Ich untersuchte den Einfluss einer akuten Östrogenexposition auf den zentralen Kohlenstoffstoffwechsel der Blutplättchen sowie auf Ruhe- und Thrombin-aktivierte Blutplättchen. Wir versuchen festzustellen, ob eine akute Östrogenexposition auf Blutplättchen zur Erhöhung des thrombotischen Risikos beiträgt, das durch die Anwendung oraler Kontrazeptiva entsteht. Die Forschung zur Gesundheit von Frauen ist weitgehend unterfinanziert.
Dieses Projekt war Teil eines größeren Aufrufs der NIH, Wissenslücken über die Gesundheit von Frauen zu schließen. Obwohl Verhütungsmittel seit mehr als 50 Jahren verfügbar sind, kennen wir immer noch nicht den genauen Mechanismus, der zu einem höheren Thromboserisiko führt. Biologische Variabilität.
Traditionelle Zellkultivierungstechniken gelten nicht für Blutplättchen, was bedeutet, dass Blutplättchen von Spendern mit unterschiedlichen Genotypen stammen. Große Probengrößen sind erforderlich, was die Notwendigkeit eines wiederholbaren Thrombozytenisolierungsverfahrens unterstreicht. Bestehende Thrombozytenwaschprotokolle werden für Experten auf dem Gebiet der Thrombozytenbiologie geschrieben.
Es gibt eine Reihe einzigartiger Herausforderungen, die mit der Arbeit an Blutplättchen verbunden sind, die mein Protokoll für den unerfahrenen Thrombozytenforscher hervorhebt. Zu Beginn heizen Sie das Wasserbad auf 37 Grad Celsius vor und legen den modifizierten Tyrode-Puffer, der Glukose enthält, hinein. Kombinieren Sie das aus allen Vacutainern entnommene Vollblut in ein konisches 50-Milliliter-Röhrchen aus Polypropylen.
Entnehmen Sie mit einer Pipettenspitze mit abgeschrägtem Schnitt ein geeignetes Probenvolumen, um eine Zellzählung durchzuführen. Aspirieren Sie vorsichtig mit einer Transferpipette mit schmaler Bohrung, um die erzeugten Blasen zu entfernen. Lassen Sie dann das Blut 25 Minuten in einem 37 Grad Celsius warmen Wasserbad ruhen.
Um eine Aktivierung während der Zentrifugation zu verhindern, fügen Sie dem Vollblut Prostaglandin I2 und Apyrase hinzu und drehen Sie das Röhrchen einmal um, um die Probe zu mischen. Als nächstes zentrifugieren Sie das Vollblut bei 250 g für 15 Minuten ohne Pause bei 37 Grad Celsius. Sammle das PRP, das als oberste gelbe Schicht über dem Buffy Coat und der roten Blutschicht erscheint, in einem neuen, gekippten konischen 50-Milliliter-Röhrchen entlang der Wand.
Lassen Sie das PRP 10 Minuten bei 37 Grad Celsius ruhen. Mischen Sie das PRP nach der Inkubation mit 500 nanomolaren Prostaglandin I2 und 0,02 Einheiten pro Milliliter Apyrase. Zentrifugieren Sie das Gemisch bei 1.000 g für 10 Minuten bei 37 Grad Celsius ohne Beschleunigung und ohne Pause.
Saugen Sie nun mit einer Kunststoffpipette mit breiter Bohrung den Überstand für das Schüttvolumen an und saugen Sie dann mit einer Ein-Milliliter-Pipette mit ungeschnittener Spitze die restliche Flüssigkeit in der Nähe des Pellets an. Geben Sie dann Prostaglandin I2 und Apyrase-haltigen Tyrode-Puffer an der Seite des konischen Rohrs zum Pellet. Mit einer abgeschrägten Spitze und einer Ein-Milliliter-Pipettenspitze das Pellet mehrmals vorsichtig resuspendieren.
Sobald das Pellet resuspendiert ist, verwenden Sie eine Transferpipette mit breiter Bohrung, um es in ein neues konisches Röhrchen zu übertragen, wobei Sie alle roten Blutkörperchen oder sichtbar verklumpten Zellen zurücklassen. Entnehmen Sie dann eine Probe für die Durchflusszytometrie mit einer abgeschrägten Pipettenspitze. Inkubieren Sie den Rest der Blutplättchen eine Stunde lang bei 37 Grad Celsius, damit die Inhibitoren abklingen können.
Mischen Sie die Probe nach der Inkubation vorsichtig mit einer Pipette mit breiter Bohrung und aliquotieren Sie die Proben für die Durchflusszytometrie. Die durchschnittliche Thrombozytenrückgewinnung aus Vollblut lag bei etwa 52 %, wobei die Kontamination der weißen Blutkörperchen nach dem Waschvorgang unter 0,1 % blieb. Die P-Selektin-Exposition war während des gesamten Waschprozesses gering, stieg aber nach der Thrombinbehandlung signifikant an.
Die gebundenen Fibrinogenspiegel stiegen nach dem ersten 1.000-G-Spin zunächst an, fielen aber nach dem zweiten Spin unter 5 % und stiegen nach der Thrombinbehandlung erneut deutlich an. Die Blutplättchen wurden erfolgreich auf Größe, Singuletts und CD42a-Positivität untersucht, bevor die Aktivierungsmarker gemessen wurden. Die Thrombinbehandlung führte zu einer signifikanten Erhöhung der P-Selektin- und Fibrinogenexpression im Vergleich zur Kontrolle.
Gewinnen Sie zunächst die gewaschenen Blutplättchen aus menschlichen Blutproben. Nachdem Sie die Mikrozentrifuge auf null Grad Celsius vorgekühlt haben, sammeln Sie die Thrombozytensuspension in teilweise gefrorener normaler Kochsalzlösung im Verhältnis 1:6. Zentrifugieren Sie die Mischung bei 16.000 g für 10 Minuten bei null Grad Celsius.
Der Überstand wird in ein separates Mikrozentrifugenröhrchen abgesaugt. Geben Sie anschließend 0,5 Milliliter vorgekühltes Methanol:Wasser mit einer Temperatur von minus 20 Grad Celsius in das abgeschreckte Pellet und wirbeln Sie es eine Minute lang kräftig auf. Frieren Sie die Probe in flüssigem Stickstoff ein und tauen Sie sie bei null Grad Celsius auf.
Die Suspension wird erneut bei 16.000 g für 10 Minuten bei vier Grad Celsius zentrifugiert und der Überstand in einem neuen Mikrozentrifugenröhrchen gesammelt. Nachdem Sie den Überstand über Nacht getrocknet haben, resuspendieren Sie den Trockenextrakt in 150 Mikrolitern LC/MS-Wasser und mischen Sie ihn 15 Minuten lang bei vier Grad Celsius. Den Extrakt kurz vortexen und in ein 0,22-Mikrometer-Mikrozentrifugenröhrchen geben, um Zelltrümmer zu entfernen.
Zentrifugieren Sie die Probe fünf Minuten lang bei 16.000 g und vier Grad Celsius. Nach der Zentrifugation pipettieren Sie weitere 50 Mikroliter Wasser auf den Filter und zentrifugieren erneut fünf Minuten lang bei 16.000 g und vier Grad Celsius. Sammeln Sie abschließend das Filtrat für die Analyse.
Die Laktatproduktion war in allen Spenderproben positiv, während Glukose und Acetat durchweg konsumiert wurden, wobei Thrombin diese Flüsse erhöhte.
