Name: long-term catheterization of the intestinal lymph trunk and collection of lymph in neonatal pigs
Uploaded: 2016-03-05T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 25 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs at JoVE.com

The work was supported in part by funding from Alberta Livestock and Meat Agency and Natural Science and Research Council Discovery grant to S. D. Proctor.

כל הנהלים על חיות ניסוי המתוארות הוא סרטון ואת כתב היד אושרו על ידי ועדת הטיפול בבעלי החיים המוסדיים השתמש ועקב אחר ההנחיות שנקבעו על ידי המועצה הקנדית של טיפול בבעלי החיים. 1. הרדמה כירורגית והכנת כירורגים של החזירים הילודים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> בחדר כניסה נפרדת, premedicate 25 חזירים ק&quot;ג סמוך לבסיס של הצוואר עם קוקטייל תרופות הרגעה-הרדמה תוך שרירית המכיל: azaperone (0.3 מ&quot;ג / ק&quot;ג), קטמין הידרוכלוריד (10 מ&quot;ג / ק&quot;ג), dexmedetomidine (15 מיקרוגרם / ק&quot;ג). הערה: הוסף עצירות (0.005-.02 מ&quot;ג / ק&quot;ג) של קוקטייל התרופות מראש הרדמה לשיכוך כאבים התוך אופרטיבית משופרת. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרדים את חזירים בגז משאיפת isoflurane בשאיפה (isoflurane 4-5% ב 500 מ&quot;ל-1000 מ&quot;ל / דקה O 2) באמצעות מסיכת פנים. דמיינו את מיתרי הקול באמצעות היקף בגרון וטרינרי (ארוך להב ישר 17-25 ס&quot;מ), ולהחיל עיקור לידוקאין 10% אקטואלי אל ווקאליתמייתרים. אפשר ספריי לידוקאין לפנות מיתרי הקול 30-60 שניות לפני אינטובציה כדי לצמצם את האפשרות של התכווצות מיתרי הקול ואת חסימה בדרכי הנשימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לצנרר החזירים על ידי העברת הטובוס אזוקים (5.0-7.0 מ&quot;מ קוטר פנימי (ID)) בין מיתרי הקול ולשמור על הרדמה בגז isoflurane (isoflurane 0.5-2.0% ב 1,000-2,000 מ&quot;ל / דקה O 2) באמצעות ארגז סגור מעגל rebreathing מערכת הרדמה במהלך הניתוח. להעריך את רמת הרדמה מטון לסת, ושניהם תגובות רפלקס דוושת palpebral. גז הרדמה פג תוקף הוא יישחט פרק מחוץ לחדרי הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> נקה את המשטח החיצוני של האוזן עם פתרון לקרצף כירורגית 2.0% chlorhexidine ואחריו שטיפת אלכוהול איזופרופיל 70%. עם קטטר 20 G תוך ורידי, קטטר וריד האוזן לספק עירוי נוזלים (פתרון Ringer Lactated; 5-10 מ&quot;ל / ק&quot;ג / שעה) במהלך הניתוח. Secure דופק oximeter אל פני השטח הרירי של הלשון עם medקלטת iCal כדי לפקח על קצב לב ואת הרוויה של חמצון דם היקפי (SpO 2). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הנח את החזיר הרדים בעמדת גב שכיבתה לגלח את בטן הגחון מאמצע חזה caudally להיבט הגחון של החיק. נקו בתחום זה עם שני לסירוגין כלורהקסידין 2.0% סקראבס כירורגית ושוטף במים סטרילית. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעביר את החזיר המורדם כדי לחדרי הניתוח ולהחיל את לקרצף כירורגית הסופית של שטיפת אלכוהול איזופרופיל 70%, לאפשר לו להתייבש, ולאחר מכן לעטוף את החיה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס בדיקת טמפרטורת רקטלית כ ​​סנטימטר 2-4 לתוך פי הטבעת כדי לפקח על טמפרטורת גוף. מניחים החזירים על כרית חימום הסירקולציה המחודשת מים כדי לשמור על טמפרטורת גוף נורמלית (C ° 38-40) במהלך ההליך הכירורגי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכרוך את החזיר עם וילונות ארבעה מגבות להציב דפוס ברבע שמעליה ברחבי הבטן. מניח את הווילון הראשון ברחבי xiphisternum, הווילון השני לאורך בצד הלטרלי של הבטן כ 5 גמ &#39;לרוחב קו אמצע הבטן. מניח את הווילון השלישי ברחבי ציצת ​​ileal של האגן ואת הווילון הרביעי, כמו הווילון השני (אם כי בצד הנגדי), מושם לאורך בצד הלטרלי של הבטן כ 5 סנטימטרים לרוחב קו אמצע הבטן. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים וילון שולחן גדול, עם פתיחת חריץ המאפשר גישה לאתר כירורגית, על וילונות מגבת שבבסיס ולכסות את חזיר ושולחן הכירורגי כולו. הווילון הסופי הוא וילון Steri-הפנויה מונח על וילון השולחן הגדול. </li></ol> 2. ניתוח בטן צנתור של טרונק הלימפה המעיים <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעשות חתך בעור 20 ס&quot;מ עם להב סכין המנתחים כדי לחשוף את שרירי הבטן הבסיסית. לחתוך את שכבות שרירי הבטן עם electrocautery מונו-קוטבית (20 הגדרה ואט) לחשוף את הצפק הקודקודית. פתח קטע ליניארי 20 ס&quot;מ של הצפק הקודקודית במספריים מצנבאום לגשת הקרביים בטן וכלי הלימפה. </li><li&gt; צב מפשקים על ההיבט גולגולתי של החתך הניתוחי לשמור על חלל הבטן פתוח למשך הניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> להרטיב את כל הרקמות עם חם (37 מעלות צלזיוס) תמיסת מלח סטרילית עבור ההליך הכירורגי כולו. הרם בעדינות פלח גדול של המעי כולל המעי הגס, cecum, מעי והמעי הריק יתכן שרמת מחלל הבטן exteriorize אותו בכנף שמאל של חזיר כדי לגשת בבטן העליונה, כבד וכלי הלימפה. אבטח את המעי exteriorized בעמדה עם וילונות מגבת נוספת לגבש קלע לתמוך המעי בעדינות. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אתר את כלי הלימפה, היא מטילה כ 4 סנטימטרים גולגולתי המדיאלי של הווריד התקין כליות, 6 סנטימטרים זנב-medial- גחון של מנהלי עבודת caval ומתחת ההיבט הקרבי של האונה הכבדה ממש ליד הלבלב 22,36,37. זהה את כלי הלימפה כמבנה שקוף חופף למגזר הגחון הימני של וריד שער 36,37. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפרד את הלימפה Vessאל מן fascia שמסביב ידי מנסים לשחזר את הרקמה המצורפת בעדינות עם אפליקטורים Q-Tip. לאחר ההיבטים לרוחב של כלי מופרדים מן הרקמה הסובבת, ליצור פתח &quot;מנהרה&quot; מתחת לכלי השייט עם בוטה קנס שקצהו מלקחיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לעבור שלושה 2-0 תפרי משי מתחת לכלי השייט הלימפה עם מלקחיים בסדר. ולקשור את תפר הזנב ביותר הראשון כדי לחסום, להתרחב ולמלא את הכלי עם הלימפה. Purposefully לעזוב את הקצוות של תפר זה ארוך יחסית (4 ס&quot;מ) כדי לאבטח את הקטטר אל כלי הלימפה. מניח שני תפרים אחרים מופרדים 1.0 סנטימטר אחד מהשני והם כ 1.0-1.5 סנטימטר גולגולתי אל תפר הזנב המאובטח. להשאיר את שני התפרים הללו עם &quot;עניבה ליגטורה רופפת יחידה &#39;כדי לאפשר לאבטחה מהירה יותר של קטטר לתוך הכלי. הערה: הקטע של כלי הלימפה ממוקם בין תפר ligating הזנב ביותר התפר באמצע (של שני תפרי הגולגולת) הוא האתר עבור צנתור. לגבי suחומר ture, 2-0 תפר polyglactin יכול להוות תחליף 2-0 תפרי משי במידת צורך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חותכי חור קטן לתוך הכלי עם מספרי איריס להרחיב את הכלי עם מלקחיים בוטים בסדר. הכנס כ 1.0-1.5 סנטימטר של צינורות קטטר מיוחדים (4.06 קוטר חיצוני (OD) X 2.31 מזהים מ&quot;מ) עם קצה משופע לתוך הכלי ולקשור שני תפרי הגולגולת כדי לאבטח את הקטטר במקום. השתמש קצות התפר הארוכים של תפר הזנב כדי לאבטח את הקטטר אל כלי השיט. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שטוף את מעי exteriorized עם כמויות של מלח חם ובעדינות להחזירו חלל הבטן להבטיח מיצוב אנטומי נכון של המעיים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> Exteriorize הקטטר את פרוותו אמצע שמאל (5-10 ס&quot;מ ventrally מן fossa paralumbar). לעשות חתך בעור עם אזמל להעביר נקז מחלל הבטן אל פני העור כדי ליצור פתח עבור ההחצנה של הקטטר. השתמש מלקחיים גדולים קלי exteriorize הקטטר מן CAV בטןity דרך פתח הנקז. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את הצפק הקודקודית עם דפוס תפר מתמשך פשוט של תפר 2-0 polyglactin עם מחט עגול (קונים). סגור את שכבות שרירי הבטן עם דפוס תפר קטע פשוט עם תפר 2-0 polyglactin על מחט עגול. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> סגור את העור בדפוס subcuticular עם 2-0 תפר polyglactin על מחט חיתוך. Secure את הקטטר exteriorized על העור עם דפוס תפר ארנק חוט תפר ניילון 2-0 על מחט חיתוך. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניח מעייל מיוחד על החזיר ועדיין מורדם להקל מיקומה ולהפחית את הלחץ של החזיר במהלך התאוששות. </li></ol> שחזור 3. פוסט-כירורגית אוסף לימפה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> כ -10 דקות לפני הפסקת הרדמה משאיפת, לנהל bupenorphine (0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג) לשריר כדי לספק שיכוך כאבים שלאחר ניתוח מיידי. המשך bupenorphine (0.1 מ&quot;ג / ק&quot;ג) כל 12 שעות במשך 24-48 שעות כדי לשמור עלשיכוך כאבים שלאחר ניתוח. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צג החזירים לסיבוכים ניתוחים דואר בכל שעות 8-12 לתקופה של 7 ימים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> אסוף את הלימפה 500 מ&quot;ל בקבוקים לשטוף פוליפרופילן, מצופה חומצה ethylenediamine tetraacetic (EDTA), שיושלם עם אנטיביוטיקה; פניצילין (6,000 IU), סטרפטומיצין (6 מ&quot;ג) ו- B amphotericin (3 מ&quot;ג) כל 12 שעות למשך 7 ימים. </li></ol> 4. כימות ApoB48 ליפופרוטאין, טריגליצריד, כולסטרול וחלבון הסכום שנגבה מן לימפה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צנטריפוגה מדגם הלימפה 1,800 XG במשך 5 דקות ב 4 ° C.. איסוף supernatant ולהשתמש בו עבור כימות של טריגליצרידים, כולסטרול וחלבון כולל. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מחלק את supernatant לשלוש דוגמאות: מדגם חי, מים מזוקקים מדולל מדגם 1:20 מדגם סופי המדולל 1: 100 עם מים מזוקקים. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש supernatant חי כדי למדוד את רמות כולסטרול, עם ערכה זמינה מסחרי. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש 1:20 01:100 דגימות בדילול למדוד טריגליצרידים ורמות חלבון הכולל עם ערכה זמינה מסחרי ואת assay חלבון bicinchoninic סך-חומצת בהתאמה. </li></ol> 5. כימות של ליפופרוטאין ApoB48, שנאספו לימפה 38 <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> קבע את הריכוז של ליפופרוטאין ApoB48 עם שיטה מערבית סופגת מותאמת חיסון 38. הלימפה הכולל הפרד (SDS-PAGE) ג&#39;ל אלקטרופורזה polyacrylamide סולפט dodecyl נתרן טריס-acetate- 3-8%. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מעבירים את החלבונים מופרדים אל קרום פלואוריד polyvinylidene (0.45 מיקרומטר) דגירה אותם עם נוגדן polyclonal עז אל apoB (1: 4,000), ולאחר מכן לאגד את זה עם נוגדנים משני אנטי-עז. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לכמת את ליפופרוטאין ApoB48 עם chemiluminescence באמצעות השוואה ליניארי densitometric עם תקן חלבון ApoB48 מכרסם מטוהרים. </li></ol>

The authors have nothing to disclose.

איסוף לימפה במעי הוא שיטה מצוינת לחקור מנגנוני המעורבים שומנים 8-12 ו מטבוליזם התרופה 13-15, סרטן גרורות 16,17, סחר תא ותפקוד מערכת חיסון 18-26, במודלים של בעלי חיים שונים הניסיונות. ואכן, את היכולת לקצור כמויות גדולות של מי היקפי (מביא) ומרכז (efferent וכלי גזע גדולים) הלימפה פני תקופה ממושכת לא הייתה חשובה במיוחד להבנת שינויים זמניים המתרחשים אוכלוסיות תאים הבאים אתגרים עם סוכני ויסות חיסוניים 18-22 , 25,26. באופן דומה, אוסף של הלימפה המרכזי כבר מועיל המגדירה התהליכים המעורבים במטבוליזם ליפופרוטאין 8-12. השירות של אוסף הלימפה תלוי ההצלחה של הליך הצנתור ואת patency של הקטטר בתוך כלי הלימפה. צנתור של כלי הלימפה הגדול מעורבניקוז הלימפה מעיים בחיות גדולות בדרך כלל משתמש באחת משלוש גישות כירורגיות. הטכניקה הראשונה משתמשת בגישת כתף גולגולתי להיכנס צינור החזה שמעל וריד הצוואר המשותף (צינור החזי פרה) 5. השני משתמש בגישת אגף עליונה על ההיבט באמצע לרוחב של הכליה התקינה 32,33. השיטה השלישית כמתוארת בסרט הזה מעסיק אחת מעמד קו אמצע גחון או paramedian 22,35 laparotomy לחשוף את תא מטען הלימפה המעיים ליד הלבלב חופף להיבט התקין הגחון של וריד השער 22,36,37. למרות שגם קו אמצע האגף ועל הגחון העליונים טכניקות כירורגיות לאפשר צנתור של מטען הלימפה המעיים, אנו מאמינים כי גישת קו אמצע הגחון מאפשרת חשיפה טובה יותר של הכלי עם מרחב מספיק בתוך הבטן העליונה להתמודד ולטפל הספינה. חשוב לציין, כמו בכל ניתוח הניסיון ישנם צעדים אשר Particularly חיוני התוצאה המוצלחת של ההליך הניסיון. ישנם ארבעה תחומים עיקריים הדורשים תשומת לב קפדנית בגישת קו אמצע הגחון כדי לגשת כלי הלימפה מעיים. ראשית, אספקת דם מצוינת מעי exteriorized נדרשה, כמו במחזור נפגע ממושכת המעי גורם נימק רירית וכישלון כירורגית מעיים איסכמית. בהליך זה &#39;קלע מגבת&#39; מפחית את המתח על כלי דם mesenteric ידי תמיכת המשקל של המעיים להבטיח זלוף רקמות מעולה. שנית, מניפולציות זהירות של כלי השיט כולל: שחרור כלי השיט מן הסובבים fascia ורקמת שומן, החדרה ובתקיפות הבטחת קטטר בתוך הכלי לאיסוף הלימפה לטווח ארוך הן קריטיות עבור צנתור מוצלח. ואכן, הוא הציע את השלמות המבנית של כלי בחזירים בילוד הוא לא יציב כמו אצל בעלי חיים בוגרים וככזה יכול לקרוע בקלות 39,40 </sup&gt;. שימוש אפליקטורים Q-טיפ לאט ובעדינות נפרדת שכבות fascial ומכשירים קהים הסתיים בסדר לעבור התפר מתחת לכלי השייט מקטין באופן משמעותי את לנקב או קריעה המכוון של כלי הלימפה. טיפול אגרסיבי מדי של כלי לעתים קרובות יוצר כלי פריך עם צנתור קבלת מבנה חלש מאוד מאתגר. שלישית, גורם שכיח של כישלון צנתור הוא &quot;המשייך-אאוט של הקטטר &#39;המכוון מספינת הלימפה. הבטחת קטטר ישירות לכלי השיט מפחית את שכיחות אובדן קטטר. מטרה זו מושגת על ידי קשירת קטטר ישירות לכלי השיט עם תפר הזנב מועסק על מנת להרחיב את כלי השיט. לבסוף, חשוב להבטיח זרימת הלימפה טובה היא הצנתור הבא הווה לפני סגירת בטן. ואכן, אם זרימת הלימפה היא איטית במהלך ההליך, לאורך זמן זה גורם להיווצרות קריש בתוך קטטר ו ניכר מפחית את תקופת אוסף הלימפה. בשנות ה exper של החוקרience, עם אוסף הלימפה לטווח הארוך של הלימפה שאינו מעיים בכבשים 41, זה מאוד קשה כדי להסיר את הקריש מן קטטר כמו קריש מפתחת בתוך קטטר והוא מושרש בתוך כלי הלימפה. כתוצאה מכך, זה יהיה לצמצם במידה ניכרת (כ -40%) את המספרים של חיות צינתור בהצלחה לניסויים לטווח ארוך (נתונים שלא פורסמו). לכן, אם זרימת הלימפה מואטת או פסיקה לשווק במהלך ההליך, הקטטר הלימפה יש לרחם cranially 0.5-1 סנטימטר מאתר הצנתור הראשוני. כל הדגמים לשמש כדי לחקור שאלות מדעיות יש מגבלות inherant צנתור של המטען הלימפה מעיים הוא לא יוצא מן הכלל. המגבלה הבולטת ביותר עבור ההליך היא חוסר היכולת לבודד ביעילות, לצנתר הספינה הלימפה, ולייצב את הקטטר בתוך הכלי. ככזה, הליך זה דורש אנשים עם מיומנות טכנית וכירורגים מעוליםים. מגבלה משמעותית נוספת היא כי פעמים כירורגית ממושכות במהלך ניתוח בטן גדול מגדילות את הסיכון לאחר ניתוח תחלואה ותמותה. יש לציין, עם זאת, החזירים בניסוי שלנו התאוששו במהירות מניתוח ולא היו סיבוכים כמו זיהומים, ileus מעיים, פגיעה ברקמות מוגזמת, או inappetence ביצוע ההליך. בהחלט, חזירים נצפו להיות בהיר, קשוב, ambulating ואכילה בדרך כלל 24 שעות לאחר ניתוח וזה נמשך כל תקופת אוסף 7 יום הלימפה. יש לציין, כי כימיות בסרום או ספירת דם מלאה לא הוערכו חזירים אלה בעקבות הניסוי 7 יום, עבודה קודמת של החוקרים באוסף הלימפה לטווח ארוך בכבשים 41 הוכיחו כי כבשים צינתור היו מעולם leukopenic, lymphopenic, hypoproteinemic עם חוסר איזון אלקטרוליטי או קליני מגלם בריאות לקויה (נתונים שלא פורסמו). חשוב לציין וכאמור לעיל, תצפית זו וקושרת catheteriחזירי Zed גם מוצג מאפיינים קליניים של בריאות טובה. מעניין, חוקרים ציינו וריאציות בהיקף זרימת הלימפה. התזרים היה גדול ביותר במהלך היום כאשר חזירים היו מפרנסים פעילים עם כ 70% של הלימפה היומי שנאסף המתרחשים בשלב זה. 30% הנותרים של זרימת הלימפה קורה בערב במהלך מנוחה ושינה. אפיון נוסף של דגימות הלימפה ניתן איורים 1, 2 ו טבלת 1. איור 1 מדגים כמות קטנה של זיהום עם כ 15% של פלזמה נגזרים ApoB100. הנוכחות של ליפופרוטאין פלזמה בתוך לימפה במעי תצפית כי לעיתים קרובות מתרחשת בחזירים 42. חזירים יונקים, הרוב של ליפופרוטאין המיוצר על-ידי הכבד ושוחרר בפלזמה. מן הפלזמה, ApoB100 מחלחל סביר לתוך איסוף lacteals 42 ולאחר מכן דרך רשת כלי הדם הלימפהמנקז לתוך תא מטען הלימפה המעיים. שיטות שונות של כרומטוגרפיה משמשים כדי להעריך כולסטרול, טריגליצרידים ותכנים פוספוליפידים אחרים בדגימות שנאספו הלימפה 42-45. השיא היחיד באיור 2 מדגים בבירור כולסטרול וטריגליצרידים נוכחים בשבריר chylomicron. שיטה זו היא טכניקה נוחה ומדויקת של ליפופרוטאינים הלימפה פרופיל וצריכה יובאה בחשבון לצורך הערכה טוהר דגימות chylomicron מ לימפה במעי 45. לבסוף, טבלה 1 מספקת רכיבי ביוכימיים של לימפה במעי שנאספו חזירים בילוד 7 ימים שלאחר הניתוח. לסיכום, צנתור ארוך טווח של הגזע לימפה במעי מצליח חזירים צעירים. בעזרת טכניקה זו, ניתן להשתמש צנתור הלימפה לאסוף ולחקור מרכיבי מטבוליזם השומנים. טוהר הלימפה, כמות הלימפה המופקת לכמויות של מרכיבים של מטבוליזם שומניםהם דומים לסכומים נוכחים הלימפה מרכזי חזיר בניסויים אחרים 9,25,26,42. תוצאות המחקר מראים כי העסקת גישה ניתוחית קו אמצע גחון עם דיסקציה רקמות זהירה כלי טיפול לצנתר המטען הלימפה במעי חזירים צעירים היא שיטה מצוינת לאסוף כמויות גדולות של הלימפה מרכזי.

מערכת הלימפה היא שטח אלתר של פיזיולוגיה. במודלים פרה של צנתור הלימפה להתרחש מיני בעלי חיים שונה 1-8 ומשמשים והפרמצבטיקה ומכוני מחקר לחקור מנגנוני המעורבים שומנים 8-12 סמים מטבוליזם 13-15, גרורות סרטן 16 עם טיפול ניסיוני 17, ו -18 תפקוד מערכת החיסון -26. מחקר זה בוחן את שימוש צנתור מטען לימפה במעי במודל חזיר בית למדוד רכיבים של מטבוליזם שומנים בדם. מטבוליזם Lipoprotein מעורב בייצור הפרשת chylomicrons, כמו גם משינויים בשיעורי שומנים הקשורים חלבון כולל. אלה הם שיקולים חשובים כמו שיש הבדלים גדולים במטבוליזם שומנים בין במודלים של מכרסמים נפוצים ובני אדם וככזה, במודלי חזירים לאסוף לימפה במעי יכולים לספק מידע דומה יותר ללימוד שומנים ליtabolism באנשים 27-31. מספר טכניקות כירורגיות משמשות כדי לאסוף את לימפה במעי במינים של בעלי חיים גדולים: גישת כתף גולגולתי (כלומר, צנתור צינור חזה) 5, גישת אגף העליון לרוחב 32-34, וכן קו אמצע גחון או גישת paramedian 22,35. וידאו זה מתאר בפירוט את ההליך הניתוח חזירים בגישה כירורגית קו אמצע גחון עבור הצנתור של המטען לימפה במעי. היתרי טכניקה כירורגית זהירות שיטה זו של צנתור הלימפה לאסוף כמויות גדולות של הלימפה מרכיביו לאורך תקופות ממושכות של זמן. טכניקה זו פותחת מספר עצום של יישומים לתחומים רבים לבחון פונקציות פיסיולוגיות שונות. יישומים יכולים לכלול, אך אינם מוגבלים, ליפופרוטאין גוף וחילוף חומרי שומנים, immunosurveillance, בראשית גידול וגרור, תפקוד מעיים, ואת developmאף אוזן גרון והתקדמות של מחלה דלקתית של המעי.

<table><tbody><tr><td>Miller laryngoscope blade</td><td>Welch Allyn</td><td>68044</td><td>182 mm length</td></tr><tr><td>Surgivet advisor: Vital signs monitor</td><td>Surgivet</td><td>V9203</td><td></td></tr><tr><td>Rectal temperature probe</td><td>Surgivet</td><td>V3417</td><td></td></tr><tr><td>Mono-polar electrosurgery generator</td><td>Valley Lab</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Metzenbaum scissors</td><td>Fine Science</td><td>14518-18</td><td></td></tr><tr><td>Tuffier retractor</td><td>Stevens</td><td>162-11-676</td><td></td></tr><tr><td>Mosquito forceps</td><td>Stevens</td><td>162-7-10</td><td></td></tr><tr><td>Kelly forceps-curved (14cm)</td><td>Stevens</td><td>162-7-38</td><td></td></tr><tr><td>Allis tissue forceps</td><td>Stevens</td><td>162-7-38</td><td></td></tr><tr><td>Forceps dressing-eye (10.2cm)</td><td>Stevens</td><td>162-18-780</td><td></td></tr><tr><td>Forceps dressing-Adison (12.1cm)</td><td>Stevens</td><td>162-17-2510</td><td></td></tr><tr><td>Needle Drivers</td><td>Stevens</td><td>162-V98-42</td><td></td></tr><tr><td>Iris scissors</td><td>Fine science</td><td>14058-11</td><td></td></tr><tr><td>Circulating water pump</td><td>Jorvet</td><td>J-783X</td><td></td></tr><tr><td>Maxitherm-Vinyl blanket</td><td>Jorvet</td><td>J-784C</td><td></td></tr><tr><td>Q tip applicators</td><td>Fisher Scientific</td><td>22-037-960</td><td></td></tr><tr><td>Catheterization&amp;nbsp; tubing (4.06 OD X 2.31 ID)</td><td>Braintree Scientific Inc.</td><td>MRE-160</td><td>Micro-Renethane implantation tubing</td></tr><tr><td>2-0 silk suture</td><td>Ethicon</td><td>LA556</td><td></td></tr><tr><td>2-0 polyglactin suture</td><td>Ethicon</td><td>J443H</td><td>2-0 vicryl</td></tr><tr><td>Large animal jacket</td><td>Lomir Biomedical Inc.</td><td>SSJ2YC</td><td></td></tr><tr><td>Polypropylene wash bottles</td><td>Fisher Scientific</td><td>03-409-22C</td><td>500 ml</td></tr><tr><td>Penicillin-Streptomycin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>D4333</td><td></td></tr><tr><td>EDTA</td><td>Sigma Aldrich</td><td>60-00-4</td><td></td></tr><tr><td>Amphotericin B</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A2411</td><td></td></tr><tr><td>Azaperone</td><td>Elanco Animal Health</td><td></td><td>Stresnil</td></tr><tr><td>Dexmedetomidine hydrochloride</td><td>Zoetis</td><td>6295</td><td>Dexdomitor</td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Abbott Animal&amp;nbsp; Health</td><td>05260-5</td><td>IsoFlo</td></tr><tr><td>Ketamine hydrochloride</td><td>Zoetis</td><td>2626</td><td>Ketaset</td></tr><tr><td>Bupenorphine hydrochloride</td><td>Champion Alstoe Animal Health</td><td></td><td>DIN:02347510</td></tr><tr><td>6 mm Endotracheal tube</td><td>Jorvet</td><td>J-165d</td><td></td></tr><tr><td>10% Lidocaine spray</td><td>AstraZeneca</td><td></td><td>DIN:02003767</td></tr><tr><td>4 % Chlorhexidine surgical scrub</td><td>Partnar Animal Health</td><td>PCH-011</td><td>Diluted: 2.0% solution</td></tr><tr><td>3M Surgical steri- drape</td><td>3M Health Care</td><td>1040</td><td></td></tr><tr><td>SDS page gel</td><td>Invitrogen</td><td>EA0375BOX</td><td>3-8 % tris acetate</td></tr><tr><td>Polyvinylidene fluoride membrane</td><td>Millipore</td><td>IPVH00010</td><td>0.45 &amp;mu;m pore size</td></tr><tr><td>ApoB antibody&amp;nbsp;</td><td>EMD Millipore</td><td>AB742</td><td>1:4000 dilution</td></tr><tr><td>Donkey anti-goat IgG-HRP</td><td>Santa Cruz Biotechnology</td><td>Sc-2304</td><td></td></tr><tr><td>ECL Prime Western Blotting Reagent</td><td>GE Healthcare LifeSciences</td><td>RPN2232&amp;nbsp;&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Triglyceride Kit</td><td>Wako Pure Chemicals</td><td>998-40391/994-40491</td><td></td></tr><tr><td>Total Cholesterol Kit</td><td>Wako Pure Chemicals</td><td>439-17501</td><td></td></tr><tr><td>Total Protein</td><td>&amp;nbsp;Pierce&amp;nbsp;</td><td>23225</td><td>Bicinchoninic Acid Assay</td></tr></tbody></table>

long-term catheterization of the intestinal lymph trunk and collection of lymph in neonatal pigs

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal (central) efferent lymph. Importantly, the collection of central lymph from the intestine enables researchers to study both the mechanisms and lipid constitutes associated with lipid metabolism, intestinal inflammation and cancer metastasis, as well as cells involved in immune function and immunosurveillance. A ventral mid-line surgical approach permits excellent surgical exposure to the cranial abdomen and relatively easy access to the intestinal lymph trunk vessel that lies near the pancreas and the right ventral segment of the portal vein underneath the visceral aspect of the right liver lobe. The vessel is meticulously dissected and released from the surrounding fascia and then dilated with sutures allowing for insertion and subsequent securing of the catheter into the vessel. The catheter is exteriorized and approximately 1 L/24 hr of lymph is collected over a 7 day period. While this technique enables the collection of large quantities of central lymph over an extended period of time, the success depends on careful surgical dissection, tissue handling and close attention to proper surgical technique. This is particularly important with surgeries in young animals as the lymph vessels can easily tear, potentially leading to surgical and experimental failure. The video demonstrates an excellent surgical technique for the collection of intestinal lymph.

<html> צנתור הלימפה של המטען הלימפה מעיים של חזיר בילוד מאפשר איסוף של כ 1 L / 24 שעות של הלימפה מרכזית על תקופה של 7 ימים. הלימפה שנאסף בניסויים זה הכיל רכיבים של מטבוליזם שומנים בדם, כלומר חלבון הלימפה הכולל, ליפופרוטאין ApoB48, טריגליצרידים, חלבון כולל, וכולסטרול. טבלת 1 מדגיש כמויות נציג והמרכיבים השומניים אלה מדגימים הלימפה משולבת של שלושה חזירים. יש לציין, זרימת הלימפה המרכיבים השומנים נמצאים-בקנה אחד עם הערכים של הלימפה המרכזי שדווח על ידי חוקרים אחרים הבאים צנתור של כלי הלימפה מעיים (הלימפה לזרום 570 ± 158 ל 979 ± 284 מ&quot;ל / 24 hr 25, 360 ± 120 MLL / 24 hr כדי 1080 ± 720 מ&quot;ל / 24 hr 26; טריגליצרידים 687 ± 110 מ&quot;ג / ד&quot;ל 9; כולסטרול 63.1 ± 5.6 מ&quot;ג / ד&quot;ל 9); המציין מיקום נכון של הקטטר בתוך כלי הלימפה. ontent &quot;FO: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/53457/53457fig2.jpg" /> איור 2. כרומטוגרפיה נוזלית חלבון מהיר (FPLC) פרופיל הוכחת טוהר הכנה chylomicron ב לימפה במעי החזיר בילוד. הלימפה שנאסף שלושה חזירים מופרדים באמצעות פרוטוקול ultracentrifugation שיפוע צפיפות 1.006 גרם / מיליליטר. הפרופיל מציג שיא יחיד (א) כולסטרול (B) הטריגליצרידים במדגם הלימפה. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53457/53457fig2large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 1" src="/files/ftp_upload/53457/53457fig1.jpg" /> איור 1. ניתוח כתם מערבי נציג הוכחת התרומה ליפופרוטאינים ApoB48 ו ApoB100 ב לימפה במעי החזיר בילוד. לימפה שנאספה שלושחזירים מופרדים באמצעות פרוטוקול ultracentrifugation שיפוע צפיפות 1.006 גרם / מיליליטר. הנתון מוכיח כמות קטנה של זיהום עם כ 15% של פלזמה נגזרת ApoB100. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/53457/53457fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <table fo:keep-together.within-page="1" style=";text-align:right;direction:rtl"><tbody><tr><td></td><td> מאפיינים לימפה </td></tr><tr><td> ApoB48 (מ&quot;ג / מ&quot;ל) </td><td> 3022.4 ± 440.4 </td></tr><tr><td> הטריגליצרידים (מ&quot;ג / ד&quot;ל) </td><td> 607 ± 203.6 </td></tr><tr><td> כולסטרול (מ&quot;ג / ד&quot;ל) </td><td> 58.5 ± 9.6 </td></tr><tr><td colspan="2"> תוצאות מבוטאות ממוצע ± סטיית תקן (n = 3) </td></tr></tbody></table> טבלת 1. רכיבים של לימפה במעי שנאספו חזירים בילוד 7 ימים שלאחר ניתוח. תוצאות חוזרות measures של הלימפה מבוטא מתכוון SD (n = 3)

Watch this Scientific Journal Video about Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs at JoVE.com

Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

We present a surgical procedure to catheterize the intestinal lymph trunk in neonatal pigs to collect large quantities of lipid metabolism components from efferent lymph.

צנתור לטווח ארוך של טרונק לימפה במעי וגביית הלימפה חזירים ילודים

Catheterization of the intestinal lymph trunk in neonatal pigs is a technique allowing for the long-term collection of large quantities of intestinal ...

long-term-catheterization-intestinal-lymph-trunk-collection-lymph

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

8.7K Views.  University of Alberta. We present a surgical procedure to catheterize the intestinal lymph trunk in neonatal pigs to collect large quantities of lipid metabolism components from efferent lymph.

Video: Long-Term Catheterization of the Intestinal Lymph Trunk and Collection of Lymph in Neonatal Pigs

Multispectral Real-time Fluorescence Imaging for Intraoperative Detection of the Sentinel Lymph Node in Gynecologic Oncology

The prognosis in virtually all solid tumors depends on the presence or absence of lymph node metastases.1-3 Surgical treatment most often combines radical excision of the tumor with a full lymphadenectomy in the drainage area of the tumor. However, removal of lymph nodes is associated with increased morbidity due to infection, wound breakdown and lymphedema.4,5 As an alternative, the sentinel lymph node procedure (SLN) was developed several decades ago to detect the first draining lymph node from the tumor.6 In case of lymphogenic dissemination, the SLN is the first lymph node that is affected (Figure 1). Hence, if the SLN does not contain metastases, downstream lymph nodes will also be free from tumor metastases and need not to be removed. The SLN procedure is part of the treatment for many tumor types, like breast cancer and melanoma, but also for cancer of the vulva and cervix.7 The current standard methodology for SLN-detection is by peritumoral injection of radiocolloid one day prior to surgery, and a colored dye intraoperatively. Disadvantages of the procedure in cervical and vulvar cancer are multiple injections in the genital area, leading to increased psychological distress for the patient, and the use of radioactive colloid.
Multispectral fluorescence imaging is an emerging imaging modality that can be applied intraoperatively without the need for injection of radiocolloid. For intraoperative fluorescence imaging, two components are needed: a fluorescent agent and a quantitative optical system for intraoperative imaging. As a fluorophore we have used indocyanine green (ICG). ICG has been used for many decades to assess cardiac function, cerebral perfusion and liver perfusion.8 It is an inert drug with a safe pharmaco-biological profile. When excited at around 750 nm, it emits light in the near-infrared spectrum around 800 nm. A custom-made multispectral fluorescence imaging camera system was used.9.
The aim of this video article is to demonstrate the detection of the SLN using intraoperative fluorescence imaging in patients with cervical and vulvar cancer. Fluorescence imaging is used in conjunction with the standard procedure, consisting of radiocolloid and a blue dye. In the future, intraoperative fluorescence imaging might replace the current method and is also easily transferable to other indications like breast cancer and melanoma.

Fluorescence imaging is a promising innovative modality for image-guided surgery in surgical oncology. In this video we describe the technical procedure for detection of the sentinel lymph node using fluorescence imaging as showcased in gynecologic oncologicy. A multispectral fluorescence camera system, together with the fluorescent agent indocyanine green, is applied.

Multispectral הדמיה בזמן אמת Fluorescence לגילוי intraoperative של הצומת סנטינל הלימפה גניקולוגיות אונקולוגיה

The prognosis in virtually all solid tumors depends on the presence or absence of lymph node metastases.1-3 Surgical treatment most often combines radical ...

A Swine Model of Neonatal Asphyxia

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, perfusion deficit, hypoxic-ischemic encephalopathy, pulmonary hypertension, vasculopathic enterocolitis, renal failure and thrombo-embolic complications. Animal models are developed to help us understand the patho-physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. In comparison to rodents and newborn lambs, the newborn piglet has been proven to be a valuable model. The newborn piglet has several advantages including similar development as that of 36-38 weeks human fetus with comparable body systems, large body size (&tilde;1.5-2 kg at birth) that allows the instrumentation and monitoring of the animal and controls the confounding variables of hypoxia and hemodynamic derangements.
We here describe an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia and allow us to examine the systemic and regional hemodynamic changes during the asphyxiating and reoxygenation process as well as the respective effects of interventions. Further, the model has the advantage of studying multi-organ failure or dysfunction simultaneously and the interaction with various body systems. The experimental model is a non-survival procedure that involves the surgical instrumentation of newborn piglets (1-3 day-old and 1.5-2.5 kg weight, mixed breed) to allow the establishment of mechanical ventilation, vascular (arterial and central venous) access and the placement of catheters and flow probes (Transonic Inc.) for the continuously monitoring of intra-vascular pressure and blood flow across different arteries including main pulmonary, common carotid, superior mesenteric and left renal arteries. Using these surgically instrumented piglets, after stabilization for 30-60 minutes as defined by Z&lt;10% variation in hemodynamic parameters and normal blood gases, we commence an experimental protocol of severe hypoxemia which is induced via normocapnic alveolar hypoxia. The piglet is ventilated with 10-15% oxygen by increasing the inhaled concentration of nitrogen gas for 2h, aiming for arterial oxygen saturations of 30-40%. This degree of hypoxemia will produce clinical asphyxia with severe metabolic acidosis, systemic hypotension and cardiogenic shock with hypoperfusion to vital organs. The hypoxia is followed by reoxygenation with 100% oxygen for 0.5h and then 21% oxygen for 3.5h. Pharmacologic interventions can be introduced in due course and their effects investigated in a blinded, block-randomized fashion.

Large animal models have good translational values in the examination of physiology and pharmacology of neonatal asphyxia. Using newborn piglets, we develop an experimental protocol to simulate neonatal asphyxia which has advantages of studying the systemic and regional hemodynamics, oxygen transport with biochemical and pathologic pathways and correlations.

דגם חזירים של חנק ילודים

Annually more than 1 million neonates die worldwide as related to asphyxia. Asphyxiated neonates commonly have multi-organ failure including hypotension, ...

Lavage-induced Surfactant Depletion in Pigs As a Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome (ARDS)

Various animal models of lung injury exist to study the complex pathomechanisms of human acute respiratory distress syndrome (ARDS) and evaluate future therapies. Severe lung injury with a reproducible deterioration of pulmonary gas exchange and hemodynamics can be induced in anesthetized pigs using repeated lung lavages with warmed 0.9% saline (50 ml/kg body weight). Including standard respiratory and hemodynamic monitoring with clinically applied devices in this model allows the evaluation of novel therapeutic strategies (drugs, modern ventilators, extracorporeal membrane oxygenators, ECMO), and bridges the gap between bench and bedside. Furthermore, induction of lung injury with lung lavages does not require the injection of pathogens/endotoxins that impact on measurements of pro- and anti-inflammatory cytokines. A disadvantage of the model is the high recruitability of atelectatic lung tissue. Standardization of the model helps to avoid pitfalls, to ensure comparability between experiments, and to reduce the number of animals needed.

Lavage-induced Surfactant Depletion in Pigs As a Model of the Acute Respiratory Distress Syndrome ARDS

Repeated pulmonary lavages in anesthetized pigs induce lung injury resembling major aspects of human acute respiratory distress syndrome (ARDS). For this purpose the lungs are repeatedly lavaged with 0.9% saline at 37 &#176;C. The goal of the protocol is a reproducible mitigation of gas exchange and hemodynamics for research in ARDS.

דלדול פעילי שטח הנגרמת שטיפה בחזירים כמודל של תסמונת מצוקה נשימתית חריפה (ARDS)

Various animal models of lung injury exist to study the complex pathomechanisms of human acute respiratory distress syndrome (ARDS) and evaluate future ...

Surgical Placement of Catheters for Long-term Cardiovascular Exercise Testing in Swine

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early cardiopulmonary dysfunction is difficult to diagnose, particularly in animal models, as cardiopulmonary function is often measured invasively, requiring anesthesia. As many anesthetic agents are cardiodepressive, subtle changes in cardiovascular function may be masked. In contrast, chronic instrumentation allows for measurement of cardiopulmonary function in the awake state, so that measurements can be obtained under quiet resting conditions, without the effects of anesthesia and acute surgical trauma. Furthermore, when animals are properly trained, measurements can also be obtained during graded treadmill exercise.
Flow probes are placed around the aorta or pulmonary artery for measurement of cardiac output and around the left anterior descending coronary artery for measurement of coronary blood flow. Fluid-filled catheters are implanted in the aorta, pulmonary artery, left atrium, left ventricle and right ventricle for pressure measurement and blood sampling. In addition, a 20 G&#160;catheter is positioned in the anterior interventricular vein to allow coronary venous blood sampling.
After a week of recovery, swine are placed on a motor-driven treadmill, the catheters are connected to pressure and flow meters, and swine are subjected to a five-stage progressive exercise protocol, with each stage lasting 3 min. Hemodynamic signals are continuously recorded and blood samples are taken during the last 30 sec of each exercise stage.
The major advantage of studying chronically instrumented animals is that it allows serial assessment of cardiopulmonary function, not only at rest but also during physical stress such as exercise. Moreover, cardiopulmonary function can be assessed repeatedly during disease development and during chronic treatment, thereby increasing statistical power and hence limiting the number of animals required for a study.

Here we present a protocol to assess cardiopulmonary function in awake swine, at rest and during graded treadmill exercise. Chronic instrumentation allows for repeated hemodynamic measurements uninfluenced by cardiodepressive anesthetic agents.

מיקום כירורגי של קטטרים לטווח ארוך בדיקת תרגיל לב וכלי דם ב חזירים

This protocol describes the surgical procedure to chronically instrument swine and the procedure to exercise swine on a motor-driven treadmill. Early ...

Direct Cannula Implantation in the Cisterna Magna of Pigs

The glymphatic system is a waste clearance system in the brain that relies on the flow of cerebrospinal fluid (CSF) in astrocyte-bound perivascular spaces and has been implicated in the clearance of neurotoxic peptides such as amyloid-beta. Impaired glymphatic function exacerbates disease pathology in animal models of neurodegenerative diseases, such as Alzheimer's, which highlights the importance of understanding this clearance system. The glymphatic system is often studied by cisterna magna cannulations (CMc), where tracers are delivered directly into the cerebrospinal fluid (CSF). Most studies, however, have been carried out in rodents. Here, we demonstrate an adaptation of the CMc technique in pigs. Using CMc in pigs, the glymphatic system can be studied at a high optical resolution in gyrencephalic brains and in doing so bridges the knowledge gap between rodent and human glymphatics.

This article presents a step-by-step protocol for the direct cannula implantation in the cisterna magna of pigs.

השתלת צינורית ישירה ב"ציסטרנה מגנה של חזירים"

The glymphatic system is a waste clearance system in the brain that relies on the flow of cerebrospinal fluid (CSF) in astrocyte-bound perivascular spaces ...

Neuroscience

Microscopic Observation of Lymphocyte Dynamics in Rat Peyer's Patches

Na&#239;ve lymphocytes recirculate from the blood to the lymphoid tissues under physiological condition and it is commonly recognized as an important phenomenon in the gut immunity. The stroma of secondary lymphoid organs, such as Peyer&#8217;s patches (PPs) or mesenteric lymph nodes, are where na&#239;ve lymphocytes sense antigens. Na&#239;ve lymphocytes circulate through the bloodstream to reach high endothelial venules, the portal of entry into PPs. Some immunomodulators are estimated to influence lymphocyte migration, but the precise evaluation of microcirculation dynamics is very difficult, and establishing a method to observe lymphocyte migration in vivo can contribute to the clarification of the precise mechanisms. We refined the method of collecting lymphocytes from the lymph duct and observing the detailed dynamics of gut-tropic lymphocytes in rat PPs. We chose confocal laser scanning microscopy to observe rat PPs in vivo and recorded it using time-lapse photography. We can now obtain clear images that can contribute to the analysis of lymphocyte dynamics.

Here, we describe a precise method for collecting thoracic duct lymphocytes and observing the migration of gut-tropic lymphocytes in rat Peyer&#8217;s patches for 3 hours using time-lapse photography. This technique can clarify how the dynamics of lymphocytes are affected under inflammatory conditions.

תצפית מיקרוסקופית של לימפוציטים דינמיקה במדבקות של עכברוש פייר

Na&#239;ve lymphocytes recirculate from the blood to the lymphoid tissues under physiological condition and it is commonly recognized as an important ...

Intubation, Central Venous Catheter, and Arterial Line Placement in Swine for Translational Research in Abdominal Transplantation Surgery

Translational surgical research models in swine are crucial for developing safe preclinical protocols. However, the success of the experimental surgeries does not solely rely on the research team's surgical skills; perioperative care and management procedures, like intubation, central venous line, and arterial line placement, are necessary and of the utmost importance for favorable experiment results. As it is uncommon for research teams to have anesthesiologists or any other staff other than the surgical team, the surgical team involved in translational research must acquire and/or develop the skills to perform the perioperative care. The purpose of this paper is to show the techniques of intubation, central venous catheter, and arterial line placement used and perfected at the Toronto Organ Preservation Laboratory over the last 10 years, to be used as a reference for future researchers joining either this team or any other lab performing translational research protocols in swine and/or abdominal transplantation.

To obtain the best possible results, surgeons performing translational research experiments should be proficient at intubation and vascular line placement. This paper describes the techniques used by the Toronto Organ Preservation Laboratory to perform these procedures.

Translational surgical research models in swine are crucial for developing safe preclinical protocols. However, the success of the experimental surgeries ...

צנתר היקמן לגישה ארוכת טווח של כלי הדם בחזירים

Hickman Catheter Use for Long-Term Vascular Access in a Preclinical Swine Model

Central venous catheters (CVCs) are invaluable devices in large animal research as they facilitate a wide range of medical applications, including blood monitoring and reliable intravenous fluid and drug administration. Specifically, the tunneled multi-lumen Hickman catheter (HC) is commonly used in swine models due to its lower extrication and complication rates. Despite fewer complications relative to other CVCs, HC-related morbidity presents a significant challenge, as it can significantly delay or otherwise negatively impact ongoing studies. The proper insertion and maintenance of HCs is paramount in preventing these complications, but there is no consensus on best practices. The purpose of this protocol is to comprehensively describe an approach for the insertion and maintenance of a tunneled HC in swine that mitigates HC-related complications and morbidity. The use of these techniques in &gt;100 swine has resulted in complication-free patent lines up to 8 months and no catheter-related mortality or infection of the ventral surgical site. This protocol offers a method to optimize the lifespan of the HC and guidance for approaching issues during use.

מחבר זרקור: שימוש בצנתר היקמן לגישה ארוכת טווח לכלי דם במודל חזירי פרה-קליני  

A reliable and reproducible approach for the insertion and maintenance of a tunneled Hickman catheter for long-term vascular access in swine is described. Placement of a central venous catheter allows for convenient daily sampling of whole blood from awake animals and intravenous administration of medication and fluids.

שימוש בצנתר היקמן לגישה ארוכת טווח לכלי דם במודל חזירי פרה-קליני

Central venous catheters (CVCs) are invaluable devices in large animal research as they facilitate a wide range of medical applications, including blood ...

צנתור לטווח ארוך של טרונק לימפה במעי וגביית הלימפה חזירים ילודים

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

Multispectral הדמיה בזמן אמת Fluorescence לגילוי intraoperative של הצומת סנטינל הלימפה גניקולוגיות אונקולוגיה

דגם חזירים של חנק ילודים

דלדול פעילי שטח הנגרמת שטיפה בחזירים כמודל של תסמונת מצוקה נשימתית חריפה (ARDS)

מיקום כירורגי של קטטרים לטווח ארוך בדיקת תרגיל לב וכלי דם ב חזירים

השתלת צינורית ישירה ב"ציסטרנה מגנה של חזירים"

תצפית מיקרוסקופית של לימפוציטים דינמיקה במדבקות של עכברוש פייר

Intubation, Central Venous Catheter, and Arterial Line Placement in Swine for Translational Research in Abdominal Transplantation Surgery

שימוש בצנתר היקמן לגישה ארוכת טווח לכלי דם במודל חזירי פרה-קליני

שימוש בצנתר היקמן לגישה ארוכת טווח לכלי דם במודל חזירי פרה-קליני

שימוש בצנתר היקמן לגישה ארוכת טווח לכלי דם במודל חזירי פרה-קליני