Name: an ultrasonic tool for nerve conduction block in diabetic rat models
Uploaded: 2017-10-20T13:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 27 s
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연구는 과학의 부 및 기술 (프로젝트 가장 105-2221-E-400-001) 및 국가 건강 연구 학회 (프로젝트 BN-105-PP-10), 대만 의해 지원 되었다.

기관 동물 관리 및 사용 위원회 대만에서 국립 건강 연구소의 모든 동물 프로토콜 승인.
 1. 남성 성인 Sprague-Dawley (SD) 쥐에서에서 당뇨병 모델 유도 <ol><li>STZ 유도 전에 6 h에 대 한 빠른 남성 SD 쥐 (300-350 g)에 쥐 음식 펠 릿 케이지에서 제거.</li>
	<li>준비 나트륨 구 연산 염 버퍼 (0.1 m M, pH 4.5).
	<ol><li>분해 1.05 g 구 연산 산 성 일 수화물 (C 6 H 8 O 7 · H 2 O; mol. wt. 210.14) 50ml에 증류수 0.1 M 구 연산 산 성 솔루션.</li>
		<li>분해 1.47 g trisodium 시트르산이 수화물 (C 8 H 5 O 7 없음 3 · 2 H 2 O; mol. wt. 294.12) 50 mL에 증류수 0.1 M 나트륨 구 연산 염 솔루션.</li>
		<li>25 mL 나트륨 구 연산 염 해결책을 추가 25 mL 연산 솔루션. 나트륨 구 연산 염 버퍼 pH (pH 4.5) 모니터링 pH 미터를 사용 하 여. 
		참고: 버퍼 이루어집니다 isotonic 0.1 M 나트륨 구 연산 염 해결책의 적절 한 볼륨의 추가 의해.</li>
	</ol></li> <li>STZ 솔루션 50 mg/mL를 0.1 M 나트륨 구 연산 염 버퍼의 분해 STZ. 
	참고: STZ 솔루션 빛에 민감한 따라서 커버 알루미늄 호 일로 STZ 솔루션 이며, 15-20 분 이내 사용</li>
	<li>50 mg/kg STZ 솔루션 1 mL 인슐린 또는 투베르쿨린 주사기로 26-28 게이지 바늘. 클린 에탄올 패드 사출 사이트 그리고 intraperitoneally의 손상을 방지 하려면 복 부의 더 낮은 오른쪽 사분면에 주입 STZ 솔루션 복 부 기관입니다. </li> <li>저 혈당을 방지 하기 위해 STZ 주입 후 48 h에 대 한 유일한 물 소스로 10% 자당 물으로 쥐를 공급.</li></ol>
 2. STZ 유발 쥐에서 당뇨병 확인 STZ에 의해 주입 <ol><li>모니터 모든 단식 플라스마 포도 당 농도 쥐 포도 당 미터와 72 h 게시.
	<ol><li>빠른 금식을 측정 하기 전에 15 h STZ 유도 된 당뇨병 쥐 혈액 포도 당 수준.</li>
		<li>구속 가방에 쥐를 억제 하 고 혈액 포도 당 측정 동안 혈액 컬렉션에 대 한 꼬리를 노출.</li>
		<li>녀석이 작은 한 방울의 피를 꼬리의 끝에는 소모품을 사용 합니다. 포도 당 테스트 스트립에 혈액 방울을 놓습니다. 단식 플라스마 포도 당 수준 기록. 
		참고: 포도 당 미터 감지 하 고 혈액 포도 당 수준 mg/dL의 단위로 표시 됩니다. STZ-유도의 2 주 후 150 mg/dl 단식 혈액 포도 당 수준으로 쥐 제외.</li>
	</ol></li></ol> 3. 당뇨병 쥐에서 주변 당뇨병 신경 병의 평가 <li>평가 기계 용어인 전자 폰 Frey와 <ol>.
	<ol><li>Habituate STZ 유도 된 당뇨병 쥐에는 뒷 다리를 평가 하기 전에 30 분 동안 1 cm 직경 금속 메쉬 바닥에 발 철수 응답.</li>
		<li>엄밀한 팁 (직경에서 0.8 m m)와 전자 폰 Frey 프로브를 사용 하 여 수동으로 쥐의 뒷 발의 발바닥 표면에 압력을 적용 하 고 발 철수 응답을 볼 때까지 점차적으로 압력을 증가.</li>
		<li>압력 시스템에 표시 하 고 각 측정 사이 30 s 간격으로 쥐 당 5 회 측정 반복 기록.</li>
	</ol></li> <li>뜨거운 접시와 열 통을 평가.
	<ol><li>고통 응답을 평가 하기 전에 10 분 동안 핫 플레이트 (24 ± 0.5 ° C)에 STZ 유도 된 당뇨병 쥐를 길 들.</li>
		<li>제거 및 쥐 다시 그들의 감 금 소에 habituation 후, 핫 플레이트를 열 놓고 핫 플레이트 유지 &#39; 55 ± 0.5 ° c.에 s 온도</li>
		<li>동시에 타이머를 시작 하는 동안 온수 핫 플레이트에 쥐를 놓고.</li>
		<li>별개 행동을 전시 하는 쥐, 핥는 등은 뒷 발 또는 비정상적으로 터치는 뒷 발, 타이머를 중지 하 고 철수 대기 시간을 기록. 
		참고: 경우에 쥐 20 후 별개 행동을 표현 하지 않는다 s (20 s 마감 시간), 핫 플레이트 테스트를 종료 하 고 뜨거운 접시에서 쥐를 제거.</li>
	</ol></li></ol> 4. Vivo에서 장내 변환기와 전도 차단 신경 참고: vivo에서 실험 50 mg/kg STZ 주입 후 주 5에 시작.
<li>수행 동물 절차와 장내 쥡니다 Cmap의 차단 하기 전에 <ol>.
	<ol><li>수술 전에 압력솥에 수술 도구 (메스가 위, 집게, 및 유리 후크) 소독.</li>
		<li>Anesthetize tiletamine/zolazepam 혼합 (40 mg/kg) 및 xylazine (10 mg/kg)의 복 주입 또는 흡입을 통해 isoflurane 기화 기를 통해 isoflurane의 1.75%의 쥐. 체온을 유지 하기 위해 생리대에 쥐를 놓고.</li>
		<li>는 Recumbency 복 부에 수술에 대 한 쥐를 배치합니다. 눈 연 고를 적용 합니다. 쥐의 다리를 확장 하 고 마 취의 깊이 확인 하는 손톱으로 다리의 발바닥 표면 꼬집어. 쥐 철수 응답을 표시, 추가 마 취를 적용.</li>
		<li>는 허벅지에서 머리를 제거 하 고 전기 깎기로 쥐가 다시 낮은. 수술 사이트에 깨끗 한 거 즈로 액체 요오드를 적용 하 고 재생 거 즈 외과 사이트의 바깥쪽에 이동. 알코올 패드를 사용 하 여 동일한 원형 운동으로 액체 요오드를 닦아. 이 실험은 왼쪽과 오른쪽 수술 사이트에서 수행 됩니다. 다른 외과 사이트에서 절차를 반복 절차의 다음 단계를 수행 하는 때.</li>
		<li>지 허벅지에 피부 절 개를 만들기 위해 불 임 수술가 위 또는 메스를 사용 합니다. 무딘 수술가 위를 사용 하 여 신중 하 게 피부 밑 조직 분리 피부 후크. 대 퇴 골은 근육 내에서 볼 수 있는 피부를 보호 하.</li>
		<li>중반 허벅지 좌 골 신경 섬유는 근육에 포함 된 볼 수 있습니다 때까지 신중 하 게 대 퇴 골에 평행 하 게 근육을 분리 하는 위를 사용 합니다. 신중 하 게 주변 결합 조직 및 근육에서 중반 허벅지 좌 골 신경을 유리 후크를 사용 하 여.</li>
	</ol></li> <li>맞춤 신경 fixator ( 그림 1 및 그림 3)를 사용 하 여 장내 초점 영역에서 좌 골 신경 위치. 
	참고: 맞춤 신경 fixator 3 부품 ( 그림 3)으로 구성 됩니다. 모든 구성 요소는 투명 한 polymethylmethacrylate (PMMA)으로 이루어져 있습니다. 외부 스레드 컴포넌트의 상위 구조 나 이며 키가 2.5 m m M10XP0.7 ( 그림 4A). 중앙 잘 나 구성 요소를 통해 4.0 m m 직경 구멍은 이다. 우물의 아래 오프닝 테이프의 시트에 의해 밀봉 된다. 슬롯의 직경 1.2 m m 이며 슬롯의 중앙 비행기 및 부품의 위쪽 표면 사이의 거리는 3.1. 구성 요소 II는 본체, 4 개의 다리와 바닥 구조 ( 그림 4B) 이루어져 있다. 아래 구조체의 내부 스레드는 2.5 m m 높이 및 외부 스레드 구성 요소를 맞게 M10XP0.7 나. 중앙 구멍의 직경은 컴포넌트의 중앙 우물 같은 나. 본체의 크기는 직경에서 및 두께에서 5.4 m m 32 m m입니다. 4 개의 다리가 대칭으로 배포 됩니다. 두 개의 동일한 짧은 다리는 맞춤 설계 및 구성 III에 연결에 대 한 두 개의 동일한 긴 다리 작동. 외부 직경 및 구성 III의 높이 41 m m와 9.2 m m를 있습니다. 내부 스레드 M36XP1.0 이며 통해 구멍 직경에서 27.5 m m (< 강한 클래스 = "xfig"> 그림 4C). 원뿔 84 m m 직경에서의 최고 오프닝과 직경에서 27.5 m m의 아래쪽 오프닝 빈 테이퍼입니다. 높이 57.5 m m ( 그림 5A)입니다.
	<ol><li>실험 전에 30-60 분 살 균 물에 몸을 담근 뒤 표 백제 솔루션에 맞춤 아크릴 신경 fixator 담가.</li>
		<li>유리 후크를 사용 하 여 신경 신중 하 고 구성 요소 나의 슬롯에 넣어</li>
		<li>나사 구성 요소 II I. 채우기는 중앙 구성 요소를 잘 구성의 난 벨 &#39; 초음파 전파 및 신경 보존을 위한 s 솔루션.</li>
		<li>나사 구성 요소 III 장내 주택 콘입니다. 독 구성 요소 구성 요소 II의 4 개의 다리를 통해 구성 요소 II와 III. 
		참고: 3 부품의 기하학적 중심과 변환기 정렬 됩니다. 신경 및 변환기 사이의 거리가 신경은 장내 초점 영역 안에 보장 초점 길이.</li>
	</ol></li> <li>좌 골 신경 및 gastrocnemius 근육에 다른 쌍의 기원에 침술 바늘의 한 쌍을 삽입. 전기 동축 케이블 ( 그림 1)을 통해 전기 생리학 수집 시스템에 바늘의 각 쌍을 연결. 
	참고: 케이블의 한쪽 끝에 두 개의 바늘을 별도로 하 고 케이블의 다른 쪽 끝에 클립을 2 개의 악어입 클립은 BNC 커넥터 시스템을 연결 하는. 침술 바늘의 쌍 좌 골 신경에 자극 전극과 기록 전극을 gastrocnemius 근육에서 작동합니다.
	<ol><li>샘플링 속도 전기 생리학 수집 시스템의 대역폭을 50 kHz 및 70 Hz-3 kHz, 각각 설정. 좌 골 신경의 근원에 자극 전극에 펄스 폭 0.1 ms의 위에 최대한 자극을 적용.</li>
		<li>기록 전극에서 Cmap을 기록 하 고 전기 생리학 수집 시스템에 내장 된 앰프는 Cmap을 증폭. 
		참고: 사용 하 여 내장 앰프 전기 생리학 수집 시스템에서 신경 신호를 증폭 하 고 전기 생리학 수집 시스템과 기록 전극에서 Cmap 기록.</li>
	</ol></li> <li>상업 2.68 MHz 장내 변환기를 사용 하 여 당뇨병 neuropathic 쥐에 Cmap 억제. 
	참고: 변환기의 사양을 다음과 같이 설명 되어 있습니다: 단일 요소 구형 그릇 조리개 직경 6 cm, 5 cm의 초점 거리와 깊이 무료 분야에서 폭에서 0.8 m m 4mm의 둥글지 초점 영역.
	<ol><li>구형 원뿔, 장내 변환기 및 콘 커버는 탱크에 담가 degassed 물으로 가득 합니다. 구형 콘으로 장내 트랜스듀서를 넣고 6 헤드 나사 ( 그림 5B)에 의해 구형 콘의 최고 오프닝 콘 덮개를 해결. 물에 비해 거품의 낮은 밀도 인해 자연스럽 게 거품 구형 콘에 퇴 학, 후 투명 0.03 m m 두꺼운 테이프에 의해 원뿔의 프런트 엔드 오프닝 인감. 구형 원뿔에 나사 부품 III.</li>
		<li>Degassed 물 탱크에서 구형 콘와 부품 III 장내 변환기에 밖으로. 
		참고: 역방향 삼 투 물 연구에 사용 되는 역삼 투의 과정에 의해 순화 하는 물입니다. 역방향 삼 투 물 가스를 추방 하기 위해 삶은입니다. 냉각 후, degassed 물 개별 밀폐 탱크에서 얻은 것입니다.</li>
	</ol></li> <li>구성 요소를 넣어 신경와 근육 사이의 공간으로 내가 신중 하 게, 및 구성 요소 I. 수행 단계 4.2.3 되도록 신경은 장내의 초점 영역 안에 4.2.4의 격차에 신경 ( 그림 3A < / 강력한 >).</li>
	<li>함수 발생기 및 고주파 전력 증폭기 연결합니다. 장내 빔의 세대에 대 한 장내 변환기를 전력 증폭기를 연결 합니다. 수동으로 설정 함수 발생기의 전압 출력은 장내 변환기를 통해 전력 증폭기. 수동으로 해제 함수 발생기 장내 노출 시간이 되 면. 타이머를 사용 하 여 시간을 관찰. 
	참고: 강도 및 장내 빔이 연구에 사용 된 에너지는 2810 W/c m 2와 84 m J/m 2, 각각.</li>
	<li>동시에, 제공 전기 생리학 수집 시스템 (4.3 단계)를 통해 자극과 장내 빔 장내 시스템 (4.6 단계)을 통해 좌 골 신경에는 Cmap을 기록 하는 동안 합니다. 점차적으로 증가 3에서 좌 골 신경에 장내 노출 s, 5 8 s s Cmap의 진폭의 억제 또는 감소 관찰 때까지.
	<ol><li>레코드는 장내 전달 중 초당 한 번씩 Cmap 빔. Cmap의 진폭에 있는 변화를 관찰 한 후 장내 시스템을 해제 하 고 수동으로 기록 Cmap 초기 10 분, 연속 30 분에서 마다 5 분에서에서 2 분 마다 전기 생리학 수집 소프트웨어에 기록 아이콘을 클릭에 모든 10 분에서 마지막 녹화 시간 2 헤에 도달할 때까지 단계</li>
	</ol></li> <li>개별 구성 요소 II 및 III 신경 fixator ( 그림 3)의 절 개 사이트에서 장내 변환기를 제거 하. 별도 구성 II 그리고 난 출시 보안된 좌 골 신경. 4-0는 Cmap을 기록한 후 크롬 다 봉합으로 봉합 당뇨 쥐의 외과 사이트. 액체 요오드 수술 부위의 감염을 방지 하기 위해 적용 됩니다.
	<ol><li>난방 패드에 새 장을 놓고 쥐 동물 시설에 그들을 반환 하기 전에 그들의 감 금 소에 복구를 허용 합니다. 3 일 또는 buprenorphine (0.05-0.1 mg/kg)의 복 주사에 대 한 식 수에이 부 프로펜 쥐 제공.</li>
	</ol></li> <li>4.1.2 단계와 단계 7, 14, 28 일에는 4.3 초기 장내 쥡니다 후에 설명 된 대로 좌 골 신경 마 취 당뇨병 neuropathic 쥐의 gastrocnemius 근육의 기원에 자극 및 기록 전극 삽입. 4.3.1 4.3.2 단계를 반복 합니다.
	<ol><li>새 장을 열 패드에 놓고 쥐 동물 시설에 감 금 소를 이동 하기 전에 그들의 감 금 소에 복구할 수 있도록.</li>
	</ol></li> <li>실험 후 쥐를 안락사. 이산화탄소 챔버에 쥐를 놓습니다. 호흡 중지를 쥐에 대 일 분 정도 기다립니다. 심장 박동을 중지 되었습니다 확인 하십시오.</li>
</ol>

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저자는 공개 없다.

당뇨병 쥐에 에서 vivo에서 neuropathic 신경의 action potentials 및 장내 치료 둘 다 관찰 된 후 차단 효과의 즉시 발생의 부분 및 임시 억제 Cmap에 28 일 후속 연구는 신경 전도의 안전 봉쇄 적절 한 장내 노출에서 실시 수 증명. 그 결과, 장내 치료의 위의 프로토콜 당뇨병 쥐에서 좌 골 신경의 가역 유도 블록에 대 한 대체 솔루션을 제공할 수 있습니다.
이 방법에서는, 아무 신경 변성, 그리고 감각 신경 시간 가벼운 신경 부상14에서 몇 일의 기간 동안 완전히 복구할 수 있습니다. 심각한 부상에 대 한 감각 회복의 시간 과정 일반적으로 몇 개월 걸립니다, 모두에서 발생 하는 경우. 또한, endoneurial 튜브 Schwann 세포 기저 lamina가 그대로 분쇄 상해15다음에 재생성 더 주변 신경 섬유 완전히. 따라서, 우리는 장내에 온화 하지만 가역 신경 상해 사건에 대 한 발생 억제 Cmap 장내 치료 후 시간이 지남에 따라 기준선에 반환 때문에 추론. 심한 신경 상해는 Cmap만 복구 부분적으로, 심지어 28 일 후.
이 연구의 기술 임상 연구 전에 주변 신경에 장내 효과의 동물 연구는 실험 플랫폼 제공. 장내 초점 영역 수 있습니다 정확 하 게 목표로 대상 신경 구조 구성 요소 및 포지셔닝의 이전 문제가 해결이 연구에서 개발 된 프로토콜. 정상적인 신경 외 기법을 차단 하는 장내는 질병 신경에도 적용할 수 있습니다. 그러나 현재 기술의 한계 온도 모니터링 (선도 주변 조직의 손상)의 부족을 포함 하는, 짧은 차단 효과, 비록 장내 노출 반복은 진통 확장할 수 있습니다. 임상 실험 기법을 차단 하는 장내를 번역, 장내 초점 영역의 비 침 투 지도 초음파 이미징 또는 이미징, 대상 조직의 위치를 식별 하 여 실시간으로 온도 모니터링 하는 미스터 처럼 필요 합니다.
50% 이상의 neuropathic 고통 경험 하나에 4 환자에서 기존 경구 용 약물 결과 통증 하 고 졸음, 현기증, 졸 림16등 몇 가지 중요 한 부작용 포즈. 실제 형식은 잘하면 침술, 전기 및 자기 stimulations 같은 진통 효능을 개선 하기 위해 개발 됩니다. 그러나, 임상 경험에 매우 의존 하는 침술의 효 험 그리고 절차는 침략 적. 비 침 투 적인 전기 자극 또는 자기 자극의 효능 2 h 고통 자유에 대 한 대략 40% 이다. 두 stimulations 하지 일부 부작용17생성 로컬 사이트에 집중 된다. 따라서, 주변 통증 완화를 위해 임상 unmet 필요를 만족 시키는 기법을 차단 하는 장내 인스턴트 효과, 가역 효과, 물리 치료, 비-침략 적 치료 및 잠재적인 가정용 유망한 도구입니다.
그것은 좌 골 신경에 장내 초점 영역을 정확 하 게 목표로 하는 중요 한입니다. 그림 3 신경 초점 영역에서 위치에 대 한 도식 절차를 보여 줍니다. 첫 번째 단계를 사용 하 여 유리 후크 약간 좌 골 신경 및 신경, 아래 나 구성 요소에 넣어 들어올린 다음 내려 컴포넌트의 슬롯에 신경 나 (그림 3A)입니다. 신경 전달의 중앙 사이트의 첫 번째 단계를 통해 나. 두 번째 단계는 구성 요소와 구성 요소 II를 조립 하는 나를 통해 나사 모자 구조. 구성 요소 어셈블리 I 및 II는 그림 2B에서 신경 fixator. 구성 요소 II 역할의 구성 요소 연결 I 및 III. 구성 요소 II 및 III, 결합 하기 전에 그들은 초음파를 전송 하 고 신경을 보존 하 벨의 솔루션 degassing 가득 합니다. 마지막 단계는 구성 요소 II에 장내 변환기 콘 커플러의 구성 III 프런트 엔드 구조를 삽입. 두 쌍의 구성 II의 유연한 길고 짧은 기둥 고정 충분 한 힘을 제공합니다. II와 III 설계 되었습니다 부품의 조립 수는 세 가지 구성의 중앙 지점에에서 확인 축 장 붓 구멍-장부 원칙에 기반. 장내 변환기의 초점 변환기의 중앙 지점과 구성 요소의 중심점 사이의 거리는 나. 그 결과, 신경은 0.8 m m의 너비와 깊이 4 m m의 타원 면은 초점 영역 안에 확실히.

구두 약물,1, 침술 그리고 전기 신경 자극2 고통 스러운 당뇨 증의 치료를 위해 사용 되었습니다. 그러나, 구두 약물, 침술, 전기 신경 자극의 침략 작전의 부작용 치료 효능과 환자의 준수 방해. 동물 모델에서 말 초 신경의 초음파 블록 수십 년3,,45에 대 한 조사는. 큰 녹색 개구리의 좌 골 신경 생체 외에서 의 전도 0.4-대 한 초음파 노출의 10-20 펄스의 치료 후 역 저해 1.0 s6. 신경 전도 차단 한 요소는 초음파7에 의해 유도 된 온도 상승. 증 환자, 복합 근육 활동 전위 (Cmap)의 억제는 2 분8에 대 한 저 강도 초음파에 노출 비 골 신경에서 수행 되었다. 전체 복구 시간 5 분 이내 했다입니다.
최근, 식품 및 의약품 안전 청은 미국의 자 궁 유 섬유 종양9, 뼈 전이10, 전립선 암11의 고통 palliations에 대 한 비-침략 적 치료로 장내를 승인. 장내 변환기, 몸 밖에 서 음향 광선 방출 그리고 광선 다양 한 조직 매체에 있는 초점에 대상 종양에 수렴. 초점 영역 즉시 주변 조직 손상 없이 대상 종양에 대 한 지역화 된 효과 생성 하기 위해 형성 된다. 장내는 또한 신경 전도 억제 하거나 정상적인 Sprague-Dawley (SD) 쥐12의 비보에 실험에서 신경 denervation에 적용 되었다. 또한, neuropathic 신경에 장내의 단기 및 장기 효과 조사13되었습니다. 이전 결과 감각 신경 전도의 가역 또는 영구 블록 장내에 의해 적절 한 매개 변수와 함께 달성 될 수 있다고 설명 했다. 진통 응용 프로그램 외 장내 주변 및 중앙 신경 전도 봉쇄 신경과의 기초 연구 및 진통제의 개발에 대 한 구성 요소의 상대적 기여도 조사 하는 도구로 사용 수 있습니다. 따라서, 장내 차단 기술 플랫폼 동물 모델에서 주변 신경에 대 한 특정 필요 합니다. 이 문서의 목적은 부분적으로 또는 완전히 차단 장내에 의해 당뇨병 neuropathic 쥐에 주변 신경의 활동 전위에 대 한 절차를 설명 하는 것입니다. 당뇨병 쥐 모델 및 주변 neuropathic 증상의 평가 설치 되었다. 장내 플랫폼 및 실험 프로세스 쥐 좌 골 신경 치료에 대 한 특정 표시 됩니다.

<table><tbody><tr><td>streptozotocin</td><td>Sigma</td><td>85882</td><td></td></tr><tr><td>citric acid monohydrate&amp;nbsp;</td><td>Sigma</td><td>C1909</td><td></td></tr><tr><td>trisodium citrate dihydrate</td><td>Sigma</td><td>W302600</td><td></td></tr><tr><td>glucose meters</td><td>Roche Accu-Check Active</td><td>GC</td><td></td></tr><tr><td>electronic von Frey device</td><td>IITC Life Science</td><td>2390</td><td></td></tr><tr><td>hot plate</td><td>IITC Life Science</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biopac MP36 acquisition system</td><td>Biopac Systems, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>HIFU transducer</td><td>Sonic Concepts</td><td>H108</td><td></td></tr><tr><td>function generator</td><td>Agilent</td><td>33250A</td><td></td></tr><tr><td>power amplifier</td><td>Electronics &amp;amp; Innovation</td><td>1040L</td><td></td></tr><tr><td>Rats&amp;nbsp;</td><td>Biolasco taiwan</td><td>Sprague-Dawley</td><td></td></tr><tr><td>Puralube vet ointment</td><td>Dechra</td><td></td><td></td></tr><tr><td>isoflurane vaporizer</td><td>Parkland Scientific</td><td>V3000PS</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurance</td><td>Attane</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Restraint bag (Decapicones)</td><td>Braintree Scientific</td><td>DC 200</td><td></td></tr></tbody></table>

an ultrasonic tool for nerve conduction block in diabetic rat models

고 강도 집중 된 초음파 (장내) 변환기와 신경 전도 블록 정상과 당뇨병 동물 모델에서 최근 수행 하고있다. 장내는 적절 한 초음파 매개 변수를 사용 하 여 동안 신경 손상 없이 역 주변 신경의 전도 차단할 수 있습니다. 신경의 활동 전위의 일시적이 고 부분적인 블록이 보여줍니다 장내 통증에 대 한 유용한 임상 치료 될 가능성이 있다. 이 작품에서는 당뇨병 쥐에 에서 vivo 장내 변환기를 사용 하 여에 neuropathic 신경의 활동 전위를 억제 하는 절차를 보여 줍니다. 성인 남성 당뇨병 neuropathic 쥐 streptozotocin (STZ) 주입에 의해 생성 하는 첫 번째 단계가입니다. 두 번째 단계 전자 폰 Frey 프로브와 뜨거운 접시 STZ 유도 된 당뇨병 쥐에서 주변 당뇨병 신경 장 해를 평가 하는 것입니다. 마지막 단계는 세포 외 활동 전위 신경 장내 쥡니다에 노출의 기록 vivo에서 . 여기 보여 메서드 초음파 진통 응용 프로그램의 연구에 혜택을 받을 수 있습니다.

Vivo에서 학문, 2810 W/c m2의 3 s 쥡니다 강도에 한 장내 복용량으로는 Cmap 기준선의 20%에 의해 억제 된 하지만 그들은 (그림 2A, 다이아몬드) 30 분 후 완전히 회복 했다 거의 시연 (그림 2B, 다이아몬드) 28 일 기간에 상수. 같은 강도로 5 s 장내 노출는 Cmap 4 분 기준의 65.4% (9.5%)로 감소 및 120 분 (그림 2A, 사각형) 초기의 73.7% (12.6%)로 복구. Cmap 하루 14 (그림 2B, 사각형)까지 초기 수준으로 반환 하지 않았습니다. 때 장내 쥡니다 시간 8 증가 했다 s 같은 강도, 아래는 Cmap 분 4 (그림 2A, 삼각형), 38.0% (12.0%) 증가 하지만 120 분 기준의 기준선의 26.0% (14.1%)로 감소 되었고 점차적으로 일별 기준의 74% 증가 28 (그림 2B, 삼각형). 리, Y.F.,13 대 한 자세한 내용은 참조 하십시오.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55675/55675fig1.jpg"> 
그림 1 :에 대 한 실험 설치 Vivo에서 신경 전도 블록 고 강도 집중 초음파 (장내). (A) 역삼 degassed 물으로 가득 맞춤 아크릴 구형 콘 장내 초점 영역 변환기는 신경의 초점면에 있도록 신경 fixator와 결합 되었다. (B) 자극 및 기록 전극은 그림에 표시 됩니다. 신경 fixator 장내 빔의 초점면에 좌 골 신경 위치. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55675/55675fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55675/55675fig2.jpg"> 
그림 2 :에 Cmap 응답 Vivo에서 3 후 당뇨병 Neuropathic 쥐 s, 5, 및 8 장내 쥡니다의 s. (A) 1 일 녹화 하는 동안 Cmap의 시간적 과정. 3 후 s, 5, 및 8 s 장내 쥡니다는 Cmap의 초반 10 분 동안 감소 했다 고 후 120 분 (B)는 Cmap의 시간적 과정 7, 14, 28 일 녹화 하는 동안 복구. Cmap 하루 14 3 후 완 치 했다 s 고 8 후 한 일 1 및 부분적으로 증가에 5 s 장내 쥡니다의 장내 쥡니다. 다이아몬드: 3 장내 쥡니다의 s 사각형: 5의의 장내 쥡니다, 및 삼각형: 8 장내 쥡니다의 s. n = 각 장내 매개 변수 6. * 주 1에서에서 다른 Signiﬁcantly입니다. 데이터는 어디 오차 막대 범위의 절반은 중간값 (범위)로 표현 됩니다. 이 그림은이, Y.F. 201513에서 수정 됩니다. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55675/55675fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55675/55675fig3.jpg"> 
그림 3 : 장내 핫 스팟에서 좌 골 신경에 되도록 조립 프로세스. (A) 3 개의 조립 단계 표시 됩니다: (1) 신중 하 게 정착 신경 구성 요소의 슬롯에, (2) 조립 부품 II 및 구성 요소, (3) 삽입 장내 변환기 콘 구조와 구성 요소 III의 프런트 엔드 구성 요소 II에. (B) 장내 변환기의 도식 그리기 쥐 신경 통합. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55675/55675fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55675/55675fig4.jpg"> 
그림 4 : 구성 요소 그림 (A), II (B) 나 및 III (C). <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55675/55675fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 5" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/55675/55675fig5.jpg"> 
그림 5 : 구형 콘 (A)와 콘의 도면 커버 (B). <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55675/55675fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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An Ultrasonic Tool for Nerve Conduction Block in Diabetic Rat Models

이 작품 당뇨병 neuropathic 신경의 활동 전위를 차단 하 고 강도 집중 된 초음파를 적용 한 방법론을 제공 합니다.

당뇨병 쥐 모델에서 신경 전도 대 한 초음파 도구 차단

Nerve conduction block with a high intensity-focused ultrasound (HIFU) transducer has been performed in normal and diabetic animal models recently. HIFU ...

an-ultrasonic-tool-for-nerve-conduction-block-in-diabetic-rat-models

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Bioengineering

7.3K 조회수.  National Health Research Institutes. 이 작품 당뇨병 neuropathic 신경의 활동 전위를 차단 하 고 강도 집중 된 초음파를 적용 한 방법론을 제공 합니다.

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Rapid Determination of the Thermal Nociceptive Threshold in Diabetic Rats

Painful diabetic neuropathy (PDN) is characterized by hyperalgesia i.e., increased sensitivity to noxious stimulus, and allodynia i.e., hypersensitivity to normally innocuous stimuli1. Hyperalgesia and allodynia have been studied in many different rodent models of diabetes mellitus2. However, as stated by B&ouml;lcskei et al, determination of "pain" in animal models is challenging due to its subjective nature3. Moreover, the traditional methods used to determine behavioral responses to noxious thermal stimuli usually lack reproducibility and pharmacological sensitivity3. For instance, by using the hot-plate method of Ankier4, flinch, withdrawal and/or licking of either hind- and/or fore-paws is quantified as reflex latencies at constant high thermal stimuli (52-55 &deg;C). However, animals that are hyperalgesic to thermal stimulus do not reproducibly show differences in reflex latencies using those supra-threshold temperatures3,5. As the recently described method of B&ouml;lcskei et al.6, the procedures described here allows for the rapid, sensitive and reproducible determination of thermal nociceptive thresholds (TNTs) in mice and rats. The method uses slowly increasing thermal stimulus applied mostly to the skin of mouse/rat plantar surface. The method is particularly sensitive to study anti-nociception during hyperalgesic states such as PDN. The procedures described bellow are based on the ones published in detail by Alm&aacute;si et al 5 and B&ouml;lcskei et al 3. The procedures described here have been approved the Laboratory Animal Care and Use Committee (LACUC), Wright State University.

Here, we describe a rapid reliable and simple procedure to determine the lowest temperature at which rats or mice show nocifensive behavior, i.e. the thermal nociceptive threshold (TNT). This method applies a slowly increasing thermal stimulus allowing precise and reproducible estimation of TNTs with minimum, if any, stress to the animals.

당뇨병 쥐의 열전달 Nociceptive 본부 신속한 결정

Painful diabetic neuropathy (PDN) is characterized by hyperalgesia i.e., increased sensitivity to noxious stimulus, and allodynia i.e., hypersensitivity ...

연구

신경과학

The Sciatic Nerve Cuffing Model of Neuropathic Pain in Mice

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in injured sensory neurons and along the entire nociceptive pathway within the central nervous system. It is usually chronic and challenging to treat. In order to study neuropathic pain and its treatments, different models have been developed in rodents. These models derive from known etiologies, thus reproducing peripheral nerve injuries, central injuries, and metabolic-, infectious- or chemotherapy-related neuropathies. Murine models of peripheral nerve injury often target the sciatic nerve which is easy to access and allows nociceptive tests on the hind paw. These models rely on a compression and/or a section. Here, the detailed surgery procedure for the &#34;cuff model&#34; of neuropathic pain in mice is described. In this model, a cuff of PE-20 polyethylene tubing of standardized length (2 mm) is unilaterally implanted around the main branch of the sciatic nerve. It induces a long-lasting mechanical allodynia, i.e., a nociceptive response to a normally non-nociceptive stimulus that can be evaluated by using von Frey filaments. Besides the detailed surgery and testing procedures, the interest of this model for the study of neuropathic pain mechanism, for the study of neuropathic pain sensory and anxiodepressive aspects, and for the study of neuropathic pain treatments are also discussed.

Neuropathic pain is a consequence of a lesion or disease affecting the somatosensory system. The &#8220;cuff model&#8221; of neuropathic pain in mice consists of the implantation of a polyethylene cuff around the main branch of the sciatic nerve. Mechanical allodynia is tested using von Frey filaments.

마우스의 신경 병증 성 통증의 좌골 신경의 바지를 접 모델

Neuropathic pain arises as a consequence of a lesion or a disease affecting the somatosensory system. This syndrome results from maladaptive changes in ...

의학

In Vivo Electrophysiological Measurements on Mouse Sciatic Nerves

Electrophysiological studies allow a rational classification of various neuromuscular diseases and are of help, together with neuropathological techniques, in the understanding of the underlying pathophysiology1. Here we describe a method to perform electrophysiological studies on mouse sciatic nerves in vivo.
The animals are anesthetized with isoflurane in order to ensure analgesia for the tested mice and undisturbed working environment during the measurements that take about 30 min/animal. A constant body temperature of 37 &#176;C is maintained by a heating plate and continuously measured by a rectal thermo probe2. Additionally, an electrocardiogram (ECG) is routinely recorded during the measurements in order to continuously monitor the physiological state of the investigated animals.
Electrophysiological recordings are performed on the sciatic nerve, the largest nerve of the peripheral nervous system (PNS), supplying the mouse hind limb with both motoric and sensory fiber tracts. In our protocol, sciatic nerves remain in situ and therefore do not have to be extracted or exposed, allowing measurements without any adverse nerve irritations along with actual recordings. Using appropriate needle electrodes3 we perform both proximal and distal nerve stimulations, registering the transmitted potentials with sensing electrodes at gastrocnemius muscles. After data processing, reliable and highly consistent values for the nerve conduction velocity (NCV) and the compound motor action potential (CMAP), the key parameters for quantification of gross peripheral nerve functioning, can be achieved.

In Vivo Electrophysiological Measurements on Mouse Sciatic Nerves

Measurements of nerve conduction properties in vivo exemplify a powerful tool to characterize various animal models of neuromuscular diseases. Here, we present an easy and reliable protocol by which electrophysiological analysis on sciatic nerves of anesthetized mice can be performed.

마우스 좌골 신경에 생체 전기 생리 측정에서

Electrophysiological studies allow a rational classification of various neuromuscular diseases and are of help, together with neuropathological ...

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and latency detect chronic axon loss and demyelination, respectively. Axonal excitability techniques &#34;by threshold tracking&#34; expand upon these measures by providing information regarding the activity of ion channels, pumps and exchangers that relate to acute function and may precede degenerative events. As such, the use of axonal excitability in animal models of neurological disorders may provide a useful in vivo measure to assess novel therapeutic interventions. Here we describe an experimental setup for multiple measures of motor axonal excitability techniques in the rat ulnar nerve.
The animals are anesthetized with isoflurane and carefully monitored to ensure constant and adequate depth of anesthesia. Body temperature, respiration rate, heart rate and saturation of oxygen in the blood are continuously monitored. Axonal excitability studies are performed using percutaneous stimulation of the ulnar nerve and recording from the hypothenar muscles of the forelimb paw. With correct electrode placement, a clear compound muscle action potential that increases in amplitude with increasing stimulus intensity is recorded. An automated program is then utilized to deliver a series of electrical pulses which generate 5 specific excitability measures in the following sequence: stimulus response behavior, strength duration time constant, threshold electrotonus, current-threshold relationship and the recovery cycle.
Data presented here indicate that these measures are repeatable and show similarity between left and right ulnar nerves when assessed on the same day. A limitation of these techniques in this setting is the effect of dose and time under anesthesia. Careful monitoring and recording of these variables should be undertaken for consideration at the time of analysis.

In Vivo Electrophysiological Measurement of the Rat Ulnar Nerve with Axonal Excitability Testing

Axonal excitability techniques provide a powerful tool to examine pathophysiology and biophysical changes that precede irreversible degenerative events. This manuscript demonstrates the use of these techniques on the ulnar nerve of anesthetized rats.

Vivo에서 Axonal 흥분 테스트 쥐 척 골 신경의 electrophysiological 측정

Electrophysiology enables the objective assessment of peripheral nerve function in vivo. Traditional nerve conduction measures such as amplitude and ...

Establishing a Mouse Model of a Pure Small Fiber Neuropathy with the Ultrapotent Agonist of Transient Receptor Potential Vanilloid Type 1

Patients with diabetes mellitus (DM) or those experiencing the neurotoxic effects of chemotherapeutic agents may develop sensation disorders due to degeneration and injury of small-diameter sensory neurons, referred to as small fiber neuropathy. Present animal models of small fiber neuropathy affect both large- and small-diameter sensory fibers and thus create a neuropathology too complex to properly assess the effects of injured small-diameter sensory fibers. Therefore, it is necessary to develop an experimental model of pure small fiber neuropathy to adequately examine these issues. This protocol describes an experimental model of small fiber neuropathy specifically affecting small-diameter sensory nerves with resiniferatoxin (RTX), an ultrapotent agonist of transient receptor potential vanilloid type 1 (TRPV1), through a single dose of intraperitoneal injection, referred to as RTX neuropathy. This RTX neuropathy showed pathological manifestations and behavioral abnormalities that mimic the clinical characteristics of patients with small fiber neuropathy, including intraepidermal nerve fiber (IENF) degeneration, specifically injury in small-diameter neurons, and induction of thermal hypoalgesia and mechanical allodynia. This protocol tested three doses of RTX (200, 50, and 10 &#181;g/kg, respectively) and concluded that a critical dose of RTX (50 &#181;g/kg) is required for the development of typical small fiber neuropathy manifestations, and prepared a modified immunostaining procedure to investigate IENF degeneration and neuronal soma injury. The modified procedure is fast, systematic, and economic. Behavioral evaluation of neuropathic pain is critical to reveal the function of small-diameter sensory nerves. The evaluation of mechanical thresholds in experimental rodents is particularly challenging and this protocol describes a customized metal mesh that is suitable for this type of assessment in rodents. In summary, RTX neuropathy is a new and easily established experimental model to evaluate the molecular significance and intervention underlying neuropathic pain for the development of therapeutic agents.

This study establishes an experimental model of pure small fiber neuropathy with resiniferatoxin (RTX). A unique dose of RTX (50 &#181;g/kg) is optimal for developing a small fiber neuropathy model that mimics patient characteristics and could help investigate the nociceptive molecular significance underlying neuropathic pain.

일시적인 수용 체 잠재력 Vanilloid 타입-1의 Ultrapotent 주 작동 근의 순수한 작은 섬유 신경 병 마우스 모델 수립

Patients with diabetes mellitus (DM) or those experiencing the neurotoxic effects of chemotherapeutic agents may develop sensation disorders due to ...

Use of In Vivo Single-fiber Recording and Intact Dorsal Root Ganglion with Attached Sciatic Nerve to Examine the Mechanism of Conduction Failure

Single-fiber recording has been a classical and effective electrophysiological technique over the last few decades because of its specific application for nerve fibers in the central and peripheral nervous systems. This method is particularly applicable to dorsal root ganglia (DRG), which are primary sensory neurons that exhibit a pseudo-unipolar structure of nervous processes. The patterns and features of the action potentials passed along axons are recordable in these neurons. The present study uses in vivo single-fiber recordings to observe the conduction failure of sciatic nerves in complete Freund&#8217;s adjuvant (CFA)-treated rats. As the underlying mechanism cannot be studied using in vivo single-fiber recordings, patch-clamp-recordings of DRG neurons are performed on preparations of intact DRG with the attached sciatic nerve. These recordings reveal a positive correlation between conduction failure and the rising slope of the after-hyperpolarization potential (AHP) of DRG neurons in CFA-treated animals. The protocol for in vivo single fiber-recordings allows the classification of nerve fibers via the measurement of conduction velocity and monitoring of abnormal conditions in nerve fibers in certain diseases. Intact DRG with attached peripheral nerve allows observation of the activity of DRG neurons in most physiological conditions. Conclusively, single-fiber recording combined with electrophysiological recording of intact DRGs is an effective method to examine the role of conduction failure during the analgesic process.

Single-fiber recording is an effective electrophysiological technique that is applicable to the central and peripheral nervous systems. Along with the preparation of intact DRG with the attached sciatic nerve, the mechanism of conduction failure is examined. Both protocols improve the understanding of the peripheral nervous system&#39;s relationship with pain.

전도 실패의 메커니즘을 검사하기 위해 연결된 Sciatic 신경을 가진 생체 내 단일 섬유 기록 및 손상되지 않은 등철 루트 신경절의 사용

Single-fiber recording has been a classical and effective electrophysiological technique over the last few decades because of its specific application for ...

Modified Spared Nerve Injury Surgery Model of Neuropathic Pain in Mice

Spared nerve injury (SNI) is an animal model that mimics the cardinal symptoms of peripheral nerve injury for studying the molecular and cellular mechanism of neuropathic pain in mice and rats. Currently, there are two types of SNI model, one to cut and ligate the common peroneal and the tibial nerves with intact sural nerve, which is defined as SNIs in this study, and another to cut and ligate the common peroneal and the sural nerves with intact tibial nerve, which is defined as SNIt in this study. Because the sural nerve is purely sensory whereas the tibial nerve contains both motor and sensory fibers, the SNIt model has much less motor deficit than the SNIs model. In the traditional SNIt mouse model, the common peroneal and the sural nerves are cut and ligated separately. Here a modified SNIt surgery method is described to damage both common peroneal and sural nerves with only one ligation and one cut with a shorter procedure time, which is easier to perform and reduces the potential risk of stretching the sciatic or tibial nerves, and produces similar mechanical hypersensitivity as the traditional SNIt model.

<meta charset="utf8"></head><body>마우스의 신경병증성 통증에 대한 수정된 보존 신경 손상 수술 모델

The modified surgery is a simplified method for mouse or rat spared nerve injury model that requires only one ligation and one cut to injure both common peroneal and sural nerves.

마우스의 신경병증성 통증에 대한 수정된 보존 신경 손상 수술 모델

Spared nerve injury (SNI) is an animal model that mimics the cardinal symptoms of peripheral nerve injury for studying the molecular and cellular ...

Preparation of Rat Sciatic Nerve for Ex Vivo Neurophysiology

Ex vivo preparations enable the study of many neurophysiological processes in isolation from the rest of the body while preserving local tissue structure. This work describes the preparation of rat sciatic nerves for ex vivo neurophysiology, including buffer preparation, animal procedures, equipment setup and neurophysiological recording. This work provides an overview of the different types of experiments possible with this method. The outlined method aims to provide 6 h of stimulation and recording on extracted peripheral nerve tissue in tightly controlled conditions for optimal consistency in results. Results obtained using this method are A-fibre compound action potentials (CAP) with peak-to-peak amplitudes in the millivolt range over the entire duration of the experiment. CAP amplitudes and shapes are consistent and reliable, making them useful to test and compare new electrodes to existing models, or the effects of interventions on the tissue, such as the use of chemicals, surgical alterations, or neuromodulatory stimulation techniques. Both conventional commercially available cuff electrodes with platinum-iridium contacts and custom-made conductive elastomer electrodes were tested and gave similar results in terms of nerve stimulus strength-duration response.

Preparation of Rat Sciatic Nerve for Ex Vivo Neurophysiology

This protocol describes the preparation of rat whole sciatic nerve tissue for ex vivo electrophysiological stimulation and recording in an environmentally-regulated, two-compartment, perfused saline bath.

Ex Vivo 신경 생리학을위한 쥐 좌골 신경의 제조

Ex vivo preparations enable the study of many neurophysiological processes in isolation from the rest of the body while preserving local tissue structure. ...

Open-Source Real-Time Closed-Loop Electrical Threshold Tracking for Translational Pain Research

Nociceptors are a class of primary afferent neurons that signal potentially harmful noxious stimuli. An increase in nociceptor excitability occurs in acute and chronic pain conditions. This produces abnormal ongoing activity or reduced activation thresholds to noxious stimuli. Identifying the cause of this increased excitability is required for the development and validation of mechanism-based treatments. Single-neuron electrical threshold tracking can quantify nociceptor excitability. Therefore, we have developed an application to allow such measurements and demonstrate its use in humans and rodents. APTrack provides real-time data visualization and action potential identification using a temporal raster plot. Algorithms detect action potentials by threshold crossing and monitor their latency after electrical stimulation. The plugin then modulates the electrical stimulation amplitude using an up-down method to estimate the electrical threshold of the nociceptors. The software was built upon the Open Ephys system (V0.54) and coded in C++ using the JUCE framework. It runs on Windows, Linux, and Mac operating systems. The open-source code is available (<a data-saferedirecturl="https://www.google.com/url?q=https://github.com/Microneurography/APTrack&amp;source=gmail&amp;ust=1680789829274000&amp;usg=AOvVaw0nMk9J_EI2jUn8SlmC5JJm" href="https://github.com/Microneurography/APTrack" target="_blank">https://github.com/Microneurography/APTrack</a>). The electrophysiological recordings were taken from nociceptors in both a mouse skin-nerve preparation using the teased fiber method in the saphenous nerve and in healthy human volunteers using microneurography in the superficial peroneal nerve. Nociceptors were classified by their response to thermal and mechanical stimuli, as well as by monitoring the activity-dependent slowing of the conduction velocity. The software facilitated the experiment by simplifying the action potential identification through the temporal raster plot. We demonstrate real-time closed-loop electrical threshold tracking of single-neuron action potentials during&#160;in vivo&#160;human microneurography, for the first time, and during&#160;ex vivo&#160;mouse electrophysiological recordings of C-fibers and A&#948;-fibers. We establish proof of principle by showing that the electrical threshold of a human heat-sensitive C-fiber nociceptor is reduced by heating the receptive field. This plugin enables the electrical threshold tracking of single-neuron action potentials and allows the quantification of changes in nociceptor excitability.

APTrack is a software plugin developed for the Open Ephys platform that enables real-time data visualization and the closed-loop electrical threshold tracking of neuronal action potentials. We have successfully used this in microneurography for human C-fiber nociceptors and mouse C-fiber and A&#948;-fiber nociceptors.

Nociceptors are a class of primary afferent neurons that signal potentially harmful noxious stimuli. An increase in nociceptor excitability occurs in ...

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