人脑器官是研究疾病的重要工具，在一个容易纵的系统中，并结合了人类环境以及多种细胞类型的适当相互作用。该技术可用于研究大脑的许多疾病，包括神经发育障碍、有毒侮辱以及大脑中癌症的生长和治疗。该协议的主要优点是能够产生具有多种神经元细胞类型的高度可重复性脑器官。
这是使用一个非常简单的工作流程完成的，大多数实验室可以完成。这些以临时的适当方式生产，不受专门增长因素或未定义的矩阵的影响，因此成为一个非常简单且具有成本效益的系统。首先，将100微升的基质与5.9毫升的冰冷Dulbeco的修改鹰介质或F12介质组合在15毫升锥形管中。
用一毫升的膜基质将每孔的孔涂在六孔板中。将盘子包裹在石蜡薄膜中，在摄氏四度下过夜。第二天，从每口井中吸出多余的介质，用 F12 冲洗油井，并在每口井两毫升的 mTeSR1 介质总体积中加入 H9 hESCS。
培养细胞从一周到一周。每天供应两毫升 mTeSR1 介质，将板放在 37 摄氏度的低氧培养箱中，并含 5% 氧气和 5% 的二氧化碳。使用玻璃工具从通道之间的培养中去掉区分细胞。
每天刷新媒体。细胞应在利用H9细胞进行器官生产前四到六天通过。要通过细胞，首先用DMEM F12介质冲洗细胞，并吸进多余的液体。
冲洗后，加入蛋白酶溶液，孵育细胞40分钟，使菌落在井内漂浮。接下来，使用DMEM F12清洗细胞三次，必要时滴定，使碎片变小。然后以大约一比八的比例将细胞分布在四个六孔板上，并将细胞放在培养箱中，每天喂食。
四到六天后，细胞达到约80%的汇合。将它们过渡到常规孵化器。将蛋白酶库存溶液稀释至工作浓度，每六井板的 HESCS 中，将一毫升的库存溶液添加到 5 毫升 DMEM 或 F12 介质中。
吸气并去除细胞培养培养，然后用蛋白酶溶液覆盖HESCS。将板放在培养箱中 10 到 15 分钟，或直到菌落的边缘四舍五入，并开始从矩阵中分离，但在它们完全四舍五入之前。倾斜板，吸进蛋白酶溶液，用两毫升的DMEM或F12轻轻清洗细胞，每井三次。
确保菌落与矩阵保持附着。因此，ES 细胞的片段必须具有适当的大小，因此请确保它们在适当时间内不帕斯。如果他们在那里的时间太短，可能很难冲洗他们，并打破他们分开。
如果他们在那里太久， 他们实际上可以只是在洗涤步骤脱落。将大约一至 1.5 毫升的新鲜 mTeSR 介质重新添加到每个孔中，并使用温和的移液将板中的细胞冲洗成 50 毫升的锥形管中。在板内吸气和分配 hESCS，直到达到其原始尺寸的大约 1/30。
现在，殖民地群类似于250至350微米大小的碎片。将细胞转移到一个超低附件T75烧瓶中，其中含有30毫升的mTeSR介质，不含bFGF。第二天，倾斜烧瓶，使活细胞池在角落里。
如果有大量的细胞粘附在烧瓶底部，请使用 10 毫升移液器将细胞转移到新的烧瓶中。预计头几天死细胞数量会很高。一旦细胞稳定下来，吸气介质和死细胞留下约10毫升的介质包含活细胞，并添加20毫升的低bFGF介质，辅以30毫微克每毫升bFGF。
两天后，检查细胞。大多数细胞应该看起来健康和明亮。然而，如果超过三分之一的细胞出现黑暗，倾斜烧瓶，用20毫升的低bFGF介质替换20毫升的介质，并辅以每毫升20毫微克的bFGF。
第三天，取出一半的介质，用15毫升的HESC介质代替每毫升bFGF10毫微克。第五天，用15毫升的神经感应介质替换一半的介质。之后，每隔一天，用神经感应介质替换一半的介质。
培养三周后，如果需要，在最终浓度为 1 倍时，将 100 倍青霉素-链霉素添加到介质中。每隔一天刷新一半的媒体。在这个协议中，形成的大脑器官看起来明亮和大小相似，没有黑暗垂死的细胞在这些集群的中心。
细胞逐渐从bFGF中分离开。在第五天，他们被放入神经诱导介质，他们在整个文化时期都留在这种介质中。虽然器官随着时间的推移变得更大，因此更暗，神经玫瑰花环状结构扩大，这表明神经分化的开始，并包含胚胎神经管的特征。
为了更深入地研究细胞内的基因表达，进行了qPCR分析。谷氨酸运输器VLGUT1在两个半星期内表达，在五周时增加，并在五个月的培养中保持一致。前脑标记Foxg1在低水平表达，直到五个星期的文化。
深层标记 Tbr1 的峰值大约五周，随后下降。而上层标记Satb2、腹角标记Eng1、后脑脊髓标记Hoxb4以及寡头细胞标记Olilig2的表达则随着时间的推移而增加。相比之下，干细胞标记Sox2会随着时间的流逝而减少。
胶质标记GFAP在五周达到顶峰，随后保持相对稳定。在早期器官处理 ES 细胞时，请记得小心谨慎，以避免在没有抗生素的情况下生长时受到污染，并记得按计划进食。按照这个程序，您可以使用定量RT-PCR基因表达和免疫荧光等技术来评估器官，用于蛋白质表达和定位。
利用这项技术，我们能够研究小分子缓解人类新生儿缺氧损伤方面的能力，如缺氧室的模型。重要的一点，这些人脑器官的行为类似于体内小鼠实验。
