Name: murine echocardiography of left atrium, aorta, and pulmonary artery
Uploaded: 2017-02-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 17 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Murine Echocardiography of Left Atrium, Aorta, and Pulmonary Artery at JoVE.com

This work was supported by the Huffington Center on Aging at Baylor College of Medicine, Geriatrics, CVS DeBakey Heart Center at Houston Methodist Hospital and BCM, NIH RO-1 HL 13870 to ML Entman, as well as a Career Development Award # IK2BX002410 from the United States Department of Veterans Affairs (LMP), Biomedical Laboratory Research and Development Program.
We are immensely grateful to Mark Entman M.D. for sharing his wisdom and supporting this work.

כל החיות טופלו בהתאם להנחיות של ה- National Institutes of Health מדריך לטיפול ושימוש בחיות מעבדה ב- Baylor College of Medicine. 1. קמה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את מערכת אקו. הפעל את התוכנה על ידי בחירת &quot;מדידות לב&quot; מן הנפתחת התפריט המוצג ולחץ על &quot;אתחול&quot;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להתחיל בלחיצת מחקר חדשה על הכפתור &quot;החדש&quot; בחלקו העליון של המסך והזן את הפרטים הדמוגרפיים של העכבר במחקר. לקבלת מזהה עכבר למשל, מין, תאריך לידה, כמו גם את השם של המפעיל עושה את המחקר. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את לוח EKG בקרת טמפרטורה על ידי לחיצה על כפתור &quot;TEMP ON / OFF&quot;. הגדר אותו לטמפרטורה של 39 מעלות צלזיוס באמצעות החצים למעלה ולמטה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להתחיל בהגדרת תא ההרדמה, ודא תחילה רמות חמצן isoflurane ראויות הן כל אחת ממערכות המשלוח. </li><li&gt; מניחים את העכבר בתא הרדמה ולגרום עם isoflurane וחמצן עד שכיבה ולאחר מכן להעביר אותו אל פנים מסכה. ודא העכבר הוא מורדם כראוי על ידי צובט ברגל, בדיקת חוסר תנועה. שמירה על isoflurane ברמה הנמוכה ביותר האפשרית כי תמנע תגובת נסיגת כפה חיובית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את העכבר במצב שכיבה על לוח EKG בקרת טמפרטורה ואת קלטת כל כפה לאלמנט מתמר כתב על הלוח. לחלופין, להשתמש בקרם מתמר לשפר את האות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> החל משחת סיכת עיני דמעות מלאכותיות על העיניים של העכבר כדי למנוע יובש. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר העכבר הוא מודבק ללוח EKG, להתבונן א.ק.ג התחקות בחלק התחתון של המסך. לפקח על קצב הלב לאורך כל תקופת המחקר כולו על מנת להבטיח תוצאות מיטביות. קצב לב של 400 פעימות / דקה היא אידיאלית. קצב לב מתחת לטווח זה עשוי להמליץ ​​תופעות isoflurane. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ודא העכבר שומר קבלת חמצןisoflurane ידי מסיכת פנים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להשתמש במכונת גילוח חשמלית לגלח את הפרווה הגוף מן החזה הקדמי של העכבר באזור הבטן העליונה. השתמש קרם מקריח במידת צורך על מנת להבטיח הסרת פרווה נוספת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לשים כמות נדיבה של ג&#39;ל מתמר בחזה של העכבר. </li></ol> 2. Image Acquisition <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מדידת פרוזדור השמאלי <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אתר את הידית מתחת ללוח EKG. השתמש בידית כדי לשנות את הזווית של לוח EKG המטלטלין שבו העכבר הוצב. בגין על ידי התאמת לוח EKG על 30 - 45 מעלות זווית לאורך ציר X ו- 0 ° זווית לאורך ציר Y. מחברים מתייחסים אליו כאל עמדה &quot;פרקדן&quot;. השתמש במצב זה במשך כל רכישת מדידות הפרוזדור השמאלי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח את ראש סריקת 25 מגה-רץ מהדק זרוע המטלטלין אקו בתצוגת ציר זמן. הקפד לבחור את מסנן מדידת לב ו 2 ד B-Mode במערכת אקו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שים לב כי ההדסט cardiographic יש מגבילי התאמת ציר X ו- Y כי ניתן להעביר או נגד כיוון השעון. סובב אותם כדי לקבל תצוגת לציר ארוכה של הלב ברמה של דרכי יצוא אב עורקים ולרכוש קלטת הסרט של 5. רוכש את הסריקה על ידי לחיצה על הכפתור &quot;חנות Cine&quot; במקלדת של מערכת אקו. השתמש באפשרות זו כדי לחשב את מדידת סופריור-- נחות של LA. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר רכישת הסרט, העברת תצוגת אקו ל- M-Mode על ידי לחיצה על הכפתור &quot;M-Mode&quot; במקלדת של מערכת אקו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימו נוף sagittal וסמן מהבהב. מניחים את הסמן כך שהוא מקיף את כל LA ברמה של דרכי יצוא אבי העורקים. רוכשת 3 תמונות של תצוגה חדשה זו. רוכש את הסריקה על ידי לחיצה על הכפתור &quot;מסגרת החנות&quot; במקלדת של מערכת אקו. השתמש באפשרות זו כדי לחשב את מדידת Anterior-האחורית של LA. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חזור אל B-Mode על ידי לחיצה על &quot;מצב-B&quot; אבל<html> טון במקלדת של מערכת אקו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סובב את מהדק זרוע מטלטלין של 90 ° עם כיוון השעון סט. זה יהיה להגדיר את ראש הסריקה בתצוגת ציר קצרה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש מומנט ציר Y למצוא מחצה intraarticular. ודא כדי להמחיש את קיר המבואה. לרכוש סרט הקלטה של ​​5. רוכש את הסריקה על ידי לחיצה על הכפתור &quot;חנות Cine&quot; במקלדת של מערכת אקו. השתמש באפשרות זו כדי לחשב את המדידה Medio-צדדי של LA. </li></ol></li></ol><img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig1.jpg" /> איור 1: מיקום &quot;פרקדן&quot;. ייצוג עכבר בתנוחת &quot;פרקדן&quot;. כ 30 - 45 מעלות זווית לאורך ציר X ו- 0 ° זווית לאורך ציר Y. עמדה זו משמשת לרכישת כל המדידות הפרוזדור השמאלי.t = &quot;_ blank&quot;&gt; לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. <ol start="2" style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מדידת כלי נהדר <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> המשך על ידי החלפת ראש סריקת 25 MHz עבור ראש 30 MHz הסריקה. הסר את ראש סריקת 25 MHz מן מהדק זרוע מטלטלי מקום ראש 30 MHz סריקת במקום. הקפד לבחור את מסנן מדידות בטן 2D B-Mode במערכת אקו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אתר את הידית מתחת ללוח EKG. השתמש בידית כדי לשנות את הזווית של לוח EKG המטלטלין שבו העכבר נמצא. בגין על ידי התאמת לוח EKG לזווית 5 ° לאורך ציר X ו- 60 ° זווית לאורך ציר Y. השתמש podition זה לרכישת האאורטה ומדידות עורק הריאה. קוראים לזה עמדה &quot;מעמד-אפ&quot;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> באמצעות מגבילי X וכוונון ציר Y במערכת אקו, לקבל תצוגת לציר ארוכה של הלב ברמה של דרכי יצוא אב עורקים ולרכוש קלטת הסרט של 5. רוכשת הדואר לסרוק על ידי לחיצה על כפתור &quot;חנות Cine&quot; במקלדת של מערכת אקו. השתמש באפשרות זו כדי לחשב את קוטר אב העורקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר רכישת הסרט, לסובב את מהדק זרוע המטלטלין של השעון 90 ° הסט. זה יהיה להגדיר את ראש הסריקה בתצוגת ציר קצרה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימוש מומנט ציר Y לאתר את עורק הריאה ברמת ההסתעפות שלה ולרכוש קלטת הסרט של 5. רוכש את הסריקה על ידי לחיצה על הכפתור &quot;חנות Cine&quot; במקלדת של מערכת אקו. השתמש באפשרות זו כדי לחשב את קוטר העורק הריאתי. הערה: החוקר רשאי להשתמש הדמיה דופלר ככלי להבטיח זיהוי נכון של עורק הריאה. אם תרצה, פעם השלמת שלב 2.2.5 לחץ על כפתור &quot;PW&quot; במקלדת של מערכת אקו להשיג הדמיה דופלר. אם העתקי גל מאפיין ריאתי נראים, החוקר יכול להיות הרגיע כי המיקום הנכון זוהה. </li></ol></li></ol<html> &gt; <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig2.jpg" /> איור 2: &quot;Standing-אפ&quot; מיקום. ייצוג עכבר בתנוחת &quot;Standing-אפ&quot;. כ 5 ° זווית לאורך ציר X ו- זווית 60 ° לאורך ציר Y. עמדה זו משמשת לרכישת קטרים ​​עורקי האאורטה ריאתי. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 3" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig3.jpg" /> איור 3: דופלר עורק הריאה. הדמית דופלר עורק ריאה אופיינית. החוקר רשאי להשתמש הדמיה דופלר ככלי להבטיח זיהוי נכון של עורק הריאה.blank &quot;&gt; לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו. 3. שחזור Animal נוהל הודעה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כדי להסיר את העכבר בבטחה מלוח EKG, להסיר את הג&#39;ל מהחזה של עכבר להסיר את הסרט בגפיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כבה את אספקת מערכות הרדמה וחמצן. החזר את העכבר לכלוב שלה ואל תשאירו את העכבר ללא השגחה עד שהוא שב להכרתו מספיק כדי לשמור שכיבה sternal. </li></ol> ניתוח תמונה 4. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> תמונת העברה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש בכונן USB כדי להעביר את התמונות שנאספו במערכת אקו לתוך מחשב. הכנס את כונן הבזק ה- USB ליציאת USB במערכת אקו. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את המחקר או מחקרים להעביר על ידי לחיצה על שם המחקר (ים). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הקש על &quot;העתק&quot; כפתור הממוקם בחלק העליון של המסך. חלון חדש מראה קבצים וספריות יהיה appאֹזֶן. בחר את ספריית המתאים כונן הבזק מסוג USB מוכנס רק ולחץ על &quot;אישור&quot;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את כונן הבזק USB ממערכת אקו ולהכניס אותו ליציאת USB במחשב כדי לשמש לניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את תוכנת אקו. הקש על &quot;העתק מ&quot; כפתור הממוקם בחלק העליון של המסך. שים חלון חדש מראה קבצים וספריות. בחר מחקרים המיועדים להעתקה מספריית המתאים כונן הבזק מסוג USB מוכנס רק ולחץ על &quot;אישור&quot;. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר העתקת הקבצים, לצפות בם ברשימת המחקר. כדי להתחיל לנתח מחקר, לחיצה כפולה על שמו ובחר בשם של הניתוח המפעיל. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתוח הפרוזדור השמאלי הערה: עבור כל מידות הפרוזדורים הבאות משתמשות את האק&quot;ג כמדריך לבחירת P-הגל כנקודה שבו החוקר רוצה למדוד את LA. זו תואמת את זמן התכווצות מראש פרוזדורים כאשר הדואר LA הוא בתפוסה הגדולה שלה. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את הסרטון המקביל לממד סופריור-- הנחות של הפרוזדור השמאלי (שלב 2.1.3). קבע את זמן התכווצות מראש פרוזדורים באמצעות EKG כמדריך. החלל בדרך זו נמדדת לפי הקיבולת הגדולה שלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מסרגל כלי בחלק העליון של המסך, לחץ על &quot;כלים&quot; ולאחר מכן &quot;מדידות&quot;. חלון חדש יופיע. לחץ על הסמל &quot;מרחק ליניארי כלי המדידה&quot; (זה תואם את הסמל הראשון על הפינה השמאלית העליונה של החלון). מדוד את החלל בקוטר הגדול ביותר שלה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את התמונה המתאימה לממד Anterior-האחורי של הפרוזדור השמאלי (שלב 2.1.5). קבע את זמן התכווצות מראש פרוזדורים באמצעות EKG כמדריך. החלל בדרך זו נמדדת לפי הקיבולת הגדולה שלה. כדי למדוד את זה חוזר על שלב 4.2.2. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את התמונה המתאימה למימד Medio-צדדי של הפרוזדור השמאלי (שלב 2.1.8). קבע את contrac מראש פרוזדוריםזמן tion באמצעות EKG כמדריך. החלל בדרך זו נמדדת לפי הקיבולת הגדולה שלה. מדוד את החלל מן מחץ interatrial אל הקיר שמנגד בצורה אלכסונית. כדי למדוד את זה חוזר על שלב 4.2.2. הערה: חזור על שלבי 4.2.1 דרך 4.2.4 לפחות 3 פעמים ולרכוש את הערכים הממוצעים למזער שגיאה. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ניתוח כלי נהדר הערה: עבור כל מידות כלי הנהדרות הבאות משתמשות את האק&quot;ג כמדריך כדי לבחור פרק זמן לאחר מורכבי QRS כנקודה שבו החוקר רוצה למדוד. זו תואמת את הנקודה שבה הכלי הנהדר נמצא הקיבולת הגדולה שלהם. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את הסרטון מתאים האאורטה (שלב 2.2.3). לקבוע נקודה לאחר QRS באמצעות EKG. מדוד את הקוטר בזווית של 90 מעלות באמצעות בדפנות כלי הדם כהפניה. כדי למדוד את זה חזור על שלב 4.2.2 </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחר את הסרטון מתאים עורק הריאה (שלב 2.2.5). לקבוע נקודה לאחר שRS באמצעות EKG. מדוד את הקוטר בזווית של 90 מעלות באמצעות בדפנות כלי הדם כהפניה. בחר במטוס מעל הסתעפות עורק הריאה. כדי למדוד את זה חוזר על שלב 4.2.2. </li></ol></li></ol>

<ol>
	<li>Upadhya, B., Taffet, G. E., Ping, C., Kitzman, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Heart+failure+with+preserved+ejection+fraction+in+the+elderly:+scope+of+the+problem.">Heart failure with preserved ejection fraction in the elderly: scope of the problem.</a> Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 83, 73-87 (2015).</li><li>Mclaughlin, V. V., Archer, S. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ACCF+/+AHA+Expert+Consensus+Document+Expert+Consensus+Document+ACCF+/+AHA+2009+Expert+Consensus+Document+on+Pulmonary+Hypertension+A+Report+of+the+American+College+of+Cardiology+Foundation+Task+Force+on+Expert+Consensus+Documents+and+the+American+Heart+Association.">ACCF / AHA Expert Consensus Document Expert Consensus Document ACCF / AHA 2009 Expert Consensus Document on Pulmonary Hypertension A Report of the American College of Cardiology Foundation Task Force on Expert Consensus Documents and the American Heart Association.</a> Circulation. , 2250-2294 (2009).</li><li>Cieslik, K. A., Taffet, G. E., Carlson, S., Hermosillo, J., Trial, J., Entman, M. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Immune-inflammatory+dysregulation+modulates+the+incidence+of+progressive+fibrosis+and+diastolic+stiffness+in+the+aging+heart.">Immune-inflammatory dysregulation modulates the incidence of progressive fibrosis and diastolic stiffness in the aging heart.</a> Journal of Molecular and Cellular Cardiology. 50 (1), 248-256 (2011).</li><li>Tate, C. A., Taffet, G. E., Hudson, E. K., Blaylock, S. L., McBride, R. P., Michael, L. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enhanced+calcium+uptake+of+cardiac+sarcoplasmic+reticulum+in+exercise-trained+old+rats.">Enhanced calcium uptake of cardiac sarcoplasmic reticulum in exercise-trained old rats.</a> Am J Physiol Heart Circ Physiol. 258 (2), H431-H435 (1990).</li><li>Kitzman, D. W., Daniel, K. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Diastolic+Heart+Failure+in+the+Elderly.">Diastolic Heart Failure in the Elderly.</a> Heart Failure Clinics. 3 (4), 437-453 (2007).</li><li>Sanderson, J. E., Rusconi, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=How+to+diagnose+diastolic+heart+failure+a+consensus+statement+on+the+diagnosis+of+heart+failure+with+normal+left+ventricular+ejection+fraction+by+the+Heart+Failure+and+Echocardiography+Associations+of+the+European+Society+of+Cardiology.">How to diagnose diastolic heart failure a consensus statement on the diagnosis of heart failure with normal left ventricular ejection fraction by the Heart Failure and Echocardiography Associations of the European Society of Cardiology.</a> Eur Heart J. , 2539-2550 (2007).</li><li>Medrano, G., Hermosillo-Rodriguez, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Left+Atrial+Volume+and+Pulmonary+Artery+Diameter+Are+Noninvasive+Measures+of+Age-Related+Diastolic+Dysfunction+in+Mice.">Left Atrial Volume and Pulmonary Artery Diameter Are Noninvasive Measures of Age-Related Diastolic Dysfunction in Mice.</a> The Journals of Gerontology Series A: Biological Sciences and Medical Sciences. (16), 1-10 (2015).</li><li>Franco, F., Thomas, G. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Magnetic+Resonance+Imaging+and+Invasive+Evaluation+of+Development+of+Heart+Failure+in+Transgenic+Mice+With+Myocardial+Expression+of+Tumor+Necrosis+Factor-+.">Magnetic Resonance Imaging and Invasive Evaluation of Development of Heart Failure in Transgenic Mice With Myocardial Expression of Tumor Necrosis Factor- .</a> Circulation. 99, 448-454 (1999).</li><li>Jenkins, C., Bricknell, K., Marwick, T. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Use+of+real-time+three-dimensional+echocardiography+to+measure+left+atrial+volume:+Comparison+with+other+echocardiographic+techniques.">Use of real-time three-dimensional echocardiography to measure left atrial volume: Comparison with other echocardiographic techniques.</a> Journal of the American Society of Echocardiography. 18 (9), 991-997 (2005).</li><li>Ujino, K., Barnes, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Two-dimensional+echocardiographic+methods+for+assessment+of+left+atrial+volume.">Two-dimensional echocardiographic methods for assessment of left atrial volume.</a> The American journal of cardiology. 98 (9), 1185-1188 (2006).</li><li>Scalia, G. M., Scalia, I. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=ePLAR+-+The+echocardiographic+Pulmonary+to+Left+Atrial+Ratio+-+A+novel+non-invasive+parameter+to+differentiate+pre-capillary+and+post-capillary+pulmonary+hypertension.">ePLAR - The echocardiographic Pulmonary to Left Atrial Ratio - A novel non-invasive parameter to differentiate pre-capillary and post-capillary pulmonary hypertension.</a> International Journal of Cardiology. 212, 379-386 (2016).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

ישנם שלושה שלבים קריטיים כדי למדוד את LAV בהצלחה, אבי העורקים ואת הרשות קטרים. במהלך ההגדרה חשובה להסיר את הפרווה לגמרי על החזה; כשל לעשות זאת תיגרם הפרעה עם איכות תמונה. במהלך Image Acquisition צעדים חשוב להשיג כל תמונה עם החללית ולסנן המתאימים כמו פריימים לשניה להשתנות מן החללית לחקור: כי הוא 25 מגה-הרץ ומסנן לב עבור הערכת LAV ו -30 MHz ומסנן בטן להערכה של קטרים ​​האאורטה והרשות הפלסטינית. החוקר עשוי להיות מוגבל לעתים על ידי רכישת תמונה עניה אם העכבר יש כמות גדולה של שומן או אם צלע מקשה לקבל חלון טוב. במהלך ניתוח תמונה צעדים חשוב למדוד את חללים בבית והקיבולת המקסימלית שלהם כמתואר בסעיף נציג תוצאות. השתמש EKG כמו הדרכה. אקו ידוע להיות תלוי במפעיל. טכניקה זו דורשתהיכרות עם האנטומיה של הלב וחלונות אקו לרכישת התמונה הטובה ביותר, כמו גם לצמצם את זמן המחקר. היכרות נעשית רלוונטית כדי למנוע סיבוכים המופקים משימוש הממושך של isoflurane כגון האטת קצב הלב והפשרה המודינמי. כדי למנוע זאת, מעקב צמוד של החיה חייב להיות מובטח על ידי שמירה על קצב הלב מעל 400 פעימות / דקה לאורך כל תקופת המחקר. טכניקה זו מציעה יתרונות רבים לעומת טכניקות זמינות אחרות כדי להעריך תפקוד לב אצל עכברים. לעומת צנתור פולשני היא טכניקה לא פולשנית, ללא מסוף המאפשר מדידות סדרתי; לעומת MRI, זה זול יותר ומהיר יותר 8. זו טכניקה חדשה למדידת LAV וקוטר הרשות באמצעות אקוקרדיוגרפיה 2D פותח דלתות להתערבויות צג ומחקר נוסף במדעי לב-ריאה.

המתודולוגיה הנוכחית מלמדת החוקר כיצד למדוד ולהשתמש LAV, קוטר האאורטה בקוטר הרשות עם אקו 2D בעכברים תחת isoflurane. אי ספיקת לב עם מקטע פליטה השתמר (HFpEF) אצל אנשי קשישים משפיעה עד 10% באותם 80 שנים ומעלה 1 ותוצאות תחלואה ותמותה משמעותיות. תמותה משמעותית להתרחש גם מיתר לחץ דם ריאתי (PH), תהליך מחלה פנימי עם הצגת תסמינים דומים כמו HFpEF, שבו מורם לחצי עורק ריאה להוביל קוצר נשימת exertional, אי ספיקת לב ימנית פרוגרסיבי, ולעתים קרובות מוות. 2 השכיחות הגוברת של שני HFpEF ו PH מסמנים את הצורך בפיתוח שיטה המאפשרת הערכה מדויקת וניטור של התערבויות במודלים Murine בגישה לא פולשנית, ללא סופנית. הזדקנות מובילה להידרדרות בתפקוד הדיאסטולי באמצעות שינויים-art חדריתהתקשות erial, תפקוד כלי דם, דלקת 3, קנה סידן לקוי 4, ירד היענות β-adrenergic, ו deconditioning הפיסית לייצר האטת הרפיה פעילה גדלה נוקשות פסיביות. במשך הזמן הזה מוביל ללחץ מילוי LV גדל והגדלת הפיצוי של LA. 5 למרות אטיולוגיות אחרות כגון תפקוד מסתמית (regurgitation צניפי או היצרות) ותהליכים infiltrative לגרום הגבהים בלחץ ונפח ב LA 1, האיגוד האירופאי לקרדיולוגיה תומך תוספת של גודל LA כהשתקפות לא פולשנית של תפקוד LV. 6 קורלציות בין נפח אנג&#39;לס אמצעים פולשניים של תפקוד דיאסטולי נחקרה בעכברים. נפח LA בקורלציה עם הבדלים בתפקוד נקבע פולשני בתוך קבוצות גיל הוא 14- ו מ 31 חודשים בתקֶרַח. בעכברים 14 חודשים בת, נפח LA בקורלציה עם שלושה אמצעי פולשניים רמים תפקוד דיאסטולי -dP / dtmin (r 2 = .5, p &lt;0.05), טאו (זמן קבוע של הרפיה, (r 2 = .6, p &lt;0.05), והלחץ הדיאסטולי חדרית בקצה השמאלי (r 2 = .25, p &lt;0.05). עבור 31 חודשים בן עכברים, המתאמים בין נפח אנג&#39;לס -dP / dtmin (r 2 = .92, p &lt; 0.05) ו LVEDP (r 2 = .61, p &lt;0.05) ניכר אף היחסים עם טאו היה פחות ברורים. לכן, נפח LA גדל עם ירידת ערך דיאסטולי לא רק בקבוצות אבל בתוך קבוצות גיל. 7 מחקרים של תפקוד לב במודלי Murine באמצעות טכניקות קטטר כדי להעריך את הביצועים של לב, למרות קפדני ואמין, מוגבלים עקב אי ההתאמה שלהם עם הערכות חוזרות ונשנות. 8 חלופות אמצעים פולשניים כגון אקו MRI ו 3D יכול להיות גםיותר מדויק מאשר טכניקות 2D אקו, אבל הם יקרים יותר; אקו 2D נחשב הולם להערכת נפח LA. 9, 10 הערכת היקף LA וקוטר רשות עם אקו מאפשרת האפליה בין דגמים המייצרים עליות עיקריות התנגדות עורק ריאה וכתוצאה מכך לעלייה בקוטר רשות ללא שינוי בלחץ LA או LAV מאלה שבו עורק הריאה ושמאל אטריום הוא להגדיל כמו בעקבות לחצי מילוי גבוהים בצד השמאלי של הלב. גישה זו צולמה על ידי ואח סקאליה. שהראה כי אצל אנשים, עורק ריאת אקו יחס שמאל פרוזדורים (ePLAR) הוא פרמטר להבדיל במדויק בין חולים עם יתר לחץ דם נימים מראש ריאתי-capillaryhypertension פוסט. 11

<table><tbody><tr><td>Vevo 770 high-resolution in vivo micro-imaging system</td><td>Visual Sonics</td><td>Vevo 770-120</td><td>Echocardiographic Equipment</td></tr><tr><td>707B RMV (Real time MicroVisualization) 30 MHz Scanhead with encapsulated transducer&amp;nbsp;</td><td>Visual Sonics</td><td>707B-256</td><td>Real Time Microvisualization Scanhead</td></tr><tr><td>710B RMV (Real time MicroVisualization) 25 MHz Scanhead with encapsulated transducer&amp;nbsp;</td><td>Visual Sonics</td><td>710B-159</td><td>Real Time Microvisualization Scanhead</td></tr><tr><td>Vevo integrated rail system including physiological monitoring unit&amp;nbsp;</td><td>Visual Sonics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inhalation Anesthesia System</td><td>VetEquip</td><td>VE2627</td><td>Anesthesia System</td></tr><tr><td>Isofluorane</td><td>Henry Schein</td><td>50033</td><td></td></tr><tr><td>Electric razor&amp;nbsp;</td><td>Wahl</td><td>General supply</td><td></td></tr><tr><td>Hair removal cream</td><td>Nair</td><td>General supply</td><td></td></tr><tr><td>Transductor cream</td><td>Parker</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Transductor gel</td><td>Parker</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Standard Gauze pads&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>McKeeson</td><td>General supply</td><td></td></tr><tr><td>Tape</td><td>Durapore</td><td>General supply</td><td></td></tr><tr><td>Nose cone&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td>For anesthesia delivery</td></tr><tr><td>Water&amp;nbsp;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vet eye ointment&amp;nbsp;</td><td>Puralube</td><td>General supply&amp;nbsp;</td><td>To prevent dryness&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Cotton tipped applicators&amp;nbsp;</td><td></td><td>General supply</td><td></td></tr><tr><td>USB Flash Drive</td><td></td><td>General supply</td><td></td></tr></tbody></table>

murine echocardiography of left atrium, aorta, and pulmonary artery

<html> המתודולוגיה הנוכחית מלמדת החוקר כיצד למדוד ולהשתמש LAV כתחליף של גבהים כרוניים בלחץ הדיאסטולי שמאל חדרית באמצעות אקוקרדיוגרפיה, כמו גם להשיג מדידות של קוטר אב העורקים ואת הרשות בעכברים. עכברים מבוגרים מ -10 ד גיל ניתן לנתח באמצעות הטכניקה הנוכחית. הטכניקה מורכבת מ 3 שלבים עיקריים: קמה, רכישת תמונה, וניתוח תמונה. שלב ההגדרה מורכב מקבל את העכבר הרדים עם 1% isoflurane, גילוח זה, מקליט אותו במצב שכיבה ללוח EKG מחומם שבו רכישת התמונה תתקיים. צעד רכישת תמונה מורכב לומד לזהות את מבני לב וקבל כל התמונות הנדרשות עם חללית הכתב שלה וצירים כדי להיות מסוגל לחשב כרכים ובקטרים. צעד ניתוח תמונה מורכב מדידת התמונות שנרכשו בעבר בעזרת תוכנת מחשב. s = &quot;jove_content&quot;&gt; היתרונות של הטכניקה המוצעת כוללים מהיר (15 דקות) הליך שיאפשר לחוקר להעריך התערבויות בגישה לא פולשנית, ללא מסוף ולכן פעל באותה העכבר לאורך זמן; ניתן להשתמש כל עכבר כשליטה משלה. עובדה זו בתוספת נתקל באותה למפעיל לבצע כל הרכישה והניתוח עבור הניסוי כולו ממזערות את המגבלה של תלות מפעילה. המתודולוגיה הנוכחית שימושית לחוקרי עכבר ברפואת לב וכלי דם ריאתי.

<html> הערכת היקף LA וקוטר רשות עם אקו מאפשרת אפליה בין דגמים שבו גדלה תוצאות התנגדות עורק ריאה בקוטר PA מוגבר, ללא שינוי LAV מאלה שבו עורק הריאה והגדלת שמאל פרוזדורים הם בעקבות לחצי מילוי מוגבהים על בצד השמאלי של הלב. תמונות מוצגות ההבדלים בשנתי pathophysiologies מוצגות באיור 4. תמונות של LA והרשות הפלסטינית הם מנער, יתר לחץ דם ריאתי ופגיעה בתפקוד הדיאסטולי LV הקשורות לגיל המושרה היפוקסיה. המודלים יתר לחץ דם ריאתי לפתח גידול בקוטר הרשות ללא שינוי בנפח שמאל אטריום פני תקופה 4 שבועות. לשם השוואה, חיות הישנות לפתח גידול בשני קוטר עורק הריאה שלהם ונפח שמאל אטריום טוען כי התפשטות לאחור של לחץ לנהוג הגידול בקוטר רשות בקבוצה זו. FO: keep-together.within-page = &quot;1&quot;&gt; <img alt="איור 4" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig4.jpg" /> איור 4: LA סופריור-- נחות קוטר רשות על עכבר רגיל, עכבר דגם יתר לחץ דם ריאתי ו עכבר ישן עם גיל הקשורים LV הדיאסטולי חוסר תפקוד. תמונות (א) ו- (ב) להראות את LA סופריור-- נחות רשות קוטר בהתאמה של עכבר רגיל בן 15 שבועות. תמונות (ג) ו- (ד) להראות את LA סופריור-- נחות רשות קוטר בהתאמה של עכבר מודל יתר לחץ דם ריאתי 15 שבועות. יתר לחץ דם ריאתי הושר על ידי חשיפה של 10% היפוקסיה במשך ארבעה שבועות ואת לחץ הסיסטולי הרשות הוגדל 75% על ידי מחקרי קטטר לב נכונים. שימו לב להבדל בקוטר הרשות. תמונות (ה) ו- (ו) להראות את LA סופריור-- נחות רשות קוטר בהתאמה של עכבר בן 21 חודשים עם לחץ הדיאסטולי סוף גבוה LV. לחץ המילוי wכמו גדל כמעט 300% בעכברים הישנים. יש לציין כי הן LA וקוטר הרשות גדולות לעומת 15 השבועות העכברים ישנים. סולם יחידות במילימטרים. דה מרקר &quot;Δ&quot; מסמל את הנקודה EKG שבו התמונה המוצגת הושג. LA SI: אטריום שמאל סופריור-- נחות, PA: עורק ריאה. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig4large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> כדי להגיע לרמת דיוק בתוצאות יש צורך המדידות ב העיתוי המתאים שלהם במחזור הלב. כאשר מודדים את LAV, החוקר רוצה למדוד אטריום בתפוקה הגדולה שלה עבור כל שלושת הצעדים, זה אומר לפני התכווצות פרוזדורים. אם תוספת LA נתפסת בכל עכברים בתצוגת סופריור-- הנחות, החוקרים ממליצים להתעלם ממנו כאשר אתה עושה את המדידה. כאשר מודדים את כלי נהדר החוקר wants למדוד אותם הקיבולת הגדולה שלהם, כלומר לאחר QRS או רק לאחר החדרים הזרימו דם לתוך כלי. איורים 5 עד 9 תמונות להראות המתאים לאותו בעל חיים, נמדד בנקודות זמן שונות על א.ק.ג כדי להמחיש את ההבדלים בין מדידה נכונה ולא נכונה. החוקר יכול לחשב את LAV באמצעות הנוסחה של האליפסה מוּאֲרָך 9, 10 כמו בדוגמה הבאה: (4 * π * ממד סופריור-- נחותים * ממד Anterior-Posterior מימד * Medio-צדדי) / (3 * 2 * 2 * 2) באיור 5, מדידה &quot;נכונה&quot; היא שהושגה באמצעות EKG כמדריך להבטיח החוקר הוא למדוד את הקיבולת הגדולה של החלל. בשנת t במקרה זההוא האטרייה הוא בתפוסה הגדולה שלה כאשר נמדד רק על-גל P. (A, C). מדידה &quot;נכונה&quot; היא לקבל בכל נקודה אחרת מאשר גל P. הוא נוטה לתת ממדים קטנים יותר כמו חוזי אטריום שמאלה או מילויים. (B, D). באיור 6, מדידה &quot;נכונה&quot; היא שהושגה באמצעות EKG כמדריך להבטיח החוקר הוא למדוד את הקיבולת הגדולה של החלל. במקרה זה הפרוזדורים הם בתפוסה הגדולה שלה כאשר נמדדו רק על P-הגל (LA (1)). מדידה &quot;נכונה&quot; היא לקבל בכל נקודה אחרת מאשר גל P. הוא נוטה לתת ממדים קטנים יותר כמו חוזי אטריום שמאלה או מילויים. (LA (2)). באיור 7, מדידה &quot;נכונה&quot; היא שהושגה באמצעות EKG כמדריך להבטיח החוקר הוא למדוד את הקיבולת הגדולה של החלל. הפרוזדורים הם בתפוסה הגדולה שלה כאשר נמדדו רק על-גל P. (A, C). מדידה &quot;נכונה&quot; היא להשיגאד בכל נקודה אחרת מאשר גל P. (B, D). * המחברים חושבים Cine הוא מאוד מועיל לקביעת גבולות LA. החוקר צריך להיות מסוגל לראות את מהלך LA לאורך מחזור הלב. באיור 8, מדידה &quot;נכונה&quot; היא שהושגה באמצעות EKG כמדריך להבטיח החוקר הוא למדוד את הקיבולת הגדולה של כלי השיט. במקרה זה האאורטה הוא בתפוסה הגדולה שלה רק לאחר מורכבי QRS. (A, C). מדידה &quot;נכונה&quot; היא לקבל בכל נקודה אחרת מזו רק לאחר מורכבי QRS. הוא נוטה לתת ממדים קטנים יותר כמו חוזי אב עורקים או מילויים. (B, D). באיור 9, מדידה &quot;נכונה&quot; היא שהושגה באמצעות EKG כמדריך להבטיח החוקר הוא למדוד את הקיבולת הגדולה של כלי השיט. במקרה זה עורק הריאה הוא בתפוסה הגדולה שלה רק לאחר מורכבי QRS. (A, C). מדידה &quot;נכונה&quot; היא השינוי המתקבל כל point אחר מאשר רק לאחר מורכבי QRS. הוא נוטה לתת ממדים קטנים יותר כמו חוזי עורק ריאה או מילויים. (B, D). <img alt="איור 5" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig5.jpg" /> איור 5: LA סופריור-- נחות מדידות. תמונות (א) ו- (ב) מתאימות לאותו דגימת העכבר. סולם יחידות במילימטרים. תמונה (C) תואם את השבר הימני התחתון של EKG של תמונה (A). לא לפי קנה מידה. תמונה (D) תואם את השבר הימני התחתון של EKG של תמונה (B). לא לפי קנה מידה. הערת הסמן &quot;Δ&quot; בתמונות (ג) ו- (ד). דה מרקר &quot;Δ&quot; מסמל את הנקודה EKG שבו התמונה המוצגת הושג. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig5large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 6" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig6.jpg" /> איור 6: LA מדידות Anterior-אחורי. M-Mode לאור שמאל אטריום. הדימוי מתאים נוף M-Mode של פרוזדור השמאלי על מנת לקבל מדידת Anterior-האחורית. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig6large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 7" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig7.jpg" /> איור 7: LA Medio-Lateral מדידות. תמונות (א) ו- (ב) מתאימים לאותו דגימת העכבר. סולם יחידות במילימטרים. (C) תואם שבר של EKG של (A). לא לפי קנה מידה. (ד) תואם שבר את האק&quot;ג של (B). שלאסוּלָם. הערת הסמן &quot;Δ&quot; בתמונות (ג) ו- (ד). דה מרקר &quot;Δ&quot; מסמל את הנקודה EKG שבו התמונה המוצגת הושג. LV: החדר השמאלי, RA: אטריום ימין, LA: אטריום שמאל. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig7large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="הספרה 8" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig8.jpg" /> איור 8: מדידות אבי העורקים. תמונות (א) ו- (ב) מתאימים לאותו דגימת העכבר. סולם יחידות במילימטרים. (C) תואם שבר של EKG של (A). לא לפי קנה מידה. (ד) תואם שבר את האק&quot;ג של (B). לא לפי קנה מידה. הערת הסמן &quot;Δ&quot; בתמונות (ג) ו- (ד). דה מרקר &quot;Δ&quot; מסמל את הנקודה שבה EKGהתמונה המוצגת הושגה. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig8large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 9" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig9.jpg" /> איור 9: מדידות עורק ריאה. תמונות (א) ו- (ב) מתאימות לאותו דגימת העכבר. סולם יחידות במילימטרים. (C) תואם שבר של EKG של (A). לא לפי קנה מידה. (ד) תואם שבר את האק&quot;ג של (B). לא לפי קנה מידה. הערת הסמן &quot;Δ&quot; בתמונות (ג) ו- (ד). דה מרקר &quot;Δ&quot; מסמל את הנקודה EKG שבו התמונה המוצגת הושג. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig9large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> כדי להדגים את השחזור ועקביות של טכניקה זו, החוקרים מציעים שתי דוגמאות מעבודה משלהם. הראשון מציג קבוצה של 19 חודשים עכברים ישנים שעברו אקוקרדיוגרפיה מחקר ולאחר אקו לאחר שבוע לאחר מכן. המחברים אספו את המדידות עבור אטריום שמאל כלי נהדר כפי שתואר לעיל וקיבל את התוצאות הבאות. הגרף בצד שמאל ניתן לראות כל כרך שמאל אטריום של עכבר הפרט מחושב באמצעות הנוסחה אליפסה מוּאֲרָך 9, 10. הגרף בצד ימין ניתן לראות בכל קוטר עורק הריאה של עכבר פרט. הנתונים הראו וריאציה של רק כמה אחוזים. <img alt="איור 10" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig10.jpg" /> איור 10: כרך אטריום שמאל קוטר עורק ריאה על שני תחת הבא<html> essments. (א) מראה את עוצמת קול Atrium שמאל mm³ של שישה עכברים בן 19 חודשים ב -2 ומבדקים שלאחר מכן. (ב) מציג את קוטר העורק הריאתי במ&quot;מ של קבוצת העכברים בן 19 חודשים אותו. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig10large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> כדוגמא שנייה, המחברים מציגים שתי תמונות של עכבר 21 חודשים אותו רכש באותו היום על ידי שני חוקרים שונים. הפנלים שני הראשונים מתאימים התמונות נרכשו על ידי חוקר # 1 ואת הלוחות שני השני מתאים התמונות נרכשו על ידי חוקר # 2. שים לב כי ההבדל &quot;פיצוי להרוויח זמן&quot; אינו משפיע על המדידות. דוגמא זו מדגימה את החשיבות הרבה של בחירת הנקודה ממש QRS תוך מדידת גודל החלל, כפי שתואר לעיל. jove_content &quot;FO: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="איור 11" src="/files/ftp_upload/55214/55214fig11.jpg" /> איור 11: LA סופריור-- נחות בקוטר רשות מאותו העכבר בן 19 חודשים נרכש על ידי שני חוקרים שונים. (א) מראה בקוטר השמאל אטריום סופריור-- נחות. (ב) מראה בקוטר הרשות מאותו העכבר. שתי התמונות נרכשו על ידי אותו חוקר באותו יום. (C) מראה בקוטר השמאל אטריום סופריור-- נחות. (D) מראה בקוטר הרשות מאותו העכבר. שני התמונות נרכשו על ידי חוקר שני באותו היום. סולם יחידות במילימטרים. דה מרקר &quot;Δ&quot; מסמל את הנקודה EKG שבו התמונה המוצגת הושג. LA SI: אטריום שמאל סופריור-- נחות. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55214/55214fig11large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Murine Echocardiography of Left Atrium, Aorta, and Pulmonary Artery at JoVE.com

Murine Echocardiography of Left Atrium, Aorta, and Pulmonary Artery

הפרוטוקול הבא מתאר את המתודולוגיה לרכישה וניתוח תמונות אקו על מנת לקבל את נפח פרוזדורי שמאל (LAV), אב עורקי קוטר (Ao), ואת עורק ריאה (PA) בקוטר בעכברים. טכניקה זו היא הליך פולשני, שאינו מסוף המאפשר הערכה של תפקוד לב-ריאה.

אקו Murine של השמאל אטריום, אבי העורקים, ו עורק הריאה

The present methodology teaches the investigator how to measure and use the LAV as a surrogate of chronic elevations in Left Ventricular diastolic ...

murine-echocardiography-of-left-atrium-aorta-and-pulmonary-artery

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

14.3K Views.  Baylor College of Medicine.  הפרוטוקול הבא מתאר את המתודולוגיה לרכישה וניתוח תמונות אקו על מנת לקבל את נפח פרוזדורי שמאל (LAV), אב עורקי קוטר (Ao), ואת עורק ריאה (PA) בקוטר בעכברים. טכניקה זו היא הליך פולשני, שאינו מסוף המאפשר הערכה של תפקוד לב-ריאה. 

Video: Murine Echocardiography of Left Atrium, Aorta, and Pulmonary Artery

Transthoracic Echocardiography in Mice

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene expression. Transgenic and gene targeting methods can be used to generate mice with altered cardiac size and function,1-3 and as a result, in vivo techniques are needed to evaluate their cardiac phenotype. Transthoracic echocardiography, pulse wave Doppler (PWD), and tissue Doppler imaging (TDI) can be used to provide dimensional measurements of the mouse heart and to quantify the degree of cardiac systolic and diastolic performance. Two-dimensional imaging is used to detect abnormal anatomy or movements of the left ventricle, whereas M-mode echo is used for quantification of cardiac dimensions and contractility.4,5 In addition, PWD is used to quantify localized velocity of turbulent flow,6 whereas TDI is used to measure the velocity of myocardial motion.7 Thus, transthoracic echocardiography offers a comprehensive method for the noninvasive evaluation of cardiac function in mice.

Transthoracic echocardiography offers a noninvasive method for the evaluation of cardiac function in mice. A combination of ultrasound and Doppler imaging modalities can be used to obtain dimensional measurements of the heart and intracardiac blood flow, which together provide an assessment of cardiac systolic and diastolic performance.

אקו Transthoracic ב עכברים

In recent years, murine models have become the primary avenue for studying the molecular mechanisms of cardiac dysfunction resulting from changes in gene ...

Murine Echocardiography and Ultrasound Imaging

Rodent models of cardiac pathophysiology represent a valuable research tool to investigate mechanism of disease as well as test new therapeutics.1 Echocardiography provides a powerful, non-invasive tool to serially assess cardiac morphometry and function in a living animal.2 However, using this technique on mice poses unique challenges owing to the small size and rapid heart rate of these animals.3 Until recently, few ultrasound systems were capable of performing quality echocardiography on mice, and those generally lacked the image resolution and frame rate necessary to obtain truly quantitative measurements. Newly released systems such as the VisualSonics Vevo2100 provide new tools for researchers to carefully and non-invasively investigate cardiac function in mice. This system generates high resolution images and provides analysis capabilities similar to those used with human patients. Although color Doppler has been available for over 30 years in humans, this valuable technology has only recently been possible in rodent ultrasound.4,5 Color Doppler has broad applications for echocardiography, including the ability to quickly assess flow directionality in vessels and through valves, and to rapidly identify valve regurgitation. Strain analysis is a critical advance that is utilized to quantitatively measure regional myocardial function.6 This technique has the potential to detect changes in pathology, or resolution of pathology, earlier than conventional techniques. Coupled with the addition of three-dimensional image reconstruction, volumetric assessment of whole-organs is possible, including visualization and assessment of cardiac and vascular structures. Murine-compatible contrast imaging can also allow for volumetric measurements and tissue perfusion assessment.

This video demonstrates use of a rail-mounted high-frequency ultrasound probe to perform echocardiography on an anesthetized mouse. The methods describe both conventional two-dimensional and M-mode measurements of cardiac function in addition to newer, more powerful tools such as color Doppler, strain analysis, as well as general and targeted contrast imaging.

אקו Murine והדמיה אולטראסאונד

Rodent models of cardiac pathophysiology represent a valuable research tool to investigate mechanism of disease as well as test new therapeutics.1  ...

Murine Fetal Echocardiography

Transgenic mice displaying abnormalities in cardiac development and function represent a powerful tool for the understanding the molecular mechanisms underlying both normal cardiovascular function and the pathophysiological basis of human cardiovascular disease. Fetal and perinatal death is a common feature when studying genetic alterations affecting cardiac development 1-3. In order to study the role of genetic or pharmacologic alterations in the early development of cardiac function, ultrasound imaging of the live fetus has become an important tool for early recognition of abnormalities and longitudinal follow-up. Noninvasive ultrasound imaging is an ideal method for detecting and studying congenital malformations and the impact on cardiac function prior to death 4. It allows early recognition of abnormalities in the living fetus and the progression of disease can be followed in utero with longitudinal studies 5,6. Until recently, imaging of fetal mouse hearts frequently involved invasive methods. The fetus had to be sacrificed to perform magnetic resonance microscopy and electron microscopy or surgically delivered for transillumination microscopy. An application of high-frequency probes with conventional 2-D and pulsed-wave Doppler imaging has been shown to provide measurements of cardiac contraction and heart rates during embryonic development with databases of normal developmental changes now available 6-10. M-mode imaging further provides important functional data, although, the proper imaging planes are often difficult to obtain. High-frequency ultrasound imaging of the fetus has improved 2-D resolution and can provide excellent information on the early development of cardiac structures 11.

Fetal and perinatal death is a common feature when studying genetic alterations affecting cardiac development. High-frequency ultrasound imaging has improved 2-D resolution and can provide excellent information on early cardiac development and is an ideal method to detect the impact on cardiac structure and function prior to death.

אקו העוברי Murine

Transgenic mice displaying abnormalities in  cardiac development and function represent a powerful tool for the understanding  the molecular mechanisms ...

Echocardiographic Assessment of the Right Heart in Mice

Transgenic and toxic models of pulmonary arterial hypertension (PAH) are widely used to study the pathophysiology of PAH and to investigate potential therapies. Given the expense and time involved in creating animal models of disease, it is critical that researchers have tools to accurately assess phenotypic expression of disease. Right ventricular dysfunction is the major manifestation of pulmonary hypertension. Echocardiography is the mainstay of the noninvasive assessment of right ventricular function in rodent models and has the advantage of clear translation to humans in whom the same tool is used. Published echocardiography protocols in murine models of PAH are lacking.
In this article, we describe a protocol for assessing RV and pulmonary vascular function in a mouse model of PAH with a dominant negative BMPRII mutation; however, this protocol is applicable to any diseases affecting the pulmonary vasculature or right heart. We provide a detailed description of animal preparation, image acquisition and hemodynamic calculation of stroke volume, cardiac output and an estimate of pulmonary artery pressure.

This article provides a protocol for the echocardiographic assessment of right ventricular size and pulmonary hypertension in mice. Applications include phenotype determination and serial assessment in transgenic and toxin-induced mouse models of cardiomyopathy and pulmonary vascular disease.

אקו הערכה של הלב הימני בעכברים

Transgenic and toxic models of pulmonary arterial hypertension (PAH) are widely used to study the pathophysiology of PAH and to investigate potential ...

Assessment of Right Ventricular Structure and Function in Mouse Model of Pulmonary Artery Constriction by Transthoracic Echocardiography

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, the RV is significantly affected in pulmonary diseases such as pulmonary artery hypertension (PAH). In addition, the RV is remarkably sensitive to cardiac pathologies, including left ventricular (LV) dysfunction, valvular disease or RV infarction4. To understand the role of RV in the pathogenesis of cardiac diseases, a reliable and noninvasive method to access the RV structurally and functionally is essential.
A noninvasive trans-thoracic echocardiography (TTE) based methodology was established and validated for monitoring dynamic changes in RV structure and function in adult mice. To impose RV stress, we employed a surgical model of pulmonary artery constriction (PAC) and measured the RV response over a 7-day period using a high-frequency ultrasound microimaging system. Sham operated mice were used as controls. Images were acquired in lightly anesthetized mice at baseline (before surgery), day 0 (immediately post-surgery), day 3, and day 7 (post-surgery). Data was analyzed offline using software.
Several acoustic windows (B, M, and Color Doppler modes), which can be consistently obtained in mice, allowed for reliable and reproducible measurement of RV structure (including RV wall thickness, end-diastolic&#160;and end-systolic dimensions), and function (fractional area change, fractional shortening, PA peak velocity, and peak pressure gradient) in normal mice and following PAC.
Using this method, the pressure-gradient resulting from PAC was accurately measured in real-time using Color Doppler mode and was comparable to direct pressure measurements performed with a Millar high-fidelity microtip catheter. Taken together, these data demonstrate that RV measurements obtained from various complimentary views using echocardiography are reliable, reproducible and can provide insights regarding RV structure and function. This method will enable a better understanding of the role of RV cardiac dysfunction.

Right ventricle (RV) dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease, yet limited methodologies are available for its evaluation. Recent advances in ultrasound imaging provide a noninvasive and accurate option for longitudinal RV study. Herein, we detail a step-by-step echocardiographic method using a murine model of RV pressure overload.

הערכה של מבנה הנכון חדרית ותפקוד בעכבר הדגם של תעוקת עורק ריאה על ידי Transthoracic אקו

Emerging clinical data support the notion that RV dysfunction is critical to the pathogenesis of cardiovascular disease and heart failure1-3. Moreover, ...

Echocardiographic Approaches and Protocols for Comprehensive Phenotypic Characterization of Valvular Heart Disease in Mice

The aim of this manuscript and accompanying video is to provide an overview of the methods and approaches used for imaging heart valve function in rodents, with detailed descriptions of the appropriate methods for anesthesia, the echocardiographic windows used, the imaging planes and probe orientations for image acquisition, the methods for data analysis, and the limitations of emerging technologies for the evaluation of cardiac and valvular function. Importantly, we also highlight several future areas of research in cardiac and heart valve imaging that may be leveraged to gain insights into the pathogenesis of valve disease in preclinical animal models. We propose that using a systematic approach to evaluating cardiac and heart valve function in mice can result in more robust and reproducible data, as well as facilitate the discovery of previously underappreciated phenotypes in genetically-altered and/or physiologically-stressed mice.

This protocol provides a detailed description of the echocardiographic approach for comprehensive phenotyping of heart and heart valve function in mice.

גישות פרוטוקולים אקו לאפיון פנוטיפי מקיף של מסתמית מחלות לב בעכברים

The aim of this manuscript and accompanying video is to provide an overview of the methods and approaches used for imaging heart valve function in ...

Echocardiographic Measurement of Right Ventricular Diastolic Parameters in Mouse

Diastolic dysfunction is a prominent feature of right ventricular (RV) remodeling associated with conditions of pressure overload. However, the RV diastolic function is rarely quantified in experimental studies. This might be due to technical difficulties in the visualization of the RV in the apical four-chamber view in rodents. Here we describe two positions facilitating the visualization of the apical four-chamber view in mice to assess the RV diastolic function.
The apical four-chamber view is enabled by tilting the mouse fixation platform to the left and caudally (LeCa) or to the right and cranially (RiCr). Both positions provide images of comparable quality. The results of the RV diastolic function obtained from two positions are not significantly different. Both positions are comparably easy to perform. This protocol can be incorporated into published protocols and enables detailed investigations of the RV function.

Here we describe and compare two positions for obtaining the apical four-chamber view in mice. These positions enable the quantification of the right ventricular function, provide comparable results, and can be used interchangeably.

המדידה האקוקרדיוגרפית של פרמטרים של הימני החדרית בעכבר

Diastolic dysfunction is a prominent feature of right ventricular (RV) remodeling associated with conditions of pressure overload. However, the RV ...

Echocardiographic Assessment of Cardiac Anatomy and Function in Adult Rats

The use of experimental animal models has become crucial in cardiovascular science. Most studies using rodent models are focused on two-dimensional imaging to study the cardiac anatomy of the left ventricle and M-mode echo to assess its dimensions. However, this could limit a comprehensive study. Herein, we describe a protocol that allows an assessment of the heart chamber size, left ventricular function (systolic and diastolic) and valvular function. A conventional medical ultrasound machine was used in this protocol and different echo views were obtained through left parasternal, apical and suprasternal windows. In the left parasternal window, the long and short axis were acquired to analyze left chamber dimensions, right ventricle and pulmonary artery dimensions, and mitral, pulmonary and aortic valve function. The apical window allows the measurement of heart chamber dimensions and evaluation of systolic and diastolic parameters. It also allows Doppler assessment with detection and quantification of heart valve disturbances (regurgitation or stenosis). Different segments and walls of the left ventricle are visualized throughout all views. Finally, the ascending aorta, aortic arch, and descending aorta can be imaged through the suprasternal window. A combination of ultrasound imaging, Doppler flow and tissue Doppler assessment have been obtained to study cardiac morphology and function. This represents an important contribution to improve the assessment of cardiac function in adult rats with impact for research using these animal models.

A non-invasive protocol for transthoracic echocardiography assessment of cardiac anatomy and function for adult rats is presented in the current study. The heart valves, all four cardiac chambers and the ascending aorta, aortic arch and descending aorta are studied in detail.

הערכת אקו-קרדיולוגית של אנטומיה ותפקוד בחולדות למבוגרים

The use of experimental animal models has become crucial in cardiovascular science. Most studies using rodent models are focused on two-dimensional ...

Echocardiographic Characterization of Left Ventricular Structure, Function, and Coronary Flow in Neonate Mice

Echocardiography is a non-invasive procedure that enables the evaluation of structural and functional parameters in animal models of cardiovascular disease and is used to assess the impact of potential treatments in preclinical studies. Echocardiographic studies are usually conducted in young adult mice (i.e., 4-6 weeks of age). The evaluation of early neonatal cardiovascular function is not usually performed because of the small size of the mouse pups and the associated technical difficulties. One of the most important challenges is that the short length of the pups&#39; limbs prevents them from reaching the electrodes in the echocardiography platform. Body temperature is the other challenge, as pups are very susceptible to changes in temperature. Therefore, it is important to establish a practical guide for performing echocardiographic studies in small mouse pups to help researchers detect early pathological changes and study the progression of cardiovascular disease over time. The current work describes a protocol for performing echocardiography in mouse pups at the early age of 7 days old. The echocardiographic characterization of cardiac morphology, function, and coronary flow in neonatal mice is also described.

The present protocol describes the echocardiographic assessment of left ventricular morphology, function, and coronary blood flow in 7-day old neonate mice.

אפיון אקוקרדיוגרפי של מבנה החדר השמאלי, תפקודו וזרימה כלילית בעכברים ילודים

Echocardiography is a non-invasive procedure that enables the evaluation of structural and functional parameters in animal models of cardiovascular ...

Transthoracic Echocardiography to Assess Post-Resuscitation Left Ventricular Dysfunction After Acute Myocardial Infarction and Cardiac Arrest in Pigs

One of the main causes of out-of-hospital cardiac arrest is acute myocardial infarction (AMI). After successful resuscitation from cardiac arrest, approximately 70% of patients die before hospital discharge due to post-resuscitation myocardial and cerebral dysfunction. In experimental models, myocardial dysfunction after cardiac arrest, characterized by an impairment in both left ventricular (LV) systolic and diastolic function, has been described as reversible but very little data are available in cardiac arrest models associated with AMI in pigs. Transthoracic echocardiography is the first-line diagnostic test for the assessment of myocardial dysfunction, structural changes and/or AMI extension. In this pig model of ischemic cardiac arrest, echocardiography was done at baseline and 2-4 and 96 hours after resuscitation. In the acute phase, the examinations are done in anesthetized, mechanically ventilated pigs (weight 39.8 &#177; 0.6 kg) and ECG is recorded continuously. Mono- and bi-dimensional, Doppler and tissue Doppler recordings are acquired. Aortic and left atrium diameter, end-systolic and end-diastolic left ventricular wall thicknesses, end-diastolic and end-systolic diameters and shortening fraction (SF) are measured. Apical 2-, 3-, 4-, and 5-chamber views are acquired, LV volumes and ejection fraction are calculated. Segmental wall motion analysis is done to detect the localization and estimate the extent of myocardial infarction. Pulsed Wave Doppler echocardiography is used to record trans-mitral flow velocities from a 4-apical chamber view and trans-aortic flow from a 5-chamber view to calculate LV cardiac output (CO) and stroke volume (SV). Tissue Doppler Imaging (TDI) of LV lateral and septal mitral anulus is recorded (TDI septal and lateral s&#39;, e&#39;, a&#39; velocities). All the recordings and measurements are done according to the recommendations of the American and European Societies of Echocardiography Guidelines.

Transthoracic echocardiography is the first-line diagnostic test for post-resuscitation left ventricular dysfunction and structural changes in a pig model of cardiac arrest.