Name: ex situ normothermic machine perfusion of donor livers
Uploaded: 2015-05-26T15:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 13 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers at JoVE.com

이 연구 작업은 재정적으로 모든 네덜란드, Innovatief Actieprogramma 흐로 닝언 (IAG-3), 월 Kornelis 드 콕에는 Stichting과 Tekke Huizingafonds에서 제공하는 보조금에 의해 지원되었다. 우리는 잠재적 인 폐기 간을 확인하고 동의서를 얻기위한 모든 네덜란드 이​​식 코디네이터에 감사하고 있습니다.

이 프로토콜은 대학 의료 센터 흐로 닝언의 의료 윤​​리위원회 (Medisch Ethische Toetsingscommissie), 네덜란드에 의해 승인되었습니다. 재관류 유체의 1. 준비 주 :이 프로토콜에 따라 정상 체온 기계 관류 제조 관류 액의 총 부피가 2233 mL로하고 관류 유체의 타겟 삼투압은 mOsmol / L (302)이다. <ol><li> 표 1에 기재된 관류 유체의 성분으로부터, 인간 충전 적혈구, 혈장 분리 냉동 인간 알부민을 유지한다. 멸균 방식으로 구성 요소의 나머지 부분을 혼합하고 수술실 (OR)에 교통 멸균 가방에서 솔루션을 저장합니다. 문화 실에서 멸균 환경 (이상적으로 좋은 제조 연습 시설) 또는 층류 캐비닛에서이 작업을 수행합니다. </li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 구성 요소들 </td><td fo:width="2in" style="width:80px"> 양 </td></tr><tr><td> 포장 적혈구 (적혈구 용적률 60 %) </td><td style="text-align:right"> 840 ml의 </td></tr><tr><td> 신선한 냉동 혈장 </td><td style="text-align:right"> 930 ml의 </td></tr><tr><td> 인간 알부민 200g / ℓ (Albuman, Sanquin) </td><td style="text-align:right"> 100 ㎖ </td></tr><tr><td> 수정 된 정맥 영양 (Clinimix N17G35E, 박스터 인터내셔널) </td><td style="text-align:right"> 7.35 ㎖의 </td></tr><tr><td> 주입을위한 종합 비타민 (Cernevit, 박스터 인터내셔널) </td><td style="text-align:right"> 7 μL </td></tr><tr><td> 주입을위한 집중 미량 원소 (Nutritrace, B. 브라운 Melsungen AG) </td><td style="text-align:right"> 7.35 ㎖의 </td></tr><tr><td> IV 관리를위한 Metronidazol (5 ㎎ / ㎖) (Flagyl, 사노피 - 아벤티스) </td><td style="text-align:right">40 ml의 </td></tr><tr><td> IV 관리를위한 세파 졸린 1,000 mg을 플라스크 5 ㎖의 분말 (Servazolin, 산도 즈) </td><td style="text-align:right"> 2 ml의 </td></tr><tr><td> 인슐린을 빨리 행동 (100 IU / ㎖) (Actrapid®, 노 보노 디스크) </td><td style="text-align:right"> 20 ㎖ </td></tr><tr><td> 칼슘 glubionate, 정맥 내 용액 10 %, 137.5 ㎎ / ㎖ (산도스) </td><td style="text-align:right"> 40 ml의 </td></tr><tr><td> 무균 H 2 O </td><td style="text-align:right"> 51.3 ml의 </td></tr><tr><td> 0.9 % 염화나트륨 용액 </td><td style="text-align:right"> 160 ml의 </td></tr><tr><td> 중탄산 나트륨 8.4 % 용액 </td><td style="text-align:right"> 31 ml의 </td></tr><tr><td> IV 관리를위한 헤파린 5,000 IE는 / ㎖ </td><td style="text-align:right"> 4 ml의 </td></tr><tr><td> 합계 </td><td style="text-align:right"> 2233 ml의 </td></tr></tbody></table> 표 1 : Componen16 유체 관류의 TS. <ol start="2"><li> 전송 인간 충전 적혈구 (840 ㎖), 냉동 플라즈마 (930 ㎖), 인간 알부민 200g / ℓ (100 mL) 및 OR 단계 1.1에서 제조 한 용액을 관류 장치로 투여 될 수있다. </li></ol> 관류 장치 2. 프라이밍 <ol><li> 인간 충전 적혈구, 신선 동결 혈장, 인간 알부민 및 산화 기의 상단에 커넥터를 통해 컴퓨터에 단계 1.1에서 제조 한 용액과 튜빙의 모든 기포를 제거 포함한 관류 액의 구성 요소를 추가한다. </li><li> 정맥 펌프를 켜고 화면에 제조업체의 지침을 따르십시오. 그리고 동맥 펌프의 전원을 켜고 화면에 표시되는 제조업체의 지침을 따르십시오. </li><li> 화면의 지시에 따라 대기압에 대한 압력 미터줍니다. 이것은 압력 perfus 동안 측정을 보장이온은 문맥과 간동맥의 레벨에서 실제 압력이다. </li><li> 4 L / min의 유량으로 산소를 사용 carbogen (95 % O 2 + 5 % CO 2)를 시작한다. 공기 흐름은 두 개의 산소 공급 나뉘어한다 (형산 당 2 L / 분)이 관류 액의 약 60 kPa로의 PO 2 (또는 450 mmHg로)을 초래할 것이다. 이상 관류의 경우, 산소와 이산화탄소의 분리 된 소스를 사용하는 것이 바람직하다. 이것은 pH 및 관류 액의 PCO 2를 조정하는데 사용될 수있다 O 2 / CO 비가 2 작은 조정을 허용한다. </li><li> 장치가 초기화 된 후 혈액 기체 측정을​​ 위해 15-20 분 관류 시료를 취하여 따라서 pH 및 전해질을 모니터링한다. 주 :이 유체 배관 주변에 있고, 시스템에서의 관류 액을 나타내지 않기 때문에, 샘플을 채취하기 전에 관류 액의 약 3 ㎖를 폐기해야. 8.4 % 중탄산 나트륨의 추가생리적 산도 (7.35-7.45)을 목표로, 버퍼링 용량 olution. 예를 들어, 8.4 % 중탄산 나트륨 용액의 25-35 mL로 추가하고 정기적으로 혈액 기체 측정을​​위한 샘플을 채취하여 관류 액의 pH는 중탄산염 농도를 확인한다. </li></ol> 3. 조달 및 기증자의 간을의 준비 참고 : 현장 냉각에서의 표준 기술을 사용하여 기관을 조달 차가운 보존 유체 (0-4 ° C) (19) 세척하십시오. 동맥 삽관을 용이하게하기 위해, 간동맥 (도 2A)에 부착 supratruncal 대동맥의 세그먼트를 떠난다. <ol><li> (즉, 위스콘신 대학 솔루션의) 보존 유체 담관을 플래시합니다. 수술 용 봉합사와 담낭 관을 결찰. </li><li> 포장 및 표준 무균 공여 기관 가방에 장기를 저장하고 MP 센터에 대한 후속 교통 얼음 조각 상자. </li><li> 출발즉시 수술실에서 도너 간 도착시 다시 나타난 절차. <ol><li> 미생물 학적 테스트를 위해 보존 액의 10 ML의 샘플을 가져 가라. </li><li> 간 노출 된 지역뿐만 아니라 수술 가위로 대정맥의 상단 커프에서 남아있는 심장 근육에 횡격막 첨부 파일을 제거합니다. </li><li> 수술 봉합 또는 hemoclips을 사용 해부 가위 및 결찰 측 가지를 사용하여 정맥 동맥 및 포털을 해부하다. </li><li> 비 흡수성 모노 필라멘트 봉합사 (예, 3-0 prolene의)를 사용하여 대동맥 supratruncal 세그먼트의 말단부습니다. supratruncal 대동맥의 기단부에 동맥 캐뉼라를 삽입하고 봉합 (그림 2A)로 고정. 관류 장치 제조업체가 제공하는 일회용 패키지로 제공되는 캐 뉼러를 사용합니다. </li><li> 포털 정맥에 정맥 캐뉼라를 삽입하고 봉합 고정합니다. dispos에서 제공되는 캐 뉼러를 사용하여수 패키지. 간 정맥은 uncannulated 남아있다. </li><li> 보존 용액과 담관을 플래시합니다. 담관에 실리콘 카테터를 삽입하고 봉합 고정합니다. 참고 : 담관에 너무 깊이 카테터를 삽입하지 마십시오이 담도 상피 부상의 원인이 될 수 있습니다. </li><li> 다음 포털 정맥 캐뉼라를 통해 0.9 % 염화나트륨 용액으로 간을 플러시 : <ol><li> 그래프트가 보존 용액 위스콘신 용액 대학에 보존되어있는 경우, 따뜻한 500 ㎖ (37 ℃) 0.9 % 염화나트륨 이어 차가운 (0-4 °의 C) 0.9 % NaCl 용액 2000㎖를 가진 간 플러시 해결책. </li><li> 그래프트 보존 용액 히스티딘 트립토판 - 케 토글 루타 레이트 용액에 보존되어있는 경우, 따뜻한 500 ㎖ (37 ℃) 0.9 이어 차가운 (0-4 °의 C) 0.9 % NaCl 용액의 1,000 mL를 간 플러시 % NaCl 용액. 따뜻한 플러시의 목적의 온도의 현저한 감소를 방지하기위한 것이다관류 액. </li><li> 관류 장치 간을 연결하기 전에 즉시 따뜻한 플러시를 수행한다. 참고 : 항상 따뜻한 플러시 1-2 분 미만의 NMP의 시작 사이의 기간을 유지합니다. </li></ol></li></ol></li></ol><table border="0" cellpadding="0" cellspacing="0"><tbody><tr><td> 기증자의 특성 (N 12 =) </td><td> 수 (%) 또는 중앙값 (IQR) </td></tr><tr><td> 나이 (10 세) </td><td> 61 (50 ~ 64) </td></tr><tr><td> 성별 (남성) </td><td> 8 (67 %) </td></tr><tr><td> 기증자의 종류 DCD, 마스 트리 히트 유형 III DBD </td><td> 10 (83 %) 2 (17 %) </td></tr><tr><td> 체질량 지수 (BMI) </td><td> 27 (25 ~ 35) </td></tr><tr><td> 거부 이유 DCD + 연령은&gt; 육십년 DCD + 높은 BMI DCD는 + 여러 가지 이유 * 심한 지방간 </td><td> 5 (41 %) 3 (25 %) 2 (17 %) <br<html> /&gt; 2 (17 %) </td></tr><tr><td> 보존 솔루션 UW 솔루션 HTK 솔루션 </td><td> 6 (50 %) 6 (50 %) </td></tr><tr><td> DCD에서 기증자 따뜻한 허혈 시간 (분) </td><td> 14 (17-20) </td></tr><tr><td> 냉 허혈 시간 (분) </td><td> 389 (458-585) </td></tr><tr><td> 기증자 위험 지수 (DRI) </td><td> 2.35 (2.01-2.54) </td></tr></tbody></table> 표 2 : 기부자 특성 * 공여 한 이식에 대한 정맥 약물 남용의 역사와 장기 기증자 SO 2 &lt;다른 이식에 대한 생활 지원의 철수 후 30 %.. 약어 : DCD, 순환 사후 기부; DBD, 뇌사 후 기부; 위스콘신 UW 대학; HTK, 히스티딘 트립토판 - 케 토글 루타 레이트 <html> g2.jpg &quot;/&gt; 그림 2 : 다시 테이블에 준비 된 사람의 기증자 이식의 (A) 사진 (B - D)는 이후 normothermically 관류했다. (A)은 동맥 캐뉼라 surpratruncal 대동맥에 삽입하고 정맥 캐뉼라는 문맥에 삽입된다. 담관은 담즙 실리콘 카테터 삽관된다. (B) 간은 그 전방면을 아래로 향하게하고 캐 뉼러가 관류 장치의 호스에 연결되어 함께 장기 챔버 내에 위치된다. (C) 30 분 정상 체온 기계 관류 시작 후. (D) 정상 체온 기계 관류 시작 후 6 시간. 동작 동안 장기 챔버 간 (안 이들 사진에 도시) 용 멸균 습한 환경을 유지하기 위해 투명한 커버로 덮여있다.&quot;&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오. 4. 정상 체온 기계 관류 <ol><li> 앞쪽면이 아래로 향하게하여 장기 실에 간을 놓습니다. 즉시 관류 장치의 포털 유입 관 및 장치의 동맥 유입 관 동맥 캐뉼라로 간문맥 정맥을 연결하여 프라임 관류 장치 간을 연결한다. </li><li> 화면에 제조업체의 지침에 따라 모두 포털 및 동맥 측에 관류를 시작합니다. 70 mmHg로에서 평균 동맥압 11 mmHg로에서 평균 포털 정맥 압력을 설정합니다. </li><li> 및 생화학 적 파라미터 (포도당, 칼슘, 젖산, 칼륨 및 나트륨) 종래의 혈액 가스 분석을 이용하여 - 혈액 가스 파라미터들의 즉각적인 분석 관류 유체 샘플을 (pH를 PO 2, PCO 2, SO 2, HCO 2)를 매 30 분 걸릴 . 관류의 약 3 ㎖를 폐기해야이 유체는 튜브 주변에 있고, 시스템에서의 관류 액을 나타내지 않기 때문에, 샘플을 채취하기 전에 유체. <ol><li> 이들 샘플은 관류 장치의 일회용 튜브 세트의 일부 샘플링 커넥터에서 1 mL의 주사기를 이용하여 관류 액을 흡인 취한다. 각 샘플에 대한 새 주사기를 사용하여 즉시 관류 액의 흡인에 주사기에서 공기 방울을 제거합니다. 그런 다음 혈액 가스 분석기에 주사기를 삽입하고 분석기의 매뉴얼에서 제공되는 제조업체의 지침을 따르십시오. </li></ol></li><li> , 관류 액에서 플라즈마를 수집 알칼리 포스 파타 아제 (AlkP), 감마 - 글루 타밀 트랜스퍼 (감마 GT), 알라닌 아미노 전이 효소 (ALT), 요소 및 총 빌리루빈의 측정을 위해 -80 ℃에서 동결 및 저장. 1,500 XG에 관류 액의 원심 분리의 5 분, 4 ℃ 후 플라즈마를 수집합니다. </li></ol>

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	<li>Plaats, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+machine+preservation+in+liver+transplantation+revisited:+Concepts+and+criteria+in+the+new+millennium.">Hypothermic machine preservation in liver transplantation revisited: Concepts and criteria in the new millennium.</a> Ann. Biomed. Eng. 32 (4), 623-631 (2004).</li><li>op den Dries, S., Sutton, M. E., Lisman, Y., Porte, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protection+of+bile+ducts+in+liver+transplantation:+Looking+beyond+ischemia.">Protection of bile ducts in liver transplantation: Looking beyond ischemia.</a> Transplantation. 92 (4), 373-379 (2011).</li><li>Seehofer, D., Eurich, D., Veltzke-Schlieker, W., Neuhaus, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biliary+complications+after+liver+transplantation:+Old+problems+and+new+challenges.">Biliary complications after liver transplantation: Old problems and new challenges.</a> Am. J. Transplant. 13 (2), 253-265 (2013).</li><li>Buis, C. I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nonanastomotic+biliary+strictures+after+liver+transplantation,+part+1:+Radiological+features+and+risk+factors+for+early+vs.+late+presentation.">Nonanastomotic biliary strictures after liver transplantation, part 1: Radiological features and risk factors for early vs. late presentation.</a> Liver. Transpl. 13 (5), 708-718 (2007).</li><li>Karimian, N., op den Dries, S., Porte, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+origin+of+biliary+strictures+after+liver+transplantation:+Is+it+the+amount+of+epithelial+injury+or+insufficient+regeneration+that+counts.">The origin of biliary strictures after liver transplantation: Is it the amount of epithelial injury or insufficient regeneration that counts.</a> J. Hepatol. 58 (6), 1065-1067 (2013).</li><li>Gastaca, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biliary+complications+after+orthotopic+liver+transplantation:+A+review+of+incidence+and+risk+factors.">Biliary complications after orthotopic liver transplantation: A review of incidence and risk factors.</a> Transplant. Proc. 44 (6), 1545-1549 (2012).</li><li>Sanchez-Urdazpal, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ischemic-type+biliary+complications+after+orthotopic+liver+transplantation.">Ischemic-type biliary complications after orthotopic liver transplantation.</a> Hepatology. 16 (1), 49-53 (1992).</li><li>Dubbeld, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Similar+liver+transplantation+survival+with+selected+cardiac+death+donors+and+brain+death+donors.">Similar liver transplantation survival with selected cardiac death donors and brain death donors.</a> Br. J. Surg. 97 (5), 744-753 (2010).</li><li>Guarrera, J. V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+machine+preservation+in+human+liver+transplantation:+The+first+clinical+series.">Hypothermic machine preservation in human liver transplantation: The first clinical series.</a> Am. J. Transplant. 10 (2), 372-381 (2010).</li><li>Henry, S. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+machine+preservation+reduces+molecular+markers+of+ischemia/reperfusion+injury+in+human+liver+transplantation.">Hypothermic machine preservation reduces molecular markers of ischemia/reperfusion injury in human liver transplantation.</a> Am. J. Transplant. 12 (9), 2477-2486 (2012).</li><li>Schlegel, A., Rougemont, O., Graf, R., Clavien, P. A., Dutkowski, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Protective+mechanisms+of+end-ischemic+cold+machine+perfusion+in+DCD+liver+grafts.">Protective mechanisms of end-ischemic cold machine perfusion in DCD liver grafts.</a> J. Hepatol. 58 (2), 278-286 (2013).</li><li>op den Dries, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Hypothermic+oxygenated+machine+perfusion+prevents+arteriolonecrosis+of+the+peribiliary+plexus+in+pig+livers+donated+after+circulatory+death.">Hypothermic oxygenated machine perfusion prevents arteriolonecrosis of the peribiliary plexus in pig livers donated after circulatory death.</a> PLoS. One. 9 (2), e88521 (2014).</li><li>Tolboom, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subnormothermic+machine+perfusion+at+both+20+degrees+C+and+30+degrees+C+recovers+ischemic+rat+livers+for+successful+transplantation.">Subnormothermic machine perfusion at both 20 degrees C and 30 degrees C recovers ischemic rat livers for successful transplantation.</a> J. Surg. Res. 175 (1), 149-156 (2012).</li><li>Gringeri, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subnormothermic+machine+perfusion+for+non-heart-beating+donor+liver+grafts+preservation+in+a+swine+model:+A+new+strategy+to+increase+the+donor+pool?+Transplant.">Subnormothermic machine perfusion for non-heart-beating donor liver grafts preservation in a swine model: A new strategy to increase the donor pool? Transplant.</a> Proc. 44 (7), 2026-2028 (2012).</li><li>Bruinsma, B. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Subnormothermic+machine+perfusion+for+ex+vivo+preservation+and+recovery+of+the+human+liver+for+transplantation.">Subnormothermic machine perfusion for ex vivo preservation and recovery of the human liver for transplantation.</a> Am. J. Transplant. 14 (6), 1400-1409 (2014).</li><li>op den Dries, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ex+vivo+normothermic+machine+perfusion+and+viability+testing+of+discarded+human+donor+livers.">Ex vivo normothermic machine perfusion and viability testing of discarded human donor livers.</a> Am. J. Transplant. 13 (5), 1327-1335 (2013).</li><li>Sutton, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Criteria+for+viability+assessment+of+discarded+human+donor+livers+during+ex+vivo+normothermic+machine+perfusion.">Criteria for viability assessment of discarded human donor livers during ex vivo normothermic machine perfusion.</a> PLoS. One. 9 (11), (2014).</li><li>Minor, T., Efferz, P., Fox, M., Wohlschlaeger, J., Luer, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Controlled+oxygenated+rewarming+of+cold+stored+liver+grafts+by+thermally+graduated+machine+perfusion+prior+to+reperfusion.">Controlled oxygenated rewarming of cold stored liver grafts by thermally graduated machine perfusion prior to reperfusion.</a> Am. J. Transplant. 13 (6), 1450-1460 (2013).</li><li>Makowka, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Surgical+technique+of+orthotopic+liver+transplantation.">Surgical technique of orthotopic liver transplantation.</a> Gastroenterol. Clin. North. Am. 17 (1), 33-51 (1988).</li><li>Hansen, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Histological+examination+and+evaluation+of+donor+bile+ducts+received+during+orthotopic+liver+transplantation--a+morphological+clue+to+ischemic-type+biliary+lesion?.">Histological examination and evaluation of donor bile ducts received during orthotopic liver transplantation--a morphological clue to ischemic-type biliary lesion?.</a> Virchows Arch. 461 (1), 41-48 (2012).</li><li>Monbaliu, D., Brassil, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Machine+perfusion+of+the+liver:+Past,+present+and+future.">Machine perfusion of the liver: Past, present and future.</a> Curr. Opin. Organ. Transplant. 15 (2), 160-166 (2010).</li><li>Oldani, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pre-retrieval+reperfusion+decreases+cancer+recurrence+after+rat+ischemic+liver+graft+transplantation.">Pre-retrieval reperfusion decreases cancer recurrence after rat ischemic liver graft transplantation.</a> J. Hepatol. 61 (2), 278-285 (2014).</li><li>Tromans, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temperature+and+pressure+dependent+solubility+of+oxygen+in+water:+A+thermodynamic+analysis.">Temperature and pressure dependent solubility of oxygen in water: A thermodynamic analysis.</a> Hydrometallurgy. 48 (3), 327-342 (1998).</li></ol>

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이 동영상은 간동맥과 문맥을 통해 압력 제어 듀얼 관류을 가능하게하는 장치를 사용하여 인간의 기증자 간의 정상 체온 기계 관류에 대한 단계 프로토콜에 의해 단계를 제공합니다. 이 프로토콜에 따라 동안 관류 시스템의 기술적 장애는 발생하지 않았고, 모든 이식 잘 관류 잘 산소화이었다. 전 현장 관류 간 안정적인 혈역학을했고, 담즙 16, 17의 생산에 의해 정의 된대로, 대사 활성했다. 이것은 인간의 기증자 간의 기계 관류에 대한 잘 확립 된 프로토콜입니다. 이 기술은 SCS (21)의 종래의 방법에 비해 여러 가지 잠재적 인 이점이있다. 기계 관류 장기 보존의 의도 된 엔드 포인트에 따라 다른 온도에서 기증자 간 이식을 보존 할 수있는 기회를 제공한다. 저체온 산소 기계 관류 더 나은 관류 및 microvasculture의 세척 아웃 그가 수도를 제공합니다LP는 아데노신 삼인산 (ATP) 재생을 자극하여 세포 내 에너지의 내용을 복원합니다. 그러나, 이식 생존의 전체 평가는 (subnormothermic 또는 정상 체온)보다 생리적 온도에서 관류가 필요합니다. 관류 온도가 증가함에 따라, 간은 대사보다 활성화되어 담즙을 생산하기 시작합니다. 최근의 연구는 전 현장 NMP는 이식 전에 이식 가능성을 평가하는 동안 간 기능의 지표로 담즙 생산 자산이 될 수 있음을 제안했다. 이 연구는 담즙 생산은 간 조직의 ATP 수준 및 간 손상 (17)의 조직 학적 및 생화학 적 지표와 상관 관계가 있음을 보여 주었다. 이러한 결과는 임상 시험에 의해 확인되고 남아있다. 담즙 생산은 간 실질 조직의 생존에 적합한 잠재적 마커이지만 계외 NMP 동안 평가 될 수 담관 생존 마커는 여전히 부족하다. 따라서, w 예측 여전히 현재 불가능hether NMP 동안 평가 간은 이식 후 여부를 NAS를 개발할 것입니다. 그러나,이 프로토콜을 이용하여 외부 계 NMP는 NMP 6 시간 동안 어떤 담관 부상의 악화를 공개하지 않았다. 또한,이 기술은 감소 된 이식 후 부상이나 질병 22 근본적인 재발 결과 이식 전에 이식의 전처리를 허용 할 수있는 잠재력을 갖는다. 기증자 간의 현지 외 산소 기계 관류에 대한 최적의 유체는 사용 온도에 따라 달라집니다. 물에서의 산소의 용해도는 온도에 따라, 온도가 증가함에 따라 23 물의 감소 유체에 용해 될 수있는 산소의 양이다. MP에 대한 낮은 온도를 사용하는 경우, 관류 액의 용존 산소량을 충분히 할 수있다. 그러나, 37 ° C에서 산소 캐리어 그래프트에 충분한 산소를 제공하기 위해 관류 액에 첨가되어야한다. 저체온 MP, preserva 들어이러한 Belzer 기계 관류 솔루션으로 기 솔루션은 11 충분한 될 수 있습니다. 정상 체온 subnormothermic 또는 MP를 들어,도 영양분과 산소를 포함하는 캐리어보다 복잡한 관류 유체는 다른 연구 15,16에 사용되어왔다. 정상 체온 MP에 우리의 연구에서, 우리는 사용하고 ABO-과 히말라야는 산소 캐리어 (16)와 같은 지역 혈액 은행에서 적혈구를 포장 정합. 또한 유사한 결과가 이러한 Hemopure 또는 Hemarina 인공 헤모글로빈 기반 산소 캐리어 얻어 질 수 있는지 여부를 확립하도록 남아있다. 인간 간 성공적 관류 가장 중요한 기술적 인 측면은 : 올바르게 문맥과 supratruncal 대동맥 세그먼트에 캐 뉼러를 고정의 압력과 유량의 규정을 방해 할 수 관류 유체의 누출을 방지하기 위해 모든 작은 쪽 지사를 결찰하도록 기계는, 특히 pH를 조정함으로써 간암을위한 생리적 환경을 유지ND 전해질 관류 액의 농도, 및 관류의 무균 환경을 유지한다. 기술적 인 제약으로 인해, 설명 된 프로토콜에 사용되는 관류 장치는 10 ° C 이하의 관류 액의 온도를 낮출 수 없다. 이것은 제한을 고려 될 수 있지만, 허혈 관련된 실제 문제를 제공하지 않는다. 그 이유는 산소의보다 충분한 양의 온도에 관계없이 두 멤브레인 산소 공급에 의해 관류 유체에 공급 될 수 있다는 것이다. 장점은 온도 용이 도너 간의 점진적인 재가 온을 허용 재관류 기간 동안 조절 될 수 있다는 것이다. 돼지 간에서 최근의 연구는 이전에 여기에 18과 동일한 장치를 사용하여 정상 체온 재관류에 점진적으로 재가 온의 중요한 장점을 보여 주었다. 다른 온도에서 도너 간을 관류하는 기능 및 추가 카발라를 추가 기회장기 관류 동안 관류 유체 TS 평가하고 이식하기 전에 장기 품질을 향상시킬 수있는 가능성을 제공한다. 따라서, 이러한 방법은 상당히 이식 가능한 장기의 수를 증가시킬 수있다.

간 이식의 장기 보존 현재의 방법으로 세척하십시오 (예 : 위스콘신 대학교 솔루션 또는 히스티딘 - 트립토판 - 케 토글 루타 레이트 솔루션 등) 저온 (0-4 ℃) 보존 유체 기증자 간 후속 저장합니다. 이 방법은 정적 냉장 (SCS)라고합니다. 0-4 ℃에서의 간 대사 속도는 매우 낮지 만, 여전히 SCS 일 동안 제공 될 수없는 산소 0.27 μmol / 분 / g의 간 조직에 대한 요구가있다. SCS의 종래의 방법에 따라서, 도너 간의 (추가) 어느 정도의 손상을 초래한다. 보존 부상이 금액은 좋은 품질의 기증자의 간에서 문제가되지 않지만, 이미 기증자에 부상 어느 정도의 고통을 최적 간에서 중요하고 제한 요인이 될 수 있습니다. 이 때문에, 품질이 만족스럽지 못한 소위 확장 된 기준 공여체 (ECD) 간으로 간 자주 위험 O 같은 이식 거부F 조기 이식 실패가 너무 높은 것으로 간주된다. 지연 이식 기능, 주요 비 기능, 비 문합 담도 협착 (NAS)의 높은 비율은 순환 죽음 (DCD), 이전 기증자 또는 steatotic 이식 2의 수신자 후 기부에서 간의받는 사람에 기재되어있다. NAS는 간 이식 후의 이환 및 사망률의 주요 원인이다. NAS는 모두 외의의 뜻과 간내 기증자 담관에서 발생할 수 췌관 내 담즙 슬러지와 주조 형성 3,4 동반 될 수있다. NAS의 병인은 다 요인으로 생각되지만, 이식 및 이식시 보존 담관의 허혈 / 재관류 손상은 주요 기전의 2,5-로 확인되었다. DCD 이식의 이식 NAS의 개발을위한 가장 강력한 위험 요인의 하나로서 확인되었다. 장기 보존 동안 DCD 기증자, 냉 허혈 따뜻한 국소 빈혈의 기간의 조합, 이후 재관류수신자의 부상은 담관의 불량한 재생 능력과 조합하여, 간 이식 후 2,5- 섬유증 흉터 및 담관의 협소화를 초래, 담관의 비가역적인 손상, 책임 생각된다. NAS는 DCD 간 6-8를받은 환자의 30 %까지보고되었다. 그것은 이식 간 이식의 SCS의 현재 방법은 DCD 기증자의 것과 같은 preinjured ECD 간은 부족한 것이 분명되고있다. 다른 방법은 증가하고 이식 간은 ECD의 사용을 최적화하기 위해 필요하다. 기계 관류 (MP)는 SCS에 비하여, 도너의 장기 보존을 더 제공 할 수있다 장기 보존하는 방법이다. MP는 ECD 이식의 보존에 특히 관련이있을 수 있습니다. MP의 중요한 장점은 보존 기간 그래프트에 산소를 제공 할 수있는 가능성이다. MP는 다양한 온도에서 수행 될 수있다,(0 ~ 10 ° C의) 저체온 subnormothermic (10-36 ° C의)과 정상 체온 (36 ~ 37 ° C의) MP 피 롤리 돈 (NMP)으로 분류되어있다. MP 사용 온도에 따라, 관류 액의 형태는 조정되어야하고 많은 산소 온도 증가와 함께 제공되어야한다. 인간의 간 이식에 MP의 첫 번째 임상 응용 프로그램은 관류 액 (9, 10)의 활성 산소없이 저체온 관류 기반으로했다. 동물 모델에서 저체온 산소 MP (0-10 ° C는) 허혈에 대한 보호 효과를 표시되었습니다 / 간 재관류 손상은 11 접목 및 담즙의 peribiliary 혈관 총을 더 잘 보존 (12) 덕트 제공합니다. Subnormothermic은 20 ° C에서 MP를 산소 또는 30 ° C는 동물 모델에서 연구되었으며, SCS (13, 14)에 비해, DCD 용의 간 이식 이전 복구 기능을 제공하기 위해 도시되었다. 인간의 간의 subnormothermic 산소 MP의 가능성은 녹화했다고한다면 일곱 폐기 인간 공여자 간 (15)의 직렬로보고 하였다. NMP (37 ° C는) 16, 17을 이식하는 이식 가능성 및 이전 기능의 평가를 할 수 있습니다. 또한, MP는 이식 (18)의 회복과 소생을 용이하게 입증되었다 이식 전에 간 이식의 점진적 재가 온, 수 있습니다. 간 기계 관류에 대한 현재 프로토콜에서 사용되는 관류 장치는 연속 포털 흐름 및 박동성 동맥의 흐름을 제공하는 두 개의 원심 펌프를 사용하여 (간문맥과 간동맥을 통해) 듀얼 관류 할 수있다. 시스템은 압력 제어, 간 통해 흐름의 자동 조절을 허용 간내 저항에 의존한다. 두 중공 사막 산소 공급뿐만 아니라 CO 2의 제거를 위해, 간 이식의 산소화 허용한다. 온도는 MP의 의도 된 형태 (최소 temperat에 기초하여 설정 될 수있다<html> 10 ° C의 URE). 유량, 압력 및 온도는 재관류 과정의 연속적인 제어를 허용 실시간으로 장치 상에 표시된다. 튜브, 저수지 및 산소 공급의 새로운 멸균 일회용 세트는 각각의 이식 (그림 1)의 관류 사용할 수 있습니다. 이 비디오 기술의 목적은이 새로 개발 간 관류 기계를 사용하여 인간 간 도너의 외부 계 정상 체온 기계 관류 단계 프로토콜에 의해 단계를 제공하는 것이다. <img alt="그림 1" src="/files/ftp_upload/52688/52688fig1.jpg" /> 도 1 (A) 개략도, (B) 관류 시스템의 사진, (C) 산화 기의 가까이보기, 및 (D) 간 인간 공여자의 정상 체온 관류에 사용되는 원심 펌프.= &quot;_ 빈&quot;을 얻을&gt;이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.

<table><tbody><tr><td>Liver Assist</td><td>Organ Assist</td><td>OA.Li.Li.140</td><td>Perfusion device</td></tr><tr><td>Liver Assist disposable package</td><td>Organ Assist</td><td>OA.Li.DP.540</td><td>Disposable set and cannulas</td></tr><tr><td>Meredith No.8</td><td>Vygon Nederlands B.V.</td><td>1362082</td><td>Bile duct cannula</td></tr><tr><td>Human albumin 200 g/L / ALBUMAN</td><td>Sanquin</td><td>15522598</td><td>100 ml</td></tr><tr><td>Modified parenteral nutrition</td><td>Baxter Nederland B.V.</td><td>N14G30E</td><td>7.35 ml</td></tr><tr><td>Multivitamins for infusion / CERNEVIT</td><td>Baxter International Inc.</td><td>9800927</td><td>7 &amp;mu;l</td></tr><tr><td>Concentrated trace elements for infusion / NUTRITRACE</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td>14811332</td><td>7.35 ml</td></tr><tr><td>Metronidazole 5 mg/ml</td><td>Baxter Nederland B.V.</td><td>98181882</td><td>40 ml</td></tr><tr><td>Cefazoline / SERVAZOLIN</td><td>Sandoz B.V.</td><td>15611337</td><td>2 ml</td></tr><tr><td>Fast acting insulin</td><td>various vendors</td><td></td><td>20 ml</td></tr><tr><td>Calcium glubionate, intravenous solution 10%, 137.5 mg/ml</td><td>Sandoz</td><td>97038695</td><td>40 ml</td></tr><tr><td>Sterile H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O</td><td>Fresenius Kabi Nederland B.V.</td><td>98084453</td><td>51.3 ml</td></tr><tr><td>NaCl 0.9%</td><td>Baxter Nederland B.V.</td><td>15262510</td><td>160 ml</td></tr><tr><td>Heparin 5,000 IE/ml for i.v. administration</td><td>LEO Pharma B.V.</td><td>98026178</td><td>4 ml</td></tr><tr><td>Sodium bicarbonate 8.4%</td><td>B. Braun Melsungen AG</td><td>97973874</td><td>The amount depends on the pH</td></tr><tr><td>Packed red blood cell (in SAGM)</td><td>Blood bank (Sanquin)</td><td>N0012000</td><td>750 ml</td></tr><tr><td>Fresh frozen plasma</td><td>Blood bank (Sanquin)</td><td>N04030A0/N04030B0</td><td>900 ml</td></tr></tbody></table>

ex situ normothermic machine perfusion of donor livers

종래의 정적 저온 보존 (0-4 °의 C)와 대조적으로, 비원 기계 관류 도너 간 더 잘 보존을 제공 할 수있다. 장기 연속 관류 장기 품질을 향상시킬 수있는 기회를 제공하고, 이식하기 전에 공여자의 간 계외 생존력 평가를 허용한다. 이 비디오 기사는 예에 대한 단계 프로토콜에 의해 단계는 간동맥과 문맥의 연속 관류의 압력과 온도 조절 박동성 혈류를 제공하는 장치를 사용하여 인간의 기증자 간의 정상 체온 기계 관류 (37 ° C의)를 현장 제공합니다. 관류 유체는 두 개의 중공 사막의 산소 공급에 의해 산소를 함유하고, 온도 10 ° C, 37 ° C 사이에서 조절 될 수있다. 재관류 동안, 간 대사 활성뿐만 아니라, 부상의 정도는 관류 액으로부터 취한 샘플의 생화학 적 분석에 의해 평가 될 수있다. 기계 관류는 매우 유망한 도구입니다이식에 적합한 간 수를 늘릴.

다양한 이유로 인해에 이식 거부했다 (12) 인간의 간은 기증자 가정의 연구에 동의를 얻은 후 사용 하였다. 공여 특성을 표 2에 기재되어있다. 인간 공여자 간 6 시간 동안 관류 normothermically이 논문에 설명 된 프로토콜을 이용하여. 간 이식의 품질 간 관류 (- D도 2a)의 거시적 균질성을 모니터링하여 평가 하였다. 간의 혈역학는 동맥 및 포털 흐름의 변화를 모니터링하여 평가 하였다. 간동맥 및 문맥 흐름 및 흐름의 후속 안정화 초기 증가는 256 ± 16 ml / 분의 평균 동맥압 흐름의 결과가 관찰되었다 (평균 ± SEM) 및 748 ± 34 ml의 평균 문맥 흐름 / 분 관류 (그림 3A)시 간 안정적인 혈역학을 나타내는, 6 시간에서 (± SEM을 의미). BL동맥 관류 액으로부터 회수 관류 샘플 OOD 가스 분석은 관류 액에서 산소화의 상태를 모니터링하기 위해 사용되었다. 4 L의 흐름에 carbogen (95 % O 2 및 5 % CO 2)와 산소화 / 분 100 %의 연속 O 2 채도 결과.도 3b는 관류 액의 산소와 이산화탄소의 후속 추출 표시 우리 경험. <img alt="그림 3" src="/files/ftp_upload/52688/52688fig3.jpg" /> 그림 3 : 12 인간의 간의 정상 체온 기계 관류의 6 시간 동안 관류 매개 변수 및 관류 액 및 담즙 모두의 생화학 적 분석의 그래픽 프리젠 테이션 동맥 및 포털 흐름 (A) 변경.. (나) 산소 특성의 발전과 정상 체온 관류의 6 시간 동안 PCO 2. (C) 누적관류 동안 담즙 생산. 기계 관류 동안 촬영 담즙 샘플 빌리루빈과 중탄산염의 농도를 증가 (D). (E) 마이크로 원심 튜브는 시간 담즙 색의 점진적인 어둡게 그늘을 보여주는 대표적인 그래프트로부터 담즙을 함유. 데이터는 평균 ± SEM으로 표현된다. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52688/52688fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 담즙 생산은 간 기능의 지표로서 사용 하였다. 대사 기능 간은 NMP (그림 3C)의 24.6 ± 6g 후 6 시간의 평균 총 담즙 생산의 결과로, NMP 동안 담즙을 생산했다. 담즙 총 빌리루빈 및 중탄산염의 농도 증가는 NMP (도 3d, E) 중에 생성 담즙의 품질의 향상을 나타낸다. mitocho 지표로서 간 조직의 ATP 함량ndrial 기능 NMP의 6 시간 (그림 4) 후 (SEM 평균 ±) 30 ± 5 μmol / g의 단백질의 평균 ATP의 결과로, NMP 동안 증가했다. 이러한 ALT, AlkP, 감마 GT 및 칼륨 관류 액에서 간 손상 마커의 생화학 분석, 그래프트 손상의 양을 평가하기 위해 사용되었다. 간 손상 마커의 안정 농도는 관류 (그림 5A) 동안 이식의 최소한의 부상을 반영합니다. 관류 유체 락트산 글루코스 수준뿐만 아니라, 산소 소비 (17)는 이전에 설명되었다. 또한,도 5b에 도시 된 바와 같이, 간 조직 및 간외 담관의 선단부로부터 수집 H &amp; E 염색 생검의 조직 학적 검사, C는 정상 체온 기계 관류 동안 이식편에 추가적인 손상을 공개하지 않았다. <img alt="그림 4" src="/files/ftp_upload/52688/52688fig4.jpg" /> 도 4 :. NMP 중 간 조직 ATP 함량의 레벨 변화 NMP 중에 증가 된 간 조직 ATP 함량은 미토콘드리아 기능의 개선을 보였다. 데이터는 평균 ± SEM로 표시됩니다. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52688/52688fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> <img alt="그림 5" src="/files/ftp_upload/52688/52688fig5.jpg" /> 그림 5 (A) 간담 부상 간 실질 및 (c) (0 시간) 전 (6 시간) 기계 관류 후 대표 이식에서 촬영 간외 담관의 (B) 염색 마커. () 관류 액에 손상 마커의 안정 농도는 기계 관류 동안 이식의 최소한의 부상을 지적했다. (B)은 AR의 미세 구조를 잘 보존epresentative 간 이식. 간외 담관의 (C) 조직학은 대표 이식의 (별표로 표시 루멘). 내강 상피 층의 부분적인 손실로 표시 보통 담도 상피 손상은베이스 라인에서 관찰되었고,이 MP의 6 시간 동안 악화하지 않았다. 담도 손상의 유사 정도는 20 이식 전에 인간 간 일련 설명되었다. Peribiliary 혈관 (화살표)과 peribiliary 샘 (점선 내 영역)에는 정상 체온 기계 관류 후 부상 악화를 표시하지 않습니다. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52688/52688fig5large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭하십시오.</a> 관류 액의 미생물 시험 NMP 중에 세균 오염을 공개하지 않았다. 한 경우 (S)에 대한 긍정적 인 문화 표피 냉 보존 직후 수집 샘플로부터 얻었다. HowevER, NMP 6 시간 후 관류 액의 배양은 관류 액으로 사용되는 항생제의 효과를 나타내는 어떠한 세균 음이었다.

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Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

여기에서 우리는 기증자 간 이식의 산소 전 현장 기계 관류를 설명하는 프로토콜을 제시한다. 이 문서에서는 조달 및 기계 관류에 대한 간 이식을 준비, 관류 액, 주요 관류 시스템을 준비하고 간 이식의 산소 정상 체온 기계 관류를 수행하는 단계 프로토콜에 의해 단계가 포함되어 있습니다.

기증자의 간을의 현지 외 정상 체온 기계 관류

In contrast to conventional static cold preservation (0-4 &#176;C), ex situ machine perfusion may provide better preservation of donor livers. Continuous ...

ex-situ-normothermic-machine-perfusion-of-donor-livers

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

11.2K 조회수.  University of Groningen, University Medical Center Groningen.  여기에서 우리는 기증자 간 이식의 산소 전 현장 기계 관류를 설명하는 프로토콜을 제시한다. 이 문서에서는 조달 및 기계 관류에 대한 간 이식을 준비, 관류 액, 주요 관류 시스템을 준비하고 간 이식의 산소 정상 체온 기계 관류를 수행하는 단계 프로토콜에 의해 단계가 포함되어 있습니다. 

비디오: Ex Situ Normothermic Machine Perfusion of Donor Livers

Technique of Subnormothermic Ex Vivo Liver Perfusion for the Storage, Assessment, and Repair of Marginal Liver Grafts

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. In most transplant regions 20-30% of patients on the waiting list for liver transplantation die without receiving an organ transplant or are delisted for disease progression. One strategy to increase the donor pool is the utilization of marginal grafts, such as fatty livers, grafts from older donors, or donation after cardiac death (DCD). The current preservation technique of cold static storage is only poorly tolerated by marginal livers resulting in significant organ damage. In addition, cold static organ storage does not allow graft assessment or repair prior to transplantation.
These shortcomings of cold static preservation have triggered an interest in warm perfused organ preservation to reduce cold ischemic injury, assess liver grafts during preservation, and explore the opportunity to repair marginal livers prior to transplantation. The optimal pressure and flow conditions, perfusion temperature, composition of the perfusion solution and the need for an oxygen carrier has been controversial in the past.
In spite of promising results in several animal studies, the complexity and the costs have prevented a broader clinical application so far. Recently, with enhanced technology and a better understanding of liver physiology during ex vivo perfusion the outcome of warm liver perfusion has improved and consistently good results can be achieved.
This paper will provide information about liver retrieval, storage techniques, and isolated liver perfusion in pigs. We will illustrate a) the requirements to ensure sufficient oxygen supply to the organ, b) technical considerations about the perfusion machine and the perfusion solution, and c) biochemical aspects of isolated organs.

Technique of Subnormothermic Ex Vivo Liver Perfusion for the Storage, Assessment, and Repair of Marginal Liver Grafts

Marginal grafts, such as fatty livers, grafts from older donors, or livers retrieved after cardiac death (DCD) tolerate conventional, cold static storage only poorly. We developed a novel model of subnormothermic ex vivo liver perfusion for preservation, assessment, and repair of marginal liver grafts prior to transplantation.

Subnormothermic의 기술<em&gt; 전의 VIVO</em&gt; 간 스토리지, 평가를위한 관류 및 한계 간 이식의 수리

The success of liver transplantation has resulted in a dramatic organ shortage. In most transplant regions 20-30% of patients on the waiting list for ...

연구

의학

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

This protocol presents an optimized erythrocytes-free NEVLP system using mouse livers. Ex vivo preservation of mouse livers was achieved by employing modified cannulas and techniques adapted from conventional commercial ex vivo perfusion equipment. The system was utilized to evaluate the preservation outcomes following 12 h of perfusion. C57BL/6J mice served as liver donors, and the livers were explanted by cannulating the portal vein (PV) and bile duct (BD), and subsequently flushing the organ with warm (37 &#176;C) heparinized saline. Then, the explanted livers were transferred to the perfusion chamber and subjected to normothermic oxygenated machine perfusion (NEVLP). Inlet and outlet perfusate samples were collected at 3 h intervals for perfusate analysis. Upon completion of the perfusion, liver samples were obtained for histological analysis, with morphological integrity assessed using modified Suzuki-Score through Hematoxylin-Eosin (HE) staining. The optimization experiments yielded the following findings: (1) mice weighing over 30 g were deemed more suitable for the experiment due to the larger size of their bile duct (BD). (2) a 2 Fr (outer diameter = 0.66 mm) polyurethane cannula was better suited for cannulating the portal vein (PV) when compared to a polypropylene cannula. This was attributed to the polyurethane material&#39;s enhanced grip, resulting in reduced catheter slippage during the transfer from the body to the organ chamber. (3) for cannulation of the bile duct (BD), a 1 Fr (outer diameter = 0.33 mm) polyurethane cannula was found to be more effective compared to the polypropylene UT - 03 (outer diameter = 0.30 mm) cannula. With this optimized protocol, mouse livers were successfully preserved for a duration of 12 h without significant impact on the histological structure. Hematoxylin-Eosin (HE) staining revealed a well-preserved morphological architecture of the liver, characterized by predominantly viable hepatocytes with clearly visible nuclei and mild dilation of hepatic sinusoids.

Normothermic Ex Vivo Liver Machine Perfusion in Mouse

A normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) system was created for mouse livers. This system requires experience in microsurgery but allows for reproducible perfusion results. The ability to utilize mouse livers facilitates the investigation of molecular pathways to identify novel perfusate additives and enables the execution of experiments focused on organ repair.

마우스의 Normothermic Ex Vivo 간 기계 관류

This protocol presents an optimized erythrocytes-free NEVLP system using mouse livers. Ex vivo preservation of mouse livers was achieved by employing ...

공학

Functional Human Liver Preservation and Recovery by Means of Subnormothermic Machine Perfusion

There is currently a severe shortage of liver grafts available for transplantation. Novel organ preservation techniques are needed to expand the pool of donor livers. Machine perfusion of donor liver grafts is an alternative to traditional cold storage of livers and holds much promise as a modality to expand the donor organ pool. We have recently described the potential benefit of subnormothermic machine perfusion of human livers. Machine perfused livers showed improving function and restoration of tissue ATP levels. Additionally, machine perfusion of liver grafts at subnormothermic temperatures allows for objective assessment of the functionality and suitability of a liver for transplantation. In these ways a great many livers that were previously discarded due to their suboptimal quality can be rescued via the restorative effects of machine perfusion and utilized for transplantation. Here we describe this technique of subnormothermic machine perfusion in detail. Human liver grafts allocated for research are perfused via the hepatic artery and portal vein with an acellular oxygenated perfusate at 21 &#176;C.

We describe a method of ex vivo machine perfusion of human liver grafts at subnormothermic temperature (21 &#176;C).

Subnormothermic 기계 관류의 수단으로 기능 인간의 간 보존 및 복구

There is currently a severe shortage of liver grafts available for transplantation.  Novel organ preservation techniques are needed to expand the pool of ...

Normothermic Ex Vivo Kidney Perfusion for the Preservation of Kidney Grafts prior to Transplantation

Kidney transplantation has become a well-established treatment option for patients with end-stage renal failure. The persisting organ shortage remains a serious problem. Therefore, the acceptance criteria for organ donors have been extended leading to the usage of marginal kidney grafts. These marginal organs tolerate cold storage poorly resulting in increased preservation injury and higher rates of delayed graft function. To overcome the limitations of cold storage, extensive research is focused on alternative normothermic preservation methods.
Ex vivo normothermic organ perfusion is an innovative preservation technique. The first experimental and clinical trials for ex vivo lung, liver, and kidney perfusions demonstrated favorable outcomes.
In addition to the reduction of cold ischemic injury, the method of normothermic kidney storage offers the opportunity for organ assessment and repair. This manuscript provides information about kidney retrieval, organ preservation techniques, and isolated ex vivo normothermic kidney perfusion (NEVKP) in a porcine model. Surgical techniques, set up for the perfusion solution and the circuit, potential assessment options, and representative results are demonstrated.

Normothermic Ex Vivo Kidney Perfusion for the Preservation of Kidney Grafts prior to Transplantation

The severe organ shortage has resulted in increased use of marginal kidney grafts for transplantation. This has triggered interest in alternative storage methods, since marginal grafts especially tolerate cold storage poorly. The technique of normothermic ex vivo kidney perfusion (NEVKP) represents a novel preservation method for kidney grafts prior to &#160;transplantation.

정상 체온<em&gt; 전의 VIVO</em&gt; 신장의 보존을위한 신장 관류는 이식 전에 이식

Kidney transplantation has become a well-established treatment option for patients with end-stage renal failure. The persisting organ shortage remains a ...

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been introduced as a method to evaluate and modify organ function. NEVLP has many advantages in comparison to hypothermic and subnormothermic perfusion including reduced preservation injury, restoration of normal organ function under physiologic conditions, assessment of organ performance, and as a platform for organ repair, remodeling, and modification. Both murine and porcine NEVLP models have been described. We demonstrate a rat model of NEVLP and use this model to show one of its important applications &#8212; the use of a therapeutic molecule added to liver perfusate. Catalase is an endogenous reactive oxygen species (ROS) scavenger and has been demonstrated to decrease ischemia-reperfusion in the eye, brain, and lung. Pegylation has been shown to target catalase to the endothelium. Here, we added pegylated-catalase (PEG-CAT) to the base perfusate and demonstrated its ability to mitigate liver preservation injury. An advantage of our rodent NEVLP model is that it is inexpensive in comparison to larger animal models. A limitation of this study is that it does not currently include post-perfusion liver transplantation. Therefore, prediction of the function of the organ post-transplantation cannot be made with certainty. However, the rat liver transplant model is well established and certainly could be used in conjunction with this model. In conclusion, we have demonstrated an inexpensive, simple, easily replicable NEVLP model using rats. Applications of this model can include testing novel perfusates and perfusate additives, testing software designed for organ evaluation, and experiments designed to repair organs.

A Small Animal Model of Ex Vivo Normothermic Liver Perfusion

There is a significant liver donor shortage, and criteria for liver donors have been expanded. Normothermic ex vivo liver perfusion (NEVLP) has been developed to evaluate and modify organ function. This study demonstrates a rat model of NEVLP and tests the ability of pegylated-catalase, to mitigate liver preservation injury.

Ex Vivo Normothermic 간 관류의 작은 동물 모델

There is a significant shortage of liver allografts available for transplantation, and in response the donor criteria have been expanded. As a result, ...

<meta charset="utf8"></head><body>기계 관류를 사용한 Orthotopic 돼지 간 이식 보존

Preservation of Porcine Donation after Circulatory Death (DCD) Liver by Perfusion and Orthotopic Liver Transplantation

Conventional static cold storage (SCS) exacerbates ischemic injury in the DCD liver, leading to severe complications for transplant recipients. To address this issue, clinical application of MP technology for donor liver preservation is underway. Simultaneously, efforts are focused on the development of various MP instruments, validated through relevant animal model experiments. Effective large animal trials play a pivotal role in clinical applications. However, challenges persist in the ex vivo preservation of DCD livers and the transplantation procedure in pigs. These hurdles encompass addressing the prolonged preservation of donor livers, conducting viability tests, alleviating ischemic injuries, and shortening the anhepatic phase. The use of a variable temperature-controlled MP device facilitates the prolonged preservation of DCD livers through sequential Dual Hypothermic Oxygenated Machine Perfusion (DHOPE) and Normothermic Machine Perfusion (NMP) modes. This protocol enhances the porcine OLTx model by improving the quality of DCD livers, optimizing the anastomosis technique, and reducing the duration of the anhepatic phase.

<meta charset="utf8"></head><body>저자 스포트라이트: 간 이식을 위한 기계 관류의 발전과 과제

This protocol outlines the methodology of establishing a porcine model utilizing variable temperature-controlled Machine Perfusion (MP) for the preservation of the donor liver, followed by orthotopic liver transplantation (OLTx). It aims to promote the success rate of OLTx using donor donation after circulatory death (DCD) liver and establish a stable model.

관류 및 정형외과 간 이식에 의한 순환 사망(DCD) 간 후 돼지 기증 보존

Conventional static cold storage (SCS) exacerbates ischemic injury in the DCD liver, leading to severe complications for transplant recipients. To address ...

생체공학

Avoiding Ischemia Reperfusion Injury in Liver Transplantation

Currently, ex situ machine perfusion is a burgeoning technique that provides a better preservation method for donor organs than conventional static cold preservation (0&#8211;4 &#176;C). A continuous blood supply to organs using machine perfusion from procurement and preservation to implantation facilitates complete prevention of ischemia reperfusion injury and permits ex situ functional assessment of donor livers before transplantation. In this manuscript, we provide a step-by-step ischemia-free liver transplantation protocol in which an ex situ normothermic machine perfusion apparatus is used for pulsatile perfusion through the hepatic artery and continuous perfusion of the portal vein from human donor livers to recipients. In the perfusion period, biochemical analysis of the perfusate is conducted to assess the metabolic activity of the liver, and a liver biopsy is also performed to evaluate the degree of injury. Ischemia-free liver transplantation is a promising method to avoid ischemia-reperfusion injury and may potentially increase the donor pool for transplantation.

<meta charset="utf8"></head><body>Avoiding Ischemia Reperfusion Injury in Liver Transplantation(간 이식에서 허혈 재관류 손상 방지)

Presented here is a protocol to provide a step-by-step ischemia-free liver transplantation protocol under ex situ normothermic machine perfusion (37 &#176;C) of human livers from donors to recipients.

Avoiding Ischemia Reperfusion Injury in Liver Transplantation(간 이식에서 허혈 재관류 손상 방지)

Currently, ex situ machine perfusion is a burgeoning technique that provides a better preservation method for donor organs than conventional static cold ...

기증자의 간을의 현지 외 정상 체온 기계 관류

요약

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이 비디오의 챕터

Subnormothermic의 기술

마우스의 Normothermic Ex Vivo 간 기계 관류

Subnormothermic 기계 관류의 수단으로 기능 인간의 간 보존 및 복구

정상 체온

Ex Vivo Normothermic 간 관류의 작은 동물 모델

관류 및 정형외과 간 이식에 의한 순환 사망(DCD) 간 후 돼지 기증 보존

관류 및 정형외과 간 이식에 의한 순환 사망(DCD) 간 후 돼지 기증 보존

관류 및 정형외과 간 이식에 의한 순환 사망(DCD) 간 후 돼지 기증 보존

Avoiding Ischemia Reperfusion Injury in Liver Transplantation(간 이식에서 허혈 재관류 손상 방지)

Avoiding Ischemia Reperfusion Injury in Liver Transplantation(간 이식에서 허혈 재관류 손상 방지)