Name: recording eeg in freely moving neonatal rats using a novel method
Uploaded: 2017-05-29T12:30:00.000+00:00
Duration: 8 min 3 s
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Este trabajo fue apoyado por la Fundación de Ciencias Naturales de China (31171355) y la Fundación de Ciencias Naturales de Guangdong (S2011010003403, 2014A030313440).

El cuidado de los animales, el procedimiento quirúrgico y los procedimientos de registro estaban de acuerdo con las directrices para el Comité de Uso y Cuidado de Animales de la Universidad Normal de China del Sur. 1. Preparación del electrodo (Figura 1A-C) NOTA: Los loci de la clavija de la computadora son simplemente un contacto de la punta como parte de la interfaz de la señal en los dispositivos de la comunicación. Se compone de un conector macho que se conecta al conector hembra. <ol><li> Con cuidado, separe las clavijas macho y hembra de los loci de los clavijas de la computadora ( Figura 1A ) con la ayuda de una pinza. Conecte las clavijas macho y hembra entre sí para formar un electrodo y aplique cianoacrilato para crear una unión adhesiva fuerte ( Figura 1C ). </li><li> Coloque los electrodos en un vaso lleno de agua destilada y colóquelo en un limpiador ultrasónico durante 10 min. Muévalos a un horno de secado a 45 ° C durante 30 min. Esterilizar los electrodos con luz UV durante 30 min. </li></ol> 2. Procedimiento quirúrgico (Figura 1D-F) <ol><li> Preparar los instrumentos quirúrgicos esterilizados y los aparatos estereotáxicos. Anestesiar el cachorro de rata neonatal utilizando anestesia con isoflurano (2,5%) con aire. Cuando el cachorro está profundamente anestesiado, ajustar la dosis de isoflurano al 1,0%. Realizar una pinza de la cola o dedo del pie antes de la cirugía para asegurar la profundidad adecuada de la anestesia. </li><li> Fijar la cabeza del cachorro en el aparato estereotáxico colocando las barras de oído en los conductos auditivos y ligeramente apriete. NOTA: No apriete excesivamente las barras del oído, ya que el cráneo neonatal es muy suave. </li><li> Mantenga el campo quirúrgico estéril rociando todo el equipo con etanol al 70%. Haga una incisión de 15 mm en la cabeza usando un bisturí. Usando una pinza, tire suavemente del cuero cabelludo lejos de la línea media en las cuatro esquinas. Ponga un poco de algodón empapado en solución salina debajo de la piel para mantener la incisión abierta ( Figura 1D ). </li><li> Encuentra los puntos bregma y lambda en el cráneoY márquelos con un lápiz. Utilice una aguja de jeringa (26 G) para hacer dos agujeros de rebabas en la corteza prefrontal (PFC) y el hipocampo. NOTA: El PFC se localiza a +1.8 mm posterior a bregma y -0.5 mm lateral a la línea media, mientras que el hipocampo se encuentra a -2.0 mm anterior a bregma y ± 0.5 mm lateral a la línea media ( Figura 1D y E ). La profundidad del electrodo no debe estar a más de 2 mm por debajo de la superficie cortical para minimizar el daño cerebral. </li><li> Utilice una pinza para sujetar los electrodos e inserte los electrodos de referencia y de grabación en el PFC y el hipocampo, respectivamente. Aplique pomada de eritromicina alrededor del electrodo para evitar cualquier posible infección. Fijar el electrodo utilizando cianoacrilato. </li><li> Prepare el cemento dental acrílico para que tenga una consistencia pegajosa y viscosa. Aplique el cemento dental para cubrir los electrodos y el resto del cráneo. NOTA: Seque completamente el cráneo antes de aplicar el cemento dental. </li&gt; <li> Aplique ácido picrico al 5% sobre los electrodos para protegerlos. NOTA: Todo el procedimiento debe realizarse en una campana de bioseguridad para mantener condiciones estériles. </li><li> Retire el animal del marco estereotáxico e inyecte 300 μl de glucosa al 10% por vía subcutánea. Colóquelo sobre una manta caliente para su recuperación. Asegúrese de que el animal está caliente (37 ° C) y ambulatorio ( es decir, completamente recuperado). Administrar buprenorfina intraperitonealmente (0.05 mg / kg) para el dolor posquirúrgico. NOTA: No deje a un animal desatendido hasta que haya recuperado suficiente conciencia (es decir, comportamiento normal y movimiento). </li><li> Devuelve el cachorro a su jaula de casa con su madre después de que recupere la conciencia. Espere dos días hasta que el animal esté completamente recuperado. </li></ol> 3. Grabación EEG <ol><li> Después de la recuperación completa, conecte los electrodos implantados en el cráneo del cachorro al amplificador en su propia jaula. Conecte el amplificador a una toma analógica-digitalOnverter y conectar el convertidor a una computadora; Las líneas de conexión deben ser tratadas cuidadosamente para que no se enreden. </li><li> Seleccione una frecuencia de muestreo de al menos 10.000 Hz en la unidad de adquisición de datos para la grabación (el ancho de banda del transmisor es 1-100 Hz). Asegúrese de que los datos se muestreen correctamente. </li><li> Después de obtener la línea base de registro, inyectar el cabello intraperitonealmente con ácido cainico (KA) (2 mg / kg) para inducir ataques epilépticos. 15 min después de la inyección de KA observar y registrar las descargas epilépticas. Los productos de la incautación a través de KA suelen ser físicos. NOTA: La duración ictal-tónica es de aproximadamente 15,2 ± 0,9 s, la duración de la crisis es de aproximadamente 62 ± 5 s. Las convulsiones se pueden prevenir en la rata neonatal dando inyección de IP de hidrato de cloral (400 mg / kg). </li><li> Guarde los datos digitalizados y analícelos utilizando paquetes de software de procesamiento de señales, como spike2. Revelar el nivel de potencia de los diferentes componentes de frecuencia en la señal EEG neonatal por perfOrming un análisis de espectro de potencia. Calcule la potencia en un intervalo de tiempo de 1 minuto encontrando la amplitud de la raíz media cuadrada de 1 a 100 Hz (banda de EEG) 9 . </li></ol>

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Los autores no declaran ningún conflicto de intereses.

Aquí, informamos de los procedimientos quirúrgicos y de registro para la adquisición de EEG en libre movimiento neonatal cachorros de rata por cable método ( Figura 3 ]. Se ha sugerido que el cachorro de rata P7-P12 está en la edad de desarrollo que corresponde a un recién nacido humano a término 10 , 11 . Es técnicamente difícil obtener datos de registro de EEG de alta calidad cuando se trabaja con cachorros de rata en este grupo de edad. Además, requiere un manejo especializado y un gran cuidado 8 . Estudios previos que examinan grabaciones de EEG in vivo en ratas neonatales se han llevado a cabo utilizando soluciones de grabación por cable en P12 o animales más antiguos [ 12] , pero estos enfoques son muy costosos. Al confiar en electrodos simples, hemos sido capaces de hacer un electrodo ( Figura 1 ) que reduce el costo del experimento a tan poco como $ 1, mientras que sigue dando alta densidad EEGGrabaciones. La implantación quirúrgica en este método puede tomar tan poco como 10 min, dependiendo de la complejidad de la cirugía. Los pasos críticos en este protocolo son la implantación de electrodos. Debe hacerse con cuidado. Para mantener un contacto constante del electrodo con el cráneo, es importante considerar los siguientes pasos. En primer lugar, eliminar los residuos de tejido en el cráneo con la ayuda de hisopo de algodón esterilizado, ya que puede separar el electrodo del cráneo. En segundo lugar, utilizar cianoacrilato adecuadamente para conectar el electrodo con el cráneo. En tercer lugar, mantener la viscosidad adecuada del cemento dental. Es mejor aplicar cemento dental en dos capas; La primera capa debe ser un poco densa para cubrir el cráneo, mientras que la segunda capa debe ser un poco líquido para cubrir las esquinas de la primera capa. Golpee suavemente el cemento dental con una punta de pipeta para estabilizarla para hacer la unión adhesiva fuerte. Si es demasiado acuoso puede construir una capa aislante debajo del electrOde, y si es demasiado denso, el cemento dental se caerá fácilmente del cráneo debido a su propio peso. También es importante mantener la temperatura corporal del cachorro a 37 ° C durante la cirugía para la supervivencia. La aplicación de este procedimiento se limita a la grabación de EEG en crías de rata neonatal entre las edades de P8 y P15 porque los cachorros en crecimiento pueden quitar el cemento dental y el electrodo de su cráneo. En términos de aplicaciones adicionales, este método también puede usarse para registrar la actividad eléctrica de ratas y ratones adultos después de una modificación menor. Además, este método se presta bien para su uso en diversos experimentos conductuales, tales como el laberinto elevado más.

Está bien establecido que la comunicación continua entre las neuronas es necesaria para obtener la función cerebral normal. La comunicación interneuronal tiene lugar principalmente en las sinapsis, donde la información de una neurona se transmite a una segunda neurona. Esta transmisión sináptica está mediada por dos tipos de estructuras estructurales dedicadas: sinapsis eléctricas o químicas 1 . La electrofisiología es el campo que capta el potencial eléctrico producido durante la comunicación interneuronal que controla las funciones corporales y el comportamiento global 2 . EEG es el método más comúnmente utilizado entre muchas técnicas electrofisiológicas. EEG es una técnica utilizada para detectar cambios en las señales eléctricas producidas por estímulos internos o externos. Por otra parte, es una prueba esencial para el diagnóstico clínico y la predicción de los resultados de diversas afecciones neurológicas como epilepsia, Parkinson y enfermedad de AlzheimerE, así como los efectos de los agentes farmacológicos y toxicológicos 3 . Generalmente, un paciente epiléptico muestra hiperexcitabilidad y deterioro de la conectividad funcional dentro del cerebro; Estos se resumen como descargas epileptiformes interictal (IED) y pueden ser registrados por EEG en forma de picos agudos y transitorios; Olas agudas; Complejos de onda pico; O polyspikes 4 . La principal característica del cerebro epiléptico es la aparición espontánea de convulsiones epilépticas, que pueden registrarse tanto en el cuero cabelludo como en el parénquima cerebral para localizar el área cerebral responsable de las convulsiones 5 . Además, el EEG también tiene implicaciones muy importantes en trastornos neurodegenerativos como la enfermedad de Alzheimer (EA). La investigación sugiere que los registros alterados de EEG y redes oscilatorias deterioradas en pacientes con EA son comunes. Sin embargo, nuestro conocimiento sobre la patofisiología de las oscilaciones de la red en las enfermedades neurodegenerativas iEs sorprendentemente incompleta y necesita ser explorada más a fondo 6 . En este protocolo, hemos diseñado un electrodo simple con el que se puede grabar EEG para comprender la comunicación eléctrica en el cerebro normal y el patológico. La implantación quirúrgica en este método es más barato que otros procedimientos disponibles [ 7] . Además, este método puede utilizarse para registrar señales de EEG de alta calidad y estables para períodos de tiempo más largos ( es decir, 2-4 h todos los días durante 1 semana). Además, se utilizaron electrodos más ligeros (con un peso aproximado de 26 mg) que permiten a los animales comportarse de forma más natural 8 . Este método es ampliamente aplicable al estudio de EEG en cachorros de rata neonatal que requiere el amplificador y digitalizador, comúnmente utilizado en laboratorio de electrofisiología y no requiere ningún dispositivo adicional.

<table><tbody><tr><td>Computer pin</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pincer</td><td>DELI Group Co., Ltd.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>502 super glue</td><td>DELI Group Co., Ltd.</td><td>7144</td><td></td></tr><tr><td>Drying oven</td><td>Boxun</td><td>GZX-9140MBE</td><td></td></tr><tr><td>Isofluorane</td><td>RWD Life Science</td><td>902-0000-522</td><td></td></tr><tr><td>Stereotaxic apparatus</td><td>RWD Life Science</td><td>900-0068-507</td><td></td></tr><tr><td>Anesthesia apparatus</td><td>RWD Life Science</td><td>902-0000-510</td><td></td></tr><tr><td>Homeothermic Heating Device</td><td>Harvard Apparatus</td><td>K 024509</td><td></td></tr><tr><td>Amplifier Model 3000&amp;nbsp;</td><td>A-M Systems</td><td>61558</td><td></td></tr><tr><td>Micro1401 Analog Digital converter</td><td>Cambridge Electronic Design Ltd.</td><td>4383</td><td>Data acquisition unit</td></tr><tr><td>Spike2</td><td>Cambridge Electronic Design Ltd.</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

recording eeg in freely moving neonatal rats using a novel method

El EEG es un método útil para detectar la actividad eléctrica en el cerebro. Además, es una herramienta de diagnóstico ampliamente utilizada para diversas afecciones neurológicas, tales como epilepsia y trastornos neurodegenerativos. Sin embargo, técnicamente es difícil obtener registros de EEG en neonatos, ya que requiere un manejo especializado y un gran cuidado. Aquí, presentamos un nuevo método para registrar EEG en ratas neonatales (P8-P15). Diseñamos un electrodo simple y confiable usando localizadores de pin de computadora; Se puede implantar fácilmente en el cráneo de un cachorro de rata para grabar señales de EEG de alta calidad en el cerebro normal y epiléptico. Los cachorros recibieron una inyección intraperitoneal (ip) de la neurotoxina ácido cainico (KA) para inducir ataques epilépticos. La implantación quirúrgica realizada en este procedimiento es menos costosa que otros procedimientos EEG para neonatos. Este método permite registrar señales de EEG de alta calidad y estables durante más de una semana. Además, este procedimiento también se puede aplicar a adultos raSt y ratones para estudiar la epilepsia u otros trastornos neurológicos.

<html> Si los procedimientos quirúrgicos anteriores se llevan a cabo adecuadamente, se llevará a cabo con éxito un registro de EEG de un recién nacido de rata de rata de canal. 10 min después de la inyección de KA, un patrón regular de signos de comportamiento surgió en forma de movimientos irregulares y arañazos, temblores y pérdida de equilibrio. La Figura 2 muestra las trazas representativas del EEG bruto y las trazas expandidas ictal-tónicas e ictal-clónicas interictal. Recurrente interictal y ictal EEG descarga patrones comenzó 15-60 min (30 ± 5,2 min, media ± SEM) después de la inyección de KA ( Figura 2A y 2B ). La figura 2D y 2E representa las convulsiones tónico-clónicas que son el tipo más común. La duración ictal-tónica duró 15,2 ± 0,9 s ( Figura 2D ). Los resultados representativos mostraron que las descargas tónicas fueron seguidas de ráfagas clónicas ( Figura 2B, 2D y 2 E ). <html> E_content &quot;fo: keep-together.within-page =&quot; 1 &quot;&gt; <img alt="Figura 1" src="/files/ftp_upload/55489/55489fig1.jpg" /> Figura 1: Ilustración del Protocolo de Implantación Quirúrgica. ( A ) Pines diminutos de la computadora. ( B ) Clavija hembra (izquierda) y clavija macho (derecha). La barra de escala se utiliza para medir la longitud del pasador hembra. ( C ) Perno hembra y macho conectado. ( D ) Cráneo expuesto. N ◦ 1 presenta el sitio de referencia, el N ◦ 2 presenta Bregma, N ◦ 3 y 4 presentan los sitios de registro, y N ◦ 5 presenta Lambda. ( E ) Implantación del electrodo. El número 1 presenta el electrodo de referencia, los números 3 y 4 presentan el electrodo de registro. ( F ) Perrito de rata recuperado (P9). <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55489/55489fig1large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> D / 55489 / 55489fig2.jpg &quot;/&gt; Figura 2: Convulsión Neonatal inducida por KA. ( A ) Un rastreo EEG representativo de una rata P10 que se inyectó con KA (2 mg / kg, ip) mostró descargas de ráfagas epilépticas recurrentes. ( B ) Vista ampliada de las descargas epilépticas de un solo racimo de la caja en A. ( C , D y E ) Las huellas interictal, ictal-tónica e ictal-clónica típicas se expandieron del cuadro de B. ( F ) La potencia promedio de EEG (1 min de ventana de tiempo) antes y después de la inyección de KA (media ± SEM). <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55489/55489fig2large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a> <img alt="figura 3" src="/files/ftp_upload/55489/55489fig3.jpg" /> Figura 3: Configuración de la grabación EEG. La grabación representativa del rastro es shoWn en el cachorro de rata neonatal que se mueve libremente. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55489/55489fig3large.jpg" target="_blank">Haga clic aquí para ver una versión más grande de esta figura.</a>

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Recording EEG in Freely Moving Neonatal Rats Using a Novel Method

Aquí, introducimos una técnica novedosa diseñada para registrar la electroencefalografía (EEG) en cachorros epilépticos neonatales de movimiento libre y describir sus procedimientos, características y aplicaciones. Este método permite registrar el EEG durante más de una semana.

Grabación de EEG en Ratas Neonatales que se mueven libremente usando un método nuevo

EEG is a useful method to detect electrical activity in the brain. Moreover, it is a widely used diagnostic tool for various neurological conditions, such ...

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Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Neuroscience

13.2K vistas.  South China Normal University.  Aquí, introducimos una técnica novedosa diseñada para registrar la electroencefalografía (EEG) en cachorros epilépticos neonatales de movimiento libre y describir sus procedimientos, características y aplicaciones. Este método permite registrar el EEG durante más de una semana. 

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Preterm EEG: A Multimodal Neurophysiological Protocol

Since its introduction in early 1950s, electroencephalography (EEG) has been widely used in the neonatal intensive care units (NICU) for assessment and monitoring of brain function in preterm and term babies. Most common indications are the diagnosis of epileptic seizures, assessment of brain maturity, and recovery from hypoxic-ischemic events. EEG recording techniques and the understanding of neonatal EEG signals have dramatically improved, but these advances have been slow to penetrate through the clinical traditions. The aim of this presentation is to bring theory and practice of advanced EEG recording available for neonatal units. 
In the theoretical part, we will present animations to illustrate how a preterm brain gives rise to spontaneous and evoked EEG activities, both of which are unique to this developmental phase, as well as crucial for a proper brain maturation. Recent animal work has shown that the structural brain development is clearly reflected in early EEG activity. Most important structures in this regard are the growing long range connections and the transient cortical structure, subplate. Sensory stimuli in a preterm baby will generate responses that are seen at a single trial level, and they have underpinnings in the subplate-cortex interaction. This brings neonatal EEG readily into a multimodal study, where EEG is not only recording cortical function, but it also tests subplate function via different sensory modalities. Finally, introduction of clinically suitable dense array EEG caps, as well as amplifiers capable of recording low frequencies, have disclosed multitude of brain activities that have as yet been overlooked.
In the practical part of this video, we show how a multimodal, dense array EEG study is performed in neonatal intensive care unit from a preterm baby in the incubator. The video demonstrates preparation of the baby and incubator, application of the EEG cap, and performance of the sensory stimulations.

This video explains the background theory of the neonatal EEG activity and the sensory responses, followed by a live demonstration of their recording in neonatal intensive care unit.

Prematuro EEG: Un protocolo neurofisiológico Multimodal

Since its introduction in early 1950s, electroencephalography (EEG) has been widely used in the neonatal intensive care units (NICU) for assessment and ...

Investigación

Neurociencias

Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

Many progressive neurologic diseases in humans, such as epilepsy, require pre-clinical animal models that slowly develop the disease in order to test interventions at various stages of the disease process. These animal models are particularly difficult to implement in immature rodents, a classic model organism for laboratory study of these disorders. Recording continuous EEG in young animal models of seizures and other neurological disorders presents a technical challenge due to the small physical size of young rodents and their dependence on the dam prior to weaning. Therefore, there is not only a clear need for improving pre-clinical research that will better identify those therapies suitable for translation to the clinic but also a need for new devices capable of recording continuous EEG in immature rodents. Here, we describe the technology behind and demonstrate the use of a novel miniature telemetry system, specifically engineered for use in immature rats or mice, which is also effective for use in adult animals.

Here we demonstrate the use of a wireless enabling technology for electroencephalogram (EEG) in neonatal rodent models of human disease. With telemetry, there are no encumbering connections, thus allowing natural behaviors.

A largo plazo Monitoreo EEG continua en Modelos pequeño roedor de las enfermedades humanas Uso del Sistema Transmisor inalámbrico Epoch

Many progressive neurologic diseases in humans, such as epilepsy, require pre-clinical animal models that slowly develop the disease in order to test ...

Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent

Although electroencephalography (EEG) is widely used as a non-invasive technique for recording neural activities of the brain, our understanding of the neurogenesis of EEG is still very limited. Local field potentials (LFPs) recorded via a multi-laminar microelectrode can provide a more detailed account of simultaneous neural activity across different cortical layers in the neocortex, but the technique is invasive. Combining EEG and LFP measurements in a pre-clinical model can greatly enhance understanding of the neural mechanisms involved in the generation of EEG signals, and facilitate the derivation of a more realistic and biologically accurate mathematical model of EEG. A simple procedure for acquiring concurrent and co-localized EEG and multi-laminar LFP signals in the anesthetized rodent is presented here. We also investigated whether EEG signals were significantly affected by a burr hole drilled in the skull for the insertion of a microelectrode. Our results suggest that the burr hole has a negligible impact on EEG recordings.

This protocol describes a simple method for concurrent recording of co-localized electroencephalography (EEG) and multi-laminar local field potential in an anesthetized rat. A burr hole drilled in the skull for the insertion of a microelectrode is shown to produce negligible distortion of the EEG signal.

Grabación concurrente de electroencefalografía Co localizada y potencial de campo Local en roedores

Although electroencephalography (EEG) is widely used as a non-invasive technique for recording neural activities of the brain, our understanding of the ...

Simultaneous Recordings of Cortical Local Field Potentials, Electrocardiogram, Electromyogram, and Breathing Rhythm from a Freely Moving Rat

Monitoring the physiological dynamics of the brain and peripheral tissues is necessary for addressing a number of questions about how the brain controls body functions and internal organ rhythms when animals are exposed to emotional challenges and changes in their living environments. In general experiments, signals from different organs, such as the brain and the heart, are recorded by independent recording systems that require multiple recording devices and different procedures for processing the data files. This study describes a new method that can simultaneously monitor electrical biosignals, including tens of local field potentials in multiple brain regions, electrocardiograms that represent the cardiac rhythm, electromyograms that represent awake/sleep-related muscle contraction, and breathing signals, in a freely moving rat. The recording configuration of this method is based on a conventional micro-drive array for cortical local field potential recordings in which tens of electrodes are accommodated, and the signals obtained from these electrodes are integrated into a single electrical board mounted on the animal's head. Here, this recording system was improved so that signals from the peripheral organs are also transferred to an electrical interface board. In a single surgery, electrodes are first separately implanted into the appropriate body parts and the target brain areas. The open ends of all of these electrodes are then soldered to individual channels of the electrical board above the animal's head so that all of the signals can be integrated into the single electrical board. Connecting this board to a recording device allows for the collection of all of the signals into a single device, which reduces experimental costs and simplifies data processing, because all data can be handled in the same data file. This technique will aid the understanding of the neurophysiological correlates of the associations between central and peripheral organs.

This study introduces a method for the simultaneous recording of local field potentials in the brain, electrocardiograms, electromyograms, and breathing signals of a freely moving rat. This technique, which reduces experimental costs and simplifies data analysis, will contribute to the understanding of the interactions between the brain and peripheral organs.

Grabaciones simultáneas de potenciales de campo Local Cortical, Electrocardiograma, electromiograma y respirar a ritmo de una rata libremente móvil

Monitoring the physiological dynamics of the brain and peripheral tissues is necessary for addressing a number of questions about how the brain controls ...

Electrophysiological Measurement of Noxious-evoked Brain Activity in Neonates Using a Flat-tip Probe Coupled to Electroencephalography

Pain is an unpleasant sensory and emotional experience. In non-verbal patients, it is very difficult to measure pain, even with pain assessment tools. Those tools are subjective or determine secondary physiological indicators which also have certain limitations particularly when exploring the effectiveness of analgesia. As cortical processing is essential for pain perception, brain activity measures may provide a useful approach to assess pain in infants. Here we present a method to assess nociception with electrophysiological brain activity recordings optimized for the use in newborn infants. To produce highly standardized and reproducible noxious stimuli we applied mechanical stimulation with a flat-tip probe, e.g., PinPrick, which is not skin-breaking and does not cause behavioral distress. The noxious-evoked potential allows the objective measurement of nociception in non-verbal patients. This method can be used in newborn infants as early as 34 weeks of gestational age. Moreover, it could be applied in different situations such as measuring the efficacy of analgesic or anesthetic drugs.

Measuring pain in non-verbal patients is a challenge. In this study we combine EEG recording with stimulation using a flat-tip probe to detect noxious-evoked brain activity in an objective manner.

Electrofisiológico medida de actividad cerebral evocados nocivos en neonatos con una sonda de punta plana juntada a la electroencefalografía

Pain is an unpleasant sensory and emotional experience. In non-verbal patients, it is very difficult to measure pain, even with pain assessment tools. ...

Medicina

Noninvasive EEG Recordings from Freely Moving Piglets

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel telemetric electroencephalography system in combination with standard self-adhesive hydrogel electrodes. The piglets are calmed down without the use of sedatives. After their release into the pigpen, the piglets behave normally&#8212;they drink and sleep in the same cycle as their siblings. Their sleep phases are used for the EEG recordings.

Here, we present a protocol to record telemetric electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen without the use of a sedative, making it possible to record typical EEG patterns during non-REM sleep, like spindle bursts.

Grabaciones de EEG no invasivo se mueva libremente lechones

The method allows the recording of high-quality electroencephalograms (EEGs) from freely moving piglets directly in the pigpen. We use a one-channel ...

Electroencephalographic Recording of Epileptic Seizures in Epilepsy-Induced Rats

Source: Soukupov&#225;, M., et al. <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/58455">Microdialysis of Excitatory Amino Acids During EEG Recordings in Freely Moving Rats.</a> J. Vis. Exp. (2018)
This video demonstrates electroencephalographic (EEG) recording of epileptic seizures in epilepsy-induced rats. A rat with electrodes implanted in the ventral hippocampus is connected to the EEG recording system and placed in a plexiglass chamber. The rat is allowed to move freely while the brain activity is recorded to monitor the occurrence of seizures.

Registro electroencefalográfico de convulsiones epilépticas en ratas inducidas por epilepsia

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
1. ...

JoVE Encyclopedia of Experiments

Neurophysiology

Stimulation and Modulation Techniques

Concurrent Electroencephalographic and Local Field Potential Recordings in an Anesthetized Rat

Source: Kang, S., et al. <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/56447">Concurrent Recording of Co-localized Electroencephalography and Local Field Potential in Rodent.</a> J. Vis. Exp. (2017).
This video demonstrates the procedure for concurrent recordings of co-localized electroencephalography (EEG) and local field potentials (LFPs) in an anesthetized rat. The process involves preparing the rat and attaching stimulating electrodes to its whisker pads. An EEG spider electrode is placed on the rat&#39;s skull for surface EEG measurements. At the same time, a multi-channel microelectrode is inserted into a specific brain region through a burr hole in the skull to record neural activity from a localized brain area.

Registros electroencefalográficos concurrentes y de potencial de campo local en una rata anestesiada

Electrophysiology Techniques

Electroencephalography Recording in a Rat Model of Focal Epilepsy

Source: Bae, J. et al., <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/52700">Brain Source Imaging in Preclinical Rat Models of Focal Epilepsy using High-Resolution EEG Recordings.</a>&#160;J. Vis. Exp. (2015)
This video demonstrates a method for high-resolution EEG recording in a rat model of focal epilepsy. It outlines the steps involved in preparing the rat, connecting a multichannel EEG mini-cap to the rat&#39;s scalp, and recording the EEG to identify seizure-related events characteristic of the epilepsy model.

Registro de electroencefalografía en un modelo de rata de epilepsia focal

Recording of Induced Seizures through Electroencephalography in Freely Moving Rat Pups

Source: Huo, Q. et al. <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/55489">Recording EEG in Freely Moving Neonatal Rats Using a Novel Method.</a> J. Vis. Exp. (2017)
The video demonstrates the recording of electroencephalogram (EEG) signals from seizure-induced rat pups. Take a freely moving pup implanted with electrodes connected to a data acquisition system. A neurotoxin is administered to induce epileptic seizures, and the resulting electrical bursting activity is monitored using the EEG signal.