Name: laboratory rearing of stable flies and other muscoid diptera
Uploaded: 2018-08-03T12:30:00.000+00:00
Duration: 7 min
Description: Watch this Scientific Journal Video about Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera at JoVE.com

Anthony Weinhold ve bizimle yıl teknik destek için hem de bizim böcek yordamlar yetiştirme geliştirmek için öneriler üzerinde çalıştım çok sayıda öğrencilere teşekkür etmek istiyorum.

1. yumurta toplama (Şekil 1)
<ol><li>Debaşarılı Kupası hazırlamak, ~ 500 mL kabı (~ 40 ° C) sıcak su dolu bir ucunu bez koyun. Taraf Kupası örtüşme ve bir lastik bant ile düzeltmek. Yarım kalmış din Kupası üst üzerinde geri katlayın.</li>
	<li>8 – 10 gün eski uçar ~ 2 h. Gravid kadın kararlı için kafes debaşarılı Kupası uçar yer üzerine kumaş Hayır.</li>
	<li>Debaşarılı Kupası egging bez kapalı kafes ve durulama yumurta içine sıkmak yıkama şişesi ile küçük bir tavada kaldırın.</li>
</ol>2. hazırlamak larva yetiştirme Pan
<ol><li>
Orta (1 yetiştirme pan miktarlarını) hazırlamak
	<ol>
<li>Buğday kepeği (500 gr), talaş (200 gr) ve 10 L Plastik tabak tavada balık unu (115 g) birleştirin ve iyice karıştırın.</li>
		<li>Amonyum Bikarbonat (50 gr) (~ 25 ° C, 1600 mL) su ekleyip eriyene kadar karıştırın.</li>
		<li>Su solüsyonu kuru malzemeyi unwetted hiçbir malzeme sağlamak için ekleyip karıştırın. Tavada orta seviye ama sıkıştırma.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
İstikrarlı sinek yumurtaları ekleyin
	<ol>
<li>Sığ bir karık ortamda pan uzunluğu olun.</li>
		<li>İstikrarlı sinek yumurta (~ 8.000 yumurta) 1 mL karık yumurta pipet (Şekil 2) ile havale. Not: bir plastik mezun pipet 100 ekleme istediğiniz noktada kesim tarafından yapılan yumurta pipet mesh ekran ve yapıştırma pipet yeniden bir araya getirmek.</li>
		<li>Kapak ince bir tabaka halinde kuruma önlemek için orta yumurta.</li>
		<li>Yastık kılıfı ile tava kapağı, bir lastik bant ve etiket ile kapatın. Larva odasında tava koyun (23 ± 2 ° C, % 30-50 RH ve 12:12 [L:D] s photoperiod). Not: Larva geliştirme oviposition andan itibaren 10-14 gün sürer.</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. Pupa işleme, larva hareket orta kenarına gün 13 ya da 14 tarafından 7-9 gün sonra Oviposition ve Pupariate
<ol><li>Kepçe kozaları, öncelikle tava dışarı orta yüzeyinde oluşturur ve temiz bir tavaya yerleştirilen kabuk altında kenarlarında bulunan.</li>
	<li>Pan, kozaları ile ½-¾ su dolu doldurun. Orta ve kozaları kümeleri kadar break. Buğday kepeği ve protein bileşenleri orta lavabo kozaları > 1 gün eski kayan nokta19.</li>
	<li>Kayan malzeme, kozaları ve bazı orta boy bir kevgir ve yıkama elekler (#5, #7, #12, #20) kalan orta kaldırmak için bir dizi ile kaldırın. #12 elek kozaları toplar ve drenaj girmesini #20 katı atık tutar. Kozaları arasında elekler evye püskürtücü ile yıkayın.</li>
	<li>Kozaları, temiz bir tavaya #12 elek durulayın. Kaydırmak için ½ su dolu doldurun. Kayan kozaları bir kevgir dökün ve aşırı su drenaj sağlar.</li>
	<li>Transfer kozaları kurutma ekran için bir fan ile süzülmüş ve kuru (Şekil 3) kadar bırakın.</li>
</ol>4. Pupa raf, kozaları toplamak için alternatif bir yöntem olduğunu bir pupa raf18 ile
Not: 10 L yemek pan (10.2 cm boyunda 10,2 cm x 31, 9 cm uzun geniş x) sonuna bir parça plastik kesme raf yapılmıştır.
<ol><li>Orta 2.1 açıklandığı şekilde hazırlayın. Konik orta ila ~7.5 cm ~2.5 cm derin üzerinde bir ucundan tavada diğer yandan derin.</li>
	<li>
Yetiştirme pan ve teyp raf (Şekil 4) taramasını larva önlemek için sığ sonunda Orta raf yerleştirin.
	<ol>
<li>Sünger (~14.5 x 9.0 x 4.5 cm3, rejenere selüloz) doyurmak ve su batırılmış bez (30.5 x 42 cm2, pamuk) ve yerde yaklaşık yarım inç Orta rafta sarın.</li>
	</ol>
</li>
	<li>
2.2 içinde açıklandığı gibi yumurta ekleyin ve daha önce olduğu gibi devam edin.
	<ol>
<li>Her gün tava sünger nemli kalır emin olun.</li>
	</ol>
</li>
	<li>Durulama kozaları raf, sünger ve bez temiz bir çanak içine pan ve 14 gün sonra oviposition kevgir dökün.</li>
</ol>5. kalite kontrol
<ol><li>Tüm pan (Toplam wt.) üretilen kozaları tartın.</li>
	<li>100 kozaları izole, tartmak ve bir 9 cm Petri kabına yerleştirilir.</li>
	<li>Sayısı ve seks yetişkin ~ 5-8 gün sonra ortaya çıkması oranı ve cinsiyet oranı belirlemek için. Daha sonraki bir tarihte saymak gerekirse bir dondurucu çıktı yetişkinlerle Petri yemekler saklayın. Sinekler tarafından onların gözlerinin şekli ve genişliğini fronto-orbital plaka20 veya genital düşük büyütme altında kadın belirlenmiştir.</li>
	<li>Kayıt ağırlığı toplam ağırlığı 100 kozaları ve numarasını ortaya yetişkin erkek ve kadın.</li>
</ol>6. kan hazırlanması
<ol><li>Taze sığır kan 19 L kovalar 70 g sodyum sitrat Tribazik dihydrate 500 ml su içeren yerel bir mezbaha toplamak. Heyecan şiddetle 5-10 dk için kan ve laboratuvara geri döndü.</li>
	<li>Kaldırmak için bir kevgir zorlanma kan pıhtılaşır ve 2 L kaplara etiket koleksiyonu ve bir dondurucu (-20 ° C) deposunda tarihi ile bölümlenmiş.</li>
	<li>Dondurucu ve buzdolabında yer kaldır kapsayıcıdan 2 gün önce ihtiyacım vardı. Kan ~ 2 bir kez çözdürülen ve ilâ 1 yıl için dolaba saklanan haftalar için kullanılabilir.</li>
</ol>7. yetişkin bakım
<ol><li>Kafesler, hat kafes alt temizliği kolaylaştırmak için kasap kağıdı ile hazırlayın.</li>
	<li>50 gr kuru istikrarlı sinek Pupa (~ 3500) her kafese koyun. Yetişkin eclose için bir kaç gün pupa işlemlerden sonra birkaç saat.</li>
	<li>Yerde taze bir kan kadınsı peçete üzerine beslenme için her kafes batırılmış. Yetişkin eclosion içinde 24 h besleme başlar ve her gün bir gün önce oviposition (9 – 10 gün sonra ortaya çıkması) kadar tekrarlayın.</li>
	<li>Oviposition (Bölüm 1) sonra 4-8 h için dondurucuda kafes yerleştirin ve sonra kağıdı çıkarmadan, frass taraf ve zemin sıcak su ile durulama ve çamaşır deterjanı ve klor ağartıcı ile tüm yüzeyler ovma temiz. Kafesleri sıcak su ile durulayın ve kurumasını bekleyin.</li>
</ol>

<ol>
	<li>Cook, D. F., Dadour, I. R., Keals, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stable+fly,+house+fly+(Diptera:+Muscidae),+and+other+nuisance+fly+development+in+poultry+litter+associated+with+horticultural+crop+production.">Stable fly, house fly (Diptera: Muscidae), and other nuisance fly development in poultry litter associated with horticultural crop production.</a> J. Econ. Entomol. 92 (6), 1352-1357 (1999).</li><li>Dominghetti, T. F., de Barros, A. T., Soares, C. O., Can&#231;ado, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stomoxys+calcitrans+(Diptera:+Muscidae)+outbreaks:+current+situation+and+future+outlook+with+emphasis+on+Brazil.">Stomoxys calcitrans (Diptera: Muscidae) outbreaks: current situation and future outlook with emphasis on Brazil.</a> Rev. Bras. Parasitol. Vet. 24 (4), 387-395 (2015).</li><li>Sol&#243;rzano, J. -. A., Guilles, J., Bravo, O., Vargas, C., Gomez-Bonilla, Y., Bingham, G., Taylor, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biology+and+trapping+of+stable+flies+(Diptera:+Muscidae)+developing+in+pineapple+residues+(Ananas+comosus)+in+Costa+Rica.">Biology and trapping of stable flies (Diptera: Muscidae) developing in pineapple residues (Ananas comosus) in Costa Rica.</a> J. Insect Sci. 15 (1), 145 (2015).</li><li>Berry, I. L., Stage, D. A., Campbell, J. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Populations+and+economic+impacts+of+stable+flies+on+cattle.">Populations and economic impacts of stable flies on cattle.</a> Trans. Am. Soc. Agric. Eng. 26, 873-877 (1983).</li><li>Taylor, D. B., Vreysen, J., Hendrichs, R., Cardoso Pereira, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Area-wide+management+of+stable+flies.">Area-wide management of stable flies.</a> Area-wide management of insect pests. , (2017).</li><li>Bishopp, F. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+stable+fly+(Stomoxys+calcitrans+L.),+an+important+live+stock+pest.">The stable fly (Stomoxys calcitrans L.), an important live stock pest.</a> J.Econ. Entomol. 6 (1), 112-126 (1913).</li><li>Hogsette, J. A., Ruff, J. P., Jones, C. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stable+fly+biology+and+control+in+northwest+Florida.">Stable fly biology and control in northwest Florida.</a> J. Agric. Entomol. 4 (1), 1-11 (1987).</li><li>Lysyk, T., Kalischuk-Tymensen, L., Selinger, L., Lancaster, R., Wever, L., Cheng, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rearing+stable+fly+larvae+(Diptera:+Muscidae)+on+an+egg+yolk+medium.">Rearing stable fly larvae (Diptera: Muscidae) on an egg yolk medium.</a> J. Med. Entomol. 38, 382-388 (1999).</li><li>Romero, A., Broce, A., Zurek, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+bacteria+in+the+oviposition+behaviour+and+larval+development+of+stable+flies.">Role of bacteria in the oviposition behaviour and larval development of stable flies.</a> Med. Vet. Entomol. 20, 115-121 (2006).</li><li>Glaser, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rearing+flies+for+experimental+purposes+with+biological+notes.">Rearing flies for experimental purposes with biological notes.</a> J. Econ. Entomol. 17 (4), 486-496 (1924).</li><li>Melvin, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Physiological+studies+on+the+effect+of+flies+and+fly+sprays+on+cattle.">Physiological studies on the effect of flies and fly sprays on cattle.</a> J. Econ. Entomol. 25 (6), 1151-1164 (1932).</li><li>Doty, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Convenient+method+of+rearing+the+stable+fly.">Convenient method of rearing the stable fly.</a> J. Econ. Entomol. 30 (2), 367-369 (1937).</li><li>Bridges, A. C., Spates, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Larval+medium+for+the+stable+fly+Stomoxys+calcitrans+(L.).">Larval medium for the stable fly Stomoxys calcitrans (L.).</a> Southwest. Entomol. 8 (1), 6-10 (1983).</li><li>Hogsette, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=New+diets+for+production+of+house+flies+and+stable+flies+(Diptera:+Muscidae)+in+the+laboratory.">New diets for production of house flies and stable flies (Diptera: Muscidae) in the laboratory.</a> J. Econ. Entomol. 85 (6), 2291-2294 (1992).</li><li>McGregor, W. S., Dreiss, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rearing+stable+flies+in+the+laboratory.">Rearing stable flies in the laboratory.</a> J. Econ. Entomol. 48 (3), 327-328 (1955).</li><li>Goodhue, L. D., Cantrel, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+vermiculite+in+medium+for+stable+fly+larvae.">The use of vermiculite in medium for stable fly larvae.</a> J. Econ. Entomol. 51 (2), 250 (1958).</li><li>Friesen, K., Berkebile, D. R., Zhu, J. J., Taylor, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Augmenting+laboratory+rearing+of+stable+fly+(Diptera:+Muscidae)+larvae+with+ammoniacal+salts.">Augmenting laboratory rearing of stable fly (Diptera: Muscidae) larvae with ammoniacal salts.</a> J. Insect Sci. 17 (1), 1-6 (2017).</li><li>Berkebile, D. R., Weinhold, A. P., Taylor, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+new+method+for+collecting+clean+stable+fly+(Diptera:Muscidae)+pupae+of+known+age.">A new method for collecting clean stable fly (Diptera:Muscidae) pupae of known age.</a> Southwest. Entomol. 34 (4), 469-476 (2009).</li><li>Champlain, R. A., Fisk, F. W., Dowdy, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Some+improvements+in+rearing+stable+flies.">Some improvements in rearing stable flies.</a> J. Econ. Entomol. 47 (5), 940-941 (1954).</li><li>Zumpt, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The stomoxyine biting flies of the world. , (1973).</li><li>Wienhold, B. J., Taylor, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Substrate+properties+of+stable+fly+(Diptera:+Muscidae)+developmental+sites+associated+with+round+bale+hay+feeding+sites+in+eastern+Nebraska.">Substrate properties of stable fly (Diptera: Muscidae) developmental sites associated with round bale hay feeding sites in eastern Nebraska.</a> Environ. Entomol. 41 (2), 213-221 (2012).</li><li>Friesen, K., Berkebile, D. R., Wienhold, B. J., Durso, L., Zhu, J., Taylor, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Environmental+parameters+associated+with+stable+fly+(Diptera:+Muscidae)+development+at+hay+feeding+sites.">Environmental parameters associated with stable fly (Diptera: Muscidae) development at hay feeding sites.</a> Environ. Entomol. 45 (3), 570-576 (2016).</li><li>Albuquerque, T. A., Zurek, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+changes+in+the+bacterial+community+of+animal+feces+and+their+correlation+with+stable+fly+oviposition,+larval+development,+and+adult+fitness.">Temporal changes in the bacterial community of animal feces and their correlation with stable fly oviposition, larval development, and adult fitness.</a> Front. Microbiol. 5 (590), 1-9 (2014).</li><li>Bailey, D. L., Whitfield, T. L., LaBrecque, G. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Laboratory+biology+and+techniques+for+mass+producing+the+stable+fly,+Stomoxys+calcitrans+(L.)+(Diptera:+Muscidae).">Laboratory biology and techniques for mass producing the stable fly, Stomoxys calcitrans (L.) (Diptera: Muscidae).</a> J. Med. Entomol. 12 (2), 189-193 (1975).</li><li>Smith, J. P., Hall, R. D., Thomas, G. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Field+studies+on+mortality+of+the+immature+stages+of+the+stable+fly+(Diptera:+Muscidae).">Field studies on mortality of the immature stages of the stable fly (Diptera: Muscidae).</a> Environ. Entomol. 14 (6), 881-890 (1985).</li></ol>

Yazarlar ifşa gerek yok.

İstikrarlı sinekler geniş yüzeylerde doğada çeşitli geliştirme bulunabilir ve medya Laboratuvarı birçok türde yetiştirilen. Biz talaş ve vermikülit ajanlar kabarma olarak kullanmışlardır. Vermikülit iyi çalıştı ama orta zor yetiştirme dan ayıran kozaları yapılmış ve pahalı (~$0.60/pan) yapıldı. Muhtemelen kozaları ortamından ayıran eklenen titizlik nedeniyle, eclosion, ayrıca vermikülit, talaş için %75 vs % 57 ile daha düşük. Cottonwood talaşı vermikülit karşılaştırılabilir ama bazen zor temin etmek. Maya ve bir "açık" ya da de gazlı orta ve ammoniacal azot21,22korumak için bitkisel veya Selülozik malzeme olmak en önemli bileşenler görünür. İstikrarlı sinek larvaları saf gübre, yaşlı gübre ile bitkisel madde karışık tercih içinde bulunamadı. Akılda bu düşünceler ile burada özetlenen yetiştirme yordamlar istikrarlı sinekler yetiştirme için ucuz yordamlar geliştirmek için mevcut yerel malzemeler için adapte edilebilir.
Bu yöntem kullanılarak yetiştirilen sinekler boyutunda alan toplanan sinekler için karşılaştırılabilir. Kanat uzunluğu istikrarlı uçmak vücut ağırlığı23ile ilişkilidir. Çünkü vahşi sineklerin kanatları sık yıpranmış, Kanat uzunluğu bir göstergesi olarak medial discal hücre uzunluğu kullanın. Medial discal hücre 249 uçar bu yöntemle yetiştirilen ortalama uzunluğu 2,49 ±0.15 mm (Aralık 1,96-2,81) Bu yapışkan tuzaklar yazlar 2011 ve 2012 Ithaca yakınındaki sırasında toplanan 3,713 uçar ise, NE oldu 2.52 ±0.21 mm (Aralık 1,80-3,58) (unpubl. veri). Bu yöntemle yetiştirilen kozaları ağırlığını önceki yetiştirme protokolleri14,24 ve hayatta kalmak için bildirilen daha yüksektir, yetişkin için yumurta, içinde alan25gözlenen %5 daha yüksektir.
Yüz sinekler, boynuz sinekler ve evi sinekler gibi diğer muscoid sinekler yetiştirme için benzer yöntemler kullanılabilir. Yüz sinek ve boynuz sineği larva taze sığır gübresi orta gerektirir. House sinek orta 470 g buzağı besleme, 500 g buğday kepeği ve 1,600 mL su (~ 25 ° C) yapılır. İstikrarlı sinek gibi boynuz sineği yetişkin kanıyla beslenir. Yüz ev sinek ve sinek yetişkin beslenen süt tozu ve şeker kuru karışımı. Yüz ev sinek ve sinek yetişkin de su kaynağı gerekir. Kapak geçen bir diş fitil ile 100 mL plastik şişeler kullanın.

İstikrarlı sinekler, Stomoxys calcitrans (L.), kimin acı sokması hayvan otlatma davranışını bozabilir, acı ve acı hayvan yoldaşı ve eğlence etkinlikleri dünya çapında insan bozabilir hematophagous sinekler vardır. Olgunlaşmamış istikrarlı sinekler bitkisel madde, genellikle hayvan atıkları ile kirlenmiş fermantasyon geliştirmek. Değişen Agronomik uygulamalar ve bitkileri bitki artıkları, Avustralya1sebze, Brezilya2şeker kamışı ve ananas Kosta Rika3kararlı sinekli ciddi salgınları doğurmuştur. Her ne kadar hayvan başına sadece 14 istikrarlı sinekler ekonomik eşik4olarak kabul edilir, hayvan başına 2.000'den fazla sinekler gözlemleri son salgınlar5sırasında yapılmıştır. Böyle istila düzeyleri sıfıra yakın ev sahibi verimlilik azaltmak ve mortalite6neden olabilir. Agronomically ilişkili salgınlar, bir sonucu olarak istikrarlı sinekler ilgiyi alıyorsanız ve laboratuar koloniler için talep önemli ölçüde artmıştır.
Tüm holometamorphic böcekler gelince, istikrarlı sinekler olgunlaşmamış ve larva aşamasında büyüme için gerekli besin elde edilir. Bu nedenle, bir yetiştirme sisteminin önemli bir bileşeni larva diyet veya yüzey. Geniş yüzeylerde alan7 bir geliştirme istikrarlı sinek larvaları gözlenmiştir ve substrat8,9microbial topluluk bağlıdır. Doğal larva yüzeylerde öncelikle çürüyen veya bitkisel malzemeler genellikle azotlu atıklar ile kirlenmiş fermantasyon oluşur.
Laboratuvar yetiştirme için bitkisel bir malzeme ile eklenen azot kaynağı genellikle istikrarlı sineği larva yüzeylerde oluşmaktadır. Çok sayıda malzeme istikrarlı sineği larva diyetler için kullanılmıştır. İlk larva diyetler doğal yüzeylerde taklit ve yulaf saman ve at veya inek gübresi10,11fermantasyon dahil. Buğday kepeği12,13,14, yonca yemek12,13,14 karbonhidrat kaynakları içerir ve ticari bir formülasyon kimyasal özellikleri tarafından geliştirilen Üreticileri Derneği (CSMA, % 33 buğday kepeği, % 27'si yonca yemek, % 40 bira mayası Granül)13,14,15,16. Azot kaynakları Maya süspansiyon12, Balık unu ve Amonyum Bikarbonat17yer alıyor. Inert malzemeler kabarma kez yulaf gövde12, BAGAS13, vermikülit16, talaş13,18 ve pelleted fıstık gövde14dahil olmak üzere diyetinde yer almaktadır.
Laboratuvar yetiştirme bir birincil amacı laboratuvar deneyleri o alan nüfus yansıtan sonuçlar doğurur ki gibi fizyolojik türüne benzer bir şekilde"vahşi" mümkün olduğunca bir ürün üretmektir. Bu üreme ve seçim minimize edilebilir gerektirir genetik korumak için çeşitlilik ve besin kaynakları bu alandaki karşılaştırılabilir. Emek ve giderleri en aza indirmek için ikincil hedefleri bulunmaktadır. Giderleri en aza indirerek önemli parçasını yerel olarak kullanılabilir diyet bileşenleri kullanmaktır. Sunulan sistem yetiştirme istikrarlı anında bu hedeflerini karşılamak için geliştirilmiştir.

<table><tbody><tr><td>Diamalt</td><td>Premier Malt Products, Inc., Saddle Brook, NJ</td><td>2540</td><td></td></tr><tr><td>CSMA Fly media</td><td>Purina Animal Nutrition, Arden Hills, MN</td><td>5S6Z</td><td></td></tr><tr><td>Thin Maxi Pad</td><td>The Tranzonic Co., Cleveland, OH, USA</td><td>5001M</td><td></td></tr><tr><td>Calf Manna</td><td>MannaPro, Chesterfield, MO, USA</td><td>Manna Pro</td><td></td></tr><tr><td>Ammonium Bicarbonate</td><td>Spectrum Chemical Manufacturing Corp, Gardena, CA</td><td>A1125</td><td></td></tr><tr><td>Wheat bran, Coarse</td><td>Siemer Milling Company, Teutopolis, IL</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wood shavings</td><td>Tractor Supply Company, Brentwood, TN</td><td>502770699</td><td></td></tr><tr><td>Fishmeal</td><td>Consumer Supply Distributing, North Sioux City, SD</td><td>F1550</td><td></td></tr><tr><td>Adult cages</td><td>All Aluminum Window Company, Lincoln, Ne</td><td>Custom</td><td>45 &amp;times; 45 &amp;times; 45 cm, 18 &amp;times; 16 mesh aluminum screen, stockinette access</td></tr><tr><td>9 &amp;times; 28 cm black cotton cloth</td><td>Robert Kaufman Fabrics, Los Angeles, CA</td><td>K040-114</td><td>Egging cloth</td></tr><tr><td>10 L plastic dish pans</td><td>Rubbermaid, Saratoga Springs, NY</td><td>FG2951ARWHT</td><td>Larval pans</td></tr><tr><td>Stockinette, Cotton, 12 inch x 25 yard roll</td><td>Tex-Care Medical Company, Burlington, NC</td><td>91311-225</td><td></td></tr></tbody></table>

laboratory rearing of stable flies and other muscoid diptera

İstikrarlı sinekler, Stomoxys calcitrans, hayvan, insan, refakatçi hayvan ve yaban hayatı dünya çapında ciddi zararlıları vardır. Son 20 + yıl boyunca, birçok ülkede kararlı sinekler ciddi salgınları Agronomik uygulamalar değişimler sonuçlandı. Bu salgınlar insan istirahat bu pest için araştırma ve yönetimi çabaları artırmak için ortak talepleri sonuçlanan ve hayvan üretimi kesintiye. Laboratuar çalışmaları için kararlı sinekler yetiştirme için basit ve ucuz bir yordam sunulur. Yordam mevcut yerel diyet bileşenleri, malzeme ve ek malzemeler kullanır. Yordamı yüz sinek (sinek autumnalis), boynuz sineği (Haematobia irritans) ve ev sineği (sinek domestica) de dahil olmak üzere diğer muscoid sinekler yetiştirme için adapte edilebilir. Yordam 12.5 mg ve % ~ 35 yumurta yetişkin yaşam için Ortalama istikrarlı sinek kozaları üretir. Yaklaşık 3000 sinekler her tavada üretilmektedir.

Larva pupariate 10-14 gün ve yetişkin ortaya 14-16 gün sonra oviposition. Oluşturma süresi, yumurta yumurta, ~ 24 gün var. Mayıs 2013 Ocak 2017 için yetiştirme verilerle üç farklı ajanlar kabarma ve iki kolonileri Şekil 5' te sunulmaktadır. Cottonwood verdi en iyi verim, 3867 ±1442 (<img alt="Equation" src="/files/ftp_upload/57341/57341eq1.jpg"> </img> ± standart sapma) 74 ±19% eclosion ile 12,5 ±1.6 mg ağırlığında pupa 2,872 ±1294 üreten yetişkin kurulan laboratuvar colony için uçar. Cinsiyet oranı biraz kadın 0.97:1 (erkek: kadın, 77,141 sinek 1184 tava kadın belirlenmiştir) karşı önyargılı. Yumurta yetişkin yaşam için yaklaşık % 36 olduğunu. Ne yazık ki, cottonwood talaşı daha sık çam talaşı kullanmamızı zorlayarak elde etmek zor olmuştur. Çam ile üretim alt olsa da, pan, başına ~ 1700 yetişkin biraz boyutudur daha büyük, 13 mg.
Pupa raf yöntemini kullanarak, raf larva yaklaşık % 85'i geçirme, kozaları temiz, ve çoğu Orta rafta toplanan flotasyon tarafından kolayca kaldırın. Bu yöntem ayrıca yetiştirme yöntemleri karşılaştırırken larva geliştirme hızı izlemek için kullanılabilir. Tava günlük sünger nemli kalmasını sağlamak için takip gerekir dezavantajıdır.
Orta bileşenleri için geçerli maliyet $1.17/tava ya da 0,39/1000 dolar istikrarlı sinekler (Tablo 1) üründür.
<table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody>
<tr>
<td>Bileşen</td>
			<td>Miktar</td>
			<td>Maliyet/Pan</td>
		</tr>
<tr>
<td>Buğday kepeği</td>
			<td>500 g</td>
			<td>$0.35</td>
		</tr>
<tr>
<td>Ahşap talaşı</td>
			<td>200 gr</td>
			<td>0,06 $</td>
		</tr>
<tr>
<td>Fishmeal</td>
			<td>115 g</td>
			<td>0,27 $</td>
		</tr>
<tr>
<td>Su (≈25 ° C)</td>
			<td>1600 mL</td>
			<td></td>
		</tr>
<tr>
<td>Amonyum Bikarbonat</td>
			<td>50 gr</td>
			<td>$0.48</td>
		</tr>
</tbody></table>Tablo 1: istikrarlı sinek larva diyet. Amonyum Bikarbonat hariç kuru malzemeyi birleştirin ve iyice karıştırın. Amonyum Bikarbonat su ekleyip eriyene kadar karıştırın. Amonyum Bikarbonat eriyik-e doğru kuru malzemeler ve unwetted hiçbir malzeme sağlamak için karışımı ekleyin. Bir pan için miktar.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57341/57341fig1.jpg"> Şekil 1: istikrarlı sinek yumurta toplamak için kullanılan malzemelerin. Kupası debaşarılı, yıkama şişesi ve yumurta almak için küçük pan sıkmak. <a href="/files/ftp_upload/57341/57341fig1large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57341/57341fig2.jpg"> Şekil 2: Pan hazırlanan ortamda uygulanmasıyla yumurta <a href="/files/ftp_upload/57341/57341fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57341/57341fig3.jpg"> Şekil 3: cihaz kullanılan kozaları kurutma için. <a href="/files/ftp_upload/57341/57341fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57341/57341fig4.jpg"> Şekil 4: pupa raf ile larva yetiştirme pan. Kozaları üstüne ve bez çevresinde birikimi unutmayın. <a href="/files/ftp_upload/57341/57341fig4large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57341/57341fig5.jpg"> Şekil 5: veri yetiştirme özetini. İstikrarlı sinek Mayıs 2013 Ocak üç kabarma ajanları, cottonwood talaşı, çam talaşı ve vermikülit ve iki kolonileri kullanarak 2017 için yetiştirme kozaları pan(a), kozaları ağırlık (B) ve pan (C) başına yetişkin sayısı başına sayısı demek . Laboratuvar koloni sürekli bizim laboratuvar olarak yaklaşık 10 yıldır yetiştirilen. PL koloni vahşi sinekler bir süt Lancaster Co, NE, 2014 yılında ABD, toplanan den kurulmuştur. Hata çubukları standart sapmalar gösterir. N veri dayandırıldığı tava sayısını temsil eder. <a href="/files/ftp_upload/57341/57341fig5large.jpg" target="_blank">Bu rakam daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera at JoVE.com

Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera

İstikrarlı sinekler (Stomoxys calcitrans) yetiştirme için bir yordam sunulur. Yordam diyet bileşenleri, malzeme ve ek malzemeler için mevcut yerel malzemeler kullanır.

Laboratuvar istikrarlı sinek ve diğer Muscoid Diptera yetiştirme

Stable flies, Stomoxys calcitrans, are serious pests of livestock, humans, companion animals and wildlife worldwide. During the last 20+ years, changes in ...

laboratory-rearing-of-stable-flies-and-other-muscoid-diptera

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Biology

8.5K Görüntüleme.  ARS-USDA. İstikrarlı sinekler (Stomoxys calcitrans) yetiştirme için bir yordam sunulur. Yordam diyet bileşenleri, malzeme ve ek malzemeler için mevcut yerel malzemeler kullanır.

Video: Laboratory Rearing of Stable Flies and Other Muscoid Diptera

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is a model for understanding microbial interactions with animal hosts, facilitated by approaches to rear large sample sizes of Drosophila under microorganism-free (axenic) conditions, or with defined microbial communities (gnotobiotic). This work outlines a method for collection of Drosophila embryos, hypochlorite dechorionation and sterilization, and transfer to sterile diet. Sterilized embryos are transferred to sterile diet in 50 ml centrifuge tubes, and developing larvae and adults remain free of any exogenous microbes until the vials are opened. Alternatively, flies with a defined microbiota can be reared by inoculating sterile diet and embryos with microbial species of interest. We describe the introduction of 4 bacterial species to establish a representative gnotobiotic microbiota in Drosophila. Finally, we describe approaches for confirming bacterial community composition, including testing if axenic Drosophila remain bacteria-free into adulthood.

Rearing the Fruit Fly Drosophila melanogaster Under Axenic and Gnotobiotic Conditions

A method for rearing Drosophila melanogaster under axenic and gnotobiotic conditions is presented. Fly embryos are dechorionated in sodium hypochlorite, transferred aseptically to sterile diet, and reared in closed containers. Inoculating diet and embryos with bacteria leads to gnotobiotic associations, and bacterial presence is confirmed by plating whole-body Drosophila homogenates.

Meyve Fly Yetiştirme<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Aksenik ve gnotobiyotik Koşullarında

The influence of microbes on myriad animal traits and behaviors has been increasingly recognized in recent years. The fruit fly Drosophila melanogaster is ...

Gelişim Biyolojisi

Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies

With an estimated 6000 species worldwide, hoverflies are ecologically important as alternative pollinators to domesticated honeybees. However, they are also a useful scientific model to study motion vision and flight dynamics in a controlled laboratory setting. As the larvae develop in organically polluted water, they are useful models for investigating investment in microbial immunity. While large scale commercial breeding for agriculture already occurs, there are no standardized protocols for maintaining captive populations for scientific studies. This is important as commercial captive breeding programs focusing on mass output during peak pollination periods may fail to provide a population that is consistent, stable and robust throughout the year, as is often needed for other research purposes. Therefore, a method to establish, maintain and refresh a captive research population is required. Here, we describe the utilization of an artificial hibernation cycle, in addition to the nutritional and housing requirements, for long term maintenance of Eristalis tenax. Using these methods, we have significantly increased the health and longevity of captive populations of E. tenax compared to previous reports. We furthermore discuss small scale rearing methods and options for optimizing yields and manipulating population demographics.

Rearing and Long-Term Maintenance of Eristalis tenax Hoverflies for Research Studies

The overall goal of these procedures is to establish, maintain and refresh a captive population of Eristalis tenax in a research setting.

Yetiştirme ve araştırma çalışmaları için Eristalis tenax Hoverflies uzun vadeli bakım

With an estimated 6000 species worldwide, hoverflies are ecologically important as alternative pollinators to domesticated honeybees. However, they are ...

Çevre

A Method to Test the Effect of Environmental Cues on Mating Behavior in Drosophila melanogaster

An individual's sexual drive is influenced by genotype, experience and environmental conditions. How these factors interact to modulate sexual behaviors remains poorly understood. In Drosophila melanogaster, environmental cues, such as food availability, affect mating activity offering a tractable system to investigate the mechanisms modulating sexual behavior. In D. melanogaster, environmental cues are often sensed via the chemosensory gustatory and olfactory systems. Here, we present a method to test the effect of environmental chemical cues on mating behavior. The assay consists of a small mating arena containing food medium and a mating couple. The mating frequency for each couple is continuously monitored for 24 h. Here we present the applicability of this assay to test environmental compounds from an external source through a pressurized air system as well as manipulation of the environmental components directly in the mating arena. The use of a pressurized air system is especially useful to test the effect of very volatile compounds, while manipulating components directly in the mating arena can be of value to ascertain a compound's presence. This assay can be adapted to answer questions about the influence of genetic and environmental cues on mating behavior and fecundity as well as other male and female reproductive behaviors.

A Method to Test the Effect of Environmental Cues on Mating Behavior in Drosophila melanogaster

We demonstrate an assay to analyze the environmental and genetic cues that influence mating behavior in the fruit fly Drosophila melanogaster.

Çevresel İpuçlarının Eklem Davranışı Üzerine Etkisini Test Etmek İçin Bir Yöntem<em&gt; Drosophila melanogaster</em

An individual's sexual drive is influenced by genotype, experience and environmental conditions. How these factors interact to modulate sexual behaviors ...

Davranış

Reproducible dsRNA Microinjection and Oviposition Bioassay in Mosquitoes and House Flies

Synthetic dsRNAs, used to induce RNA interference, may have dose dependent phenotypic effects. These effects are difficult to define if the dsRNAs are delivered using a non-quantitative method. Accurate delivery of known quantities of nucleic acids or other chemicals is critical to measure the efficacy of the compound being tested and to allow reliable comparison between compounds.
Here we provide a reproducible, quantitative microinjection protocol that ensures accurate delivery of specific doses of dsRNA, reducing the mortality typically induced by injection injury. These modifications include the addition of Rhodamine B, a graduated injection needle, and an improved recovery method borrowed from Isoe and Collins. This method allows calculation of dose responses and facilitates comparisons between compounds. Versions of this method have been successfully used on three genera of mosquitoes as well as house flies to assess the reduction in fecundity resulting from gene silencing of ribosomal RNA transcripts.
This protocol provides strategies to reduce several challenges of small insect microinjection. Together, mechanical delivery of dsRNAs accompanied by visual verification, identification of effective locations for delivery, and inclusion of a post-injection recovery period ensure accurate dosing and low injury mortality. This protocol also describes an oviposition bioassay for uniform determination of effects on fecundity.

This protocol describes a microinjection methodology that we have standardized and used for several years to deliver specific quantities of nucleic acids directly to the hemolymph of mosquitoes and house flies. This protocol results in minimal injection mortality and allows dose correlated measurements of fecundity.

Tekrarlanabilir dsRNA mikroenjeksiyon ve Oviposition Bioassay sivrisinekler ve evi sinekler

Synthetic dsRNAs, used to induce RNA interference, may have dose dependent phenotypic effects. These effects are difficult to define if the dsRNAs are ...

Flying Insect Detection and Classification with Inexpensive Sensors

An inexpensive, noninvasive system that could accurately classify flying insects would have important implications for entomological research, and allow for the development of many useful applications in vector and pest control for both medical and agricultural entomology. Given this, the last sixty years have seen many research efforts devoted to this task. To date, however, none of this research has had a lasting impact. In this work, we show that pseudo-acoustic optical sensors can produce superior data; that additional features, both intrinsic and extrinsic to the insect&#8217;s flight behavior, can be exploited to improve insect classification; that a Bayesian classification approach allows to efficiently learn classification models that are very robust to over-fitting, and a general classification framework allows to easily incorporate arbitrary number of features. We demonstrate the findings with large-scale experiments that dwarf all previous works combined, as measured by the number of insects and the number of species considered.

We proposed a system that uses inexpensive, noninvasive pseudo-acoustic optical sensors to automatically and accurately detect, count, and classify flying insects based on their flying sound.

Ucuz Sensörler ile Böcek Tespit ve Sınıflandırma Uçan

An inexpensive, noninvasive system that could accurately classify flying insects would have important implications for entomological research, and allow ...

Biyomühendislik

An Optimized Protocol for Rearing Fopius arisanus, a Parasitoid of Tephritid Fruit Flies

Fopius arisanus (Sonan) is an important parasitoid of Tephritid fruit flies for at least two reasons. First, it is the one of only three opiine parasitoids known to infect the host during the egg stage1. Second, it has a wide range of potential fruit fly hosts. Perhaps due to its life history, F. arisanus has been a successfully used for biological control of fruit flies in multiple tropical regions2-4. One impediment to the wide use of F. arisanus for fruit fly control is that it is difficult to establish a stable laboratory colony5-9. Despite this difficulty, in the 1990s USDA researchers developed a reliable method to maintain laboratory populations of F. arisanus10-12. There is significant interest in F. arisanus biology13,14, especially regarding its ability to colonize a wide variety of Tephritid hosts14-17; interest is especially driven by the alarming spread of Bactrocera fruit fly pests to new continents in the last decade18. Further research on F. arisanus and additional deployments of this species as a biological control agent will benefit from optimizations and improvements of rearing methods. In this protocol and associated video article we describe an optimized method for rearing F. arisanus based on a previously described approach12. The method we describe here allows rearing of F. arisanus in a small scale without the use of fruit, using materials available in tropical regions around the world and with relatively low manual labor requirements.

An Optimized Protocol for Rearing Fopius arisanus, a Parasitoid of Tephritid Fruit Flies

Fopius arisanus is an egg-larval parasitoid of Tephritid fruit flies that is successfully used in biological control of these important tropical pests. We describe here an optimized protocol for rearing F. arisanus on a small scale using readily available materials.

Yetiştirilmesi için Optimum Protokol Fopius arisanus Tephritid Meyve bir parazitoit Sinekler

Fopius arisanus (Sonan) is an important parasitoid of Tephritid fruit flies for at least two reasons. First, it is the one of only three opiine ...

Biyoloji

Maintenance of a Drosophila melanogaster Population Cage

Large quantities of DNA, RNA, proteins and other cellular components are often required for biochemistry and molecular biology experiments. The short life cycle of Drosophila enables collection of large quantities of material from embryos, larvae, pupae and adult flies, in a synchronized way, at a low economic cost. A major strategy for propagating large numbers of flies is the use of a fly population cage. This useful and common tool in the Drososphila community is an efficient way to regularly produce milligrams to tens of grams of embryos, depending on uniformity of developmental stage desired. While a population cage can be time consuming to set up, maintaining a cage over months takes much less time and enables rapid collection of biological material in a short period. This paper describes a detailed and flexible protocol for the maintenance of a Drosophila melanogaster population cage, starting with 1.5 g of harvested material from the previous cycle.

Maintenance of a Drosophila melanogaster Population Cage

This manuscript reports a detailed protocol for culturing, on a regular basis, a population of Drosophila melanogaster using a fly population cage.

Bir bakımı<em&gt; Drosophila melanogaster</em&gt; Nüfus Kafes

Large quantities of DNA, RNA, proteins and other cellular components are often required for biochemistry and molecular biology experiments. The short life ...

Circadian Entrainment of Drosophila Melanogaster

Nearly universal among organisms, circadian rhythms coordinate biological activity to earth&#39;s orbit around the sun. To identify factors creating this rhythm and to understand the resulting outputs, entrainment of model organisms to defined circadian time-points is required. Here we detail a procedure to entrain many Drosophila to a defined circadian rhythm. Furthermore, we detail post-entrainment steps to prepare samples for immunofluorescence, nucleic acid, or protein extraction-based analysis.

Here, we detail how to synchronize Drosophila to a circadian day. This is the first, and most important step necessary for studying biological rhythms and chronobiology.

Drosophila Melanogaster Sirkadiyen Entrainment

Nearly universal among organisms, circadian rhythms coordinate biological activity to earth&#39;s orbit around the sun. To identify factors creating this ...

Topical Application Bioassay to Quantify Insecticide Toxicity for Mosquitoes and Fruit Flies

The continued use of insecticides for public health and agriculture has led to widespread insecticide resistance and hampering of control methods. Insecticide resistance surveillance of mosquito populations is typically done through Centers for Disease Control and Prevention (CDC) bottle bioassays or World Health Organization (WHO) tube tests. However, these methods can result in a high degree of variability in mortality data due to variable insecticide contact with&#160;the insect, the relatively small numbers of organisms tested, extensive variation in mass between populations, and constantly changing environmental conditions, leading to variable outcomes. This paper presents the topical application bioassay, adapted as a high-throughput phenotypic bioassay for both mosquitoes and fruit flies, to test large numbers of insects along&#160;a range of insecticide concentrations.
This assay 1) ensures consistent treatment and insecticide contact with every organism, 2) produces highly specific dose-response curves that account for differences in average mass between strains and sexes (which is particularly important for field-collected organisms), and 3) allows for the calculation of statistically rigorous median lethal doses (LD50), which are necessary for resistance ratio comparisons-an alternative surveillance approach from diagnostic dose mortality, which is also used for larvicide resistance surveillance. This assay will be a complementary tool for accurately phenotyping mosquito populations and, as illustrated using fruit flies, is easily adaptable for use with other insects. We argue that this assay will help fill the gap between genotypic and phenotypic insecticide resistance in multiple insect species.

We describe the methodology and importance of the topical application bioassay to measure insecticide susceptibility in mosquitoes and fruit flies. The presented assay is high-throughput, utilizes insect mass-thus allowing for calculating a mass-relativized lethal dose instead of concentration-and likely has lower variability than other similar methods.

Sivrisinekler ve Meyve Sinekleri için İnsektisit Toksisitesini Ölçmek için Topikal Uygulama Biyotahlili

The continued use of insecticides for public health and agriculture has led to widespread insecticide resistance and hampering of control methods. ...

Bradysia coprophila Lab Protocols and Chromosomal Research

Laboratory Maintenance of the Lower Dipteran Fly Bradysia (Sciara) coprophila: A New/Old Emerging Model Organism

Laboratory stocks of the lower dipteran fly, Bradysia (Sciara) coprophila, have been maintained for over a century. Protocols for laboratory upkeep of B. coprophila are presented here. These protocols will be useful for the rapidly increasing number of laboratories studying B. coprophila to take advantage of its unique biological features, which include (1) a monopolar spindle in male meiosis I; (2) non-disjunction of the X dyad in male meiosis II; (3) chromosome imprinting to distinguish maternal from paternal homologs; (4) germ line-limited (L) chromosomes; (5) chromosome elimination (paternal chromosomes in male meiosis I; one to two X chromosomes in early embryos; L chromosomes from the soma in early embryos); (6) sex determination by the mother (there is no Y chromosome); and (7) developmentally regulated DNA amplification at the DNA puff loci in larval salivary gland polytene chromosomes. 
It is now possible to explore these many unique features of chromosome mechanics by using the recent advances in sequencing and assembly of the B. coprophila genome and the development of transformation methodology for genomic engineering. The growing scientific community that uses B. coprophila for research will benefit from the protocols described here for mating the flies (phenotypic markers for mothers that will have only sons or only daughters; details of mass mating for biochemical experiments), checking embryo hatch, feeding larvae, and other comments on its rearing.

Author Spotlight: Exploring Bradysia coprophila's Unique Biology &#8211; A Guide to Laboratory Maintenance

This paper outlines the laboratory maintenance (including mating and feeding) of the lower dipteran fly Bradysia (Sciara) coprophila.

Alt Dipteran Sineği Bradysia (Sciara) coprophila'nın Laboratuvar Bakımı: Yeni/Eski Ortaya Çıkan Bir Model Organizma

Laboratory stocks of the lower dipteran fly, Bradysia (Sciara) coprophila, have been maintained for over a century. Protocols for laboratory upkeep of B. ...

Laboratuvar istikrarlı sinek ve diğer Muscoid Diptera yetiştirme

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Meyve Fly Yetiştirme