מיופתיה פרוזדורית יכולה לגרום לפרפור פרוזדורים, שהוא הפרעת הקצב הנפוצה ביותר בבני אדם. מודל דלקת קרום הלב הסטרילית הוא מודל אמין וגדול של בעלי חיים הדומה לפתוגנזה של מיופתיה פרוזדורים. מודל זה מספק אינדוקציה מהירה של מיופתיה פרוזדורית תוך שבועות ספורים.
כמו כן, מחקרים אלקטרופיזיולוגיים חוזרים ונשנים יכולים להתבצע בקלות בתקופת מעקב ללא צורך בצנתורים חוזרים ונשנים. בגלל הדמיון באנטומיה ובפיזיולוגיה בהשוואה לבני אדם, ניתן להשתמש במודל המיניפיג המוצג כאן כדי לחקור את הפתופיזיולוגיה של מיופתיה פרוזדורים ופרפור פרוזדורים, אך ניתן להשתמש בו גם בגילוי תרופות פרה-קליניות. התחילו בהכנת מערכת מוליכת הלחץ.
הוסף 5, 000 יחידות בינלאומיות של הפרין לשקית IV עם 500 מיליליטר של 0.9% מלוחים. מניחים את החיה בתנוחת השכיבה, ואז מרחיבים את הרגל ומאתרים את עורק הירך באמצעות אולטרסאונד עם הבדיקה הווסקולרית בסביבת הצוואר. יש לחטא את האזור המפשעה עם כלורהקסידין.
לנקב את עורק הירך באמצעות הנחיית אולטרסאונד ולהחדיר נדן 3 צרפתי בטכניקת סלדינגר. לקבע את הנדן עם התפר ולחבר אותו למתמר כדי לשטוף. עקוב אחר לחץ הדם העורקי בזמן אמת.
בצע חתך של חמישה סנטימטרים בחריץ בגבול המדיאלי של שריר הסטרנוקלידומסטואיד. לאחר מכן מנתחים באופן בוטה עד שמגיעים לווריד הג'וגולרי הפנימי. הסר רקמה סיבית סביב הווריד והנח תפר פרולין 6 על 0 בריבוע סביב אתר הצנתור הרצוי כדי להשיג שליטה בכלי הדם.
קנוניזציה של וריד הג'וגולרי הפנימי עם 3 לומן CVC משולש צרפתי בטכניקת סלדינגר. לאחר מכן הדקו את תפר הפרולין 6-0 סביב הצנתר. לקבע את הידית של הצנתר לשריר הסטרנוקלידומסטואיד.
מנהרים את שלושת הצנתרים לומינה בנפרד ומחברים את הקצוות בחוזקה לעור. שים על יציאת ההזרקה ללא מחט, ואז סגור את אתר החתך בשתי שכבות. יש ליצור חתך חציוני של עצם החזה עד שלושה סנטימטרים מתחת לתהליך ה-xiphoid עד שעצם החזה מתגלה.
לנתח בבוטות את התהליך ה-xiphoid. יש לשים אצבע או מספריים קהים על הצד הקרבי של עצם החזה ולהסיר רקמת חיבור בעקבות משטח החזה הקרבי ככל האפשר. השתמש במסור עצם החזה כדי לבקוע את עצם החזה.
לאחר מכן השתמש במפיץ עצם החזה כדי להגדיל את הגישה לחלל בית החזה, תוך הימנעות מפגיעה בצדר. פתח את קרום הלב בזהירות והשתמש בתפרים מתלים כדי להרחיק אותו משדה הניתוח. לאחר בדיקת מנגנון ההרחבה והנסיגה של בורג הקיבוע של העופרת, הניחו את קצה העופרת על מלקחיים מעוקלים ועקמו את הסגנון ב-60 מעלות, במידת הצורך.
שים דחיסה על החדר השמאלי ומשוך אותו בעדינות הצידה כדי לקבל מבט על האטריום השמאלי. עם ההדמיה של האטריום השמאלי, הניח בחוזקה את קצה העופרת על קירו קרוב ככל האפשר לוורידים הריאתיים ורחוק ככל האפשר מהחדר. הברג אותו פנימה על ידי הארכת הסליל לתוך רקמת הפרוזדורים, רצוי עם נטייה קלה.
לעבוד במהירות ולשחרר את הלחץ על החדר השמאלי מיד. מדוד את סף החישה והקצב והעכבה של הליד באמצעות תוכנית מגרה חשמלי או קוצב לב הניתנים לתכנות. הבטחה שאין לכידת יתר חדרית בעת הקצב במתחים גבוהים.
מקם מוליך קוצב לב על האטריום הימני בדומה לחלוטין למיקום של מוליך הפרוזדורים השמאלי. הקפדה על כך ששני הלידים ישאירו את בית החזה בקו האמצע. יש לתעל את עופרת הפרוזדורים השמאלית דרך השומן התת-עורי הבטני מתהליך ה-xiphoid לאגף השמאלי ואת עופרת הפרוזדורים הימנית לאגף הימני.
הכינו כיס של קוצב לב בשומן התת עורי באגף השמאלי והימני של החזיר. חברו קוצב לב המסוגל לבצע 50 מתפרצים של הרץ עם מוליך הפרוזדורים השמאלי, וקוצב לב מיצרן אחר עם עופרת אטריה ימנית, ואז הניחו אותם בתוך הכיסים. חשוף שוב את האטריה על ידי משיכה עדינה הצידה של החדרים, ולאחר מכן כיסה את החדרים בגאזה.
יש לרסס טלק סטרילי על פני השטח האפיקרדיאליים של שתי האטריות באמצעות המתקן. השאירו שכבה אחת של גזה סטרילית על פני השטח האפיקרדיאליים של האטריה. בדוק את המיקום של מובילי קוצב הלב בפעם האחרונה לפני תחילת הסגירה.
סגור את קרום הלב באמצעות מונוקריל 3-0 ואת עצם החזה באמצעות חוט נירוסטה, ולאחר מכן סגור תת עורית ואת העור באמצעות Vicryl zero ו monocryl 3-0, בהתאמה. לאחר שפצע החזה החלים, שקלו שוב את החזיר למעקב, ואז הניחו את החיה במנשא מרסן והביאו אותה לחדר הניתוח. חברו א.ק.ג וניטור רוויה והניחו את ראשי המתכנתים מעל קוצבי הלב המתאימים להם.
לחקור את קוצב הלב. בדוק את הגדרות קוצב הלב עבור התרחשות של מיקוד אוטומטי ספונטני. אזהרה חדרית היא נורמלית בעת שימוש בקוצב לב בעל תא כפול. לקבוע סף עכבה וחישה וקצב.
קבע את תקופת העקשנות האפקטיבית של פרוזדורים המשוערת על ידי אורך המחזור הקצר ביותר שבו לכידת יחס אחד לאחד נשמרת במהלך קצב הפיצוץ. קבעו את זמן ההולכה בין מובילי פרוזדורים שמאליים וימניים על ידי מדידת הזמן שבין התחלת הספייק הקצבי לבין הדפולריזציה של הפרוזדורים על עופרת הפרוזדורים הימנית. בצע שלושה פרוטוקולים כמתואר בכתב היד של הטקסט.
תוך ציון משך המיקוד האוטומטי ויכולת ההשראה של AF עבור כל פרוטוקול, ואז לאפשר לבעל החיים להתעורר או להמשיך בהליכים אחרים. עלייה הדרגתית בסף המתח והעכבה של עופרת הפרוזדורים השמאלית נצפו לאורך זמן, מה שמעיד על פיברוזיס מוגבר. הקצב המזיק ו-50 פרוטוקולי הקצב של הרץ היו מוצלחים יותר מפרוטוקול הקצב של AERP פלוס 30 אלפיות השנייה.
אינדוקציות AF החלו לעלות שבועיים לאחר הניתוח עד כ-25% פרוטוקול AERP פלוס 30 אלפיות השנייה היה הפחות יעיל, והראה כ-10% AF inducibility. קצב מזיק וקצב פרץ של 50 הרץ הגדילו את חוסר ההשראה של המיקוד האוטומטי לכ-40% אלקטרוגרמה פרוזדורית זו של קוצב הלב הפרוזדורי השמאלי מראה אינדוקציה של פרק של AF לאחר חמש שניות של 50 קצב פרץ הרץ. ואילו בזה, אין אינדוקציה של AF.
צביעת הטריכרום של מאסון של רקמת פרוזדורים שמאל הראתה רמות גבוהות יותר של פיברוזיס אינטרסטיציאלי או פרה-וסקולרי בחיות דלקת קרום הלב הסטרילית בהשוואה ל-shams. כימות עיוור של אחוז שטח הרקמה הפיברוטית הכחולה ביחס לאזור שריר הלב הכולל הראה כי דלקת קרום הלב הסטרילית גורמת ליותר פיברוזיס פרא-וסקולרי ובין-תאי ברקמת פרוזדורים מאשר ניתוח בושה. הדבר החשוב ביותר הוא להשיג מיקום טוב של מובילי קוצב הלב עם סף מתח הולם וללא לכידת חדרים.
קשה מאוד לתקן בעיות עם לידים קוצב לב לאחר הניתוח הראשוני מכיוון שהפיברוזיס הנרחב שנצפה במודל זה אוסר על החלפת הלידים. פרוטוקול זה מתמקד במחקרים הכירורגיים והאלקטרופיזיולוגיים, אך המודל יכול לשמש גם להיסטולוגיה והדמיית לב, כולל CT ו- MRI. כמו כן, בהשוואה למכרסמים, הכמות הגדולה יותר של רקמת הפרוזדורים מאפשרת מחקרי תעתיק ופרוטאומיים מפורטים.
