Venöz Bypass Olmadan Domuz Karaciğeri Transplantasyonu Genişletilmiş Kriterli Donör Modeli Olarak

Liver transplantation is regarded as the gold standard for the treatment of a variety of fatal hepatic diseases. However, unsolved issues of chronic graft ...

Tail Vein Transection Bleeding Model in Fully Anesthetized Hemophilia A Mice

Tail bleeding models are important tools in hemophilia research, specifically for the assessment of procoagulant effects. The tail vein transection (TVT) survival model has been preferred in many settings due to sensitivity to clinically relevant doses of FVIII, whereas other established models, such as the tail clip model, require higher levels of procoagulant compounds. To avoid using survival as an endpoint, we developed a TVT model establishing blood loss and bleeding time as endpoints and full anesthesia during the entire experiment. Briefly, anesthetized mice are positioned with the tail submerged in temperate saline (37&#176;C) and dosed with the test compound in the right lateral tail vein. After 5 min, the left lateral tail vein is transected using a template guide, the tail is returned to the saline, and all bleeding episodes are monitored and recorded for 40 min while collecting the blood. If no bleeding occurs at 10 min, 20 min, or 30 min post-injury, the clot is challenged gently by wiping the cut twice with a wet gauze swab. After 40 min, blood loss is quantified by the amount of hemoglobin bled into the saline. This fast and relatively simple procedure results in consistent and reproducible bleeds. Compared to the TVT survival model, it uses a more humane procedure without compromising sensitivity to pharmacological intervention. Furthermore, it is possible to use both genders, reducing the total number of animals that need to be bred, in adherence with the principles of 3R&#39;s. A potential limitation in bleeding models is the stochastic nature of hemostasis, which can reduce the reproducibility of the model. To counter this, manual clot disruption ensures that the clot is challenged during monitoring, preventing primary (platelet) hemostasis from stopping bleeding. This addition to the catalog of bleeding injury models provides an option to characterize procoagulant effects in a standardized and humane manner.

The refined tail vein transection (TVT) bleeding model in anesthetized mice is a sensitive in vivo method for the assessment of hemophilic bleeding. This optimized TVT bleeding model uses blood loss and bleeding time as endpoints, refining other models and avoiding death as an endpoint.

Tam Anestezi Uygulanan Hemofili A Farelerinde Kuyruk Ven Transeksiyonu Kanama Modeli

Tail bleeding models are important tools in hemophilia research, specifically for the assessment of procoagulant effects. The tail vein transection (TVT) ...

Biyoloji

Intravital Microscopy to Study Platelet-Leukocyte-Endothelial Interactions in the Mouse Liver

Inflammation and thrombosis are complex processes that occur primarily in the microcirculation. Although standard histology may provide insight into the end pathway for both inflammation and thrombosis, it is not capable of showing the temporal changes that occur throughout the time course of these processes. Intravital microscopy (IVM) is the use of live-animal imaging to gain temporal insight into physiologic processes in vivo. This method is particularly powerful when assessing cellular and protein interactions within the circulation due to the rapid and sequential events that are often necessary for these interactions to occur. While IVM is an extremely powerful imaging methodology capable of viewing complex processes in vivo, there are a number of methodological factors that are important to consider when planning an IVM study. This paper outlines the process of conducting intravital imaging of the liver, identifying important considerations and potential pitfalls that may arise. Thus, this paper describes the use of IVM to study platelet-leukocyte-endothelial interactions in liver sinusoids to study the relative contributions of each in different models of acute liver injury.

<meta charset="utf8"></head><body>Fare karaciğerinde trombosit-lökosit-endotel etkileşimlerini incelemek için intravital mikroskopi

Intravital microscopy is a powerful tool that provides insight into both the temporal and spatial relationships of rapid and/or sequential processes. Herein, we describe a protocol to assess both protein-protein interactions and platelet-neutrophil-endothelial interactions in liver sinusoids in a murine model of experimental sepsis (endotoxemia).

Fare karaciğerinde trombosit-lökosit-endotel etkileşimlerini incelemek için intravital mikroskopi

Inflammation and thrombosis are complex processes that occur primarily in the microcirculation. Although standard histology may provide insight into the ...