Este trabalho foi apoiado por subsídios da Fundação de Pesquisa-Flanders (FWO G.0856.13N) eo Conselho de Pesquisa da KU Leuven (OT / 13/113). KDC é financiado pelo FWO Bélgica. AH é financiado pelo OT / 13/113. Nós gostaríamos de agradecer ao celular instalação de imagem Núcleo da KU Leuven (http://gbiomed.kuleuven.be/english/corefacilities/microscopy/cic/cic.htm) para o uso do microscópio confocal.

AlexaFluor Todos os experimentos com animais para este estudo foram aprovados pelo comitê de ética da KU Leuven (Bélgica) (Projeto P174 / 2013). Os ratinhos foram alojados sob condições padrão, com acesso ad libitum a peletes de alimento e água da torneira, e mantidos em condições controladas (23 ± 1,5 ° C, humidade relativa é de 40 - 60%, 12/12 ciclo de luz / escuro). 1. Ratos <ol><li> Use comercialmente disponível estirpe de ratinhos (ou seja, C57BL / 6, do sexo feminino 8 - 12 semanas de idade). Tipicamente, 4 - 5 ratinhos irá produzir uma quantidade adequada de células para experiências adicionais. </li><li> Injectar ratos intactos por via subcutânea com 100 uL do 17β-estradiol (E2) solução (100 ng / 100 mL) durante 3 consecutivo d antes do isolamento, a fim de padronizar a fase do ciclo de estro dos animais e para induzir a proliferação de cancro do endométrio células. A necessidade de verificar a fase do ciclo dos ratinhos antes de iniciar o protocolo é ser evitáveiscausa do 3 d &#39;tratamento com estradiol. </li></ol> 2. Preparações <ol><li> Adicione uma solução de 100 ng / 100 ul E2 no óleo de amendoim. Para as injecções de cinco ratinhos (como descrito em 1.2), é necessário uma quantidade de 1,5 mL. <ol><li> Dissolve-se 1 mg de E2 em 1 ml de etanol para se ter uma solução stock de 1 mg / mL. </li><li> Diluir esta solução estoque 1: 1.000 em óleo de amendoim. </li></ol></li><li> Adicione 500 mL de Solução Salina Equilibrada de Hank (HBBS) 1x complementado com 100 U / mL de penicilina e 100 ug / ml de estreptomicina (adiante referida como HBSS +). </li><li> Adicione 500 mL de filtrado celular rato Estroma Endometrial (MESC) forma a MESC cultura: de Dulbecco Modified Eagle Médium / Nutrient Mixture F12 (DMEM / F12) com vermelho de fenol, L-glutamina e cloreto de 4- (2-Hidroxietil) piperazina-1-etanossulfónico ácido, N - (2-Hidroxietil) piperazina-N &#39;- (ácido 2-etanossulfónico) (HEPES) contendo FBS a 10%, 0,5 ug / mL de anfotericina B, e 100 ug / mL de gentamicina (Further referido como meio MESC). </li><li> Adicione 500 mL de filtrado meio MESC 2% a cultura durante MESC decidualização: DMEM / F12 com vermelho de fenol, L-glutamina e HEPES contendo 2% de FBS, 0,5 ug / mL de anfotericina B, e 100 ug / ml de gentamicina. </li><li> Preparar 500 mL de filtrado celular rato Endometrial epitelial (MEEC) meio: DMEM contendo FBS a 10%, 0,5 ug / mL de anfotericina B, 100 ug / ml de gentamicina, 25% MCDB 105-forma, e 5 ug / ml de insulina (adiante referida como meio MEEC). </li><li> Prepare lamelas de poli-L-lisina (PLL) revestidos para a cultura MESC. <ol><li> Dissolve-se 25 mg de PLL em 250 ml de água destilada. Filtrar a solução através de um filtro de 0,22 um. </li><li> Adicionar lamelas estéreis numa placa de 12 poços. Adicionar 300 uL de PLL dissolvido em as lamelas. </li><li> Remover a solução após 30 minutos de incubação. As placas podem ser armazenadas a 4 ° C até à sua utilização (até 1 - 2 meses). </li></ol></li><li> Prepare a 10 mg / mL solução estoque of colagenase tipo IA e armazenar alíquotas de 300 mL a -20 ° C. Filtrar antes do uso. </li></ol> 3. preparativos necessários 24 h antes do isolamento <ol><li> Prepare lamelas revestidas de colágeno para a cultura MEEC. <ol><li> Prepara-se uma solução de ácido acético 0,02 M em água destilada (1 mL por lamela). </li><li> Adicionar 150 uL colágeno em 12 mL de ácido acético 0,02 M para obter uma concentração final de 50 ug / mL. </li><li> Adicionar lamelas estéreis numa placa de 12 poços. </li><li> Adicionar 1 ml de solução de colagénio (ver 3.1.2). </li><li> Incubar S / N (mínimo 12 horas) a 37 ° C. Durante o isolamento: </li><li> Remover a solução de colagénio fora as lamelas por sucção e deixá-la secar ao ar num ambiente estéril (na câmara de fluxo laminar). </li><li> Lavam-se as lamelas duas vezes com solução salina tamponada com fosfato (PBS). </li></ol></li><li> Prepara-se uma solução de pancreatina a 2,5% por adição de 0,25 g de pancreatina num tubo canónica de 15 mL contendo 10 mL deHBSS +. Agitar (200 rpm) à solução a 37 ° C durante 1 h para aumentar a solubilidade. Armazenar a 4 ° C. </li></ol> 4. isolamento e cultura de células de camundongo endometrial epiteliais (MEEC) e do rato endométrio do estroma Cells (MESC) <ol><li> Adicionar 25 mg de tripsina em um tubo de 15 ml contendo solução de pancreatina 2,5% (ver 3.2) para acabar com uma solução final contendo 0,25% de tripsina (mais conhecido como MESC mistura de digestão). </li><li> O isolamento de úteros <ol><li> Verifique a fase do ciclo dos animais com um exame de esfregaço vaginal. <ol><li> Conter o animal e lave a vagina suavemente com 50 mL PBS 3 - 5 vezes. </li><li> Recolha o flush final sobre uma lâmina de vidro. </li><li> Examine o material sob um microscópio de campo claro usando uma objetiva de 10X ou 20X. </li><li> Utilize apenas os ratos que estão em fase de estro. Esta fase caracteriza-se pela presença de células epiteliais cornificadas na lavagem vaginal (Figura 1 </strong&gt;). </li></ol></li><li> Eutanásia dos animais utilizando um método apropriado, como deslocamento cervical ou CO 2 narcose induzida. </li><li> Pulverizar as carcaças com 70% de etanol, a fim de gerar um ambiente estéril. </li><li> Usando instrumentos cirúrgicos estéreis, abrir o abdômen e empurrar os intestinos de lado para visualizar ambos os cornos uterinos. </li><li> Agarre o corno uterino no final mais distal sob a trompa de Falópio. Dissecar os cornos uterinos da trompa de falópio e remover os tecidos adiposo e conjuntivo. Recorte o chifre na extremidade distal acima do corpo uterino e colocá-lo em um prato de 35 milímetros Petri com 3 mL de HBSS +. <ol><li> Repita este passo para o outro chifre e para os outros animais até que todos os cornos uterinos são coletados. </li></ol></li><li> Limpe o corno uterino (em HBSS +) mais sob um estereoscópio e remover todo o tecido adiposo residual ou de tecido conjuntivo. </li><li> Cortar os cornos uterinos abertas longitudinalmente para expor o lúmen uterino e substituí-the chifre em uma nova placa de Petri com frescos HBSS +. </li><li> Transferir todos os cornos uterinos para o tubo de 15 mL contendo pancreatina e tripsina. </li><li> Incubar horizontalmente durante 60 minutos a 4 ° C num agitador orbital (50 rpm). </li><li> Incubar horizontalmente durante 45 minutos a 23 ° C (TA), sem agitação. </li><li> Incubar horizontalmente durante 15 minutos a 37 ° C (banho de água), sem agitação. </li><li> Enquanto isso fazer a mistura de digestão MESC por dissolução de 300 uL de 1 mg da colagenase / mL em 2,7 mL de solução de 0,05% de tripsina-ácido etilenodiaminotetracético (EDTA). NOTA: A partir de agora, mais passos de isolamento são realizadas num ambiente estéril sob uma câmara de fluxo laminar. </li></ol></li><li> Rato endometrial células epiteliais (MEEC) Cultura <ol><li> Após 2 h de incubação, deitar fora cuidadosamente a solução sobrenadante. </li><li> Transferir os úteros em uma placa de Petri contendo meio de MEEC frio e incubar durante 5 min a fim de inactivar a tripsinaatividade. </li><li> Transferir os úteros para um tubo de 15 mL contendo 3 mL de HBSS frio +. </li><li> Vortex durante 10 segundos para libertar as folhas epiteliais. </li><li> Lavar os úteros em uma placa de Petri limpa com 3 mL de HBSS +. </li><li> Repetir o passo 4.3.2 - 4.3.4 para se obter um total de três suspensões contendo camadas epiteliais. </li><li> Transferir os úteros para a mistura de digestão MESC e incubar durante 30 min a 37 ° C, com agitação (200 rpm) (ir para o passo 4.4 para um maior isolamento de MESC). </li><li> Recuperar as folhas epiteliais pipetando as três suspensões de células suavemente sobre uma malha de nylon de 100 um, a fim de remover os detritos de tecido. </li><li> Centrifugar a suspensão de células recolhidas a 500 xg durante 5 min. </li><li> Ressuspender o sedimento em 12 mL de meio MEEC e misturar bem. </li><li> Estabelecer-se a solução durante 5 minutos a fim de separar MESC restantes usando a gravidade de sedimentação. </li><li> Remova cuidadosamente os superiores 2 mL usando uma pipeta de 5 mL. </li><li> Centrifugar a suspensio celularN a 500 xg durante 5 min. </li><li> Ressuspender em meio MEEC cuidado pipetando para cima e para baixo. </li><li> Placa as células em lamelas revestidas com colagénio na densidade desejada para outras experiências (Figura 2A). </li><li> Incubar as células a 37 ° C em uma incubadora de CO 2 a 5% por um período mínimo de 12 h. NOTA: Para imunocoloração ou experiências funcionais como imagem de cálcio fluorescente, é aconselhável a placa as células diretamente sobre as lamelas, enquanto a semeadura em uma placa de 6 poços é recomendado quando RNA ou proteína isolada é desejada. Isolamento de células estromais do endométrio de rato é dividido em duas fases, como a pureza das células depois de apenas uma digestão pode ser insuficiente. Os úteros são digerido duas vezes para uma recuperação óptima de células e a pureza. Em ambos os rounds as intervenções técnicas são idênticos. Células coletadas de ambos os turnos podem ser mantidos por novas experiências, como desejado pelo pesquisador. </li></ol></li><li> Rato endometrial Strcelular omal (MESC) Cultura: 1ª Rodada <ol><li> Antes do início da primeira digestão rodada, preparar uma segunda mistura de digestão por dissolução de 300 uL de 1 mg da colagenase / mL em 2,7 mL de solução de tripsina-EDTA a 0,05%. Esta mistura é necessária na etapa 4.4.8. </li><li> Prepare três pequenas placas de Petri com o frio (4 ° C) HBSS + e 3 x 15 tubos mL com 3 mL de meio MESC (tubo de X1, X2 e X3). </li><li> Após 30 min de incubação, agitar a solução de tripsina contendo úteros suavemente durante 10 s. células Mesc irá separar a partir do tecido uterino e vai permanecer na solução de tripsina. </li><li> Transferir os úteros para a primeira placa de Petri contendo 3 mL de frio (4 ° C) HBSS + e lavar bem. </li><li> Adicionar 3 ml de meio MESC ao tubo contendo originalmente as trompas uterinas (tubo no passo 4.4.3) para inibir a actividade da tripsina. </li><li> Transferir os úteros de placa de Petri com o frio (4 ° C) HBSS + para X1 tubo contendo 3 mL de meio MESC e agitar suavemente durante 10 s. </li&gt; <li> Repita os passos 4.4.4 (transferência para uma placa de Petri com o frio (4 ° C) HBSS +) e 4.4.6 (transferência para X2 tubo e X3) duas vezes. NOTA: Finalmente, este protocolo irá resultar em suspensões de células de 4: um tubo que contém a solução de tripsina e 3 tubos com meio contendo MESC MESC (tubos de X1, X2 e X3). </li><li> Transferir úteros na nova digestão MESC, conforme descrito no passo 4.4.1 e incubar durante 30 min a 37 ° C, na vertical. </li><li> Recolher as células do estroma, passando as quatro suspensões de células através de uma malha de nylon de 40? M. Lavar a malha com um adicional de 5 mL de MESC. </li><li> Centrifugar a suspensão de células a 500 xg durante 7 minutos. </li><li> Ressuspender o sedimento em MESC e placa em lamelas revestidas com PLL para mais experiências com a densidade desejada. </li><li> Incuba-se durante um período mínimo de 4-6 horas ou O / N a 37 ° C numa incubadora de CO2 a 5%. </li></ol></li><li> Rato do Estroma Endometrial celular (MESC) Cultura: 2ª Rodada &lt;ol&gt; <li> Prepare três pequenas placas de Petri com o frio (4 ° C) HBSS + e 3 x 15 tubos mL com 3 mL de meio MESC (Tubes Y1, Y2 e Y3). </li><li> Repita os passos 4.4.3 - 4.4.7. </li><li> Transferir a última suspensão de células em conjunto com o útero para uma malha de nylon de 40? M. </li><li> Recolha das células do estroma, passando o conteúdo do tubo de Y1, Y2 e Y3 através da malha de nylon. Lavar a malha com um adicional de 5 mL de MESC. </li><li> Centrifugar a suspensão de células a 500 xg durante 7 minutos. </li><li> Ressuspender o sedimento em MESC médio e placa em lamelas revestidas com PLL para outras experiências (Figura 2B). </li><li> Incuba-se durante um período mínimo de 4-6 horas a 37 ° C com 5% de CO 2. NOTA: Para imunocoloração ou experiências funcionais como imagem de cálcio fluorescente, é aconselhável a placa as células em lamelas, enquanto a semeadura em uma placa de 6 poços é recomendado quando RNA ou proteína isolada é desejada. </li></ol></li></ol> 5. Vimentin/ Cytokeratin dupla marcação de Validação de MEEC Pura e culturas Mesc <ol><li> Semear as células em lamelas. </li><li> Lavar 3 x 5 min com PBS contendo cálcio e magnésio num agitador orbital (50 rpm). </li><li> Fixar as células com paraformaldeído a 4% (PFA) (CUIDADO!) Durante 10 min, e não no agitador. </li><li> Lavar 3x com PBS sem cálcio e magnésio em shaker (50 rpm). </li><li> Permeabilizar as células com 0,2% de Triton X-100 durante 10 min num agitador (50 rpm). </li><li> Lavar 3x com PBS num agitador. </li><li> Bloco com 5% de soro de cabra (GS) em PBS durante 2 h num agitador (50 rpm) </li><li> Incubar as células com anticorpo monoclonal de coelho anti-vimentina humana (1: 500) e pancitoqueratina monoclonal de ratinho anti-humano (1: 1000) a 4 ° C num agitador (50 rpm). Os anticorpos são diluídos em PBS com 0,5% GS. </li><li> Lavar 3x com PBS num agitador (50 rpm). </li><li> Incubar as células com os anticorpos secundários (1: 1000 em 0,5% GS) de IgG anti-coelho conjugado 488-Alexa Fluor 488 e Alexa Fluor-conjuIgG anti-rato fechado num agitador. </li><li> Lavar 3x com PBS num agitador. </li><li> Mount slides com meio de montagem aquoso contendo DAPI e O seco / N. </li><li> Selar as lâminas com unha polonês e manter a 4 ° C para utilização posterior (Figura 2a, b). </li></ol> 6. In Vitro decidualização num sistema Coculture NOTA: Quatro a cinco animais são obrigados a estabelecer um sistema de co-cultura em uma placa de 24 poços. Continue com o seguinte protocolo em um ambiente estéril, de preferência sob uma câmara de fluxo laminar. <ol><li> Preparar as inserções de cultura de células durante os passos de centrifugação e / ou incubação do isolamento de células epiteliais (tal como descrito em 4.3) em uma placa de 24 poços adicional. <ol><li> Adicionar 200 - 400 ul de meio MESC para a quantidade desejada de poços na placa de 24 poços. </li><li> Coloque as inserções nas pré-cheias de 24 poços usando uma pinça estéril. </li></ol></li><li> Ressuspender o sedimento MEEC(Volume de trabalho: 150 - 300 mL por inserção) (passo 4.3.14) em meio MEEC e dividir ao longo dos inserções. Cultura das células a 37 ° C em uma incubadora de CO 2 a 5%. </li><li> Semear as células estromais em outra placa de 24 poços (compatível com as inserções de cultura de células) após a segunda rodada de isolamento de células do estroma (passo 4.5.6). Utilizar um volume de trabalho de 400 uL de suspensão de células por poço. </li><li> Permitir que as células estromais a aderir durante mínimo 4-6 h a 37 ° C numa incubadora de CO2 a 5%. </li><li> Transferir as inserções de cultura de células cobertos com células epiteliais da primeira placa de 24 cavidades para a segunda placa de 24 poços revestidos por células do estroma. Use uma pinça esterilizados ou tocar as inserções apenas com seu pé de suspensão. </li><li> Cultura das células a 37 ° C em 5% de CO2 durante um período de 3 - 5 d até as células epiteliais formar uma monocamada, e as células do estroma atingir 80-90% de confluência. Além disso, use a resistência elétrica transepitelial (TEER)para monitorar a monocamada epitelial, pela utilização de um medidor epitelial Volt / Ohm como descritos por Grant et ai. 7. Os valores de 800-1.000 / poço foram suficientes para considerar o confluente em monocamada epitelial. </li><li> Se necessário, substituir o meio cada 2-3 d usando pipetas de vidro ou pontas de pipetas finas. Comece com a substituição do meio das células do estroma (semeados na parte inferior), antes de substituir o meio nas inserções. Recomenda-se a utilização de meio de cultura de células pré-aquecido a 37 ° C. </li><li> Preparar o meio decidualization para induzir em decidualization vitro antes de iniciar o experimento. Utilizar um volume de trabalho de 400 uL por poço de células do estroma. <ol><li> Preparar as seguintes soluções de reserva e alíquotas armazenar a -20 ° C. <ol><li> Preparar 250 uM de medroxiprogesterona 17-acetato (MPA) em etanol. </li><li> Preparar a solução estoque 100 mM de 8 Bromoadenosine 3 &#39;, 5&#39;-cAMP em água ultrapura. </li></ol></li><li> Tornar o meio decidual contendo MPA 1 PM e cAMP 0,5 mM em meio MESC contendo 2% de FBS. </li></ol></li><li> Remova cuidadosamente o meio dos poços e adicionar o meio decidual sobre as células do estroma. Se uma condição de controle é necessário, usar a forma MESC contendo 2% de FBS. </li><li> Remover o meio das inserções de cultura de células e adicionar 300 uL de meio sobre as células MEEC. </li><li> Incubam-se as células durante 5 d, numa incubadora a 37 ° C em 5% de CO 2. </li><li> A partir do quinto dia, avaliar a extensão da decidualização em células do estroma por meio de RT-qPCR (ver abaixo). </li><li> Validar a viabilidade das células epiteliais utilizando o reagente de viabilidade baseados em Resazurina. <ol><li> Prepara-se uma solução 01:10 de reagente de viabilidade em meio MEEC. </li><li> Transferir as inserções de cultura de células para uma nova placa de 24 poços. </li><li> Adicionar 150 - 300 uL do reagente de viabilidade - MEEC solução para as células. </li><li> Incubar a 37 ° C em 5% de CO 2 durante pelomenos 4 - 5 h ou durante a noite e avaliar a viabilidade celular, observando uma mudança de cor (azul ao roxo / rosa). NOTA: decidualização também pode ser avaliada usando um ELISA específico da prolactina de camundongo, como preferido pelo pesquisador. </li></ol></li></ol> 7.Validation de decidualização por qRT-PCR NOTA: Para a validação do decidualização por qRT-PCR, recomenda-se realizar todos os testes em duplicado-condições, a fim de receber uma quantidade suficiente de células para análise de ARN. RT-PCR quantitativo é realizado tal como descrito anteriormente em De Clercq et ai. 8. Em resumo: <ol><li> Isolar o ARN total utilizando um kit de isolamento de ARN comerciais. <ol><li> Avaliar a quantidade e qualidade do ARN utilizando métodos comerciais de acordo com o protocolo do fabricante, respectivamente. </li></ol></li><li> Sintetizar ADNc, de acordo com o protocolo do fabricante a partir de 1 ug de ARN total. </li><li> Usar um kit comercial de acordo com o protocolo do fabricante para levar a cabo a reacção de qRT-PCR. <ol><li> Executar todas as amostras em triplicado. </li><li> Fazer uso do TaqMan Master Mix comercial e sondas TaqMan específicas para os genes de manutenção desejada e prolactina (prl8a2) para efectuar a reacção. </li></ol></li></ol>

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</ol>

Os autores não têm nada a revelar.

Decidualization é a diferenciação dependentes de progesterona de células estromais endometriais em células deciduais rodada secretoras. No ser humano, este processo ocorre espontaneamente durante a fase lútea do ciclo menstrual e é iniciada nas células do estroma que rodeiam as células vasculares para formar o predecidua. No entanto, em roedores, a presença de um blastocisto é imperativo para induzir decidualização. O facto de decidualização ocorre apenas após o contacto com as células epiteliais do endométrio implica que os factores importantes são segregadas pelas células epiteliais para induzir decidualização no estroma subjacente. Embora esta diferença na iniciação do processo decidualização deve ser reconhecido, o facto de decidualização humano torna-se mais robusta sobre a implantação do embrião sugere que mecanismos semelhantes poderiam estar envolvidos. Culturas celulares in vitro são muitas vezes utilizados para estudar o efeito de moléculas específicas durante o processo de decidualização.No entanto, a disponibilidade e quantidade de tecido humano que pode ser coletado é muitas vezes limitado e acompanhados por variações, por exemplo, a fase do ciclo, número de gestações e presença de doenças ginecológicas como a endometriose ou adenomiose. Muitos destes problemas podem ser evitados pelo uso de tecido murino, que é facilmente acessível e fase do ciclo independente. Outra grande vantagem do uso de tecido murino, é a possibilidade de utilizar roedores geneticamente modificadas e a possibilidade de instalação de um grande número de experiências. No momento, muitos protocolos de isolamento diferentes foram descritos na literatura com elevada variabilidade na idade dos animais e o período na fase do estro no momento da utilização. Este estudo apresenta um novo método para a co-culturas primárias de endométrio do estroma e as células epiteliais em que tirou-se vantagem de um ciclo estral padronizado por uma injecção diária de estrogénio antes do isolamento. Além disso, o estrogénio é kNown de induzir proliferação em células epiteliais e do estroma, o que aumenta ainda mais o rendimento por isolamento. O protocolo de isolamento descrito neste trabalho foi baseado em Grant et al. 7, no entanto, foram incluídos outros passos de optimização para aumentar o rendimento, pureza e viabilidade das culturas de células diferentes. Em primeiro lugar, foi sempre HBSS suplementado com antibióticos para evitar a contaminação da cultura primária. Durante o isolamento de MEEC, uma adaptação de temperatura foi feita (15 min a 37 ° C) para aumentar a colheita das células epiteliais durante a primeira digestão. Em seguida, uma etapa adicional foi incluído para temperar a actividade enzimática após tratamento com tripsina-digestão através da adição de meio contendo FBS para inibir a sua actividade. Além disso, MEECs foram passados ​​através de um filtro de malha que foi maior do que aquilo que é vulgarmente descrito (100 pm) como vêm frequentemente em aglomerados e folhas de células. Além disso, a contaminação por células do estroma foi reduzida através da realização de um suplementoitional passo em que MEECs MESCs e foram separadas com base na sedimentação por gravidade. Finalmente, MEECs foram semeadas em lamelas revestidas com colagénio para aumentar a fixação das células para lamelas de vidro, uma vez que se tornou claro que a fixação lamelas de vidro não revestidas ou revestidas com PLL foi insuficiente. Durante o isolamento dos MESCs, colagenase (1 mg / mL) foi suplementado para melhorar a digestão. Além disso, esta etapa de digestão foi realizada em duplicado para evitar a contaminação dos restantes MEECs. Todos estes passos adicionais resultaram em culturas puras e viáveis ​​de populações de células homogéneas. A pureza da população celular foi avaliada com e imunocoloração de qRT-PCR utilizando vimentina como marcador citoqueratina estromal e epitelial como um marcador. Claramente, foi observado um padrão de expressão oposto da vimentina e citoqueratina em MEEC e MESC. No entanto, pode-se notar que a expressão de ARNm relativa de vimentina e citoqueratina é semelhante nas culturas MEEC. similresultados Ar são publicados por outros grupos de pesquisa, em que as células epiteliais na cultura adquirem expressão de vimentina 9. Mais importante é a diferença na expressão da proteína entre vimentina e citoqueratina como foi observado nas colorações imuno-histológicos das diferentes populações de células. imunomarcação dupla mostrou que EECS foram positivas para citoqueratina e ESC foram positivas para vimentina. A utilização destes marcadores na imunomarcação é um método estabelecido e standardly usado para indicar os tipos de células 10. Embora uma grande quantidade de investigação tem sido efectuada no decidualização de MESC, continua a ser possível que a presença de células epiteliais neste modelo possam alterar os resultados do decidualização. Em primeiro lugar, foi demonstrado que se MEEC crescer a uma monocamada na presença de meio condicionado por MESC ou numa configuração de co-cultura, a monocamada tem uma melhor resistência transepitelial célula epitelial eléctrica (TEER), resultante de fatores secretados pelo MESC 7. Além disso, Pierro et ai. 11 forneceram provas de que a proliferação epitelial, influenciado por 17β-estradiol, pode ser mediada por factores segregados a partir das células do estroma, e em alternativa, as células epiteliais podem libertar factores que modulam estromal decidualização 12, 13. Em geral, é evidente que o meio de co-cultura do epitélio-estromal proporciona uma situação mais fisiológica que permite a interacção e comunicação parácrina. O método de cultura de dois tipos de células diferentes, utilizando um sistema de co-cultura foi descrita anteriormente inserção 14, 15 e foi adaptado para a utilização de células primárias de murídeo. Pela detecção dos níveis de mRNA da prolactina como um read-out para decidualização, a técnica descrita tem uma muito reprodutível read-out para decidualização disponíveis e permitemé, assim, o estudo da relação epitélio-estromal durante decidualização. sinais parácrinos mediados de MEEC pode alterar a extensão da decidualization nas células estromais. Além disso, o modelo permite a modulação específica do lado epitelial, sem afectar directamente as células do estroma. Por conseguinte, esta co-cultura de MEEC e MESC oferece uma ferramenta perfeita para avaliar o efeito de hormonas, citocinas, etc., em células epiteliais com uma leitura em decidualização do estroma. Outra vantagem deste sistema de co-cultura é que ele permite que os investigadores para investigar o envolvimento de uma proteína específica no processo decidualização quer no compartimento epitelial e estromal, utilizando células isoladas a partir de animais transgénicos. Além disso, esta técnica vai ser muito útil para investigar blastocisto adesão para avaliar se os factores parácrinos secretados por células epiteliais, na presença de um blastocisto são suficientes para induzir a decidualização do estroma subjacentecélulas. Um passo importante na invasão de trofoblastos correlacionada com a degradação da matriz extracelular, que é mediada pela acção de enzimas proteolíticas. A técnica proposta pode ser aplicada como um modelo in vitro para investigar a conversa cruzada entre o blastocisto, as células epiteliais e do estroma de suporte. No entanto, no momento em que pouco é conhecido sobre a origem das células epiteliais que podem ser bem luminal como glandular. Portanto, é necessária caracterização adicional do perfil de genética e molecular das células epiteliais. Além disso, o método descrito é limitado no conhecimento disponível sobre a polarização das células epiteliais. No momento, a polarização de células epiteliais não foi tomada em conta. No entanto, as diferenças na expressão de proteínas de membrana são descritas nas membranas apicais e basais. polarização inadequado da camada epitelial poderia ter um impacto sobre a interação parácrina entre epitheliai e células estromais. No entanto, os métodos para a obtenção de células epiteliais polarizadas foram descritos e podem ser incluídos na técnica descrita 15, 16. No total, o protocolo descrito propõe uma técnica para estabelecer com sucesso culturas de células primárias de rato epiteliais do endométrio e células estromais. Esta técnica resulta em culturas de células puras, como confirmado por qRT-PCR e imunocoloração de vimentina e citoqueratina. Em última análise, uma co-cultura de células epiteliais e do estroma foi introduzida que permite a investigação de sinais parácrinos mediada quer por MEEC e / ou MESC no processo decidualização.

O endométrio humano é o revestimento interno do útero e passa por ciclos mensais de discriminação e de reparação como uma preparação para possíveis gravidezes. É constituída por uma única camada de células epiteliais que revestem o lúmen uterino e o estroma subjacente, que varia em espessura de acordo com flutuações de hormonas do ovário de estrogénio e progesterona. Durante a fase lútea, pós-ovulatória do aumento de progesterona irá induzir a diferenciação de células estromais do endométrio em células deciduais maiores, redondos, um processo chamado decidualização 1, 2. Em humanos, este fenómeno ocorre espontaneamente para formar a predecidua, mas torna-se mais pronunciada sobre a implantação do embrião. Uma consequência funcional da decidualização é que o útero se torna transitoriamente receptivo à implantação do embrião. Esse intervalo é rotulado como a &quot;janela de implantação&quot;. Durante o período inicial de implantação do embrião, o decidualizado eAs células do estroma que rodeiam o embrião ndometrial implantação irá proporcionar uma barreira para impedir a passagem de substâncias nocivas para o embrião 3. Durante a gravidez, este decídua irá fornecer nutrientes para o feto em desenvolvimento antes placentation teve lugar, e mais tarde irá formar a parte materna da placenta 4. considerações éticas e práticas limitar a concepção de estudos humanos para investigar o processo de decidualization e levaram o uso de modelos animais. Ser um membro do grupo placentation hemocorial, o endométrio de roedores também irá sofrer decidualization antes placentation 5. Em roedores, no entanto, a iniciação do processo de decidualização depende da presença de blastocistos no lúmen uterino, que indica que um estímulo extra é necessário para desencadear as respostas deciduais 6. Isto implica uma comunicação complexa entre the células endometriais epiteliais que têm contato direto com o blastocisto, e as células do estroma subjacentes. No entanto, decidualization pode ser induzido artificialmente utilizando estímulos como coçar mecânica ou a instilação de petróleo em um útero hormonalmente preparada. Embora os estudos in vivo utilizando modelos decidualization artificiais nos permitiram melhorar os nossos conhecimentos no complexo processo de sinalização de decidualization, mecanicistas estudos aprofundados, por exemplo, a investigação da comunicação indispensável entre células epiteliais e estromais, são limitados. Por isso, os estudos in vitro decidualização pode ser usado para manipular vias importantes e estudar processos fundamentais. Para este fim, as culturas de células do estroma endometrial primárias pode ser configurado a partir de endométrio humano ou roedor. Empregando roedores consente a utilização de animais geneticamente modificados para investigar o papel de uma proteína específica de interesse durante o processo de decidualização. No entanto, imaturo, prepuberTy ratinhos são muitas vezes utilizados de modo a evitar complicações do ciclo estral, enquanto que em outros casos úteros são recolhidos a partir de todas as fases do ciclo estral, o que resulta em uma heterogeneidade nas culturas. Além disso, o processo de decidualização tem sido estudado em diferentes protocolos, por exemplo, por (i) hormonas completar (estrogénio, progesterona ou monofosfato de adenosina cíclico (cAMP)) para o meio de cultura, ou por (ii) isolamento de células deciduais de ratinhos em dia 4.5 de (pseudo) gravidez, o que demanda necessidade adicional de verificação de plug and machos vasectomizados. Estas limitações demonstram a necessidade de um método normalizado para estudar em decidualização vitro. Neste estudo, um modelo fisiológico para examinar decidualization in vitro a partir de adulto, será apresentado (pseudo) ratas grávidas não. Neste método, a injecção diária de 17β-estradiol (E2) vai induzir a proliferação de células do endométrio, resultando num aumento do rendimento de homogéneo e ppopulações de células ure. Além disso, a utilização de um sistema de coculturing permite o estudo da diafonia epitélio-estromal e a capacidade de manipular o processo de decidualização em diferentes níveis.

<table><tbody><tr><td>ThinCert Tissue culture insert for 24 well plates; 1 &amp;micro;m pore size; transparant</td><td>Greiner Bio-one</td><td>662610</td><td>Inserts are also provided for other multiwell plates and/or other pore sizes. Other suppliers: Merck Millipore.&lt;br/&gt; https://shop.gbo.com/en/row/articles/catalogue/article/&lt;br/&gt;0110_0110_0090_0030/13408/&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Nunc Cell culture treated 24 well plates</td><td>Thermo Scientific</td><td>142475</td><td>http://www.thermofisher.com/order/catalog/product/142475</td></tr><tr><td>8-Bromoadenosine 3&amp;prime;,5&amp;prime;-cyclic monophosphate sodium salt</td><td>Sigma Aldrich</td><td>B7880</td><td>Prepare a stock solution of 100 mM in Milli Q water. Store aliquots at -20 &amp;deg;C.&lt;br/&gt; http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/b7880?lang=en&amp;amp;region=BE&amp;nbsp;&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>Medroxyprogesterone 17-acetate</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M1629</td><td>Prepare a stock solution of 250 &amp;micro;M in ethanol. Store aliquots at -20 &amp;deg;C.&lt;br/&gt; http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/m1629?lang=en&amp;amp;region=BE&amp;nbsp;&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>Arachis oil</td><td>Supermarket</td><td></td><td>Standard cooking arachis oil that can be found in every supermarket is used</td></tr><tr><td>PrestoBlue cell viability reagent</td><td>Thermo Scientific</td><td>A13261</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/A13261?ICID=cvc-prestoblue-c1t1</td></tr><tr><td>HBSS 1x, no calcium, no magnesium, no phenol red</td><td>Gibco</td><td>14175-046</td><td>Store in fridge as long as possible. Use cold HBSS+ during the protocol.&lt;br/&gt; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14175046&amp;nbsp;&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>17-&amp;beta; Estradiol</td><td>Sigma Aldrich</td><td>E8875</td><td>Prepare a stock solution of 1 mg/mL in EtOH before diluting in arachis oil (1:1,000).&lt;br/&gt;http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/e8875?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>Cell medium filter Stericup, 0.22 &amp;micro;m, polyethersulfone, 500 mL, radio-sterilized</td><td>Merck Millipore</td><td>SCGPU05RE</td><td>http://www.merckmillipore.com/BE/en/product/Stericup-GP%2C-0.22%C2%A0%C2%B5m%2C-polyethersulfone%2C-500%C2%A0mL%2C-radio-sterilized,MM_NF-SCGPU05RE</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin (5,000 U/mL)</td><td>Gibco</td><td>15070-063</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15070063?ICID=search-15070-063</td></tr><tr><td>DMEM/F12, phenol red, L-glutamine, HEPES</td><td>Gibco</td><td>11330-032</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/11330057?ICID=search-11330-057</td></tr><tr><td>Fetal Bovine Serum, qualified, heat inactivated, E.U.-approved, South America Origin</td><td>Gibco</td><td>10500-056</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/10500064?ICID=search-10500-064</td></tr><tr><td>Amphotericin B</td><td>Gibco</td><td>15290-018</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15290018?ICID=search-15290-018</td></tr><tr><td>Gentamicin (50 mg/mL)</td><td>Gibco</td><td>15750-037</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/15750037?ICID=search-15750-037</td></tr><tr><td>DMEM, low glucose, pyruvate, no glutamine, no phenol red</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D5921</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/d5921?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>MCDB-105</td><td>Sigma Aldrich</td><td>M6395</td><td>Dilute in Milli Q water, adjust pH to 7 with NaOH and filter before use. Store in the dark.&lt;br/&gt; http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/m6395?lang=en&amp;amp;region=BE&amp;nbsp;&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>Insulin from bovine pancreas</td><td>Sigma Aldrich</td><td>I1882</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/i1882?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>Coverslips, glass, 18 mm &amp;Oslash;</td><td>Glaswarenfabrik Karl Hecht</td><td>1001/18</td><td>http://www.hecht-assistent.de/187/?L=1&amp;amp;tx_rmproducts_pi1[g]=937&lt;br/&gt;&amp;amp;tx_rmproducts_pi1[p]=3504&lt;br/&gt;&amp;amp;tx_rmproducts_pi1[v]=20088&lt;br/&gt;&amp;amp;cHash=abd12065683fe74b00eaa&lt;br/&gt;5e562824d06</td></tr><tr><td>Poly-L-lysine</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P2636</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p2636?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>Collagenase type IA from Clostridium histolyticum</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C2674</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/c2674?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>DPBS, no calcium, no magnesium</td><td>Gibco</td><td>14190-094</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14190094?ICID=search-14190-094</td></tr><tr><td>Trypsin from bovine pancreas</td><td>Sigma Aldrich</td><td>T7409</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/t7409?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA (0.05%), phenol red</td><td>Gibco</td><td>25300-054</td><td>Warm to room temperature before use.&lt;br/&gt; https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/25300054?ICID=search-25300-054&amp;nbsp;&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>Cell strainer, 40 &amp;micro;m mesh, disposable</td><td>BD Falcon</td><td>352340</td><td>https://www.fishersci.com/shop/products/falcon-cell-strainers-4/p-48680</td></tr><tr><td>Cell strainer, 100 &amp;micro;m mesh, disposable</td><td>BD Falcon</td><td>352360</td><td>https://www.fishersci.com/shop/products/falcon-cell-strainers-4/p-48680</td></tr><tr><td>Millex-GP Syringe Filter Unit, 0.22&amp;nbsp;&amp;micro;m, polyethersulfone, 33&amp;nbsp;mm, gamma sterilized</td><td>Merck Millipore</td><td>SLGP033RS</td><td>https://www.merckmillipore.com/BE/en/product/Millex-GP-Syringe-Filter-Unit%2C-0.22%C2%A0%C2%B5m%2C-polyethersulfone%2C-33%C2%A0mm%2C-gamma-sterilized,MM_NF-SLGP033RS?bd=1</td></tr><tr><td>Acetic acid (glacial) 100%</td><td>Merck Millipore</td><td>1.00063</td><td>https://www.merckmillipore.com/BE/en/product/Acetic-acid-%28glacial%29-100%25,MDA_CHEM-100063</td></tr><tr><td>Collagen I</td><td>Corning&amp;nbsp;</td><td>354236</td><td>From rat tail.&lt;br/&gt; https://catalog2.corning.com/LifeSciences/en-BR/Shopping/ProductDetails.aspx?categoryname=&amp;amp;&lt;br/&gt;productid=354236%28&lt;br/&gt;Lifesciences%29#&amp;nbsp;&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>Pancreatin from porcine pancreas</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P3292</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/p3292?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>35 mm Tissue Culture Dishes, Polystyrene, Sterile</td><td>BD Falcon</td><td>353001</td><td>https://us.vwr.com/store/catalog/product.jsp?product_id=4675630</td></tr><tr><td>Ethanol absolute AnalaR NORMAPUR ACS, Reag. Ph. Eur. analytical reagent</td><td>VWR Chemicals</td><td>20821296</td><td>https://uk.vwr.com/store/catalog/product.jsp?catalog_number=20821.310DP</td></tr><tr><td>monoclonal rabbit anti-human vimentin (D21H3)&amp;nbsp;</td><td>Cell Signalling Tech</td><td>#5741</td><td>Use 1/500.&lt;br/&gt; http://www.cellsignal.com/products/primary-antibodies/vimentin-d21h3-xp-rabbit-mab/5741&lt;br/&gt;</td></tr><tr><td>monoclonal mouse anti-human pan cytokeratin&amp;nbsp;</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C2562</td><td>Use 1/1,000.&lt;br/&gt;http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/c2562?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>Paraformaldehyde Solution, 4% in PBS</td><td>Affymetrix</td><td>19943</td><td>http://www.affymetrix.com/catalog/130621/USB/Paraformaldehyde+Solution+4+percent+in+PBS#1_1</td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Sigma Aldrich</td><td>X100</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/SIAL/X100?lang=en&amp;amp;region=BE&amp;amp;gclid=&lt;br/&gt;Cj0KEQjwhN-6BRCJsePgxru9iIw&lt;br/&gt;BEiQAI8rq&lt;br/&gt;879lESeuIU4N4AEQRLNEXj4f&lt;br/&gt;8z65KkD-q8Xr35sQDRgaAp-k&lt;br/&gt;8P8HAQ</td></tr><tr><td>Goat serum</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G9023</td><td>http://www.sigmaaldrich.com/catalog/product/sigma/g9023?lang=en&amp;amp;region=BE</td></tr><tr><td>Goat anti-rabbit Alexa Fluor 488</td><td>Thermo Scientific</td><td>A-11034</td><td>http://www.thermofisher.com/order/genome-database/searchResults?query=488&amp;amp;&lt;br/&gt;resultPage=1&amp;amp;&lt;br/&gt;resultsPerPage=15&amp;amp;&lt;br/&gt;autocomplete=&amp;amp;&lt;br/&gt;searchMode=keyword&amp;amp;&lt;br/&gt;productTypeSelect=antibody&amp;amp;&lt;br/&gt;targetTypeSelect&lt;br/&gt;=antibody_secondary&amp;amp;&lt;br/&gt;species=ltechall&amp;amp;keyword=&lt;br/&gt;488#filters=genericsort2:\%22Capra%20hircus\%22;;generic6:^\%22Oryctolagus%20cuniculus\%22$;;conjugates:^\%22Alexa%20Fluor&amp;amp;reg;%20488\%22$;;</td></tr><tr><td>Goat anti-mouse Alexa Fluor 594</td><td>Thermo Scientific</td><td>A-11032</td><td>http://www.thermofisher.com/order/genome-database/searchResults?query=594&amp;amp;&lt;br/&gt;resultPage=1&amp;amp;&lt;br/&gt;resultsPerPage=15&amp;amp;&lt;br/&gt;autocomplete=&amp;amp;&lt;br/&gt;priorSearchTerms=&amp;amp;&lt;br/&gt;searchMode=keyword&amp;amp;&lt;br/&gt;productTypeSelect=antibody&amp;amp;&lt;br/&gt;targetTypeSelect=&lt;br/&gt;antibody_secondary&amp;amp;&lt;br/&gt;species=ltechall&amp;amp;&lt;br/&gt;keyword=594#filters=genericsort2:\%22Capra%20hircus\%22;;generic6:^\%22Mus%20musculus\%22$;;</td></tr><tr><td>VECTASHIELD mounting medium with DAPI</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1200</td><td>http://vectorlabs.com/vectashield-mounting-medium-with-dapi.html</td></tr><tr><td>DPBS, with calcium and magnesium</td><td>Gibco</td><td>14040174</td><td>https://www.thermofisher.com/order/catalog/product/14040133</td></tr></tbody></table>

isolation of mouse endometrial epithelial and stromal cells for in vitro decidualization

Decidualization é um processo de diferenciação dependentes de progesterona de células estromais endometriais e é um pré-requisito para a implantação do embrião bem sucedido. Apesar de muitos esforços têm sido feitos para desvendar os mecanismos subjacentes a decidualização, a sinalização exacta entre as células epiteliais que estão em contacto com o embrião e as células do estroma subjacente permanece pouco compreendido. Portanto, estudar decidualization de uma forma que leva tanto a células epiteliais e do estroma em consideração poderia melhorar nosso conhecimento sobre os detalhes moleculares da decidualization. Para este efeito, em modelos in vivo de decidualização artificial são fisiologicamente mais relevante; No entanto, a manipulação de comunicação intercelular é limitada. Actualmente, em culturas in vitro de células do estroma do endométrio, estão a ser utilizados para investigar a modulação de decidualização por várias moléculas de sinalização. Convencionalmente, as células estromais humanas ou mouse endometriais sãousava. No entanto, a disponibilidade de amostras humanas é muitas vezes limitada. Além disso, a utilização de tecidos de murídeo é acompanhada com a variedade no método de cultivo. Este estudo apresenta um método validado e padronizado para obter pura celular endometrial epitelial (CEE) e as culturas do estroma celular (ESC) usando ratos intactos adultos tratados com estrógeno durante três dias consecutivos. O protocolo foi optimizado para melhorar o rendimento, viabilidade, e a pureza das células e foi ainda alargada, a fim de estudar decidualização numa co-cultura de CEE e ESC. Este modelo pode ser adequado para explorar a importância de ambos os tipos de células em decidualização e para avaliar a contribuição das moléculas de sinalização segregadas por significativas CEE ou ESC durante a comunicação intercelular.

Visão Geral do Protocolo Figura 1A ilustra uma visão geral do protocolo. Uma injecção diária de E2 (100 ng) durante três dias consecutivos foi usada para sincronizar os animais e padronizar a fase do ciclo estral. O ciclo estral podem ser avaliadas por lavagens vaginais e é dividido em proestro, estro, diestro, e fase metaestro. A fase do ciclo podem ser designados de acordo com a proporção de células descamadas no lavado, que são submetidas a alterações hormonais. Aumento dos níveis de estrogênio fará com que os animais evoluem para a fase de estro. Esta fase pode ser facilmente detectada pela presença de células epiteliais exclusivamente cornified e a ausência de leucócitos (Figura 1B). No dia 4, úteros dos animais que estão em fase de estro são recolhidos e MEEC e MESC são isolados (Figura 1C). decidualization cum ser induzida pela adição de 0,5 mM de cAMP e 1 uM MPA para o meio com FBS a 2% durante um período de incubação de 5 d. Controle de Qualidade de MEEC e Mesc culturas A pureza das culturas de células primárias pode ser avaliado pela diferença de vimentina e expressão de citoqueratina. Vimentina é um filamento intermediário que é expressa em células mesenquimatosas, por conseguinte, nas células do estroma endometrial. Citoqueratina é um filamento intermediário encontrado no citoesqueleto de tecido epitelial. A Figura 2A mostra o nível de expressão de ARNm de vimentina e citoqueratina em MEEC e MESC avaliada utilizando qRT-PCR. níveis vimentina são ricos em MESC e pobre em MEEC (2,2x superior, p &lt;0,001), enquanto os níveis de citoqueratina são ricos em MEEC e pobre em MESC (36x superior, p &lt;0,001). A vimentina / citoqueratina coloração dupla foi realizada e indicou que as células do estroma expressam vimentina enquanto epitcélulas helial expressar citoqueratina (Figura 2B, C). A ausência de anticorpo primário foi usado como um controlo negativo para a imunocoloração (Figura 2D, E). Estas colorações imuno-histológicos mostram que ambas as culturas de células do endométrio (MEEC e Mesc) tem uma pureza de até 90%. Decidualization em MEEC / Mesc Co-culturas Após o isolamento, as células endometriais e estroma rato foram semeadas num sistema de co-cultura para mimetizar o ambiente do endométrio. As células foram cultivadas até as células epiteliais formado uma monocamada na lâmina de cultura celular (valores de TEER 800 - 1000 / poço), e as células do estroma atingido um estado de sub-confluência. Decidualização foi induzida em células do estroma com o pedido de cAMP 0,5 mM e 1 uM MPA. Após cinco dias de incubação, os níveis de ARNm de prolactina foram avaliados nas células estromais por qRT-PCR como uma indicação para decidualization (Figura 3A). Os níveis de prolactina foram altamente expresso em células sujeitas às hormonas e não detectáveis ​​em células incubadas com o meio de controlo (p &lt;0,01). Uma vez que as células epiteliais são difíceis de visualizar o interior das inserções de cultura de células, um ensaio de viabilidade foi realizada imediatamente após o período de incubação de cinco dias (Figura 3B). Uma mistura de meio de crescimento normal e um reagente de viabilidade foi adicionado aos poços e incubou-se durante um período mínimo de 8 - 12 h. A mudança de cor de azul para rosa brilhante indicou a presença de células epiteliais viáveis. Note-se que a mudança de cor só ocorrerá quando as células viáveis ​​estão presentes. <img alt="figura 1" src="/files/ftp_upload/55168/55168fig1.jpg" /> Figura 1: Visão Geral do Protocolo. (A) Esquema de o protocolo de isolamento inicial com trêsdias consecutivos de injeções de estrogênio. No dia 3, os preparativos necessários devem estar preparados. No dia 4, a fase estro é avaliada (indicado por asterisco), efectuando uma lavagem vaginal. MESC e MEEC são isoladas usando diferentes fases de digestão. No dia 6, ou quando as células estão confluentes, decidualização podem ser induzidas no sistema de co-cultura por adição de cAMP e MPA para o meio e um período de incubação de cinco dias (dias 6-11). (B) imagem representativa da fase estro caracterizado pela presença de células epiteliais cornificadas na lavagem vaginal (ampliação de 10X). (C) imagem Representante do MESC e MEEC (ampliação de 20X, barra de escala: 100 mm). <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55168/55168fig1large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> <img alt="Figura 2" src="/files/ftp_upload/55168/55168fig2.jpg" /> <strong&gt; Figura 2: A imunocoloração e RT-PCR quantitativo para vimentina e Cytokeratin em MEEC e MESC. (A) os níveis de RNA mensageiro de vimentina e expressão de citoqueratina para indicar a pureza das culturas. Os níveis de ARN foram quantificados relativamente à média geométrica dos genes housekeeping ACTB e TBP. Os dados foram apresentados como média ± SEM. Vimentina / coloração dupla citoqueratina em culturas Mesc (B) e culturas MEEC (C). Insira na esquerda mostra uma vista de ampliação 63X. O controlo negativo com anticorpo primário omitido para MESC (D) e MEEC (E) (Barra de escala: 50 mm). ***: P &lt;0,001 com Two-way ANOVA com correção de Bonferroni para testes múltiplos. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55168/55168fig2large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a> Figura 3: Validação da decidualização através de RT-PCR. Níveis (A) de ARNm de expressão em células do estroma da prolactina para avaliar decidualização. Os níveis de ARN foram quantificados relativamente à média geométrica dos genes housekeeping PGK1 e TBP. A mudança vezes em células cultivadas em meio controlo ou decidual é mostrado como média ± SEM. (B) imagens ilustrativas de células estromais antes (superior) e depois (inferior) estímulo decidualization. A inserção à direita ilustra uma ampliação de uma célula estromal decidualizado. Decidualização é caracterizado pela presença de células multinucleadas, indicado por setas negras. (C) Imagens representativas da avaliação da viabilidade das células epiteliais na inserção após o ensaio. Fotos foram tiradas imediatamente após a administração do reagente de viabilidade (Prestoblue) (0 h) e a fmanhã epois (ON). **: P &lt;0,01 pelo teste de Mann-Whitney. ON: durante a noite. Barra de escala: 100? m. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55168/55168fig3large.jpg" target="_blank">Por favor clique aqui para ver uma versão maior desta figura.</a>

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Isolation of Mouse Endometrial Epithelial and Stromal Cells for In Vitro Decidualization

Este estudo apresenta um método padronizado e validado para o isolamento e cultura de rato primária do estroma do endométrio e pelas células epiteliais, o que pode ser utilizado num sistema de co-cultura para estudo em decidualização vitro.

Isolamento de rato Endometrial epiteliais e estromais para células<em&gt; In Vitro</em&gt; decidualization

Decidualization is a progesterone-dependent differentiation process of endometrial stromal cells and is a prerequisite for successful embryo implantation. ...

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Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Developmental Biology

Isolation of Mouse Endometrial Epithelial and Stromal Cells for In Vitro Decidualization

24.0K visualizações.  Katholieke Universiteit Leuven (KU Leuven).  Este estudo apresenta um método padronizado e validado para o isolamento e cultura de rato primária do estroma do endométrio e pelas células epiteliais, o que pode ser utilizado num sistema de co-cultura para estudo em decidualização vitro. 

Vídeo: Isolation of Mouse Endometrial Epithelial and Stromal Cells for In Vitro Decidualization

Isolation of Human Endometrial Stromal Cells for In Vitro Decidualization

The differentiation of human endometrial stromal cells (HESC) from fibroblast-like appearance into secretory decidua is a transformation required for embryo implantation into the uterine lining of the maternal womb. Improper decidualization has been established as a root cause for implantation failure and subsequent early embryo miscarriage. Therefore, understanding the molecular mechanisms underlying decidualization is advantageous to improving the rate of successful births. In vivo based studies of artificial decidualization are often limiting due to ethical dilemmas associated with human research, as well as translational complications within animal models. As a result, in vitro assays through primary cell culture are often utilized to explore the modulation of decidualization via hormones. This study provides a detailed protocol for the isolation of HESC and subsequent artificial decidualization via the supplementation of hormones to the culturing medium. Further, this study provides a well-designed method to knockdown any gene of interest by utilizing lipid-based siRNA transfections. This protocol permits the optimization of culture purity as well as product yield, thereby maximizing the ability to utilize this model as a reliable method to understand the molecular mechanisms underlying decidualization, and the subsequent quantification of secreted agents by decidualized endometrial stromal cells.

Isolation of Human Endometrial Stromal Cells for In Vitro Decidualization

This study presents a validated and optimized procedure for the isolation and culture of human endometrial stromal cells to conduct in vitro decidualization assay. Further, this study provides a detailed method to efficiently knockdown a specific gene using siRNAs in human endometrial stromal cells.

Isolamento de células do estroma Endometrial humanas para In Vitro Decidualization

The differentiation of human endometrial stromal cells (HESC) from fibroblast-like appearance into secretory decidua is a transformation required for ...

Biologia do Desenvolvimento

Two Methods for Establishing Primary Human Endometrial Stromal Cells from Hysterectomy Specimens

Many efforts have been devoted to establish in vitro cell culture systems. These systems are designed to model a vast number of in vivo processes. Cell culture systems arising from human endometrial samples are no exception. Applications range from normal cyclic physiological processes to endometrial pathologies such as gynecological cancers, infectious diseases, and reproductive deficiencies. Here, we provide two methods for establishing primary endometrial stromal cells from surgically resected endometrial hysterectomy specimens. The first method is referred to as &#8220;the scraping method&#8221; and incorporates mechanical scraping using surgical or razor blades whereas the second method is termed &#8220;the trypsin method.&#8221; This latter method uses the enzymatic activity of trypsin to promote the separation of cells and primary cell outgrowth. We illustrate step-by-step methodology through digital images and microscopy. We also provide examples for validating endometrial stromal cell lines via quantitative real time polymerase chain reactions (qPCR) and immunofluorescence (IF).

Establishing primary endometrial stromal cell culture systems from hysterectomy specimens is a valuable biological technique and a crucial step prior to pursuing a vast array of research aims. Here, we describe two methods used to establish stromal cultures from surgically resected endometrial tissues of human patients.&#160;

Dois métodos para estabelecer células endometriais Humano estromais primários de espécimes de histerectomia

Many efforts have been devoted to establish in vitro cell culture systems. These systems are designed to model a vast number of in vivo processes. Cell ...

Medicina

Generation of a Mouse Artificial Decidualization Model with Ovariectomy for Endometrial Decidualization Research

Endometrial decidualization is a unique differentiation process of the endometrium, closely related to menstruation and pregnancy. Impairment of decidualization leads to various endometrial disorders, such as infertility, recurrent miscarriage, and preterm birth. The development and use of the endometrial decidualization model in reproductive studies have been a highlight for reproductive researchers for a long time. The mouse has been extensively used in studying reproduction and decidualization. There are three well-established mouse models regarding decidualization, namely natural pregnancy decidualization (NPD), artificial decidualization (AD), and in vitro decidualization (IVD). Among them, AD is considered a reliable model for mouse decidualization, which is easy to implement and close to NPD. This paper focuses on a modified method of the generation and application process of the mouse artificial decidualization model with ovariectomy to avoid ovarian effects, which can obtain highly reproducible results with small within group variances. This method provides a good and reliable animal model for the study of endometrial decidualization.

Here, we describe the method of generating an artificial decidualization model using the ovariectomized mouse, a classic endometrial decidualization experiment in the research field of endometrial decidualization.

Geração de um Modelo de Decidualização Artificial em Camundongos com Ovariectomia para Pesquisa em Decidualização Endometrial

Endometrial decidualization is a unique differentiation process of the endometrium, closely related to menstruation and pregnancy. Impairment of ...

Isolation of Primary Human Decidual Cells from the Fetal Membranes of Term Placentae

The decidua, also known as the pregnant endometrium, is a critically important reproductive tissue. Decidual cells, comprised mainly of decidualized stromal cells and immune cells, are responsible for the secretion of hormonal and inflammatory factors which are critical for successful blastocyst implantation, placental development and play a role in the initiation of labor at term and preterm. Many pregnancy complications can arise from perturbations of a fine balance of different cell populations comprising decidua. Alterations in the proportion of specific decidual cell types may disrupt these crucial processes and increase the risk of developing serious complications of pregnancy, such as embryo implantation failure, intrauterine growth restriction, preeclampsia and preterm labor. The protocol outlined here demonstrates a cost and time effective method for the isolation of primary human decidual cells collected from the fetal membranes of term placentae. By combining enzymatic digestion and gentle mechanical disruption of the decidual tissue, a high yield of decidual cells was obtained with virtually no chorion contamination. Importantly, isolated decidual cells were characterized (stromal cells (55-60%), leukocytes (35%), epithelial (1%) or trophoblast (0.01%) cells) and maintained high viability (80%) which was confirmed by multicolor imaging flow cytometry assay. This protocol is specific to the decidua parietalis and can be adapted to first and second trimester placentae. Once isolated, decidual cells can be used for a multitude of experimental applications aiming to understand the role of different decidual cell sub-populations in pregnancy complications.

This protocol demonstrates a method for the isolation of primary human decidual cells collected from the fetal membranes of term placentae which can be used for a variety of applications (i.e. immunocytochemistry, flow cytometry, etc.) aiming to study the role of different cell populations in pregnancy complications.

Isolamento de células humanas primárias do Decidual de membranas fetais de termo placentas

The decidua, also known as the pregnant endometrium, is a critically important reproductive tissue. Decidual cells, comprised mainly of decidualized ...

A Syngeneic Murine Model of Endometriosis using Naturally Cycling Mice

Endometriosis is a leading cause of pelvic pain and infertility. It is defined by the presence of endometrial tissue in extrauterine locations. The development of novel therapies and diagnostic tools for endometriosis has been limited due in part to challenges in studying the disease. Outside of primates, few mammals menstruate, and none develop spontaneous endometriosis. Rodent models are popular but require artificial induction of endometriosis, with many utilizing either immunocompromised mice or surgically induced disease. Recently, more attention has been given to models involving intraperitoneal injection. We present a murine model of endometriosis that integrates several features of existing endometriosis models into a novel, simplified system that relies on microscopic quantification in lieu of subjective grading. In this model, we perform hormonal stimulation of donor mice, intraperitoneal injection, systematic abdominal survey and tissue harvest, and histologic quantification that can be performed and verified at any time after necropsy. This model requires minimal resources and training; does not require expertise by lab technicians in murine survival surgery or in the identification of gross endometriotic lesions; can be used in immunocompromised, immunocompetent, and/or mutant mice; and reliably creates endometriotic lesions that are histologically consistent with human endometriotic disease.

Many rodent models of endometriosis are limited by technical complexity, reproducibility, and/or need for immunocompromised animals or special reporter mice. We present a simplified system of lesion induction using any experimental mouse with an independently verifiable, objective scoring system and with no requirement for ovariectomy or survival surgery.

Um modelo de murina síndico de endometriose usando ratos naturalmente ciclistas

Endometriosis is a leading cause of pelvic pain and infertility. It is defined by the presence of endometrial tissue in extrauterine locations. The ...

<meta charset="utf8"></head><body>Desenvolvimento de um novo modelo de camundongo que simula endometrioma

Establishment of an Experimental Mouse Model of Endometrioma to Study its Related Infertility

Endometrioma (OMA), a subtype of endometriosis characterized by the formation of endometriotic cysts in the ovaries, affects 17-44% of individuals diagnosed with endometriosis. Women with OMA often experience compromised fertility, yet the exact mechanisms underlying OMA-associated infertility remain unclear. Notably, existing animal models simulate superficial peritoneal endometriosis (SUP) and deep infiltrating endometriosis (DIE), leaving a notable gap in research focused on OMA. In response to the gap of knowledge, this paper introduces a pioneering OMA-simulating mouse model and provides a comprehensive description of the techniques and procedures employed in the model. With a high success rate of 83% and ovarian lesion specificity, this model holds significant promise for advancing our understanding of OMA, particularly in the context of infertility. It offers a valuable platform for conducting targeted research into OMA-associated fertility challenges, potentially paving the way for improved diagnostic and therapeutic strategies in the field of reproductive medicine.

<meta charset="utf8"></head><body>Estabelecimento de um modelo experimental de endometrioma em camundongos para estudar sua infertilidade relacionada

This study introduces a novel mouse model specifically designed to simulate endometrioma, a clinically significant subtype of endometriosis. By utilizing C57BL/6J mice, the model aims to elucidate the pathophysiological mechanisms underlying endometrioma-related infertility, offering a refined tool to bridge the current knowledge gap in reproductive medicine.

Estabelecimento de um modelo experimental de endometrioma em camundongos para estudar sua infertilidade relacionada

Endometrioma (OMA), a subtype of endometriosis characterized by the formation of endometriotic cysts in the ovaries, affects 17-44% of individuals ...

Establishing 3D Endometrial Organoids from the Mouse Uterus

Endometrial tissue lines the inner cavity of the uterus and is under the cyclical control of estrogen and progesterone. It is a tissue that is composed of luminal and glandular epithelium, a stromal compartment, a vascular network, and a complex immune cell population. Mouse models have been a powerful tool to study the endometrium, revealing critical mechanisms that control implantation, placentation, and cancer. The recent development of 3D endometrial organoid cultures presents a state-of-the-art model to dissect the signaling pathways that underlie endometrial biology. Establishing endometrial organoids from genetically engineered mouse models, analyzing their transcriptomes, and visualizing their morphology at a single-cell resolution are crucial tools for the study of endometrial diseases. This paper outlines methods to establish 3D cultures of endometrial epithelium from mice and describes techniques to quantify gene expression and analyze the histology of the organoids. The goal is to provide a resource that can be used to establish, culture, and study the gene expression and morphological characteristics of endometrial epithelial organoids.

This protocol describes methodologies to establish mouse endometrial epithelial organoids for gene expression and histological analyses.

Estabelecendo organoides endometriais 3D do útero do rato

Endometrial tissue lines the inner cavity of the uterus and is under the cyclical control of estrogen and progesterone. It is a tissue that is composed of ...

Biologia

Avaliação da adesão embrionária em um modelo de co-cultura in vitro com células de Ishikawa

Establishment of an Embryo Implantation Model In Vitro

Embryo implantation is the first step in the establishment of a successful pregnancy. An in vitro model for embryo implantation is critical for basic biological research, drug development, and screening. This paper presents a simple, rapid, and highly efficient in vitro model for embryo implantation. In this protocol, we first introduce mouse blastocyst acquisition and human endometrial adenocarcinoma cells (Ishikawa)&#160;preparation for implantation, followed by the co-culture method for mouse embryos and Ishikawa cells. Finally, we conducted a study to assess the impact of varying concentrations of 17-&#946;-estradiol (E2) and progesterone (P4) on embryo adhesion rates based on this model. Our findings revealed that high concentrations of E2 significantly reduced embryo adhesion, whereas the addition of progesterone could restore the adhesion rate. This model offers a simple and fast platform for evaluating and screening molecules involved in the adhesion process, such as cytokines, drugs, and transcription factors controlling implantation and endometrial receptivity.

Autor em destaque: Avançando em estratégias terapêuticas para melhorar as taxas de gravidez analisando as interações embrião-endométrio

This protocol describes methodologies to establish simple and efficient embryo implantation in vitro model for evaluating the relevant molecules affecting the embryo implantation process.

Estabelecimento de um Modelo de Implantação Embrionária In Vitro

Embryo implantation is the first step in the establishment of a successful pregnancy. An in vitro model for embryo implantation is critical for basic ...

Isolamento de rato Endometrial epiteliais e estromais para células

Resumo

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