Cette technique représente une méthode non invasive pour évaluer le gain ou la perte de fonction musculaire dans un cadre physiologique. Il peut également être utilisé pour évaluer longitudinalement la fonction chez le même sujet pendant la progression de la maladie ou avant, pendant ou après la stratégie de traitement. Cette méthode fournit un véritable test de force maximale car les contractions musculaires sont évoquées de manière quantifiable contrôlée, indépendamment de la motivation du sujet.
Toutes les questions de recherche qui évaluent le muscle squelettique peuvent être amplifiées par cette méthodologie car elle fournit des données précieuses sur la fonction principale du muscle. Les individus ont généralement besoin de deux à 300 expériences avant de perfectionner une approche similaire pour les petits animaux. D’après notre expérience, cette technique de gros animaux nécessite moins de temps.
Le positionnement du genou, le placement des électrodes, le sujet sur la civière et la hauteur de la plaque de pied nécessitent de la pratique. Pour commencer, allumez l’ordinateur, le stimulateur, le système de transducteur et l’interface numérique analogique environ 30 minutes avant le test pour permettre la stabilisation des changements de matériaux liés à la chaleur qui peuvent avoir un impact sur les propriétés électriques. Sélectionnez ensuite le périphérique d’acquisition de données approprié et connecté.
Ensuite, pour optimiser le placement des électrodes, cliquez sur préparer l’expérience lorsque vous êtes prêt à commencer l’étude. Ouvrez le moniteur de données en direct pour permettre une enquête ou une visualisation en temps réel des contractions. Cliquez ensuite sur Instant Sim pour émettre des contractions répétées.
Vous pouvez également appuyer sur le bouton de déclenchement manuel de l’unité de stimulation pour donner manuellement une contraction. Cliquez sur Exécuter l’expérience lorsque vous êtes prêt à commencer l’expérience. Une fois que le porc est complètement anesthésié, nettoyez les membres postérieurs droit et gauche avec de l’eau et du savon pour enlever les débris et raser les poils de la peau en portant une attention particulière à la zone latérale du genou qui sera ensuite utilisée pour le placement des électrodes.
Ensuite, transportez le porc sur une table chirurgicale et placez-le solidement en position couchée avec le porc vers le pied de la table et les muscles fessiers à l’extrémité ou légèrement au-dessus de la table. Pour évaluer le couple isométrique in vivo, placez le pied sur la plaque de pied du capteur de force, puis à l’aide d’un bandage cohésif flexible, fixez le pied à la plaque de pied. Maintenez le pied en position sur la plaque de pied avec la cheville au neutre, puis fixez le pied à la plaque en enroulant le bandage cohésif autour du pied et de la plaque de pied dans le style d’un ruban adhésif fermé à la cheville.
Une fois le pied fixé à la plaque de pied, positionnez la cheville à angle droit, défini comme zéro degré ou neutre pour référence aux degrés de déflexion de la jardinière ou de la porte. Après avoir stabilisé le genou et la cheville à angle droit, positionnez les barres de serrage des membres près des emplacements nécessaires. Et lorsque vous êtes prêt, en partant de l’aspect médian du membre, alignez la barre de serrage du membre à environ le plateau tibial.
Ensuite, alignez la barre de serrage latérale des membres à la tête distale du fémur et stabilisez fermement les barres à l’aide des vis de verrouillage du pouce. Ensuite, appliquez 70% d’alcool et en utilisant un gauss propre, nettoyez la peau autour de la tête fibulaire en cercles concentriques en commençant au centre du placement prévu de l’électrode et en se déplaçant vers l’extérieur. Placez ensuite les électrodes stériles de style électromyographie percutanée à travers le nerf périnéal et implantez les électrodes par voie sous-cutanée à une profondeur d’environ cinq à 10 millimètres.
Optimisez le placement de l’électrode en augmentant les amplitudes de courant ajustées sur le stimulateur, en commençant à 100 milliampères et en augmentant au besoin. Visualisez l’amplitude du couple de contraction sur la vue des données en direct et sur le compartiment intérieur du cochon. Les sabots peuvent jouer et se déplacer vers le haut aussi.
Assurez-vous que le compartiment postérieur via le nerf tibia n’est pas activé pendant la stimulation. Inspecter visuellement et palper la contraction du compartiment postérieur et le mouvement vers le bas des sabots pendant la stimulation. Inspectez la région du plateau de contraction tétanique à partir du traçage du temps de couple en direct dans les étapes suivantes pour détecter l’absence de recrutement musculaire antagoniste.
Une fois le placement de l’électrode et les amplitudes de stimulation optimisés, le couple tétanique isométrique maximal illicite utilise les paramètres de stimulation décrits dans le manuscrit textuel. Pour l’analyse de l’angle couple-articulation, mesurez le couple tétanique isométrique maximal sur une plage de positions de cheville allant du neutre à l’extrémité proche de la flexion de la jardinière ou de zéro à 50 degrés de flexion de la jardinière. Après la mesure, commencez à desserrer les deux vis de verrouillage de l’étage du goniomètre pour vous déplacer entre les angles de joint et assurez-vous que les deux vis de verrouillage sont serrées avant la prochaine contraction.
Pour l’analyse de la fréquence du couple, positionnez la cheville à l’angle articulaire souhaité, puis mesurez le couple isométrique maximal sur une gamme de fréquences de stimulation qui induisent des trains de secousses non fusionnés jusqu’à et au-delà de ceux qui induisent une tétanie entièrement fusionnée. Pour analyser les données, ouvrez le programme d’analyse. Ensuite, à l’aide d’une plate-forme de données automatisée, calculez les différentes variables dans l’analyse des formes d’ondes isométriques individuelles.
Au cours de l’évaluation in vivo, la visualisation de la forme de l’onde de couple est nécessaire en temps réel pour assurer une activation appropriée du compartiment antérieur. Les formes d’ondes ne doivent refléter qu’une dose de réflexion et avoir un aspect arrondi lisse et un plateau tétanique apparent. Des incohérences ou des perturbations de la forme d’onde peuvent indiquer une stimulation inadéquate ou un mauvais placement des électrodes.
On voit ici le couple de contraction et le traçage du temps de couple tétanique avec un couple maximal de 50%. Les barres pointillées sur les membres ascendants et descendants du traçage temporel du couple tétanique représentent une plage de couple maximal de 30 à 70% qui peut déterminer le taux moyen de contraction ou de relaxation. Les valeurs représentatives de l’angle de l’articulation de couple et des relations de fréquence de couple pour les membres non assurés sont indiquées ici.
Des enregistrements simultanés de couple isométrique et d’EMG ont été effectués à des fréquences de stimulation de 20, 60 et 100 Hertz. Le nombre d’impulsions du stimulateur reflète le quotient de la durée de la stimulation et du temps entre les impulsions. Une fréquence de stimulation de 20 Hertz signifie une impulsion toutes les 50 millisecondes, donc une durée de stimulation de 400 millisecondes divisée par 50 millisecondes entre les impulsions équivaut à huit impulsions délivrées.
Les enregistrements EMG bruts sont convertis via une analyse quadratique des moyennes racinaires pour visualiser l’activité musculaire totale avec une fréquence de stimulation croissante. Lors de l’évaluation du couple isométrique, un alignement anatomique approprié, un placement électrique approprié et la confirmation que la contraction provoquée ne concerne que le compartiment antérieur sont les clés d’une procédure réussie. Comme il s’agit d’une procédure non terminale, elle peut être combinée avec plusieurs résultats d’étude complémentaires.
Par exemple, dans le grand modèle animal, l’évaluation de la démarche et de la mobilité peut être testée le même jour avec des données de force maximale pour mieux comprendre comment la fonction neuromusculaire influence la déambulation.
