Bu araştırma, &quot;Sanal Karaciğer Ağ&quot; finanse Eğitim ve Araştırma Federal Bakanlığı (Bmbf) tarafından desteklenmiştir. Ben videoyu üreten ve ses kayıt için animasyon ve Isabel Jank yaratarak onların yardım için Jena Üniversitesi Hastanesi medya merkezinden Frank Schubert ve Rene GUMPERT teşekkür etmek istiyorum.

Konut ve yürütülen tüm işlemler Alman Hayvan Refahı Mevzuatına uygun vardı. 1. Sensörler Kalibrasyon (Sensörler Kalibrasyon için üreticinin talimatlarına uyun) 1.1) Millar kateter kalibrasyonu. 30 dakika önce dengelemek için (sıfırlar) ve kalibrasyon için steril su ya da tuzlu su içinde kateterin ucu ön-ıslatma. <ol><li> Köprü amplifikatör millar1 kanalına millar sensörünü bağlayın ve su sütununa millar sensör ucu takın. </li><li> 0 cmH2O O. su sütunu değerini ayarlayın Veri analiz yazılımı penceresinde, yükseltmek köprü seçin ve onu sıfır. Bazal değer 0 cmH2O ayarlanabilir. </li><li> 20 cmH2O O. su sütunu değerini ayarlayın Veri analiz yazılımı penceresi ilerlemeyi çalıştırın ve durdurun. Yükseltmek köprü penceresinde &quot;birimleri&quot; seçiniz, 2 O buna göre 0 ve 20 CMH taban ayarlamak. &lt;CMH &quot;birimi&quot; ayarlayınsub&gt; 2 O. </li><li> Aynı şekilde CAP ölçülmesi için millar2 kalibre (iki taban hattı 90 ve 110 cmH2O ayarlanır). </li></ol> 1.2) Kan akım probu kalibrasyonu <ol><li> Iyonu giderilmiş su içine sonda yerleştirin. Transonik akış prob sistemi ile prob bağlayın. </li><li> Veri analiz yazılımı penceresinde, Giriş akış probu sıfıra yükseltmek seçin. Birimleri ayarlayın. </li><li> &quot;Test kanalı&quot; sinyal toplamak için düğmeye basın: sinyal 3-4 bar varsa, bu sinyalin iyi olduğu anlamına gelir. Iyi bir sinyal elde edilir durumda, prosedür devam edilebilir. </li><li> Değeri kalibre edilmiş veya edilmemiş olup olmadığını &quot;sıfır kanal&quot; ve ölçek görmek için kanalı için düğmeye basın. </li><li> Daha sonra ölçüm için &quot;tedbir kanal&quot; için düğmeye basın. </li></ol> 2. Cerrahi Prosedür için Fare hazırlayın <ol><li> Indüksiyon odasında fare yerleştirin ve% 2 izofluran ile fare uyutmak ve0.3 ml / dakika oksijen. Fare ayak parmağı sıkıştırma çekme refleksi mevcut olmaması halinde işlemi gerçekleştirilebilir. </li><li> Sol boyun ve karın dahil cerrahi bölgelerde, kürk tıraş. </li><li> Ameliyat masasında fare yerleştirin ve kasetleri kullanarak sabitleyin. Işletme süresince kuruluğunu önlemek için gözlerin veteriner merhem kullanın. </li><li> Boyun operasyon alanının optimal pozlama için boyun altında bir gazlı bez yastık yerleştirin. </li><li> Operasyon alanı dezenfekte edin ve sadece açık cerrahi alanını terk fareyi kapsayacak şekilde sterilize Gauzes yerleştirin. </li></ol> 3. Vital Parametreler Ölçüm <ol><li> Deri altından fare pençeleri içine EKG iğneler takın. </li><li> Fare arkasına altında solunum sensörü yerleştirin. </li><li> Fare rektum içine, sıcaklık probu yerleştirin. </li><li> Tutanak sıcaklığı, EKG ve veri analizi yazılımı fare solunum hızı. </li></ol> S 4. Boyun Operasyonuystemic Kardiyovasküler İzleme 4.1) Gemi diseksiyonu <ol><li> Boyun orta hattı, klavikula orta noktası, mandibulanın açısını tanımlayın. </li><li> Orta çizginin sol tarafına 0.5cm olan klavikula orta noktaya mandibula açısı bir 2cm boyuna kesi yapmak. </li><li> , Submandibular bez disseke ters çevirin ve tuzlu batırılmış gazlı bez ile örtün. </li><li> , Juguler ven tespit teşrih ve daha sonra ligasyon ve sabitleme için ven altına üç 6-0 ipek sütür koyun. </li><li> , Sternokleidomastoid kas tespit digastricus&#39;un omohyoid ve arka karnının üstün karnından ayırmak ve karotis arter kolay maruz kalma bir ekartör ile çekin. </li><li> Karotis arter incelemek ve daha sonra ligasyon ve sabitleme için arterin altında üç 6-0 ipek sütür koyun. </li></ol> 4.2) Karotis arter kan akım ölçümü <ol><li> Transonic yerleştirin, karotis arter etrafında soruşturma sabit tutmak ve ultrason jeli veya tuzlu su kullanılarak kişiyi optimize. </li><li> Veri analiz yazılımı kullanılarak transonik cihazın küçük ekranda gösterildiği gibi karotis arter rekor kan akım hızı </li><li> Ölçümü tamamladıktan sonra probu çıkarın </li></ol> 4.3) Karotis arter basıncı ölçümü (CAP) <ol><li> Karotid arterin distal ucunu birbirine bağlamak ve yakın uca kelepçe. </li><li> Karotis arter etrafında 2 sabitleme sütür koyun. Kalmak dikiş için 10-0 proleni kullanın. </li><li> Geminin ön duvarında küçük bir kesi yapmak. </li><li> Millar kateter yerleştirin ve önceden yerleştirilmiş dikişler ile sabitleyin. </li><li> Veri analizi yazılımı CAP kaydedin. </li></ol> 4.4) Boyun ven kan akımı ölçümü <ol><li> Juguler ven kaldırın ve akış hızını ölçmek için transonik akış probu yerleştirin. </li><li> Veri işleme ve akış hızı kaydedin. </li></ol> 4.5) Santral venöz basınç ölçümü (CVP) <ol><li> Şahdamarından proksimal ucunu Kelepçe ve distal ucu Arter. </li><li> Kabın ön duvar microscissors kullanarak küçük bir kesik kesin. </li><li> Sıvı dolu kateter yerleştirin ve önceden yerleştirilmiş dikiş hatları ile sabitleyin. </li><li> Veri analizi yazılımı CVP kaydedin. </li></ol> Karaciğer Hemodinamiğin Edinme 5. Karın Çalışması 5.1) Gemi tanımlama <ol><li> Karın üzerinde enine kesi yapmak. </li><li> Sol tarafa bağırsakları Eventerate ve ıslak bir gazlı bez ile kaplayın. </li><li> Inferior vena kava, portal ven, ortak hepatik arter ve uygun hepatik arter tanımlayın. </li><li> Bütün izleme işlemi sırasında karın ve bağırsak her 5 dakika yüzeyinde bir ılık tuzlu su bırakın. </li></ol> Portal kan akışının 5.2) Ölçüm <ol><li> Portal ven teşrih. </li><li> Akış prob yerleştirirken, teknenin kaldırma sağlamak için, portal ven altında 6-0 ipek yerleştirin. </li><li> Portal ven etrafında transonik akış probu yerleştirin ve kan akış hızını ölçmek. </li><li> Portal ven kan akış hızını kaydedin. </li></ol> Ortak hepatik arter akış 5.3) Ölçme <ol><li> Dikkatli ortak hepatik arter ayır. </li><li> Teknenin kaldırma sağlamak için teknenin yaklaşık bir 6-0 ipek dikiş yerleştirin. </li><li> Arter etrafında akış probu yerleştirin. </li><li> Kendi kan akımını ölçmek ve veri elde. </li></ol> Portal ven basıncı 5.4) Ölçüm (PVP) <ol><li> Düz portal ven içine akıtır az yan dalları ile mezenterik ven, bir dalı seçin. </li><li> Seçilen mezenterik ven uzak ucunu Arter. Ligasyon bağırsak tüp yakın olduğundan emin olun. Onun küçük dalları bağlayan </li><li> 2 f yerleştirinven çevresinde 6-0 prolen sütür kullanarak ixing. Bu prosedürün kilit noktası ven bağlanarak zaman mezenterik arter dokunmamak için. </li><li> Portal ven proksimal ucunu sıkıştırın. </li><li> 10-0 prolen kullanılarak 2 kalmak sütür koyun. Kalmak dikiş ince mezenterik ven damar duvarına nüfuz etmelidir yana bazı kanama meydana gelecektir. </li><li> 45 derece açıyla eğik bir microscissor kullanarak ven küçük bir kesi yapmak. </li><li> Portal ven içine mezenterik ven aracılığıyla Millar kateter yerleştirin ve bunu düzeltmek </li><li> Portal ven basıncını kaydedin. Prosedürün sonunda, anestezi altında kanı akıtılarak kurban fareler. </li></ol>

<ol>
	<li>Albuszies, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+increased+cardiac+output+on+hepatic+and+intestinal+microcirculatory+blood+flow,+oxygenation,+and+metabolism+in+hyperdynamic+murine+septic+shock.">Effect of increased cardiac output on hepatic and intestinal microcirculatory blood flow, oxygenation, and metabolism in hyperdynamic murine septic shock.</a> Crit Care Med. 33 (10), 2332-2338 (2005).</li><li>Bernhard, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Phosphatidylcholine+molecular+species+in+lung+surfactant:+composition+in+relation+to+respiratory+rate+and+lung+development.">Phosphatidylcholine molecular species in lung surfactant: composition in relation to respiratory rate and lung development.</a> Am. J. Respir. Cell Mol. Biol. 25 (6), 725-731 (2001).</li><li>Cheever, A. W., Warren, K. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Portal+vein+ligation+in+mice:+portal+hypertension,+collateral+circulation,+and+blood+flow.">Portal vein ligation in mice: portal hypertension, collateral circulation, and blood flow.</a> 18, 405-407 (1963).</li><li>Costa, G., Aguiar, B. G., Coelho, P. M., Cunha-Melo, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On+the+increase+of+portal+pressure+during+the+acute+and+chronic+phases+of+murine+schistosomiasis+mansoni+and+its+reversibility+after+treatment+with+oxamniquine.">On the increase of portal pressure during the acute and chronic phases of murine schistosomiasis mansoni and its reversibility after treatment with oxamniquine.</a> Acta Trop. 89 (1), 13-16 (2003).</li><li>Cui, S., Shibamoto, T., Zhang, W., Takano, H., Kurata, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Venous+resistance+increases+during+rat+anaphylactic+shock.">Venous resistance increases during rat anaphylactic shock.</a> Shock. 29 (6), 733-739 (2008).</li><li>Geerts, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+three+research+models+of+portal+hypertension+in+mice:+macroscopic,+histological+and+portal+pressure+evaluation.">Comparison of three research models of portal hypertension in mice: macroscopic, histological and portal pressure evaluation.</a> Int. J. Exp. Pathol. 89 (4), 251-263 (2008).</li><li>Huang, H., Deng, M., Jin, H., Dirsch, O., Dahmen, U. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intraoperative+vital+and+haemodynamic+monitoring+using+an+integrated+multiple-channel+monitor+in+rats.">Intraoperative vital and haemodynamic monitoring using an integrated multiple-channel monitor in rats.</a> Lab Anim. 44 (3), 254-263 (2010).</li><li>Krege, J. H., Hodgin, J. B., Hagaman, J. R., Smithies, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+noninvasive+computerized+tail-cuff+system+for+measuring+blood+pressure+in+mice.">A noninvasive computerized tail-cuff system for measuring blood pressure in mice.</a> Hypertension. 25 (5), 1111-1115 (1995).</li><li>Kuga, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Rapid+and+local+autoregulation+of+cerebrovascular+blood+flow:+a+deep-brain+imaging+study+in+the+mouse.">Rapid and local autoregulation of cerebrovascular blood flow: a deep-brain imaging study in the mouse.</a> J. Physiol.. 587 (Pt 4), 745-752 (2009).</li><li>Muraki, T., Strain Kato, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=difference+in+the+effects+of+morphine+on+the+rectal+temperature+and+respiratory+rate+in+male+mice.">difference in the effects of morphine on the rectal temperature and respiratory rate in male mice.</a> Psychopharmacology (Berl). 89 (1), 60-64 (1986).</li><li>Nielsen, J. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+ventricular+volume+measurement+in+mice+by+conductance+catheter:+evaluation+and+optimization+of+calibration.">Left ventricular volume measurement in mice by conductance catheter: evaluation and optimization of calibration.</a> Am. J. Physiol Heart Circ. Physiol. 293 (1), H534-H540 (2007).</li><li>Sakamoto, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Improvement+of+portal+hypertension+and+hepatic+blood+flow+in+cirrhotic+rats+by+oestrogen.">Improvement of portal hypertension and hepatic blood flow in cirrhotic rats by oestrogen.</a> Eur. J. Clin. Invest. 35 (3), 220-225 (2005).</li><li>Reverter, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Impact+of+deep+sedation+on+the+accuracy+of+hepatic+and+portal+venous+pressure+measurements+in+patients+with+cirrhosis.">Impact of deep sedation on the accuracy of hepatic and portal venous pressure measurements in patients with cirrhosis.</a> Liver Int. 34 (1), 16-25 (2014).</li></ol>

Yazarlar hiçbir rakip mali çıkarlarının olmadığını beyan ederim.

Hepatik Hemodinamiğin izlenmesi Hepatoloji ve karaciğer cerrahisinde önemli bir araştırma aracı. Hepatik hemodinamik verilerin elde dolaşım sistemi üzerinde hepatobilier prosedürlerin etkisini belirlemek için yardımcı olur. Vazoaktif ilaçlar değerlendiren çalışmalarda gerektiği gibi hepatik hemodinamik verilerin elde edilmesi de, örneğin portal basıncı ve portal akışını etkileyen ilaçların etkilerini incelemek için gereklidir. Küçük boyutuna rağmen, sistemik yaşamsal parametreleri ve karaciğer hemodinamik farelerde izlenebilir. Aşağıdaki gibi protokol çerçevesinde kritik adımlar vardı: Birincisi, dolaşım disfonksiyonuna yol açabilir hipotermi önlemek için tüm prosedür sırasında bir ısınma pad üzerinde hayvan yerleştirmek önemlidir. Fare damar duvarı çok kırılgan ve ince olduğundan İkincisi, bu, bir fare damarları diseksiyon zaman çok dikkatli olmak önemlidir. Bu th bazı yağ dokusu kapma damar duvarını düzeltmek için en iyi görünüyorYerine, damar duvarı kendini kapma E yüzeyi. Üçüncüsü, bu mezenterik ven çevresinde sabitleme sütür yerleştirirken arteriyel kaynağını bozmayacak için mezenterik arterin yanlışlıkla bağlanmasını önlemek için hayati önem taşımaktadır. Ancak, invaziv rehberlik tekniği bazı sınırlamalar vardır. İlki kendisi tarafından invaziv olduğunu. Bu izleme tekniği cerrahi müdahale gerektiren invaziv bir yöntemdir. Dolayısıyla, izleme prosedür, hayvanlar için yan etkilere neden olabilir. Bu nedenle, sadece ama hayatta deneylerde, normal hayvanlarda akut deneylerde hemodinamik parametreleri elde etmek için bu prosedürü kullanılır. Bir sonraki adımda, hayatta kalma deneylerde bu tekniği değerlendirmek isterler. Bu prosedürün ikinci sınırlaması önemli mikrocerrahi tecrübe gerektirir. Farelerde Hemodinamik izlem sadece özel eğitimli mikrocerrah tarafından yapılmalıdır. En zor parBu ven son derece kırılgan olduğundan bu izleme sürecinin t, küçük mezenterik ven Millar kateter yerleştirilmesidir. Bizim ellerde, yaklaşık 10 eğitim operasyonları öncesinde teknik bu prosedürü mastering için deneyimli bir microsurgeon için ihtiyaç vardı. Deneyim başarıyla sıçan veya farelerde 50&#39;den fazla vasküler anastomoz (karotis arter, juguler ven) yapılan olmanın tanımlanmıştır. Üçüncü sınırlama, bu yöntem ile elde edilen portal kan basıncı normal hayvan için fizyolojik sınırın altında olabilir olmasıdır. Mezenterik ven ligasyonu ve kateter yerleştirme tahmini% 10 oranında portal ven içine drene kan toplam hacmi azaltabilir. Bununla birlikte, bu fizyolojik aralık mevcut cihazlar kullanılarak elde edilemez. Benzer şekilde, PVP anestezi kendisinin etkisi 13 göz ardı edilemez. Tüm hayvanlar, aynı müdahaleye maruz Ancak, olası hata sistematik bir hata olacaktır. Bu durumda, Data yorumlama dikkatli hayvanlar arasındaki mutlak farkların mutlaka göreceli bir hayvan içinde değişiklikler değil odaklanarak ile yapılmalıdır. Ancak, kemirgenlerde invaziv hemodinamik az alternatifler vardır. Non-invaziv izleme sistemik kan basıncının satın sınırlıdır. Portal basınç veya portal akım farelerde non-invaziv tespit edilemez. Telemetrik izleme da sistemik kan basıncı özellikleriyle sınırlıdır. Hiçbir raporlar, diğer hemodinamik parametreler telemetrik edinimi ile ilgili bulunmuştur. Bu, tam intraoperatif izleme prosedürü karaciğer perfüzyon, karaciğer rejenerasyonu ve kapsamlı hepatobilier cerrahi regülasyonu gibi hepatik fizyolojik süreçleri anlamak için gereklidir. Gerçek zamanlı Ameliyatta Laboratuar hayvanlarının verileri izlemek ve toplamak için yeteneği, bu nedenle, karaciğer di çalışmada önemli bir ilerlemeyi temsiliçeriyordu ve portal hipertansiyon.

Bu videonun genel amacı, sistemik ve hepatik hemodinamik parametrelerini elde etmek için gerçek-zamanlı izleme prosedürü göstermekti. Bu prosedürü geliştirmek için gerekçe sistemik ve hepatik hemodinamik parametrelerin elde edilmesi gerektiren farelerde deneysel müdahaleler için büyük bir değerdir. Prosedür böyle hepatektomiden, portal ven ligasyonu ve karaciğer nakli gibi, naif hayvanlara ve sırasında veya belirli bir hepatobiliyer deneysel cerrahi müdahale sonrasında uygulanabilir. Kemirgenlerde karaciğer hemodinamik verilerin elde edilmesi önerilen invaziv prosedür gerektirir. Karaciğer perfüzyon non-invaziv elde edilemez. Ancak, sistemik kan basıncı edinimi için alternatifler vardır. Böyle kuyruk manşet tekniği 8 olarak izleme teknikleri sıçan ve farelerde hem de kan basıncını elde etmek için kullanılmıştır. Kuyruk manşet tekniği consci uygulanabilirlı hayvanlar. Kan basıncını ölçerken, hayvan belirli bir rahatsız bir pozisyonda yerleştirilir ve düzeltilmesi gerekiyor. Kuyruk manşet cihaz kılavuzda, üretici farenin sinir olur ve kuyruk dolaşımını azaltabilir hangi vurguladı belirtmektedir. Bu koşullar altında, kuyruk elde edilen periferik kan basıncı merkezi kan basıncından daha düşük olabilir. Tam izleme prosedürü veri toplama için sensörler bir dizi kullanarak bir tümleşik çoklu-kanal monitör ile gerçekleştirildi. Kan basıncı, mikroskop altında dikkatli bir mikrocerrahi diseksiyon ve maruz kaldıktan sonra söz konusu kabı içine bir kateter sokulması ile elde edilmiştir. Akış hızı, her bir kabın etrafına transonik akış prob yerleştirilmesi ile ölçülmüştür. Biz zaten SINGL karşılaştırılabilir fizyolojik hemodinamik verileri kapsamlı bir dizi sonuçlanan sıçanlar için benzer intraoperatif izleme prosedürü bildirdiDiğer grup 7 rapor E verileri. Bu nedenle fare, sıçan daha küçük 10-kat bir türe adapte için iyi bir temel temsil etmek için bu prosedürü kabul. Sıçan prosedüre en önemli fark, kan basıncı verileri yerine sıvı tabanlı kateter sistemi elde etmek için Millar kateter kullanılmasıdır. Akış veriler de transonik akış sondaları, gelen sıçan gemiler için daha sadece daha küçük olanlar ile elde edildi. Nedeniyle hayvanın küçük boyutu, farelerin enstrümantasyon teknik açıdan zorlayıcı, ama mümkündür. Enstrümantasyon tamamlandıktan sonra önceden tanımlanmış bir ayar dosyası kullanılabilir beri, veri toplama ve birincil yaşam veri analizi, basittir. Ayar dosyası bir dizi deney başında bir kez tanımlanması ve bu depolanmış ve daha sonraki deneyler için kullanılabilir sahiptir. Şimdiye kadar akut deneylerde karaciğer hemodinamik etkilerini değerlendirmek için bu prosedürü uygulanır. Biz CA ölçülenP ve PVP önce ve hemen% 70 parsiyel hepatektomi (PH) sonra ve / de-sıkma deneyler kıstırma. Biz karaciğer kütlesinin tamamen% 90&#39;ını temsil eden kitle medyan kısa (5 dakika) sıkıştırma ve sol lateral lob ardından karaciğer% 20 temsil eden sağ lobunun Hepato-duodenum ligament kenetlenir. De-sıkma medyan ve sol lateral lobu boşaltarak ardından sağ lob kelepçeyi serbest başladı. Maksimum bağlama süresi 10 dakikanın altında idi.

<table><tbody><tr><td>PowerLab 16/30&amp;nbsp;</td><td>ADInstruments</td><td>PL3516</td><td></td></tr><tr><td>Quad Bridge Amp</td><td>ADInstruments</td><td>FE224</td><td>Bridge amplifier&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Animal Bio Amp</td><td>ADInstruments</td><td>FE136</td><td></td></tr><tr><td>Needle Electrodes for FE136 (3 pk)</td><td>ADInstruments</td><td>MLA1213</td><td></td></tr><tr><td>Perivascular Flowmeter Module</td><td>Transonic</td><td>TS420</td><td></td></tr><tr><td>Flowprobe MA0.5PSB/MA1PSB</td><td>Transonic</td><td>MA0.5PSB/MA1PSB</td><td></td></tr><tr><td>SPR-1000 Mouse Pressure Catheter</td><td>Millar instruments</td><td>841-0001</td><td></td></tr><tr><td>fluid filled catheter&amp;nbsp;</td><td>Terumo</td><td>SR+DU2619PX</td><td>26G, 0.64&amp;times;19mm</td></tr><tr><td>micro scissors</td><td>F&amp;middot;S&amp;middot;L</td><td>No. 14058-09</td><td></td></tr><tr><td>micro serrefine</td><td>F&amp;middot;S&amp;middot;L</td><td>No.18055-05</td><td></td></tr><tr><td>Micro clamps applicator</td><td>F&amp;middot;S&amp;middot;L</td><td>No. 18057-14</td><td></td></tr><tr><td>Straight micro forceps</td><td>F&amp;middot;S&amp;middot;L</td><td>No. 00632-11</td><td></td></tr><tr><td>Curved micro forceps</td><td>F&amp;middot;S&amp;middot;L</td><td>No. 00649-11</td><td></td></tr><tr><td>needle-holder</td><td>F&amp;middot;S&amp;middot;L</td><td>No. 12061-01</td><td></td></tr><tr><td>6-0 silk</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>6-0 prolene</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>7-0 prolene</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>10-0 prolene</td><td>ethicon</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Tail cut-off device&amp;nbsp;</td><td>Kent Scientific</td><td></td><td>www.kentscientific.com</td></tr><tr><td>LabChart7</td><td>ADInstruments</td><td></td><td>data&amp;nbsp; analysis software&amp;nbsp;</td></tr></tbody></table>

monitoring of systemic and hepatic hemodynamic parameters in mice

Deneysel araştırma fare modellerinin kullanımı hepatik fizyolojisi ve patofizyolojik rahatsızlıkların çalışma için çok büyük önem taşıyor. Ancak nedeniyle fare, küçük boyutu, fare için uygun intraoperatif izleme prosedürünün teknik detayları nadiren tarif edildi. Daha önce biz fareler için hemodinamik parametrelerini elde etmek için bir izleme prosedürü bildirdi. Şimdi, farelerde sistemik ve hepatik hemodinamik parametrelerini elde etmek için prosedür, sıçanlar daha küçük on kat bir tür adapte. Bu film, hayvanların aletleri hem de farelerde karaciğer ve sistemik hemodinamikler değerlendirmek için gerekli olan veri toplama işlemini göstermektedir. Vücut ısısı, solunum hızı ve kalp hızı dahil yaşamsal parametreleri, işlem boyunca kaydedildi. Sistemik hemodinamik karotis arter basıncı (CAP) ve santral venöz basınç (CVP) oluşmaktadır. Karaciğer perfüzyon parametreleri portalı v dahilEin basıncı (PVP), köprülü akış hızı hem de ortak hepatik arter (Tablo 1) akış hızı. Enstrümantasyon ve veri toplama normal değerler 1.5 saat içinde tamamlandı kaydetmek için. Sistemik ve hepatik hemodinamik parametreler bu işlem sırasında normal sınırlar içinde kalmıştır. Bu prosedür zor ama mümkündür. Biz zaten deneyler sıkma normal farelerde olduğu gibi% 70 hepatektomiden sırasında ve karaciğer lobunda hepatik hemodinamikleri değerlendirmek için bu prosedürü uyguladık. Rezeksiyon (n = 20), rezeksiyon (6.87 ± 2.39 cmH2O) daha önce anlamlı derecede yüksek olduğu cmH2O (p &lt;0.05) 11.41 ± 2.94 idi sonra PVP idi. Denemeyi sıkma lob sonuçları bu izleme prosedürü portal basınçta ve portal akış hızında küçük değişiklikler tespit etmek için hassas ve uygun olduğunu belirtti. Sonuç olarak, bu yordamı tecrübeli bir mikro-cerrahın elinde güvenilir ama exp sınırlı olmalıdıreriments farenin kesinlikle nerede ihtiyaç vardır.

Böyle solunum hızı ve kalp hızı gibi farelerin hayati parametreleri açıkça sıçan çok daha yüksektir. Ortalama sistemik kan basıncı ve boyun ven basıncı sıçan değerlere benzer ve insan verilerinden bile benzer. Karaciğer hemodinamik veriler açıkça farklıdır. Biz 8 farelerin normal değerleri elde edilmiştir. Normal farelerde, portal kan akışı 1,6-2,3 ml / dakika arasında değişmektedir. Ortak hepatik arter akış 0.10 0.35 ml / dk arasında değişmektedir. Normal hayvanlarda portal damar basıncı 8,09 ± 2,47 arasında ortalama bir değer cmH2O (Tablo 1) ile O cmH2O 4,4-11,2 geniş aralığı içinde olmuştur. Normal hayvan küçük gruplar ortalama değeriyle karşılaştırarak, bu geniş küçük ama önemli olmayan farklılıklara yol açabilir. Özellikle portal basınçta önemli bireyler arası farklılıklar gözlenmektedir yana, biz küçük içi bireysel farklılıklar, bu teknoloji ile tespit edilebilir olup olmadığını testnique. Biz iki farklı deneysel ortamlarda bu yordamı değerlendirdi: parsiyel hepatektomi ve karaciğer lobu sıkıştırma / de-kelepçeleme. Portal basınç önce ve hemen sonra aynı hayvanda% 70 parsiyel hepatektomi (n = 20) (= P &lt;0.001) O cmH2O 6.87 ± 2.39 ve 11.41 ± 2.94 2 kat artmıştır (Şekil 1). İnsanlarda 7&#39;de, diğer türleri de 5,12 gözlendi ve Bu sonuçlar benzer bir aralık içinde olmuştur. Rezeksiyon öncesi Normal portal ven basıncı ve portal basıncı iki farklı grupta (normal denetleme parametreleri gruptan biri,% 70 PH gruptan diğer) satın alındı. 6.87 ± 2.39 CMH karşı (8.09 ± 2.47 cmH2O bizim deneyinde görüldüğü gibi, normal farelerde portal basınçta geniş (4 cmH2O 11), hayvanların küçük gruplar ortalama değerleri, biraz farklı olabilir 2 O). Veriler analiz edildiğinde, ancak, hiçbir &#39;durağan olduğu bulunduBu iki grup (p = 0.237) arasında olarak anlamlı fark. Sıkıştırma / de-sıkma deney prosedürü portal basınçta bile küçük değişiklikler algılayabilecek kadar hassas olduğunu göstermek için tasarlanmıştır. Karaciğer kütlesinin% 20&#39;sini temsil eden sağ lob sıkma yaklaşık% 17 oranında bir artışla sonuçlandı. Median daha sıkma ve sol lateral lob başlayan portal basınçta kıyasla en az 2-3 katlık bir artışa neden olmuştur. Karaciğer% 70 sıkıştırma sonuçlanan sağ lob kelepçeyi serbest bırakıldığında portal kan basıncı, başlangıç ​​basıncı aşamalı olarak. Medyan ve sol lateral lobu (Şekil 2 ve Tablo 2) besleyen sol portal ven kelepçeyi çıkarırken basınç başlangıç ​​seviyesine geri döndü. Sham grubunun MAP karın açıldıktan sonra 1 saat içinde sabit kalmıştır. Benzer bir zaman noktasında elde edilen kontrol grubundaki farelerin MAP,sıkma deneyde olduğu gibi, deney grubunun MAP ile karşılaştırıldığında anlamlı bir fark vardı. Her iki deneyin sonuçları az% 20, hatta küçük birey-içi bir değişiklik, bu prosedür ile tespit edilebilir olduğunu göstermiştir. Şiddetli kanama ve tıkanıklık gibi tipik komplikasyonlar işlem sırasında oluşabilir. Ciddi kan kaybı önemli MAP azalma yanı sıra PVP yol açacağından, bu komplikasyon ile farelerin sonuçları elimine edilmelidir. Biz küçük bir doz heparin (500 U / kg) enjekte öneririz, karaciğer lobu sıkma deneyi gerçekleştirirken ameliyat sıkma öncesi venöz konjesyon ve tromboz riskini. Ortak hepatik arter damar kaldırma ve prob yerleştirilmesi gibi işleme üzerine geçici bir damar spazmı uğrayabilir. Bu, bir karaciğer geçici iskemi kısa yol açabilir. Genel olarak, spazm dakika içinde kendiliğinden çözebilir. CHA bir kısa damar spazmı ciddi bir problem oluşturan değilhepatik iskemi reperfüzyon hasarı odaklanarak zaman hayvanın yaşam, ancak, deneysel sonuçlar ile etkileşebilir. Sonuç olarak, bu prosedür zor ama mümkündür. Hatta deneyimli mikro cerrahlar için bazı eğitim gerektirir. Nedeniyle müdahaleler öncesi ve sonrasında farklı hayvanlarda elde edilen basınç verilerine yüksek bireyler arası değişkenliği karşılaştırmak için kesin sonuçlara yol olmayabilir. Bu nedenle önce ve aynı hayvanda müdahalesinden sonra verileri alarak akut deneylerde karaciğer hemodinamiklerinin kısa vadeli düzenlenmesini incelemek için bu yordamı öneririz. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr height="26"><td colspan="2"> Parametreler </td><td> Kendi verileri elde </td><td> Parametreler bildirdi </td></tr><tr><td rowspan="3"> Yaşamsal parametreleri </td><td> Kalp hızı (n = 8) </td><td> 418 ± 55 BPM </td><td> 389 (353-566) BPM 1 </td></tr><tr><td&gt; solunum oranı (n = 2) </td><td> 162 ± 11 BPM </td><td> 254 ± 28 BPM 2 </td></tr><tr><td> Sıcaklık (n = 8) </td><td> 33.56 ± 0.54 ° C </td><td> 36,1-36,6 ° C 11 </td></tr><tr><td colspan="2"> Sistemik kan basıncı (CAP) (n = 8) </td><td> 130.54 ± 20.47 cmH2O (= 96,02 ± 15,06 mmHg) </td><td> 94 ± 15 mmHg 9 </td></tr><tr><td colspan="2"> Santral venöz basınç (CVP) (n = 2) </td><td> 8.90 ± 3.25 cmH2O </td><td> 5.9 ± 2.0 cmH2O 11 </td></tr><tr><td rowspan="6"> Karaciğer hemodinamik </td><td rowspan="2"> Portal ven akım (n = 6) </td><td rowspan="2"> 2.03 ± 0.24 ml / dk </td><td> 3,0 (2,5-3,1) ml / 1 dak </td></tr><tr><td> 3.3 ml / dakika 1 </td></tr><tr><td> Ortak hepatik arter akım (n = 6) </td><td> 0.20 ± 0.09 ml / dak </td><td> Fou değil<html> nd </td></tr><tr><td rowspan="3"> PVP (n = 8) </td><td rowspan="3"> 8.09 ± 2.47 cmH2O (= 5.95 ± 1.82mmHg) </td><td> 5.3 ± 1.4 cm tuzlu 3 </td></tr><tr><td> 8.7 ± 2.1 mmHg 4 </td></tr><tr><td> 6 4mmHg </td></tr></tbody></table> . Bu izleme prosedürü TKP kullanılarak elde farelerin Tablo 1. Normal sistemik ve hepatik hemodinamik parametreler: karotid arter basıncı; MAP: ortalama arter basıncı; CVP: Santral venöz basıncı; PVP: portal ven basıncı. <img alt="Şekil 1" fo:content-width="5in" src="/files/ftp_upload/51955/51955fig1highres.jpg" width="500" /> Şekil 1. PVP önce ve% 70 PH sonra. Vardı Portal ven% 70 hepatektomiden önce ve sonra basınç (n = 20) 6.87 ± 2.39 ve 11.41 ± 2.94 cmH2O O.www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/51955/51955fig1highres.jpg &quot;target =&quot; _blank &quot;&gt; Bu rakamın büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız. <table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> Parametreler (cmH2O) </td><td> Operasyon sonrasında </td><td> Karaciğerin% 20 sıkıştırdıktan sonra (RL) </td><td> Karaciğerin% 90 sıkıştırdıktan sonra (RL + ML + LLL) </td><td> Karaciğerin% 70 sıkıştırdıktan sonra (ML + LLL) </td><td> Sonunda (tüm kıskaçları bırakın) </td></tr><tr><td> PVP - Sıkıştırma exp grubu (n = 10) </td><td> 9.59 ± 4.00 </td><td> 10.45 ± 3.89 </td><td> 25.78 ± 8.99 </td><td> 16.91 ± 9.86 </td><td> 11.14 ± 4.48 </td></tr><tr><td> Ortalama CAP - Sıkma exp grubu (n = 10) </td><td> 121.50 ± 18.67 </td><td> 95.89 ± 32.76 </td><td> 74.41 ± 35.35 </td><td> 93.88 ± 42.96 </td><td> 89.44 ± 44.20 </td></tr><tr><td> Ortalama CAP - Sham grubu (n = 3) </td><td> 123.33 ± 12.42 </td><td> 121.0 ± 5.57 </td><td> 124.00 ± 8.66 </td><td> 127.33 ± 7.23 </td><td> 123.00 ± 8.89 </td></tr></tbody></table> . Tablo 2. hemodinamik yanıt sıkma ve farklı karaciğer lobu klempin alınması sonrası (n = 10) RL: sağ lob, ML: (sağ median lob ve sol lob olmak üzere medyan) medyan lob, LLL: yanal lob bıraktı. <img alt="Şekil 2" fo:content-width="7.18in" src="/files/ftp_upload/51955/51955fig2highres.jpg" width="675" /> Sıkma ve farklı karaciğer lobu klempin alınması sonrası Şekil 2. hemodinamik yanıt (hayvan ID: CHI-108) A.. PVP sağ millar Kateter yerleştirildikten sonra cmH2O O. 8.8 oldu % 20 karaciğer lobu sıkma sonra PVP cmH2O OBPVP% 90 karaciğer lobu sıkma sonra cmH2O 17.5 yükseldi 10.8 idi. Sağ lob kelepçeyi serbest C. PVP O cmH2O 10.3 düşmüştür. D.PVP cmH2O 8.7 geri döndü </sub&gt; O bütün kelepçeleri bıraktıktan sonra başında olduğu gibi. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/51955/51955fig2highres.jpg" target="_blank">, bu rakamın büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayınız.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice at JoVE.com

Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

Bu film farelerde sistemik ve hepatik hemodinamik kazanmak için nasıl gösterir. Tüm izleme hayati parametrelerin, sistemik kan basıncı, santral venöz basınç, ortak hepatik arter akım hızı ve portal ven basıncı yanı sıra farelerde portal akış hızı edinimini içerir.

Farelerde Sistemik ve Karaciğer Hemodinamik Parametrelerin İzleme

The use of mouse models in experimental research is of enormous importance for the study of hepatic physiology and pathophysiological disturbances. ...

monitoring-of-systemic-and-hepatic-hemodynamic-parameters-in-mice

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

16.0K Görüntüleme.  Jena University Hospital.  Bu film farelerde sistemik ve hepatik hemodinamik kazanmak için nasıl gösterir. Tüm izleme hayati parametrelerin, sistemik kan basıncı, santral venöz basınç, ortak hepatik arter akım hızı ve portal ven basıncı yanı sıra farelerde portal akış hızı edinimini içerir. 

Video: Monitoring of Systemic and Hepatic Hemodynamic Parameters in Mice

Transthoracic Echocardiography in Mice

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene expression. Transgenic and gene targeting methods can be used to generate mice with altered cardiac size and function,1-3 and as a result, in vivo techniques are needed to evaluate their cardiac phenotype. Transthoracic echocardiography, pulse wave Doppler (PWD), and tissue Doppler imaging (TDI) can be used to provide dimensional measurements of the mouse heart and to quantify the degree of cardiac systolic and diastolic performance. Two-dimensional imaging is used to detect abnormal anatomy or movements of the left ventricle, whereas M-mode echo is used for quantification of cardiac dimensions and contractility.4,5 In addition, PWD is used to quantify localized velocity of turbulent flow,6 whereas TDI is used to measure the velocity of myocardial motion.7 Thus, transthoracic echocardiography offers a comprehensive method for the noninvasive evaluation of cardiac function in mice.

Transthoracic echocardiography offers a noninvasive method for the evaluation of cardiac function in mice. A combination of ultrasound and Doppler imaging modalities can be used to obtain dimensional measurements of the heart and intracardiac blood flow, which together provide an assessment of cardiac systolic and diastolic performance.

Fareler de Transtorasik Ekokardiyografi

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene ...

Tıp

Long Term Intravital Multiphoton Microscopy Imaging of Immune Cells in Healthy and Diseased Liver Using CXCR6.Gfp Reporter Mice

Liver inflammation as a response to injury is a highly dynamic process involving the infiltration of distinct subtypes of leukocytes including monocytes, neutrophils, T cell subsets, B cells, natural killer (NK) and NKT cells. Intravital microscopy of the liver for monitoring immune cell migration is particularly challenging due to the high requirements regarding sample preparation and fixation, optical resolution and long-term animal survival. Yet, the dynamics of inflammatory processes as well as cellular interaction studies could provide critical information to better understand the initiation, progression and regression of inflammatory liver disease. Therefore, a highly sensitive and reliable method was established to study migration and cell-cell-interactions of different immune cells in mouse liver over long periods (about 6 hr) by intravital two-photon laser scanning microscopy (TPLSM) in combination with intensive care monitoring.
The method provided includes a gentle preparation and stable fixation of the liver with minimal perturbation of the organ; long term intravital imaging using multicolor multiphoton microscopy with virtually no photobleaching or phototoxic effects over a time period of up to 6 hr, allowing tracking of specific leukocyte subsets; and stable imaging conditions due to extensive monitoring of mouse vital parameters and stabilization of circulation, temperature and gas exchange.
To investigate lymphocyte migration upon liver inflammation CXCR6.gfp knock-in mice were subjected to intravital liver imaging under baseline conditions and after acute and chronic liver damage induced by intraperitoneal injection(s) of carbon tetrachloride (CCl4).
CXCR6 is a chemokine receptor expressed on lymphocytes, mainly on Natural Killer T (NKT)-, Natural Killer (NK)- and subsets of T lymphocytes such as CD4 T cells but also mucosal associated invariant (MAIT) T cells1. Following the migratory pattern and positioning of CXCR6.gfp+ immune cells allowed a detailed insight into their altered behavior upon liver injury and therefore their potential involvement in disease progression.

Stable intravital high-resolution imaging of immune cells in the liver is challenging. Here we provide a highly sensitive and reliable method to study migration and cell-cell-interactions of immune cells in mouse liver over long periods (about 6 hours) by intravital multiphoton laser scanning microscopy in combination with intensive care monitoring.

CXCR6.Gfp Muhabir Fare kullanma Sağlıklı ve hastalıklı Karaciğer Bağışıklık Hücreleri Uzun Vadeli intravital multiphoton Mikroskopi Görüntüleme

Liver inflammation as a response to injury is a highly dynamic process involving the infiltration of distinct subtypes of leukocytes including monocytes, ...

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. Indeed, research focusing on the discovery of new potential therapeutic targets using genetically altered mice requires a reliable, long-term assessment of the systemic arterial pressure variation. Currently, the gold standard for obtaining long-term measurements of blood pressure in ambulatory mice uses implantable radio-transmitters, which require&#160;artery cannulation. This technique eliminates the need for tethering, restraining, or anesthetizing the animals which introduce stress and artifacts during data sampling. However, arterial blood pressure monitoring in mice via catheterization can be rather challenging due to the small size of the arteries. Here we present a step-by-step guide to illustrate the crucial key passages for a successful subcutaneous implantation of radio-transmitters and carotid artery cannulation in mice. We also include examples of long-term blood pressure activity taken from freely moving mice after a period of post-surgery recovery. Following this procedure will allow reliable direct blood pressure recordings from multiple animals simultaneously.

The goal of this protocol is to assess systemic blood pressure in conscious freely moving mice using implantable radio-telemetry devices.

Telemetri kullanarak Serbestçe Hareketli Fare Uzun süreli Tansiyon Ölçümü

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Novel Approach for Simultaneous Recording of Renal Sympathetic Nerve Activity and Blood Pressure with Intravenous Infusion in Conscious, Unrestrained Mice.

Renal sympathetic nerves contribute significantly to both physiological and pathophysiological phenomena. Evaluating renal sympathetic nerve activity (RSNA) is of great interest in many areas of research such as chronic kidney disease, hypertension, heart failure, diabetes and obesity. Unequivocal assessment of the role of the sympathetic nervous system is thus imperative for proper interpretation of experimental results and understanding of disease processes. RSNA has been traditionally measured in anesthetized rodents, including mice. However, mice usually exhibit very low systemic blood pressure and hemodynamic instability for several hours during anesthesia and surgery. Meaningful interpretation of RSNA is confounded by this non-physiological state, given the intimate relationship between sympathetic nervous tone and cardiovascular status. To address this limitation of traditional approaches, we developed a new method for measuring RSNA in conscious, freely-moving mice. Mice were chronically instrumented with radio-telemeters for continuous monitoring of blood pressure as well as a jugular venous infusion catheter and custom-designed bipolar electrode for direct recording of RSNA. Following a 48-72 hour recovery period, survival rate was 100% and all mice behaved normally. At this time-point, RSNA was successfully recorded in 80% of mice, with viable signals acquired up to 4 and 5 days post-surgery in 70% and 50% of mice, respectively. Physiological blood pressures were recorded in all mice (116&plusmn;2 mmHg; n=10). Recorded RSNA increased with eating and grooming, as well-established in the literature. Furthermore, RSNA was validated by ganglionic blockade and modulation of blood pressure with pharmacological agents. Herein, an effective and manageable method for clear recording of RSNA in conscious, freely-moving mice is described.

Anesthetized mice exhibit non-physiological systemic blood pressure, which precludes meaningful assessment of autonomic tone given the intimate relationship between blood pressure and the autonomic nervous system. Thus, a novel method to simultaneously record renal sympathetic nerve activity and blood pressure with intravenous infusion in conscious mice is outlined.

Böbrek sempatik sinir etkinliği ve kan basıncı bilinçli, intravenöz infüzyon ile aynı anda kayıt için yeni yaklaşımın kontrolsüz fareler.

Renal sympathetic nerves contribute significantly to both physiological and pathophysiological phenomena. Evaluating renal sympathetic nerve activity ...

Uncontrolled Hemorrhagic Shock Modeled via Liver Laceration in Mice with Real Time Hemodynamic Monitoring

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via a liver laceration that results in consistent blood loss, hemodynamic alterations, and survival.
Mice undergo a standardized resection of the left-middle lobe of the liver. They are allowed to bleed without mechanical intervention. Hemostatic agents can be administered as pre-treatment or rescue therapy depending on the interest of the investigator. During the time of hemorrhage, real-time hemodynamic monitoring via a left femoral arterial line is performed. Mice are then sacrificed, blood loss is quantified, blood is collected for further analysis, and organs are harvested for analysis of injury. Experimental design is described to allow for simultaneous testing of multiple animals.
Liver hemorrhage as a model of uncontrolled hemorrhage exists in the literature, primarily in rat and porcine models. Some of these models utilize hemodynamic monitoring or quantify blood loss but lack consistency. The present model incorporates quantification of blood loss, real-time hemodynamic monitoring in a murine model that offers the advantage of using transgenic lines and a high-throughput mechanism to further investigate the pathophysiologic mechanisms in uncontrolled hemorrhage.

Uncontrolled hemorrhage, an important cause of mortality among trauma patients, can be modeled using a standard liver laceration in a murine model. This model results in consistent blood loss, survival, and allows for testing hemostatic agents. This article provides the step-by-step process to perform this valuable model.

Gerçek Zamanlı Hemodinamik İzlemli Farelerde Karaciğer Yırtıklaması İle Kontrol Edilen Kontrolsüz Hemorajik Şok

Uncontrolled hemorrhage is an important cause of preventable deaths among trauma patients. We have developed a murine model of uncontrolled hemorrhage via ...

Invasive Hemodynamic Characterization of the Portal-hypertensive Syndrome in Cirrhotic Rats

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. Portal hypertension (PHT) due to cirrhosis is responsible for the most severe complications in patients with liver disease. The full picture of the portal hypertensive syndrome is characterized by increased portal pressure (PP) due to the increased intrahepatic vascular resistance (IHVR), hyperdynamic circulation, and increased splanchnic blood flow. Progressive splanchnic arterial vasodilation and increased cardiac output with elevated heart rate (HR) but low arterial pressure characterizes the portal hypertensive syndrome.
Novel therapies are currently being developed that aim to decrease PP by either targeting IHVR or increased splanchnic blood flow &#8212; but side effects on systemic hemodynamics may occur. Thus, a detailed characterization of portal venous, splanchnic, and systemic hemodynamic parameters, including measurement of PP, portal venous blood flow (PVBF), mesenteric arterial blood flow, mean arterial pressure (MAP), and HR is needed for preclinical evaluation of the efficacy of novel treatments for PHT. Our video article provides the reader with a structured protocol for performing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats. In particular, we describe the catheterization of the femoral artery and the portal vein via an ileocolic vein and the measurement of portal venous and splanchnic blood flow via perivascular Doppler-ultrasound flow probes. Representative results of different rat models of PHT are shown.

Here we describe a detailed protocol for invasive measurements of hemodynamic parameters including portal pressure, splanchnic blood flow, and systemic hemodynamics in order to characterize the portal hypertensive syndrome in rats.

Sirozlu fareleri Portal hipertansif sendromunda invaziv hemodinamik karakterizasyonu

This is a detailed protocol describing invasive hemodynamic measurements in cirrhotic rats for the characterization of portal hypertensive syndrome. ...

Echocardiographic Measurement of Right Ventricular Diastolic Parameters in Mouse

Diastolic dysfunction is a prominent feature of right ventricular (RV) remodeling associated with conditions of pressure overload. However, the RV diastolic function is rarely quantified in experimental studies. This might be due to technical difficulties in the visualization of the RV in the apical four-chamber view in rodents. Here we describe two positions facilitating the visualization of the apical four-chamber view in mice to assess the RV diastolic function.
The apical four-chamber view is enabled by tilting the mouse fixation platform to the left and caudally (LeCa) or to the right and cranially (RiCr). Both positions provide images of comparable quality. The results of the RV diastolic function obtained from two positions are not significantly different. Both positions are comparably easy to perform. This protocol can be incorporated into published protocols and enables detailed investigations of the RV function.

Here we describe and compare two positions for obtaining the apical four-chamber view in mice. These positions enable the quantification of the right ventricular function, provide comparable results, and can be used interchangeably.

Fareyle sağ ventriküler diyastolik parametrelerin ekokardiyografik ölçümü

Diastolic dysfunction is a prominent feature of right ventricular (RV) remodeling associated with conditions of pressure overload. However, the RV ...

Invasive Hemodynamic Assessment for the Right Ventricular System and Hypoxia-Induced Pulmonary Arterial Hypertension in Mice

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a chronic and severe cardiopulmonary disorder. Mice are a popular animal model used to mimic this disease. However, the evaluation of right ventricular pressure (RVP) and pulmonary artery pressure (PAP) remains technically challenging in mice. RVP and PAP are more difficult to measure than left ventricular pressure because of the anatomical differences between the left and right heart systems. In this paper, we describe a stable right heart hemodynamic measurement method and its validation using healthy and PAH mice. This method is based on open-chest surgery and mechanical ventilation support. It is a complicated procedure compared to closed chest procedures. While a well-trained surgeon is required for this surgery, the advantage of this procedure is that it can generate both RVP and PAP parameters at the same time, so it is a preferable procedure for the evaluation of PAH models.

Here, we present a protocol to perform an invasive hemodynamic assessment of the right ventricle and pulmonary artery in mice using an open-chest surgery approach.

Farelerde Sağ Ventrikül Sistemi ve Hipoksiye Bağlı Pulmoner Arteriyel Hipertansiyon için İnvaziv Hemodinamik Değerlendirme

Pulmonary arterial hypertension (PAH) is a chronic and severe cardiopulmonary disorder. Mice are a popular animal model used to mimic this disease. ...

DREADDs Teknolojisi ve Otomatik Kan Örneklemesi

Remote Neuronal Activation Coupled with Automated Blood Sampling to Induce and Measure Circulating Luteinizing Hormone in Mice

Circulating luteinizing hormone (LH) levels are an essential index of the functioning of the hypothalamic-pituitary control of reproduction. The role of numerous inputs and neuronal populations in the modulation of LH release is still unknown. Measuring changes in LH levels in mice is often a challenge since they are easily disrupted by environmental stress. Current techniques to measure LH release and pulsatility require long-term training for mice to adapt to manipulation stress, certain restraint, the presence of the investigator, and working on individual animals, reducing its usefulness for many research questions.
This paper presents a technique to remotely activate specific neuronal populations using Designer Receptor Exclusively Activated by Designer Drugs (DREADDs) technology coupled with automated sequential blood sampling in conscious, freely moving, and undisturbed mice. We first describe the stereotaxic surgery protocol to deliver adeno-associated virus (AAV) vectors expressing DREADDs to specific neuronal populations. Next, we describe the protocol for carotid artery and jugular vein cannulation and postsurgical connection to the CULEX automated blood sampling system. Finally, we describe the protocol for clozapine-N-oxide intravenous injection for remote neuronal activation and automated blood collection. This technique allows for programmed automated sampling every 5 min or longer for a given period, coupled with intravenous substance injection at a desired time point or duration. Overall, we found this technique to be a powerful approach for research on neuroendocrine control.

Yazar Spotlight: Bilinçli Farelerde Hassas Hormonal Analiz için Otomatik İnfüzyon ve Kan Örneklemesi

Luteinizing hormone (LH) pulsatility is a hallmark of reproductive function. We describe a protocol for remote activation of specific neuronal populations linked to serial automated blood collection. This technique allows timed hormonal modulation, multiplexing, and minimizing manipulation effects on LH levels in conscious freely moving, and undisturbed animals.

Farelerde Dolaşımdaki Luteinize Edici Hormonu İndüklemek ve Ölçmek için Otomatik Kan Örneklemesi ile Birleştirilmiş Uzaktan Nöronal Aktivasyon

Circulating luteinizing hormone (LH) levels are an essential index of the functioning of the hypothalamic-pituitary control of reproduction. The role of ...

Farelerde Sistemik ve Karaciğer Hemodinamik Parametrelerin İzleme

Özet

Daha Fazla Video Keşfet

Bu videodaki bölümler

Fareler de Transtorasik Ekokardiyografi

CXCR6.Gfp Muhabir Fare kullanma Sağlıklı ve hastalıklı Karaciğer Bağışıklık Hücreleri Uzun Vadeli intravital multiphoton Mikroskopi Görüntüleme

Telemetri kullanarak Serbestçe Hareketli Fare Uzun süreli Tansiyon Ölçümü

Böbrek sempatik sinir etkinliği ve kan basıncı bilinçli, intravenöz infüzyon ile aynı anda kayıt için yeni yaklaşımın kontrolsüz fareler.

Gerçek Zamanlı Hemodinamik İzlemli Farelerde Karaciğer Yırtıklaması İle Kontrol Edilen Kontrolsüz Hemorajik Şok

Sirozlu fareleri Portal hipertansif sendromunda invaziv hemodinamik karakterizasyonu

Fareyle sağ ventriküler diyastolik parametrelerin ekokardiyografik ölçümü

Farelerde Sağ Ventrikül Sistemi ve Hipoksiye Bağlı Pulmoner Arteriyel Hipertansiyon için İnvaziv Hemodinamik Değerlendirme

Farelerde Dolaşımdaki Luteinize Edici Hormonu İndüklemek ve Ölçmek için Otomatik Kan Örneklemesi ile Birleştirilmiş Uzaktan Nöronal Aktivasyon

Farelerde Dolaşımdaki Luteinize Edici Hormonu İndüklemek ve Ölçmek için Otomatik Kan Örneklemesi ile Birleştirilmiş Uzaktan Nöronal Aktivasyon