납 II를 사용하여 마취 마우스의 심전도 기록

우리의 프로토콜의 중요성은 심전도 측정이 유전적으로 또는 약리적으로 조작된 작은 마우스에 있는 큰 감도로 수행될 수 있다는 것입니다. 프로토콜은 간단하고 빠르며 저렴하며 민감하다는 점에서 유리합니다. 추가적으로, 그것은 작은 마우스, 심지어 신생아에 수행 될 수 있습니다.

우리는 이 방법이 심장 혈관 지역에 있는 부정맥의 미개척 지구의 이해에 기여할 것이라는 점을 믿습니다. 절차를 시연하는 것은 내 실험실에서 태웅하가 될 것입니다. 먼저 분석 소프트웨어를 열고 ECG 데이터 수집을 위해 설정합니다.

설정 및 채널 설정으로 이동하여 샘플 속도를 초당 2, 000 샘플로 설정합니다. 범위를 20 밀리볼트로 설정하고 입력 증폭기를 200 헤르츠의 로우 패스로 설정합니다. 그런 다음 심전도 분석 및 심전도 설정으로 이동한 다음 검색 및 분석 설정 의 사전 설정에서 마우스를 선택합니다.

평균 패널에서 단일 평균 신호 또는 평균 보기 및 테이블 뷰에 연속심장 주기를 결합하도록 선택합니다. QTc 패널에서 QT 간격의 심박수 수정 값으로 정의된 Bazett 방법을 선택합니다. 마우스를 정밀 축척에 놓고 무게를 기록합니다.

마우스가 제대로 마취된 후 침술 바늘이 있는 전극을 오른쪽과 왼쪽 앞다리와 왼쪽 뒷다리에 삽입합니다. 실험 전반에 걸쳐 전극 깊이와 위치가 일관되게 유지되는지 확인합니다. 3개의 리드 바이오 증폭기 케이블의 리드 와이어의 다른 쪽 끝에 있는 3개의 스냅 커넥터로 클릭하여 전극의 다른 끝을 연결하고 마취제 후에 약 3분 후에 약물을 주입한다.

마취제를 투여한 후 10분 후에 심전도 기록을 시작합니다. 기록이 완료되면 분석용 마취제를 주입한 후 12분에서 17분까지 심전도 데이터를 사용하십시오. 완료되면 전극을 조심스럽게 제거하십시오.

이 비침습적 심전도 측정이 심장 전도 시스템에 대한 자율 변조의 영향을 반영하는지 여부를 결정하기 위해 정상적인 BALB/c 마우스는 자율 신경계의 작용제 및 길항제에게 도전하였다. 차량 제어에 비해, 심박수가 아트로핀과 이소프레네라인에서 크게 증가하여 생쥐를 치료하고 카바톨로 떨어졌다. 또한, QTc 간격은 아트로핀에서 상승하고 이소프레네린 처리 마우스와 카르바콜 처리 마우스에서 감소.

아트로핀, 카르바콜 및 차량 처리 마우스의 ECG 신호의 대표적인 차트 뷰 및 평균 뷰가 여기에 표시됩니다. 이 프로토콜을 시도할 때 가장 중요한 것은 심전도 전극이 실험 전체에서 안전하게 삽입되도록 하는 것입니다. 심전도 신호가 안정적이고 일관적일 때까지 여러 예비 실험을 수행합니다.

마우스를 가진 우리의 이전 간행물은 부정맥과 같은 심장 혈관 연구 지역에서 이 방법의 유용성을 지원하는 인간 적인 유전 연구 결과에서 보고된 ECG 변이를 확인했습니다.