Name: synthesis of keratin-based nanofiber for biomedical engineering
Uploaded: 2016-02-07T15:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 43 s
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저자는 지원 자금에 대한 혁명 금속 생체 적합 물질에 대한 공학 연구 센터 (ERC-0812348) 및 나노 기술 학부 교육 (EEC 1242139)을 통해 국립 과학 재단 (National Science Foundation)에게 감사의 말씀을 전합니다.

모든 프로토콜은 연구 준수 및 윤리 노스 캐롤라이나 A &amp; T 주립 대학 사무실의 지침을 따릅니다. 각질 추출 4 1. 화학 준비 <ol><li> 흄 후드, 2 % 중량 / 부피 초산 용액 (PAS) 1000 ml의를 준비하는 것은 탈 (DI) 물 980 ml의 초산 20 ㎖를 추가합니다. </li><li> 100 mM 트리스 염기 용액 (TBS) : 1000㎖를 제조 DI 물 1000 ml의 트리스베이스의 12.2 g을 추가하고 완전히 용해 될 때까지 교반한다. </li><li> DI 물 30 ㎖에 진한 염산 4 mL로 흘려 흄 후드에 묽은 염산 수용액 (DHAS)을 준비한다. </li><li> 화학적으로 처리되거나 변경되지 않은 인간의 머리 잘라낸의 약 20 g의 조달. 헤어 길이 될 수 있습니다. </li><li> 따뜻한 물과 비누로 손으로, 철저하게 머리를 씻으십시오. 마지막 헹굼에 대한 탈 (DI) 물을 사용합니다. </li><li> 80 ºC O를 두 개의 600 ㎖의 비커에 머리와 장소를 넣어1 시간 동안 VEN. </li><li> 비커의 바닥으로부터 액체를 배출시키고 모발이 완전히 건조 될 때까지 오븐에서 제자리. </li><li> 분할은 각 비커에 머리 10g을 배치, 600 ml의 비커 사이에 균일하게 머리를 건조. 500 개 이상의 ml의를 채우기 위해 머리를 허용하지 않습니다. </li><li> 머리를 모두 커버해야하고 각각의 비이커에 PAS 500 ml에 따르십시오. 12 시간 동안 파라 필름 및 저장과 비커를 커버. </li></ol> 케라틴 추출물 솔루션 2. 준비 <ol><li> 500 μm의 체를 사용하여 PAS에서 머리를 분리합니다. 별도의 용기에 폐기물 PAS를 수집합니다. 남은 PAS를 제거하는 DI의 물로 머리를 씻어. </li><li> 500㎖의 플라스크에 세척 머리를 놓습니다. 머리가 포함되어 있는지 확인하고, 플라스크에 TBS 400ml를 붓고. 38 ºC, 1 시간 동안 65 rpm으로 설정 떨고 욕조에 넣어 플라스크. </li><li> 1 시간 후, 각질 추출 용액의 약 400 ㎖ (KES)에 액체를 목욕을 흔들어에서 제거하고 부어, 난1,000 비이커 NTO. </li><li> 모발 덮고 1 시간 동안 진탕 수욕 제자리 않도록 보장 머리 함유 플라스크에 탈 이온수 400ml를 붓는다. 진동 화장실에서 플라스크를 제거하고 이전에 수집 된 KES으로 1,000 ml의 비이커에 KES의​​ 나머지 400 ml에 붓는다. 모발은 더 이상 필요하지 않은 가장 가까운 쓰레기 수용 플라스크 밖으로 버려진 폐기 될 수있다. </li></ol> 케라틴 추출물 솔루션 3. 농도 <ol><li> 증류수로 맨 윗줄에 rotodistiller 목욕을 입력하고 90 ºC로 설정합니다. 200 rpm으로 설정 회전 속도. 냉각수 냉각 펌프를 켜고 -10 ºC로 설정합니다. </li><li> pH 미터를 사용하여, KES의​​ pH를 모니터링 천천히 pH가 7.0에 도달 할 때까지 KES 1 mM의 DHAS을 추가 피펫을 사용합니다. 용액을 추가로 천천히 교반한다. </li><li> 전체에 대한 분기까지 둥근 바닥 플라스크에 500 ml의에 중화 KES을 따르십시오. 제조업체에 따라 증류기를 실행1.25 시간 동안 프로토콜입니다. <ol><li> KES의 모든 때까지 단계를 반복 3.3 증류되고있다. 플라스크에 단단히 연결되어 있는지 확인합니다. </li></ol></li></ol> 케라틴 추출물 솔루션 4. 투석 <ol><li> (12) 별도의 14 ML 원뿔 튜브에 동일하게 KES 솔루션을 따르십시오. 10 분 동안 1,050 XG에서 튜브를 원심 분리기. </li><li> 수집 된 파편에서 멀리 부어해야하고, 깨끗한 비커에 원심 분리 KES을 따르십시오. KES의 모든 원심 분리 될 때까지 반복합니다. </li><li> 채우기 2,000 ml의 DI 물과 실린더를 졸업했다. </li><li> 이십사인치 투석 튜브 셀룰로오스 막을 잘라, 그것을 폐쇄 유지하도록 튜브의 한쪽 끝을 클립. </li><li> 더 유연하고 쉽게 열 수 있도록 DI 워터의 실린더 튜브의 길이를 딥. </li><li> 투석 튜빙 셀룰로오스 막의 비 클립핑 단부를 열고 천천히 원심 튜브에 KES 용액 60 ㎖에 붓는다. 튜브의이 끝을 닫습니다 다른 클립을 사용합니다. </li><li> 디 넣어DI 물 2,000 ml의 실린더 alysis 튜브와 24 시간 동안 앉아서 할 수 있습니다. 실린더에있는 모든 3 ~ 4 시간을 DI 물을 변경합니다. </li><li> 24 시간 기간 후, 24 시간 동안 -20 ° C에서 냉동실에 상단의 공간과 장소를 떠날 확인되고, 덮인 항아리에 투석 KES 솔루션을 비 웁니다. </li></ol> 5. 동결 건조 각질 추출 솔루션 <ol><li> -86 ºC에 동결 건조기를 설정합니다. </li><li> , 냉동실에서 냉동 KES를 포함하는 항아리를 제거 항아리 떨어져 뚜껑을하고​​, 동결 건조 앰플에 배치합니다. 앰플에 씰을 놓고 0.133 mbar에서의 진공 압력을 생성하기 위해 노브를 돌려. 모든 수분이 멈출 때까지 약 48 시간 동안 샘플을 동결 건조. </li></ol> 전기 방사 솔루션 6. 준비 (10 중량 % 각질 솔루션) <ol><li> 동결 건조기에서 각질 가루를 제거하고 무게. </li><li> 10 % 중량 / 중량을 만들 케라틴 분말 DI 물 추가각질 솔루션입니다. </li></ol> 10 % 중량 PCL 솔루션 7. 준비 <ol><li> 및 트리 플루오로 에탄올 (TFE) - PCL (90 kDa의 ε 카프로 락톤 폴리머, 망간 70)을 얻었다. 교반 O / N에 의해​​ TFE에 무게 PCL으로 10 %를 준비하고 균질 혼합물을 구하십시오. </li></ol> 각질 / PCL 솔루션 8. 준비 <ol><li> 10 중량 % PCL 용액을 미리 준비하고, 10 중량 % 각질 솔루션을 얻습니다. 90:10, 80:20, 70:30 10 ml의 PCL / 각질 솔루션, 60:40 비율을 만들기 위해 현명한 PCL 용액 드롭으로 각질을 추가합니다. </li><li> 전기 방사 전에 PCL / 각질 용액의 균질 한 혼합물을 수득 vortexer를 사용합니다. </li></ol> 전기 방사 PCL 9. 생산 / 케라틴 섬유 <ol><li> 0.5 mm 직경의 플라스틱 튜브가 장착 된 10 ㎖의 일회용 주사기에 PCL / 각질 솔루션의 약 8 ml에 놓습니다. 유속은 2.5 ㎖ / 시간으로 설정된다 주사기 펌프에 주사기를 놓는다. </li><li&gt; 관에 접속 침의 선단에 전압을인가 (~ 수평으로부터 30도를 드럼 수집 섬유로부터 ~ 23cm 위치 등). 튜브에 22 kV의 전압과 약 200 rpm에서 집 드럼을 회전 - 19을 적용합니다. <ol><li> 샘플을 실행하기 전에 알루미늄 호일로 집 드럼을 감싸. 알루미늄 호일은 양쪽 끝에서 라벨 테이프를 적용하여 안정적인지 확인하십시오. 참고 : 섬유는 알루미늄 호일에 형성한다 (그림 2 참조) RT에서 섬유 커버 호일을 저장합니다. </li></ol></li></ol> PCL / 각질 나노 파이버 (10) 기계 분석 <ol><li> 8mm에서 60mm로 샘플을 잘라. 디지털 마이크로 미터를 사용하여 두께를 기록해야합니다. 준비 각 구성의 경우, 5 개의 샘플을 사용합니다. </li><li> 인장 시​​험기에 60 × 8 밀리미터 샘플을 연결합니다. 샘플을 연결하는 맞춤 설계 시편 홀더를 사용합니다. 이중 사용 색인 카드로 만들어 시편 홀더 간의 샘플 샌드위치양면 테이프. 10mm / 분의 변위 율 10 N 부하 셀을 적용한다. 참고 : 시편 홀더는 38mm 50 mm의 내부 창 40mm로 62mm로 설계되었습니다. </li><li> 확장 레코드 및 소프트웨어 프로토콜에 따라 소프트웨어를 통해 부하 값. </li><li> 시험 샘플의 면적으로 나눔으로써 힘 응력을 계산한다. 다음으로, 초기 길이만​​큼 길이의 변화로 나누어 변형을 계산한다. </li><li> X 축에 스트레인 값에 대해 대응하는 Y 축 응력을 플롯하여 응력 - 변형 곡선을 생성한다. </li><li> 경사 탄성률 같음 선형 영역에서의 영률을 계산한다. 변형의 오프셋 (offset) 0.2 %를 복용하고 선형 영역 곡선에 평행 한 선을 그려 응력 변형 플롯에서 인장 강도를 결정합니다. </li><li> 이전 분석 소프트웨어 (8)를 사용하여 분산 분석을 사용하여 수득 중으로 기계 데이터의 통계적 분석을 수행한다. P 값 &lt;0.05 우리통계적으로 유의 한 것으로 간주 다시. </li></ol> 11. 표면 형태와 구조 특성 <ol><li> 전기 방사 된 섬유의 형태를 관찰하기 위해 15 kV의 전압 및 5 μA의 전류 가속의 파라미터를 주 사형 전자 현미경 (SEM)을 사용한다. <ol><li> SEM으로 촬상에 앞서, 섬유의 단면이 2cm를 잘라내어 구리 테이프를 사용 SEM 스테이지에 부착. 약 11 nm 두께의 금 층을 만드는 데 1 분 30 초 동안 15mA에서 금을 스퍼터 코터와 코트 안에 무대를 놓습니다. SEM의 챔버로 샘플을로드합니다. 섬유 샘플을 관찰한다. </li></ol></li><li> PCL과 각질 사이의 화학 결합의 특성을 적외선 분광기 (FTIR)를 푸리에 변환을 사용합니다. 자석 홀더에 전기 방사 나노 섬유 막 2cm 2 부를 넣고 실험 전에 건조한 공기 정화 시스템. (200) 검사에 대한 스펙트럼을 구하여 역을 이용하여 스펙트럼을 분석소프트웨어 프로토콜에 따라 ndard 소프트웨어. </li><li> 표준 소프트웨어를 사용하여 스펙트럼 분석을 수행하고 제조 업체의 프로토콜에 따라 나노 섬유의 각 비율의 삼중를 사용합니다. </li></ol> 셀 섬유의 상호 작용의 연구 (12) <ol><li> 16mm 2 샘플로 섬유를 잘라. 12 mm 직경으로 된 커버에 각 시료를 해결하기 위해 생체 적합성, 실리콘 기반의 접착제를 사용합니다. </li><li> , 다음,도 커버 슬립 위로 샘플의 자유 단을 접착제, 커버 슬립 주위 샘플 랩에만 덮여 슬립 상단 떠나는 커버 슬립 위로 섬유 샘플의 일단 접착제 섬유 샘플. </li><li> 24 웰 플레이트에서 섬유 샘플을 놓습니다. 1 시간 동안 80 % 에탄올에 침지시켜 샘플을 소독. </li><li> DI 물을 사용하여 샘​​플에서 에탄올 헹군다. 그런 다음, 피펫 전체 샘플을 커버 확인하고 샘플 상에 기초 배지 2 ㎖. 5 분 후 매체를 제거합니다. </li><li> 사용 섬유 아세포 (3)T3 세포는 섬유 샘플 시드. DMEM 1 ㎖ 당 / cm이 약 62,000 세포가 존재한다는 항생제 등이 10 % 소 태아 혈청 (FBS)으로 보충 된 둘 베코 변성 이글 배지 (DMEM)에서 세포를 일시. </li><li> 각 섬유 샘플 / cm이 약 62,000 세포로 피복되어 있도록 각 웰 플레이트 3T3 세포 함유 DMEM 용액 1ml를 놓는다. 37 ° C에서 24 시간 5 % CO 2 잘 번호판을 품어. 주 : 사용 5 % CO 2 수준은 일반적 일 생리적 범위 셀 매체의 pH를 유지할 수 있기 때문이다. </li></ol> 나노 섬유 매트릭스 (13) 저하 <ol><li> 잘라 사각형 약 30mm X 30mm로 PCL / 각질 나노 섬유 멤브레인을 건조시켰다. </li><li> 10 분의 배양 기간 동안 80 % 알코올로 900mm 2 샘플을 소독하고 DI 물로 깨끗이 씻는다. 37 ºC에서, PBS, pH를 7.5 15 ml의 샘플을 품어. 버피를 교체3 일마다 FER. </li><li> 지정된 간격으로 용액 중 세포막을 타고 일주 7 주, 및 DI의 물로 씻어. </li><li> 동결 건조 앰플로 막 샘플을 놓습니다. 앰플에 실을 삽입하고 진공을 만들려면 노브를 돌려. 완전히 건조 될 때까지 24 시간 동안 동결 건조. </li><li> 구리 테이프를 사용 SEM 단계로 건조 된 샘플을 연결합니다. 1 분 30 초 동안 15mA에서 금을 스퍼터 코터와 코트 안에 무대를 놓습니다. </li><li> SEM의 챔버로 샘플을로드합니다. 1.5 kV의 5 μA의 전류의 가속 전압에서 섬유 샘플을 관찰한다. </li></ol>

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저자는 더 경쟁 재정적 이해 관계가 없음을 선언합니다.

인간의 머리에서 각질의 추출이 성공적으로 이루어졌다. 아세트산은 케라틴은 트리스 자료 추출 할 수 있도록, 인간의 머리에 산화제로서 작용. 케라틴 분말의 제조 인해에만 연구 목적으로 행해졌 사실 소규모이었다. 이 과정은 이미 대규모 제조 산업에서 확립되었다. 소규모 케라틴 추출 목적은 오염 배치 다양성 및 비용 효율성을 제어 할 수 있었다. 각질 추출이 절차의 제한 단계이다. 2 % - 케라틴 분말의 수율은 0.7 매우 낮다. 0.4 g의 각질 - 인간의 머리카락의 20g는 0.14을 얻었다. 전기 방사 된 섬유를 생산하는 또 다른 중요한 단계는 전기 방사에 적합한 용액 제형된다. 케라틴 용이 DI 물에 분산시키고, 그러나, 전기 방사시, 케라틴 / 물 용액은 섬유 형성을 초래하지 않았다. 필요한 m을 제공한다나노 파이버를 생성하는 공중 합체를 olecular 상호 작용은 용액에 도입 하였다. TFE에 용해 PCL은 수소 결합을 통해 각질과 더 강하게 상호 작용을 할 수 있었다. TFE이 때문에 전기 음성 및 산성 행동의 공중 합체 복합체의 안정성을 주로 담당했습니다. 케라틴은 친수 알려져 있지만 PCL는 소수성 것으로 알려져 있다는 사실로 인해 새로운 도전 PCL 용액 케라틴 용액 제시 혼합. 우리는 케라틴의 비율 증가로는 균질 한 혼합물을 얻기 어려웠다. 이 문제는 PCL 용액 현명한 케라틴 용액 방울을 첨가하고, 30 분 동안 수동 텍싱에 의해 해결되었다. SEM 이미지는 세포의 성장과 증식에 이상적입니다 우수한 표면 형태를 보여줍니다. 비교 FTIR 결과 전기 방사 섬유에 PCL 케라틴 사이에 양호한 혼 화성을 입증한다. 이는 분자간 수소 B 될 수도PCL과 각질 사이에 onding. 또 다른 요인은 전기 방사 섬유 혼합물 PCL 응집을 방지 고화되는 속도이다. 구조적 및 기계적 무결성이 재생 의학 애플리케이션에 적합 물질, PCL과 케라틴 분자 사이의 상호 작용에 의해 유지된다. 이러한 전기 방사 섬유 젊은 계수 네이티브 조직 그 가까이있는 것으로 밝혀졌다. 기계적으로 강한 섬유 세포 부착 및 증식을 지원할 수있다. PCL / 각질 나노 파이버는 우수한 균일도, 구조적 무결성, 적절한 기계적 특성 및 세포 적합성을 나타내었다. (100)의 비율에 PCL / 각질 대 영률 (MPA) : 00, 90:10, 80:20 및 70:30 각각 10 ± 2, ± 8 1 5 ± 1.5, 4.5 ± 1.6였다 . 케라틴의 비율이 증가 된 추가 된 계수는 감소 하였다. PCL / 케라틴 섬유에 대한 세포 부착 및 증식 섬유 독성없는 세포 성장을위한 지원을 제공하는 것을 확인한다.나노 섬유를 따라 filopodia 성장은 섬유 아세포 및 PCL / 케라틴 섬유 사이의 우호적 인 상호 작용을 나타냅니다. 전기 방사 기술은 성공적 PCL / 각질 계 나노 섬유를 합성 하였다. 이 기술은 기존의 방법과 달리, 신뢰성 있고 비용 효과적인 것으로 입증 된 잠재적으로 큰 규모의 나노 섬유 제조에 이용 될 수있다. 본 연구에서, 우리는 PCL / 각질 계 복합 나노 섬유 지지체는 전위 조직 공학 어플리케이션에 의치 애플리케이션 및 자연 모의 ECM에 사용할 수 있다고 결론 지었다.

전기 방사 나노 섬유는 중합체를 달성 방법으로서 널리 인식되고있다. 섬유는 나노 스케일에서 제조 될 수 있고, 섬유 한 사용자 정의 속성이다. 이러한 발전과 전기 방사 나노 섬유의 특성은 특히 조직 공학에서 생물 의학 공학 애플리케이션에 특히 흥미 있었다. 전기 방사 나노 섬유는 세포 외 매트릭스 유사성을 가지고있어 세포의 부착, 이동 및 증식을 촉진이. 때문에 세포 외 기질 (ECM)이 유사성, 전기 방사 섬유 상처 드레싱, 약물 전달을 돕기 위해 원료로 사용 될 수 있고, 예컨대 간, 뼈, 심장, 근육 (3)와 같은 조직 공학에 대한. 합성 및 천연 기원의 다른 중합체의 다양한 다른 애플리케이션 의공학 4 전기 방사 섬유를 만드는 데 사용되어왔다. 최근에이 성장하고있다합성 및 천연 중합체 (4)를 혼합하여 복합 나노 파이버의 개발의 terest. 이러한 조성물에서 최종 제품은 일반적으로 또한 천연 고분자에서 생물학적 단서와 속성을 채택하면서 합성 고분자와 관련된 기계적 강도를 상속합니다. 합성 및 천연 중합체는 나노 복합체의 합성에 사용되는 바와 같이,이 실험에서, PCL 및 케라틴이 제시된다. 각질은 머리, 양모와 손톱에서 발견되는 천연 중합체이다. 그것은 많은 아미노산 잔기를 포함 주목할만한 관심 시스테인 4,5입니다. 이상적으로 천연 중합체는 biorenewable 생체 적합성 및 생분해 될 것이다. 또한도 6에 포함 된 생체 물질에 세포 증식 및 부착을 강화하면서 각질이 모든 특성을 가지고 세. 폴리 카프로 락톤 (PCL)를 크게하는 흡수성 합성 폴리머조직 공학 4. 이러한 중합체는 이전 구조적 및 기계적 안정성을 평가되고 있으며, 그러나, 세포 친 화성이 부족하고 긴 분해율을 나타낸다. PCL의 소수성 특성은 세포 친 화성 (7)의 부족에 대한 가능성이 담당합니다. 그러나, PCL는 다른 폴리머와 매우 혼합 됨으로써 한계로 가입합니다. PCL / 각질 복합 PCL의 기계적 특성을 설명하고 다양한 생명 의학 애플리케이션을위한 이상적인 선택하고, 각질의 생물학적 특성을 통합해야합니다.

<table><tbody><tr><td>Human Hair&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>Obtained from Local Barber Shop in Greensboro</td></tr><tr><td>Peracetic acid</td><td>Sigma Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>PCL (e-caprolactone polymer)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>502-44-3</td><td>Mn 70-90 kDa</td></tr><tr><td>Trifluoroethanol (TFE)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>75-89-8</td><td></td></tr><tr><td>Tris Base (TrizmaTM Base Powder)</td><td>Sigma Aldrich</td><td></td><td>&gt;99.9% crystalline</td></tr><tr><td>Hydrochloric Acid</td><td>Fischer Scientific</td><td>A144C-212 Lot 093601</td><td>Waltham, MA</td></tr><tr><td>Kwik-Sil</td><td>World Precision Instruments</td><td></td><td>Sarasota, FL</td></tr><tr><td>Cellulose membrane</td><td>Sigma Aldrich</td><td></td><td>12 - 14 kDa molecular cut off</td></tr><tr><td>optical microscope</td><td>Olympus BX51M</td><td>BX51M</td><td>Japan</td></tr><tr><td>scanning electron microscope</td><td>Hitachi SU8000</td><td>SU8000</td><td>Japan</td></tr><tr><td>Table-Top Shimadzu machine</td><td>North America Analytical and Measuring Instruments AGS-X series</td><td>AGS-X Series&amp;nbsp;</td><td>Columbia, MD</td></tr><tr><td>Fourier transform infrared spectroscopy</td><td>Bruker Tensor 2 Instrument&amp;nbsp;</td><td></td><td>Billerica, MA</td></tr><tr><td>Microcal Origin software</td><td></td><td></td><td>Northampton, MA</td></tr><tr><td>X-ray diffraction (XRD)</td><td>Bruker AXS D8 Advance X-ray Diffractometer</td><td></td><td>Madison, WI</td></tr><tr><td>Fibroblast 3T3&amp;nbsp; cell</td><td>American Tissue Type Culture Collection</td><td></td><td>Manassas, VA</td></tr><tr><td>Dulbecco&#039;s modified Eagle&#039;s medium (DMEM</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Grand Island, NY</td></tr><tr><td>Spectra max Gemini XPS microplate reader</td><td>Molecular Devices</td><td></td><td>Sunnyvale, CA</td></tr><tr><td>Student- Newman-Keuls post hoc test</td><td>SigmaPlot 12 software</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

synthesis of keratin-based nanofiber for biomedical engineering

다양한 분야에서의 응용을위한 범용성 및 잠재적으로 인해 전기 방사, 자주 나노 파이버를 제조하기 위해 사용되고있다. 이러한 다공성 나노 섬유의 생산은 그들의 독특한 물리 화학적 특성에 큰 관심이다. 여기에서 우리는 폴리 (ε 카프로 락톤)를 포함하는 케라틴 (PCL) 나노 섬유 (즉, PCL이 / 케라틴 합성 섬유)의 제조에 정교한. 수용성 각질 제 머리카락으로부터 추출 된 다른 비율의 PCL과 혼합 하였다. PCL / 각질의 혼합 용액을 설정 실험실 설계 전기 방사를 이용한 나노 섬유 멤브레인로 변신했다. 섬유 형태 얻어진 나노 파이버의 기계적 특성을 관찰 주 사형 전자 현미경 및 인장 시험기를 사용하여 측정 하였다. 또한, 나노 파이버의 분해성 화학적 특성은 FTIR에 의해 분석 하였다. SEM 이미지는 다른 조성의 PCL / 케라틴 섬유의 균일 한 표면 형상을 나타내었다. 이 PCL / keratiN 섬유는 또한 영률 실패 점 등 뛰어난 기계 특성을 보였다. 섬유 아세포의 세포 부착과 좋은 세포 생존 능력을 증명하여 증식 할 수 있었다. 상술 한 특성에 따라, 우리는 강하게 천연 및 합성 고분자 나노 파이버가 혼합 된 다양한 생물 의학 응용에 사용할 수있는 복합 재료의 우수한 현상을 나타낼 수 있음을 주장하고있다.

섬유 형태론 섬유의 SEM 이미지는 모든 섬유 조성물 얻어졌다. 도 3 참조. 섬유 화상 섬유가 랜덤하게 배향되어 있음을 확인한다. 기계 테스트 기계적으로 강한 섬유는 일반적으로 다양한 조직 공학 응용 프로그램이 필요합니다. 이 섬유는 특정 스트레스와 환경 조건 (9)에서 충분한 강도와 유연성을 유지해야한다. 일반적으로, 스캐 폴드 효과 차폐 스트레스를 피하기 위해 목표 조직에 가까운 계수를 갖고 생체의 도중 및 / 또는 시험 관내 세포의 성장 (10)에 충분한 강도를 유지하는 것이 요구된다. 인장 시​​험기의 영률 및 섬유의 파단 강도를 측정 하였다. 젊은 계수 (MPA) PCL의 / 100의 비율에 각질 : 00, 90:10, 80:20 및 70:30 w각각 5 ± 1.5 및 1.6 ± 4.5, 4 ~ 10 ± 2, 8 ± 1로 발견. 마찬가지로, 파괴 강도 (MPA) 100의 비율에서 PCL의 / 각질 : 00, 90:10, 80:20 및 70:30 3 ± 1.2, 2 ± 0.5, 1 ± 0.2, 1 ± 0.3로 나타났다 각각 표 4에 도시 된 바와 같이 하나. 4 표시 PCL.keratin 비율 대 영률의 변화 경향 그래픽 도표. 상기 파단 연신율을 이해 그래프 에이즈 추세선. 구조 및 형태 학적 특성 그림 5에서, PCL / 각질 복합 나노 섬유에 대한 FTIR 투과율 스펙트럼은 2,950cm -1, 1,050cm -1과 1,240cm -1 인해 각각 CH 2의 비대칭 신축 진동, CO 및 COC 그룹에에서 밴드를 보여줍니다. 1720 ㎝-그쪽에서 카보 닐 흡수 피크t는 PCL의 특징은 또한 4,11 볼 수 있습니다. 흡수에 밴드 (3,286cm-1), (3056 - 3,075cm-1), (1,600 - 1,700cm-1), (1,480 - 1,580cm-1) 및 (1,220 - 1,300cm -1) 각질을 나타내는입니다 단백질. 밴드 아미드 A, B, I, II 및 III 각각로서 표시되어있다. 합성의 증가 각질 농도와 FTIR 스펙트럼 변화에 존재하는 밴드와 봉우리. 모양이 존재 케라틴 사슬의 구조 형태를 나타내고 있지만, 피크 밴드 사이의 상호 작용에 어려움을 야기했다. 예를 들어, 1,600의 아미드 I 밴드 본 - 1,700cm -1 일반적으로 각질을 연구하는 데 사용됩니다, 그러나 밴드는 약간 PCL 피크에 의해 모양을 손상됩니다. 다행히도, 아미드 II 밴드는 PCL 사이 각질 존재, 각질 체인 형태 및 결합 상호 작용을 증명하기 위해 충분각질 작용기. 셀 섬유의 상호 작용 세포 - 섬유 상호 작용을 조사 하였다 주사 전자 현미경을 사용. 6 시간 동안 24 나노 파이버 시료의 배양 3T3 섬유 아세포의 SEM 이미지를 보여준다. 나노 샘플 세포 접착 표시하고 직경 유사한 경​​우 셀 filopodia은 나노 섬유의 배향을 따르는 경향이 있음을 보여준다. ALMAR 블루 (AB) 분석은 섬유에 3T3 세포의 생존율을 정량화 하였다. AB는 화학 레사 주린이다. 이 비 형광 염료는 살아있는 세포를 입력, 미토콘드리아 리덕는 핑크와 형광 인 resorrufin하는 레사 주린을 줄일 수 있습니다. PCL / 각질의 다른 비율의 독성 수준에서 유의 한 차이가 없었다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/53381/53381fig1.jpg" /> &lt;<html> BR /&gt; 그림 각질 추출 과정 1. 그림 (A) 추출하기 전에 인간의 머리카락 청소.; 케라틴 추출한 후 (B) 머리; (C) 각질 추출액; (D) 동결 건조 각질 분말. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53381/53381fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 2" src="/files/ftp_upload/53381/53381fig2.jpg" /> 전기 방사 섬유의 그림 2. 디지털 카메라 사진. 알루미늄 호일에 수집 된 다른 비율이 CL / 케라틴의 합성 섬유 등의 이미지. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53381/53381fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 전자 3 &quot;SRC =&quot;/ 파일 / ftp_upload / 53381 / 53381fig3.jpg &quot;/&gt; PCL / 각질 나노 섬유의 그림 3. SEM 이미지. (AC) 각각 70:30, 80:20, 90:10,의 PCL / 각질 비율이 솔루션에서 방사 된 나노 섬유의 이미지. 세트는 각 해당 SEM 이미지의 높은 배율의 이미지를 보여줍니다. SEM 이미지 (DF) 및 (GI)을 각각 1, 7 주일 열화 시험 후의 화상 (AC)에 도시 된 섬유를 나타낸다. 세트의 스케일 바는 500 nm의 (이미지 C의 스케일 바 참조)를 나타냅니다. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53381/53381fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/53381/53381fig4.jpg" /> PCL / 각질 비율에 비해 계수 그림 4. 그래프. 아버님의 대 각질 농도의 그래프g의 계수는 탄성 계수의 변화의 그래픽 추세를 보여줍니다. 이해 깨는 신장 속도 추세선 에이즈. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53381/53381fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/53381/53381fig5.jpg" /> PCL 다른 비율과 / 각질 나노 섬유의 그림 5. FTIR 스펙트럼. 스펙트럼은 각질에 PCL의 결합을 확인합니다. 1,722cm에서 측정 된 주요 피크는 -1 PCL 흡수 밴드의 표준 기본 측정에 동의하고 모든 스펙트럼에서 볼 수 있습니다. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53381/53381fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 6" src="/files/ftp_upload/53381/53381fig6.jpg" /> 3T3 섬유 아세포의 형태를 도시하는도 6의 SEM 사진에 PCL 시드 / 각질 나노 섬유 멤브레인. 이미지 A, B 및 C는 각각 90/10의 비율로 80/20 PCL / 각질을 나타내고, 70/30. 사진 (A &#39;) (B&#39;) 및 (C &#39;)가 각각 고배율 (A)의 이미지 (B) 및 (C)이다. 이미지의 어두운 영역의 상단에와 나노 지형에 걸쳐 연결된 각 섬유 아세포의 위치를 나타냅니다. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53381/53381fig6large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> 비율 </td><td> 영률 (MPA) </td><td> 파괴 강도 (MPA) </td></tr><tr><td> 100/0 </td><td> 10 ± 2 </td><td> 3 ± 1.2 </td></tr><tr><td> 90/10 </td><td> 8 ± 1 </td><td> 2 ± 0.5 </td></tr><tr><td> 80/20 </td><td> 5 ± 1.5 </td><td> 1 ± 0.2 </td></tr><tr><td> 70/30 </td><td> 4.5 ± 1.6 </td><td> 1 ± 0.3 </td></tr></tbody></table> 표 1. PCL의 기계적 성질 / 케라틴 섬유

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Synthesis of Keratin-based Nanofiber for Biomedical Engineering

전기 방사 나노 섬유는 비 기계적 무결성을 중량으로 세포의 성장과 증식을 지원하는 높은 표면적을 갖는다. 이러한 나노 섬유는 의치 넓은 응용 범위를 가진다. 여기서 우리는 전기 방사 기술을 이용하여 각질 / PCL 나노 섬유를 제조하고, 조직 공학에서의 응용 가능성을 위해 섬유를 특성화.

의 생명 공학에 대한 각질 기반의 나노 섬유의 합성

Electrospinning, due to its versatility and potential for applications in various fields, is being frequently used to fabricate nanofibers. Production of ...

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15.4K 조회수.  North Carolina A&T State University.  전기 방사 나노 섬유는 비 기계적 무결성을 중량으로 세포의 성장과 증식을 지원하는 높은 표면적을 갖는다. 이러한 나노 섬유는 의치 넓은 응용 범위를 가진다. 여기서 우리는 전기 방사 기술을 이용하여 각질 / PCL 나노 섬유를 제조하고, 조직 공학에서의 응용 가능성을 위해 섬유를 특성화. 

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Postproduction Processing of Electrospun Fibres for Tissue Engineering

Electrospinning is a commonly used and versatile method to produce scaffolds (often biodegradable) for 3D tissue engineering.1, 2, 3 Many tissues in vivo undergo biaxial distension to varying extents such as skin, bladder, pelvic floor and even the hard palate as children grow. In producing scaffolds for these purposes there is a need to develop scaffolds of appropriate biomechanical properties (whether achieved without or with cells) and which are sterile for clinical use. The focus of this paper is not how to establish basic electrospinning parameters (as there is extensive literature on electrospinning) but on how to modify spun scaffolds post production to make them fit for tissue engineering purposes - here thickness, mechanical properties and sterilisation (required for clinical use) are considered and we also describe how cells can be cultured on scaffolds and subjected to biaxial strain to condition them for specific applications.
Electrospinning tends to produce thin sheets; as the electrospinning collector becomes coated with insulating fibres it becomes a poor conductor such that fibres no longer deposit on it. Hence we describe approaches to produce thicker structures by heat or vapour annealing increasing the strength of scaffolds but not necessarily the elasticity. Sequential spinning of scaffolds of different polymers to achieve complex scaffolds is also described. Sterilisation methodologies can adversely affect strength and elasticity of scaffolds. We compare three methods for their effects on the biomechanical properties on electrospun scaffolds of poly lactic-co-glycolic acid (PLGA).
Imaging of cells on scaffolds and assessment of production of extracellular matrix (ECM) proteins by cells on scaffolds is described. Culturing cells on scaffolds in vitro can improve scaffold strength and elasticity but the tissue engineering literature shows that cells often fail to produce appropriate ECM when cultured under static conditions. There are few commercial systems available that allow one to culture cells on scaffolds under dynamic conditioning regimes - one example is the Bose Electroforce 3100 which can be used to exert a conditioning programme on cells in scaffolds held using mechanical grips within a media filled chamber.4 An approach to a budget cell culture bioreactor for controlled distortion in 2 dimensions is described. We show that cells can be induced to produce elastin under these conditions. Finally assessment of the biomechanical properties of processed scaffolds cultured with or without cells is described.

Electrospun scaffolds can be processed post production for tissue engineering applications. Here we describe methods for spinning complex scaffolds (by consecutive spinning), for making thicker scaffolds (by multi-layering using heat or vapour annealing), for achieving sterility (aseptic production or sterilisation post production) and for achieving appropriate biomechanical properties.

조직 공학을위한 Electrospun의 Fibres의 Postproduction 처리

Electrospinning is a commonly used and versatile method to produce  scaffolds (often biodegradable) for 3D tissue engineering.1, 2, 3 Many tissues in vivo ...

연구

생체공학

Expansion of Two-dimension Electrospun Nanofiber Mats into Three-dimension Scaffolds

Electrospinning has been the preferred technology in producing a synthetic, functional scaffold due to the biomimicry to extracellular matrix and the ease control of composition, structure, and diameter of fibers. However, despite these advantages, traditional electrospun nanofiber scaffolds come with limitations including disorganized nanofiber orientation, low porosity, small pore size, and mainly two-dimensional mats. As such, there is a great need for developing a new process for fabricating electrospun nanofiber scaffolds that can overcome the above limitations. Herein, a novel and simple method is outlined. A traditional 2D nanofiber mat is transformed into a 3D scaffold with desired thickness, gap distance, porosity, and nanotopographic cues to allow for cell seeding and proliferation through the depressurization of subcritical CO2 fluid. In addition to providing a scaffold for tissue regeneration to occur, this method also provides the opportunity to encapsulate bioactive molecules such as antimicrobial peptides for local drug delivery. The CO2 expanded nanofiber scaffolds hold great potential in tissue regeneration, wound healing, 3D tissue modeling, and topical drug delivery.

This article demonstrates the technique of expanding a traditional, two-dimension (2D) electrospun nanofiber mat into a three-dimension (3D) scaffold through the depressurization of subcritical CO2 fluid. These augmented scaffolds are 3D, closely mimic cellular nanotopographic cues, and preserve the functions of biologic molecules encapsulated within the nanofibers.

건설 기계 3-차원으로 2 차원 Electrospun Nanofiber 매트의 확장

Electrospinning has been the preferred technology in producing a synthetic, functional scaffold due to the biomimicry to extracellular matrix and the ease ...

유전학

ECM Protein Nanofibers and Nanostructures Engineered Using Surface-initiated Assembly

The extracellular matrix (ECM) in tissues is synthesized and assembled by cells to form a 3D fibrillar, protein network with tightly regulated fiber diameter, composition and organization. In addition to providing structural support, the physical and chemical properties of the ECM play an important role in multiple cellular processes including adhesion, differentiation, and apoptosis. In vivo, the ECM is assembled by exposing cryptic self-assembly (fibrillogenesis) sites within proteins. This process varies for different proteins, but fibronectin (FN) fibrillogenesis is well-characterized and serves as a model system for cell-mediated ECM assembly. Specifically, cells use integrin receptors on the cell membrane to bind FN dimers and actomyosin-generated contractile forces to unfold and expose binding sites for assembly into insoluble fibers. This receptor-mediated process enables cells to assemble and organize the ECM from the cellular to tissue scales. Here, we present a method termed surface-initiated assembly (SIA), which recapitulates cell-mediated matrix assembly using protein-surface interactions to unfold ECM proteins and assemble them into insoluble fibers. First, ECM proteins are adsorbed onto a hydrophobic polydimethylsiloxane (PDMS) surface where they partially denature (unfold) and expose cryptic binding domains. The unfolded proteins are then transferred in well-defined micro- and nanopatterns through microcontact printing onto a thermally responsive poly(N-isopropylacrylamide) (PIPAAm) surface. Thermally-triggered dissolution of the PIPAAm leads to final assembly and release of insoluble ECM protein nanofibers and nanostructures with well-defined geometries. Complex architectures are possible by engineering defined patterns on the PDMS stamps used for microcontact printing. In addition to FN, the SIA process can be used with laminin, fibrinogen and collagens type I and IV to create multi-component ECM nanostructures. Thus, SIA can be used to engineer ECM protein-based materials with precise control over the protein composition, fiber geometry and scaffold architecture in order to recapitulate the structure and composition of the ECM in vivo.

A method to obtain nanofibers and complex nanostructures from single or multiple extracellular matrix proteins is described. This method uses protein-surface interactions to create free-standing protein-based materials with tunable composition and architecture for use in a variety of tissue engineering and biotechnology applications.

ECM 단백질 나노 섬유 및 나노 구조 엔지니어링 사용하여 표면 시작 회의

The extracellular matrix (ECM) in tissues is synthesized and assembled by cells to form a 3D fibrillar, protein network with tightly regulated fiber ...

Electrospun Fibrous Scaffolds of Poly(glycerol-dodecanedioate) for Engineering Neural Tissues From Mouse Embryonic Stem Cells

For tissue engineering applications, the preparation of biodegradable and biocompatible scaffolds is the most desirable but challenging task. &#160;Among the various fabrication methods, electrospinning is the most attractive one due to its simplicity and versatility. Additionally, electrospun nanofibers mimic the size of natural extracellular matrix ensuring additional support for cell survival and growth. This study showed the viability of the fabrication of long fibers spanning a larger deposit area for a novel biodegradable and biocompatible polymer named&#160;poly(glycerol-dodecanoate) (PGD)1 by using a newly designed collector for electrospinning. PGD exhibits unique elastic properties with similar mechanical properties to nerve tissues, thus it is suitable for neural tissue engineering applications. The synthesis and fabrication set-up for making fibrous scaffolding materials was simple, highly reproducible, and inexpensive. In biocompatibility testing, cells derived from mouse embryonic stem cells could adhere to and grow on the electrospun PGD fibers. In summary, this protocol provided a versatile fabrication method for making PGD electrospun fibers to support the growth of mouse embryonic stem cell derived neural lineage cells.

Electrospun Fibrous Scaffolds of Polyglycerol-dodecanedioate for Engineering Neural Tissues From Mouse Embryonic Stem Cells

Synthesis and fabrication of electrospun long fibers spanning a larger deposit area via a newly designed collector from a novel biodegradable polymer named poly(glycerol-dodecanoate) (PGD) was reported. The fibers were able to support the growth of cells derived from mouse pluripotent stem cells.

마우스 배아 줄기 세포에서 신경 조직 공학을위한 폴리의 전기 방사 섬유 발판 (글리세롤 dodecanedioate)

For tissue engineering applications, the preparation of biodegradable and biocompatible scaffolds is the most desirable but challenging task. &#160;Among ...

Electrospun Nanofiber Scaffolds with Gradations in Fiber Organization

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible applications in controlling cell morphology/orientation. Nanofiber organization is controlled with a new fabrication apparatus that enables the gradual decrease of fiber organization in a scaffold. Changing the alignment of fibers is achieved through decreasing deposition time of random electrospun fibers on a uniaxially aligned fiber mat. By covering the collector with a moving barrier/mask, along the same axis as fiber deposition, the organizational structure is easily controlled. For tissue engineering purposes, adipose-derived stem cells can be seeded to these scaffolds. Stem cells undergo morphological changes as a result of their position on the varied organizational structure, and can potentially differentiate into different cell types depending on their locations. Additionally, the graded organization of fibers enhances the biomimicry of nanofiber scaffolds so they more closely resemble the natural orientations of collagen nanofibers at tendon-to-bone insertion site compared to traditional scaffolds. Through nanoencapsulation, the gradated fibers also afford the possibility to construct chemical gradients in fiber scaffolds, and thereby further strengthen their potential applications in fast screening of cell-materials interaction and interfacial tissue regeneration. This technique enables the production of continuous gradient scaffolds, but it also can potentially produce fibers in discrete steps by controlling the movement of the moving barrier/mask in a discrete fashion.

Here, we present a protocol to fabricate electrospun nanofiber scaffolds with gradated organization of fibers and explore their applications in regulating cell morphology/orientation. Gradients with regard to physical and chemical properties of the nanofiber scaffolds offer a wide variety of applications in the biomedical field.

섬유 조직의 그라데이션으로 전기 방사 나노 섬유 공사장 공중 발판

The goal of this protocol is to report a simple method for generating nanofiber scaffolds with gradations in fiber organization and test their possible ...

Fabricating Superhydrophobic Polymeric Materials for Biomedical Applications

Superhydrophobic materials, with surfaces possessing permanent or metastable non-wetted states, are of interest for a number of biomedical and industrial applications. Here we describe how electrospinning or electrospraying a polymer mixture containing a biodegradable, biocompatible aliphatic polyester (e.g., polycaprolactone and poly(lactide-co-glycolide)), as the major component, doped with a hydrophobic copolymer composed of the polyester and a stearate-modified poly(glycerol carbonate) affords a superhydrophobic biomaterial. The fabrication techniques of electrospinning or electrospraying provide the enhanced surface roughness and porosity on and within the fibers or the particles, respectively. The use of a low surface energy copolymer dopant that blends with the polyester and can be stably electrospun or electrosprayed affords these superhydrophobic materials. Important parameters such as fiber size, copolymer dopant composition and/or concentration, and their effects on wettability are discussed. This combination of polymer chemistry and process engineering affords a versatile approach to develop application-specific materials using scalable techniques, which are likely generalizable to a wider class of polymers for a variety of applications.

Two- and three-dimensional superhydrophobic polymeric materials are prepared by electrospinning or electrospraying biodegradable polymers blended with a lower surface energy polymer of similar composition.

바이오 메디컬 응용 프로그램에 대한 초 소수성 고분자 재료를 제조

Superhydrophobic materials, with surfaces possessing permanent or metastable non-wetted states, are of interest for a number of biomedical and industrial ...

Fabrication and Characterization of Griffithsin-modified Fiber Scaffolds for Prevention of Sexually Transmitted Infections

Electrospun fibers (EFs) have been widely used in a variety of therapeutic applications; however, they have only recently been applied as a technology to prevent and treat sexually transmitted infections (STIs). Moreover, many EF technologies focus on encapsulating the active agent, relative to utilizing the surface to impart biofunctionality. Here we describe a method to fabricate and surface-modify poly(lactic-co-glycolic) acid (PLGA) electrospun fibers, with the potent antiviral lectin Griffithsin (GRFT). PLGA is an FDA-approved polymer that has been widely used in drug delivery due to its outstanding chemical and biocompatible properties. GRFT is a natural, potent, and safe lectin that possesses broad activity against numerous viruses including human immunodeficiency virus type 1 (HIV-1). When combined, GRFT-modified fibers have demonstrated potent inactivation of HIV-1 in vitro. This manuscript describes the methods to fabricate and characterize GRFT-modified EFs. First, PLGA is electrospun to create a fiber scaffold. Fibers are subsequently surface-modified with GRFT using 1-Ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide (EDC) and N-hydroxysuccinimide (NHS)chemistry. Scanning electron microscopy (SEM) was used to assess the size and morphology of surface-modified formulations. Additionally, a gp120 or hemagglutinin (HA)-based ELISA may be used to quantify the amount of GRFT conjugated to, as well as GRFT desorption from the fiber surface. This protocol can be more widely applied to fabricate fibers that are surface-modified with a variety of different proteins.

This manuscript describes the procedure to fabricate and characterize Griffithsin-modified poly(lactic-co-glycolic acid) electrospun fibers that demonstrate potent adhesive and antiviral activity against human immunodeficiency virus type 1 infection in vitro. Methods used to synthesize, surface-modify, and characterize the resulting morphology, conjugation, and desorption of Griffithsin from surface-modified fibers are described.

감염 성병 제조 및 방지를 위한 Griffithsin 수정 섬유 장비의 특성

Electrospun fibers (EFs) have been widely used in a variety of therapeutic applications; however, they have only recently been applied as a technology to ...

Procedure for Fabricating Biofunctional Nanofibers

Electrospinning is an effective processing method for preparing nanofibers decorated with functional groups. Nanofibers decorated with functional groups may be utilized to study material-biomarker interactions i.e. act as biosensors with potential as single molecule detectors. We have developed an effective approach for preparing functional polymers where the functionality has the capacity of specifically binding with a model protein. In our model system, the functional group is 2,4-dinitrophenyl (DNP) and the protein is anti-DNP IgE (Immunoglobulin E). The functional polymer, &alpha;,&omega;-bi[2,4-dinitrophenyl caproic][poly(ethylene oxide)-b-poly(2-methoxystyrene)-b-poly(ethylene oxide)] (CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP), is prepared by anionic living polymerization. The difunctional initiator utilized in the polymerization was prepared by electron transfer reaction of &alpha;-methylstyrene and potassium (mirror) metal. The 2-methoxystyrene monomer was added first to the initiator, followed by the addition of the second monomer, ethylene oxide, and finally the living polymer was terminated by methanol. The &alpha;,&omega;-dihydroxyl polymer [HO-PEO-P2MS-PEO-OH] was reacted with N-2,4-DNP-&isin;-amino caproic acid, by DCC coupling, resulting in the formation of &alpha;,&omega;-bi[2,4-dinitrophenylcaproic][poly(ethyleneoxide)-b-poly(2-methoxystyrene)-b-poly(ethylene oxide)] (CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP). The polymers were characterized by FT-IR, 1H NMR and Gel Permeation Chromatography (GPC). The molecular weight distributions of the polymers were narrow (1.1-1.2) and polymers with molecular weights greater than 50,000 was used in this study. The polymers were yellow powders and soluble in tetrahydrofuran. A water soluble CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP/ DMEG (dimethoxyethylene glycol) complex binds and achieves steady state binding with solution IgE within a few seconds. Higher molecular weight (water insoluble i.e. around 50,000) CDNP-PEO-P2MS-PEO-CDNP polymers, containing 1% single wall carbon nanotubes (SWCNT) were processed into electroactive nanofibers (100 nm to 500 nm in diameter) on silicon substrate. Fluorescence spectroscopy shows that anti-DNP IgE interacts with the nanofibers by binding with the DNP functional groups decorating the fibers. These observations suggest that appropriately functionalized nanofibers hold promise for developing biomarker detection device.

An efficient approach for preparing nanofibers decorated with functional groups capable of specifically interacting with proteins is described. The approach first requires the preparation of a polymer functionalized with the appropriate functional group. The functional polymer is fabricated into nanofibers by electrospinning. The effectiveness of the binding of the nanofibers with a protein is studied by confocal microscopy.

Biofunctional Nanofibers를 제조 절차

Electrospinning is an effective processing method for preparing nanofibers decorated with functional groups. Nanofibers decorated with functional groups ...

생물학

Fabricating Engineered Nanofibrillar Collagen with Directed Patterning

Production of Nanofibrillar Patterned Collagen for Tissue Engineering

Regenerative biomaterials are designed to facilitate cell-material interactions to guide the repair of damaged tissues and organs. These materials are designed to emulate the biophysical properties of native tissue, providing cellular phenotypic and morphological guidance that contributes to the restoration of the regenerative tissue niche. Collagen, a prevalent extracellular matrix protein, is a common component of these regenerative biomaterials due to its biocompatibility and other favorable properties. The current study describes a novel and straightforward method for the fabrication of engineered nanofibrillar collagen with directed fibril patterning. Through the manipulation of shear stress, temperature, and pH, collagen fibrillogenesis and alignment are precisely controlled without requiring specialized equipment. This approach allows for the creation of nanofibrillar collagen biomaterials that mimic the native structure of tissues exhibiting either anisotropic or isotropic characteristics. The flexibility in collagen nanofibril patterning not only facilitates the study of nanoscale patterning on cell behavior but also offers diverse possibilities for patterned tissue engineering applications.

The following protocol presents a shear-based extrusion method for the fabrication of collagen hydrogels with nanoscale patterned fibrils, which can be applied to a broad range of tissue engineering applications.

Regenerative biomaterials are designed to facilitate cell-material interactions to guide the repair of damaged tissues and organs. These materials are ...

<meta charset="utf8"></head><body>세포 배양 삽입물에 대한 FN-Silk Membranes의 형성 및 부착

Nanofibrillar Basement Membrane Mimic Made of Recombinant Functionalized Spider Silk in Custom-Made Tissue Culture Inserts

Replicating tissue barriers&#160;is critical for generating relevant in vitro models for evaluating novel therapeutics. Today, this is commonly done using tissue culture inserts with a plastic membrane, which generates an apical and a basal side. Besides providing support for the cells, these membranes come far from emulating their native counterpart, the basement membrane, which is a nanofibrillar, protein-based matrix. In this work, we show a simple way to considerably improve the biological relevance of the tissue culture inserts by replacing the plastic membrane with one made from a pure recombinant functionalized spider silk protein. The silk membrane forms through self-assembly and will spontaneously adhere to a membrane-free tissue culture insert, where it can provide support for cells. Custom-designed tissue culture inserts can be printed using a standard 3D printer, following the instructions provided in the protocol, or commercial ones can be purchased and used instead. This protocol shows how the culture system with silk membranes in inserts is set up and, subsequently, how the same cell culturing techniques that are used with traditional, commercially available inserts can be implemented.

<meta charset="utf8"></head><body>저자 스포트라이트: Enhancing In Vitro Cell Culture Models with Recombinant Functionalized Spider Silk Membranes

Tissue culture inserts with plastic membranes are the golden standard in cell culture labs as permeable supports to establish cell layers and models of barrier tissues. Herein, we present a simple method to replace the plastic membrane with a more biologically relevant membrane made from a recombinant functionalized spider silk protein.

맞춤형 조직 배양 인서트에 재조합 기능성 거미줄로 만든 Nanofibrillar 기저막 모방

Replicating tissue barriers&#160;is critical for generating relevant in vitro models for evaluating novel therapeutics. Today, this is commonly done using ...