Name: intrauterine telemetry to measure mouse contractile pressure in vivo
Uploaded: 2015-04-06T15:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 3 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo at JoVE.com

This work was supported by funding from the March of Dimes FY12-133 (S.K.E.) and the National Institutes of Health R01HD037831 (S.K.E.). We would like to thank Dr. Deborah Frank for critical review of the manuscript.

ملاحظة: جميع الإجراءات الحيوانية ينسجم مع المبادئ التوجيهية لرعاية واستخدام الحيوانات المنصوص عليها من قبل المعاهد الوطنية للصحة. وتمت الموافقة على جميع البروتوكولات من قبل لجنة الدراسات الحيوانية في جامعة واشنطن في سانت لويس. ملاحظة: مواد محددة والمعدات اللازمة لهذا البروتوكول وترد المواد والجدول المعدات. 1. تربية موقوتة من إناث الفئران <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تربية الإناث البالغات بين شهرين وستة أشهر من العمر في وقت نافذة 2 ساعة مع الذكور. ليست هناك حاجة ساعة تربية محددة طالما يتم الاحتفاظ بها بما يتفق لمجمل التجربة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تأكيد الحمل عن طريق وجود المكونات كوبولاتوري. تعيين يوم وساعة الذي ينظر إلى المكونات أولا كيوم ما بعد الجماع 0 (dpc0). تذكر ساعة محددة عند بدء تسجيل الضغط. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء العمليات الجراحية على dpc8-13. فإن شركة ظفار المحدد يعتمد على سلالة الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتحديد ما إذا كان الفأر هو الحامل قبل الجراحة، والمؤسسة العامةالتصوير بالموجات فوق الصوتية rform من البطن مع 40 ميغاهيرتز مجموعة خطية التحقيق بالإضافة إلى نظام التصوير قبل بالإدارة التخدير. وهذا سوف يسمح التصور من الأكياس الحمل. إذا كان نظام الموجات فوق الصوتية غير متوفرة، واستخدام وزن الماوس. ملاحظة: زيادة الوزن لا يقل عن 2 غرام بين dpc0 وdpc8 وانتفاخ البطن يعد مؤشرا جيدا من الحمل. </li></ol> 2. القياس عن بعد جراحة الإعدادية <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام الأوتوكلاف لتعقيم الأدوات والشاش، ومسحات القطن، والستائر الجراحية، ونصائح ماصة خلال 24 ساعة قبل الجراحة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سطح جراحة نظيفة مع الايثانول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بدوره على وسادة التدفئة (المتخصصة للقوارض) وحبة معقمة. </li></ol> 3. القياس عن بعد جراحة <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> للتخدير، استخدم 4-5٪ الأيزوفلورين مع معدل تدفق الأوكسجين من 1-2 لتر / دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> انتظر حتى يظهر الماوس علامات التخدير ثم حقن تحت الجلد مع البوبرينورفين (مسكن: 0.1 مل لكل 20 غرام). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حلق البطن من الفأرة من أسفل الأضلاع وصولا الى المثانة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جلب الماوس إلى طاولة جراحة في مرحلة ما قبل تحسنت سادة التدفئة، وتغطية العينين الماوس، مع مرهم للعين لمنع جفاف. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تبدأ تقنية معقمة. وضعت على قفازات معقمة والحفاظ على المجمع كما سطح العقيمة التي لوضع اليود والإيثانول الدعك. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إزالة مقياس البعد من حزمة أو المالحة واستخدام ملقط معقم لوضعه على شاش معقم. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> استخدام حقنة (التي قدمها المورد مقياس البعد) لملء طرف القسطرة مع هلام. الضغط بلطف القسطرة خلق الضغط السلبي كافيا لاستخلاص جل في القسطرة. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع غيض العقيمة على ماصة. ماصة 2 ميكرولتر من الغراء الجراحية وتعيين ماصة على سطح العقيمة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> لتنظيف موقع الجراحية، مسحة المنطقة مع اليود ثم مع الايثانول 70٪. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> قطع حفرة في ثنى الجراحية مجرد كبيرة بما فيه الكفايةللمنطقة اللازمة لشق ومكان على الماوس. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء قرصة القدم (استجابة دواسة) لضمان تخدير الماوس تماما قبل اتخاذ شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> جعل عمودي خط الوسط شق صغير. التالي، وجعل شق مماثل من خلال الكامنة عضلة جدار الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> سحب بلطف الرحم خارج تجويف الجسم وتحديد موقع قرن الرحم التي تحتوي على معظم الجراء التي هي قابلة للحياة. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> اختياري - لإضافة ميرنا، وضخ ناقلات فيروسية في الطبقة العضلية من الرحم قبل الإدراج من مقياس البعد. </li></ol></li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إجراء شق صغير في غيض من قرن الرحم مع 3 مم قطع مقص الربيع الحافة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> كاتب الموضوع القسطرة، دون الضغط، وبين جدار الرحم والحويصلات الجنين. إدراج القسطرة الماضي عدة الأكياس للحد من زواله عرضي. تأكد من عدم نشعر بالانزعاج الحويصلات الجنين قبل الإدراج. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ماصة الغراء الجراحي لموقع مقياس البعد الإدراج إلى الالتزام القسطرة إلى شالقرن terine ومنع القسطرة من الانزلاق للخروج من قرن الرحم. انتظر بضع ثوان للالغراء لتصبح جامدة، وبعد ذلك وضعت بعناية الرحم إلى داخل تجويف الجسم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مقياس البعد في تجويف الجسم على الجانب المقابل للموقع إدخال القسطرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة تجويف الجسم مغلقة مع 6.0 الغرز للامتصاص. أولا، هل غرزة محفظة ثم 3-4 غرز الفردية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> خياطة الجلد باستخدام نفس الأسلوب، ولكن مع 6-0 خياطة غير قابل للامتصاص. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> ديبوكايين مسحة (مسكن موضعي) مرهم على موقع شق. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> حقن 0.3-0.4 مل من معقم المالحة تحت الجلد للمساعدة على ترطيب الحيوان. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> مراقبة الحيوانات بعد الجراحة حتى يتم مستيقظا تماما. لا تضع الماوس مرة أخرى في قفصه حتى أنها قادرة على عقد بحرية رأسه فوق الجدول كما أنواع معينة من الفراش يمكن خنق ماوس تخدير بشكل كبير. لماوس التي تم تخدير لمدة 30-45 دقيقة، وينبغي للمرء أن يتوقع التاسعالبريد الماوس ليكون مستيقظا تماما قبل 1 ساعة و 15 دقيقة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> إذا كان أداء العمليات الجراحية إضافية، يمسح الأدوات مع الايثانول 70٪ وحبة تعقيم قبل إعادة استخدامها. </li></ol> 4. ما بعد الجراحة الانتعاش <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> رصد التقدم المحرز بعد الجراحة اليومي في السجل. الكتالوج زيادة الوزن وفقدان ومشاهدة لالخمول، والنزيف، أو إغلاق ناقصة من شق جراحي. <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> تغذية الماوس خففت طعام الماوس (~ اتساق عصير التفاح) أو متخصص الانتعاش الحمية الغذائية. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> دراسة الغرز وتأكد من عدم وسحبت خارج، ولكن حاول أن لا تعامل مع الماوس بشكل مفرط. </li></ol></li></ol> 5. القياس تسجيل <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في يوم من الفائدة (على الأقل يومين إلى ثلاثة أيام بعد أن تعافى من عملية جراحية الماوس)، ضع مغناطيس بالقرب من الماوس لتشغيل مقياس البعد. وضع القفص الماوس على المتلقي. ضوء على المتلقي يجب أن تعمل إذا تم تنشيط مقياس البعد. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> معايرة teleme العلامة التجارية الجديدة<html> النسب مع المعايرة الخاصة بالشركة المصنعة المقدمة. وستبقى مواصفات معايرة مقياس البعد استخدامها في مجال البرمجيات. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> في داخل البرنامج، بدء التسجيل عن طريق النقر على الحق في &quot;الحيوان&quot; وانقر على &quot;بدء أخذ العينات، ومستمرة&quot;، الذي يسمح أخذ العينات بمعدلات تصل إلى 500 هرتز. تأكد من تعيين البرنامج لحفظ وتعقبها. ملاحظة: عندما يتحول رمز الماوس أخذ العينات الأخضر، يجري تسجيلها الضغوط. يمكن إزعاج الماوس أثناء الولادة يقطع أو تغيير العمل، لذلك نلاحظ بحذر. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> بعد الولادة أو فترة زمنية من الفائدة، وإيقاف التسجيل عن طريق النقر على الحق في &quot;الحيوان&quot; واختيار &quot;وقف التسجيلات، جميع&quot;. استخدام المغناطيس لإيقاف مقياس البعد لإنقاذ حياة البطارية، وبطارية مقياس البعد وعادة ما تستمر فقط لمدة 1.5 أشهر من التسجيل المتواصل. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> الموت ببطء الماوس عن طريق CO 2 جرعة زائدة واسترداد مقياس البعد. يصرح باستخدامها الجراء عن طريق قطع الرأس. </li></ol>TLE &quot;&gt; 6. التعقيم مقياس البعد <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> وضع مقياس البعد في حل من 1٪ انزيم المنظفات في الماء طوال الليل منزوع الأيونات في درجة حرارة الغرفة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف مقياس البعد في الماء منزوع الأيونات وإزالة جميع الأنسجة والغراء، والحرص على عدم الضغط على القسطرة. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> احتضان مقياس البعد في 2٪ غلوتارالدهيد لمدة 24 ساعة في درجة حرارة الغرفة لتعقيم. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> شطف مقياس البعد بمحلول ملحي معقم وتخزينها في المياه المالحة عقيمة حتى زرع المقبل أو ليتم إرسالها إلى الشركة المصنعة ليتم تجديدها. وينبغي تجديدها Telemeters إذا كان موجودا الأنسجة داخل القسطرة بعد التعقيم. عادة telemeters يمكن استخدام 4-5 مرات قبل أن تحتاج إلى تجديد. </li></ol>

<ol>
	<li>Slattery, M. M., Morrison, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Preterm+delivery.">Preterm delivery.</a> Lancet. 360, 1489-1497 (2002).</li><li>Goldenberg, R. L., Culhane, J. F., Iams, J. D., Romero, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Epidemiology+and+causes+of+preterm+birth.">Epidemiology and causes of preterm birth.</a> Lancet. 371, 75-84 (2008).</li><li>Keelan, J. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Pharmacological+inhibition+of+inflammatory+pathways+for+the+prevention+of+preterm+birth.">Pharmacological inhibition of inflammatory pathways for the prevention of preterm birth.</a> Journal Of Reproductive Immunology. 88, 176-184 (2011).</li><li>Voltolini, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Understanding+spontaneous+preterm+birth:+from+underlying+mechanisms+to+predictive+and+preventive+interventions.">Understanding spontaneous preterm birth: from underlying mechanisms to predictive and preventive interventions.</a> Reproductive Sciences. 20, 1274-1292 (2013).</li><li>Ratajczak, C. K., Muglia, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Insights+into+parturition+biology+from+genetically+altered+mice.">Insights into parturition biology from genetically altered mice.</a> Pediatric research. 64, 581-589 (2008).</li><li>Rajakumar, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Placental+HIF-1+alpha,+HIF-2+alpha,+membrane+and+soluble+VEGF+receptor-1+proteins+are+not+increased+in+normotensive+pregnancies+complicated+by+late-onset+intrauterine+growth+restriction.">Placental HIF-1 alpha, HIF-2 alpha, membrane and soluble VEGF receptor-1 proteins are not increased in normotensive pregnancies complicated by late-onset intrauterine growth restriction.</a> American Journal Of Physiology. Regulatory, Integrative And Comparative Physiology. 293, (2007).</li><li>Whitesall, S. E., Hoff, J. B., Vollmer, A. P., D'Alecy, L. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Comparison+of+simultaneous+measurement+of+mouse+systolic+arterial+blood+pressure+by+radiotelemetry+and+tail-cuff+methods.+American+journal+of+physiology.">Comparison of simultaneous measurement of mouse systolic arterial blood pressure by radiotelemetry and tail-cuff methods. American journal of physiology.</a> Heart And Circulatory Physiology. 286, H2408-H2415 (2004).</li><li>Mackay, L. B., Shi, L. B., Maul, H. .., Maner, W. L., Garfield, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+bilateral+pelvic+neurectomy+on+cervical+ripening+in+pregnant+rats.">The effect of bilateral pelvic neurectomy on cervical ripening in pregnant rats.</a> Journal Of Perinatal Medicine. 37, 263-269 (2009).</li><li>Pierce, S. L., Kutschke, W., Cabeza, R., England, S. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In+vivo+measurement+of+intrauterine+pressure+by+telemetry:+a+new+approach+for+studying+parturition+in+mouse+models.">In vivo measurement of intrauterine pressure by telemetry: a new approach for studying parturition in mouse models.</a> Physiol Genomics. 42, 310-316 (2010).</li><li>Imamura, T., Luedke, C. E., Vogt, S. K., Muglia, L. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Oxytocin+modulates+the+onset+of+murine+parturition+by+competing+ovarian+and+uterine+effects.">Oxytocin modulates the onset of murine parturition by competing ovarian and uterine effects.</a> American Journal Of Physiology. Regulatory, Integrative And Comparative Physiology. 279, R1061-R1067 (2000).</li><li>McCloskey, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+inwardly+rectifying+K++channel+KIR7.1+controls+uterine+excitability+throughout+pregnancy.">The inwardly rectifying K+ channel KIR7.1 controls uterine excitability throughout pregnancy.</a> EMBO Mol Med. 6 (9), 1161-1174 (2014).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

وقد اعتمدت التحقيقات في انقباض ميوميتريال على القياسات المجراة سابقا من توتر العضلات. هذه المنهجية يمكن أن تكون مفيدة للاختبار في مرحلة مبكرة من الأدوية المقوية لتوتر الرحم وضعت حديثا التي لا يمكن أن تدار على الحيوانات الحية. ومع ذلك، النهج في الجسم الحي ضرورية لفهم طوليا تطور العمل. القياسات المجراة تخدم عدة أغراض. أولا، أنها تمكن من التقاط صورة كاملة عن التغييرات في نمط مقلص الرحم خلال فترة الحمل. ثانيا، القضاء على التحيز من خارج الحي التسجيلات التي تتطلب أنسجة الرحم ليتم تحميلها إما عموديا أو أفقيا، مما يحد من فهمنا لدور كامل للطبقة العضلات الدائرية والطولية للرحم. ثالثا، أنها تسمح تسجيل ضغط الرحم في البيئة الهرمونية الذاتية، مما يجعل من الممكن لدراسة أكثر دقة الولادة في نماذج الماوس. وأخيرا، أنها تسمح لمزيد من TRالتحقيقات anslational بين نماذج الماوس والبشر كما الرحم القياس عن بعد أكثر شبها القياسات التي اتخذت في النساء الحوامل مع القسطرة الضغط داخل الرحم. طرق للماوس الرحم القياس عن بعد من السهل تعلم، ولكن من الصعب الرئيسي. المحققون مع خبرة سابقة جراحة الماوس قد يحقق النجاح أسرع، ولكن هذا لا ينبغي أن ردع مختبرات من استخدام هذه التقنية قيمة. وقد أجريت دراسات الأصلية باستخدام الماوس الرحم القياس عن بعد من قبل مبتدئ بنجاح كبير بعد عدة محاولات، لذلك يجب أن تكون على استعداد مختبرات لأول زوجين من العمليات الجراحية للتسبب في السد لتفقد كل الأجنة. وفيما يلي بعض المؤشرات أن نأخذ في الاعتبار. كما هو الحال مع أي عملية جراحية، وأقصر مدة هي الأفضل للحيوان. وهناك عملية جراحية سريعة تحد من الجفاف والحاجة إلى جرعات إضافية من التخدير. إذا كان الباحث هو وجود الوقت الصعب الانتهاء من إجراءات قبل الماوس يستيقظ، الأيزوفلورين يمكن استخدامها للحفاظ على anesthetiz الماوسإد لفترة أطول. لقد وجدنا أيضا أن استخدام الأيزوفلورين يزيد من عدد من الجراء وقابلة للحياة ويفضل أكثر من الكيتامين. أصغر شق ممكن، فقط أكبر قليلا من جسم مقياس البعد، سوف يقلل من فرصة للجرحا غائرا في وقت لاحق، وانخفاض الوقت اللازم لخياطة الجروح، وتحسين الانتعاش الماوس. مع شق البطن صغير، وسحب الرحم خارج تجويف الجسم سيسمح لتحسين الرؤية أثناء إدخال القسطرة. عندما إعادة استخدام مقياس البعد، عامل في منحنى السابق للقسطرة عندما خيوط عليه قرن الرحم. السماح للالغراء جراحي لتتصلب تماما قبل وضع قرن الرحم إلى داخل تجويف الجسم سوف تساعد على الحفاظ القسطرة في مكان ومنع الغراء من الالتصاق إلى الأمعاء. يمكن للجسم مقياس البعد تلف الكبد إذا وضعت مرتفعة جدا، والبطن الماوس، قادر على توسيع نطاق واسع، لذلك لا تتردد في وضع مقياس البعد أقل في الجسم. وهذه الأساليب يجب أن تكون مخصصة رس تناسب احتياجات مختبرات مختلفة ونماذج الماوس مختلفة، ولكن مزايا الرحم القياس عن بعد تفوق بكثير العقبات. هناك بعض القيود التي يجب أخذها في الاعتبار عند تنفيذ هذه المنهجية. واحدة من التحديات الرئيسية التي لا بد من التغلب عليها هي درجة من فقدان الجنين بعد زرع جهاز الإرسال. في القياس عن بعد داخل الرحم التقرير الأولي 9، كان كل SK3 T / T، والنوع البري الفئران المعدلة وراثيا درجة معينة من فقدان الجنين في قرون واحد أو كلا الرحم بغض النظر عما إذا تم اختيار هذا القرن لوضع مقياس البعد. تعظيم الاستفادة من اختيار يوم خلال فترة الحمل عندما يكون مقياس البعد كان جراحيا بإدراجه تحسن معدل لدينا من الحمل على المدى ناجحة، ولكن مجموعة كاملة من الجراء تم الحصول عليها أبدا. والجدير بالذكر أن اليوم الأمثل لعملية جراحية لSK3 T / T الفئران تختلف عن التي في النوع البري، مع نتائج الإنجابية الأفضل لوحظ في dpc12-13 لSK3 T / T الفئران مقابل dpc8-9 لWT الفئران، suggeاللدغة التي قد تحتاج بروتوكول لعملية جراحية لتعديلها لكل نموذج الفأر من الفائدة. وأشارت البيانات المتوفرة لدينا أن عدد الجراء ولادة لم تكن متطابقة مع الضغط داخل الرحم بشكل عام. نتائج الجنين لم تتحسن مع تحسن المهارات الجراحية من قبل المجرب، وغيرهم ممن نفذت هذه المنهجية في المختبرات الخاصة لاحظت أن نتائج الجنين تحسنت مع استخدام الأيزوفلورين بدلا من الكيتامين. ومن المتوقع أن كما تستخدم المزيد من مختبرات هذه المنهجية، والتكنولوجيا الارسال وبرامج التحليل داخل الرحم وسوف تصبح أكثر دقة. هذا وسوف تقدم مما لا شك فيه فائدة هذه التقنية في الدراسات الآليات التي تسهم في العمل.

الولادة المبكرة هي السبب الرئيسي للمراضة والوفيات في البلدان المتقدمة ما حول الولادة، وهي مسؤولة عن 50٪ من الاعتلال فترة ما حول الولادة و 75٪ من وفيات ما حول الولادة 1،2. الولادة المبكرة هو متعدد الأوجه ويمكن أن يكون مجهول السبب. على الرغم من أن الكثير من البحث برز على المسارات الجزيئية والكهربائية تحويل عضل الرحم من الأنسجة هادئة إلى مقلص واحد، والفيزيولوجيا المرضية الدقيق الولادة المبكرة لا يزال بعيد المنال. كانت جميعها ترتبط الغدد الصماء، والتهابات، وتنظيم الجينات إلى الخدج العمل 3،4. ومع ذلك، مخاوف أخلاقية تحد من القدرة على إجراء البحوث حول آليات الولادة المبكرة لدى البشر. ونظرا لهذه القيود، تحولت العديد من الباحثين على الفئران كنظام نموذج التي لدراسة علم وظائف الأعضاء من الولادة. الفئران لها gestations قصيرة استمرت ما يقرب من ثلاثة أسابيع، ويمكن بسهولة التلاعب بها وراثيا. بالإضافة إلى ذلك، عدة نماذج الماوس الوراثية لهاوضعت لتحديد مسارات الإشارات التي هي ضرورية لعمل 5. على الرغم من الاختلافات الرئيسية بين الماوس والولادة الإنسان والفئران والانسان يشتركان في العديد من نفس الآليات التي تعتبر أساسية للعمل، بما في ذلك التهاب داخل الرحم وإصابة 6. وهكذا، الفئران بمثابة أداة لا تقدر بثمن لدراسة النشاط الرحم. حتى الآن، معيار الذهب لقياس انقباض الرحم في الفئران كانت خارج الحي تسجيلات التوتر متساوي القياس. ولكن هذا يقتصر على نقطة واحدة مرة الحمل في التجربة ويتطلب إزالة الرحم من بيئتها الفسيولوجية. عامل مهم آخر هو عدد كبير من الحيوانات المطلوبة لهذه التحقيقات. وأخيرا، هذه المنهجية لا يسمح للدراسات طولية دراسة تحريض المخاض قبل الأوان والفيزيولوجيا المرضية. التقدم المحرز مؤخرا في أجهزة القياس الإشعاعي المستخدمة لدراسة ضغط الدم يغير 7 في الفئران وكثافة العملياتضغط rauterine في الفئران 8 توسل السؤال ما إذا كان نفس التكنولوجيا يمكن أن تستخدم لدراسة التغيرات في الضغط داخل الرحم في الفئران خلال فترة الحمل. بعد استكشاف الأخطاء وإصلاحها الأولي، تم وضع طريقة لقياس بنجاح تحريض المخاض والتقدم في الماوس. يمكن لهذا النهج في الجسم الحي قياس التحول من الدولة الضغط المنخفض من الرحم هادئة للدولة وارتفاع ضغط الإرشادية للتقلصات العمل قوية. وقد كان هذا الأسلوب أيضا قادرة على الكشف عن الاختلافات ضغط كبيرة بين الفئران المعدلة وراثيا مع الولادة للخطر والفئران نوع البرية، مما يدل على تأثير الفسيولوجية في التعبير الجيني 9. يوفر هذا البروتوكول في الوقت الحقيقي، في طريقة الجسم الحي لدراسة ضغط الماوس الرحم خلال فترة الحمل.

<table><tbody><tr><td>Surgical Glue</td><td>3M Vetbond</td><td>1469SB</td><td>Tissue Adhesive--stored in Drierite</td></tr><tr><td>Absorbable 6-0 Sutures</td><td>Ethicon</td><td>J212H</td><td>Vicryl</td></tr><tr><td>Non-absorbable 6-0 Sutures</td><td>Ethicon</td><td>8706H</td><td>Prolene</td></tr><tr><td>Water Jacket Blanket + Heating Pad</td><td>Gaymer</td><td>T/Pump PN 11184-000 Blanket-66N111CC</td><td>Specialized for rodents</td></tr><tr><td>Bead sterilizer</td><td>Keller</td><td>Z378577</td><td>Steri 250 Sterilizer</td></tr><tr><td>Disecting Microscope</td><td>Nikon</td><td>SMZ754</td><td>Fibre optic gooseneck external light source</td></tr><tr><td>Sterile Surgical Gloves--Latex&amp;nbsp;</td><td>Cardinal Health Triflex</td><td>2D7253</td><td></td></tr><tr><td>PhysioTel PA-C10 Pressure Transmitter</td><td>&amp;nbsp;Data Sciences International</td><td>270-0135-001</td><td>TA11PA-C10</td></tr><tr><td>Telemeter Reciever</td><td>&amp;nbsp;Data Sciences International</td><td>272-6001-001</td><td>RPC-1</td></tr><tr><td>Dataquest ART 4.3.2 Analysis Platinum</td><td>&amp;nbsp;Data Sciences International</td><td>271-0147-141</td><td>Analysis software</td></tr><tr><td>Diet Recovery Gel</td><td>Clear H2O</td><td>72-01-5022</td><td>Purified Soft Diet for Rodents</td></tr><tr><td>Tergazyme</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z273287</td><td>Enzyme detergent</td></tr></tbody></table>

intrauterine telemetry to measure mouse contractile pressure in vivo

وهناك حاجة إلى التكامل معقدة من الإشارات الجزيئية والكهربائية لتحويل الرحم هادئة في جهاز مقلص في نهاية الحمل. وعلى الرغم من اكتشاف المنظمين الرئيسية الرحم انقباض، لا تزال غير مفهومة تماما هذه العملية. وتوفر الفئران المعدلة وراثيا نموذج مثالي للدراسة الولادة. سابقا، كان الطريقة الوحيدة لدراسة الرحم انقباض في الماوس خارج الحي تسجيلات التوتر متساوي القياس، والتي هي دون المستوى الأمثل لعدة أسباب. يجب إزالة الرحم من بيئتها الفسيولوجية، ودورة زمنية محدودة من التحقيق هو ممكن، ويجب التضحية الفئران. وقد سمحت التطورات الأخيرة في القياس الإشعاعي للالطولية، والقياسات في الوقت الحقيقي من الضغط داخل الرحم في الجسم الحي في الفئران. هنا، وغرس لمقياس البعد داخل الرحم لقياس تغيرات الضغط في الرحم الماوس من منتصف الحمل حتى يتم وصفها التسليم. من خلال مقارنة الاختلافات في الصحافةures بين نوع البرية والفئران المعدلة وراثيا، وتأثير الفسيولوجية من الجين من الفائدة يمكن توضيح. هذه التقنية يجب الإسراع في تطوير علاجات تستخدم لعلاج اضطرابات ميوميتريال خلال فترة الحمل، بما في ذلك المخاض قبل الأوان.

في الوقت الحقيقي في الضغوط داخل الرحم الجسم الحي يمكن تسجيلها باستخدام نظام الحصول على القياس عن بعد. تم استخدام أخذ العينات الضغط يقترن في وقت واحد تسجيل الفيديو من الماوس لالتقاط الوقت المحدد للتسليم كل الجرو وربط التسليم في الوقت المحدد لضغط الرحم للأم. ويمكن بعد كل النقاط البيانات يمكن رسم في جميع أنحاء تسجيل لتوليد مؤامرة (الشكل 1A) الضغط مقابل الوقت. وتظهر هذه المؤامرة النقاط خلال فترة الحمل عندما يتغير الضغط داخل الرحم وكذلك الفرق في الضغط بين دورات الظلام والضوء. بالإضافة إلى ذلك، المتوسط ​​المتحرك لضغط الرحم يمكن رسم (الشكل 1B). وهذا مفيد لتصور بسهولة أكبر زيادات مستدامة في خاصية الضغط داخل الرحم للتقلصات المصاحبة لعملية العمل (وقد نشرت التسجيلات التي تم الحصول عليها أثناء الولادة قبل 9). يمكن للبيانات أن تحليلها من خلال تصدير البيانات تشير إلى برامج التحليل وبلغ متوسط ​​البيانات عبر فترة زمنية من الفائدة. عند المقارنة بين ظروف تجريبية مختلفة، مثل النوع البري مقابل الفئران المعدلة وراثيا، يوميا أو الضغوط ساعة من الفئران مختلفة يمكن المتوسط ​​لدراسة أنماط مقلص تعتمد على الجينات في المصالح. بالإضافة إلى ذلك، يمكن تحديد دلالة إحصائية في أي خلافات. يمكن فحص الضغوط داخل الرحم أثناء الولادة، أو يمكن أجرت دراسة طولية لدراسة فترة الحمل بأكملها تحت ظروف مختلفة. القياس عن بعد داخل الرحم يمكن استخدامها لاختبار في استجابات الجسم الحي إلى وكلاء الدوائية خلال فترة الحمل. على وجه التحديد، ويسمح هذا الأسلوب في أوائل اختبار المخدرات قبل التجارب السريرية. ويمكن اختبار الاختلافات في استجابة لعوامل محددة في الفئران المعدلة وراثيا، وكذلك في الفئران غير الحوامل أو الحوامل. واحد وكيل الدوائية محددة معروفة لزيادة عنقانكماش شمال شرق، الأوكسيتوسين، يمكن تسليمها تحت الجلد كما هو موضح سابقا في نموذج الفئران 10. يمكن زرعها في مقياس البعد في نفس الوقت بمثابة مضخة التناضحي الصغيرة لتقديم بمعدل ثابت من الأوكسيتوسين. كما يمكن فحص الاختلافات في التسجيلات بين غير الحوامل (الشكل 2A) وحامل (الشكل 2B) الفئران مع إدارة الأوكسيتوسين. تطبيق آخر محتمل القياس عن بعد داخل الرحم هو يبحث في تقلصات الرحم بعد ميرنا / shRNA إسكات البروتينات. نماذج الماوس ليست متاحة لجميع الجينات التي تعتبر ضرورية لالولادة. وبالتالي، إسكات الجينات في تركيبة مع قياسات الضغط داخل الرحم يمكن استخدامها لتحقيق البروتينات المثيرة للاهتمام. عن طريق حقن ميرنا، معربا عن ناقلات lentiviral في عضل الرحم خلال زرع مقياس البعد، ضربة قاضية الرحم محددة من الجينات في المصالح يمكن فحص، كما رأينا في الشكل 3A. وأظهرت دراسة حديثةمثال محدد مما يدل على أن قناة Kir7.1 دورا هاما في الرحم هدوء بعد استخدام كل من ميرنا والقياس عن بعد لدراسة التغييرات في الضغط داخل الرحم طوال فترة الحمل 11. تظهر اقتفاء أثر التمثيلية للسارعت ميرنا (الشكل 3A) أو Kir7.1 ميرنا (الشكل 3B) التي هدمت تعبير عن قناة البوتاسيوم Kir7.1 تسبب الضغط داخل الرحم لزيادة. هذه اقتفاء أثر تمثيلية مشابهة لما ينظر إليه في نماذج الماوس المعدلة وراثيا كما هو موضح سابقا 9. <img alt="الشكل (1)" src="/files/ftp_upload/52541/52541fig1highres.jpg" /> الشكل 1: ممثل المستمر تسجيل ضغط الرحم (A) في الوقت الحقيقي البيانات الضغط داخل الرحم المسجلة في الجسم الحي بشكل مستمر لمدة أربعة أيام (15-19 DPC). (ب) المتوسط ​​المتحرك ساعة من البيانات في (A). WHالحانات الفنار والأسود على رأس التسجيلات تشير إلى 12 ساعة ضوء والظلام دورات على التوالي. (C) والتكبير في أثر الماوس في تقلصات الفردية الجسم الحي. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52541/52541fig1large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.</a> <img alt="الشكل 2" src="/files/ftp_upload/52541/52541fig2highres.jpg" /> الشكل 2: الضغوط داخل الرحم استجابة لاقتفاء أثر الأوكسيتوسين التمثيلية للضغط الرحم من غير الحوامل (NP) عضل الرحم (A) والحوامل في وقت متأخر (18 DPC) عضل الرحم (B) تتعرض ل5 وحدات / يوم من الأوكسيتوسين لمدة 24 ساعة وتظهر الزيادات. في الضغط في وقت متأخر من الحمل مقابل الفئران NP. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52541/52541fig2large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.</a> <img alt="الشكل (3)" src="/files/ftp_upload/52541/52541fig3highres.jpg" /> الشكل (3): قياس الضغط داخل الرحم بعد إسكات قناة البوتاسيوم التي كتبها ميرنا / shRNA (A) تخطيطي لموضع مقياس البعد ومواقع حقن lentiviruses ميرنا، معربا عن. وقد أظهرت الدراسات التي أجريت مؤخرا على اقتفاء أثر التمثيلية للضغط الرحم من عضل الرحم transduced مع (B) سارعت ميرنا أو (C) Kir7.1 ميرنا. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/52541/52541fig3large.jpg" target="_blank">الرجاء انقر هنا لمشاهدة نسخة أكبر من هذا الرقم.</a>

Watch this Scientific Journal Video about Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo at JoVE.com

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy.

القياس عن بعد داخل الرحم لقياس ماوس مقلص الضغط<em&gt; في فيفو</em

A complex integration of molecular and electrical signals is needed to transform a quiescent uterus into a contractile organ at the end of pregnancy. ...

intrauterine-telemetry-to-measure-mouse-contractile-pressure-in-vivo

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

9.6K Views.  Washington University in St. Louis. This manuscript provides a protocol for implanting telemeters in the mouse for the purpose of measuring intrauterine pressures during pregnancy. 

Video: Intrauterine Telemetry to Measure Mouse Contractile Pressure In Vivo

Measuring Left Ventricular Pressure in Late Embryonic and Neonatal Mice

Blood pressure increases significantly during embryonic and postnatal development in vertebrate animals. In the mouse, blood flow is first detectable around embryonic day (E) 8.51. Systolic left ventricular (LV) pressure is 2 mmHg at E9.5 and 11 mmHg at E14.52. At these mid-embryonic stages, the LV is clearly visible through the chest wall for invasive pressure measurements because the ribs and skin are not fully developed. Between E14.5 and birth (approximately E21) imaging methods must be used to view the LV. After birth, mean arterial pressure increases from 30 - 70 mmHg from postnatal day (P) 2 - 353. Beyond P20, arterial pressure can be measured with solid-state catheters (i.e. Millar or Scisense). Before P20, these catheters are too big for developing mouse arteries and arterial pressure must be measured with custom pulled plastic catheters attached to fluid-filled pressure transducers3 or glass micropipettes attached to servo null pressure transducers4.
Our recent work has shown that the greatest increase in blood pressure occurs during the late embryonic to early postnatal period in mice5-7. This large increase in blood pressure may influence smooth muscle cell (SMC) phenotype in developing arteries and trigger important mechanotransduction events. In human disease, where the mechanical properties of developing arteries are compromised by defects in extracellular matrix proteins (i.e. Marfan's Syndrome8 and Supravalvular Aortic Stenosis9) the rapid changes in blood pressure during this period may contribute to disease phenotype and severity through alterations in mechanotransduction signals. Therefore, it is important to be able to measure blood pressure changes during late embryonic and neonatal periods in mouse models of human disease.
We describe a method for measuring LV pressure in late embryonic (E18) and early postnatal (P1 - 20) mice. A needle attached to a fluid-filled pressure transducer is inserted into the LV under ultrasound guidance. Care is taken to maintain normal cardiac function during the experimental protocol, especially for the embryonic mice. Representative data are presented and limitations of the protocol are discussed.

Measuring left ventricular pressure (LV) in embryonic and neonatal mice is described. Pressure is measured by inserting a needle connected to a fluid-filled transducer into the LV under ultrasound guidance. Care must be taken to maintain normal cardiac function during the experimental protocol.

قياس ضغط البطين الأيسر في وقت متأخر من الفئران الجنينية وحديثي الولادة

Blood pressure increases significantly during embryonic and postnatal development in vertebrate animals. In the mouse, blood flow is first detectable ...

Bioengineering

Implantation of Radiotelemetry Transmitters Yielding Data on ECG, Heart Rate, Core Body Temperature and Activity in Free-moving Laboratory Mice

The laboratory mouse is the animal species of choice for most biomedical research, in both the academic sphere and the pharmaceutical industry. Mice are a manageable size and relatively easy to house. These factors, together with the availability of a wealth of spontaneous and experimentally induced mutants, make laboratory mice ideally suited to a wide variety of research areas.
In cardiovascular, pharmacological and toxicological research, accurate measurement of parameters relating to the circulatory system of laboratory animals is often required. Determination of heart rate, heart rate variability, and duration of PQ and QT intervals are based on electrocardiogram (ECG) recordings. However, obtaining reliable ECG curves as well as physiological data such as core body temperature in mice can be difficult using conventional measurement techniques, which require connecting sensors and lead wires to a restrained, tethered, or even anaesthetized animal. Data obtained in this fashion must be interpreted with caution, as it is well known that restraining and anesthesia can have a major artifactual influence on physiological parameters1, 2.
Radiotelemetry enables data to be collected from conscious and untethered animals. Measurements can be conducted even in freely moving animals, and without requiring the investigator to be in the proximity of the animal. Thus, known sources of artifacts are avoided, and accurate and reliable measurements are assured. This methodology also reduces interanimal variability, thus reducing the number of animals used, rendering this technology the most humane method of monitoring physiological parameters in laboratory animals3, 4. Constant advancements in data acquisition technology and implant miniaturization mean that it is now possible to record physiological parameters and locomotor activity continuously and in realtime over longer periods such as hours, days or even weeks3, 5.
Here, we describe a surgical technique for implantation of a commercially available telemetry transmitter used for continuous measurements of core body temperature, locomotor activity and biopotential (i.e. onelead ECG), from which heart rate, heart rate variability, and PQ and QT intervals can be established in freeroaming, untethered mice. We also present pre-operative procedures and protocols for post-operative intensive care and pain treatment that improve recovery, well-being and survival rates in implanted mice5, 6.

A surgical technique for implantation of commercially available telemetry transmitters used for continuous measurement of biopotential (one-lead ECG), heart rate, core body temperature and locomotor activity in freely moving mice is shown. Recommendations and protocols for post-operative care and pain relief, improving recovery, well being and survival rate are also presented.

غرس المرسلات القياسات اللاسلكية استسلام بيانات عن تخطيط القلب ومعدل ضربات القلب الهيئة الأساسية ، درجة الحرارة والنشاط في الفئران المختبرية الحركة الحرة

The laboratory mouse is the animal species of choice for most biomedical research, in both the academic sphere and the pharmaceutical industry. Mice are a ...

In utero Measurement of Heart Rate in Mouse by Noninvasive M-mode Echocardiography

Congenital heart disease (CHD) is the most frequent noninfectious cause of death at birth. The incidence of CHD ranges from 4 to 50/1,000 births (Disease and injury regional estimates, World Health Organization, 2004). Surgeries that often compromise the quality of life are required to correct heart defects, reminding us of the importance of finding the causes of CHD. Mutant mouse models and live imaging technology have become essential tools to study the etiology of this disease. Although advanced methods allow live imaging of abnormal hearts in embryos, the physiological and hemodynamic states of the latter are often compromised due to surgical and/or lengthy procedures. Noninvasive ultrasound imaging, however, can be used without surgically exposing the embryos, thereby maintaining their physiology. Herein, we use simple M-mode ultrasound to assess heart rates of embryos at E18.5 in utero. The detection of abnormal heart rates is indeed a good indicator of dysfunction of the heart and thus constitutes a first step in the identification of developmental defects that may lead to heart failure.

In utero Measurement of Heart Rate in Mouse by Noninvasive M-mode Echocardiography

Ultra-high frequency ultrasound is a powerful live imaging tool to examine cardiac abnormalities in small animals. Its noninvasiveness allows maintaining the physiologic state of embryos. Herein, we show the use of M-mode ultrasound to measure the heart rates of embryos at E18.5 in utero.

في قياس الرحم من معدل ضربات القلب في الماوس بواسطة موسع M-وضع ضربات القلب

Congenital heart disease (CHD) is the most frequent noninfectious cause of death at birth. The incidence of CHD ranges from 4 to 50/1,000 births (Disease ...

<meta charset="utf8"></head><body>التغييرات اللاإرادية للأم في الفئران من الحمل إلى تربية الجراء

Analysis of Electrocardiograms and Behavior in Mice from Pregnancy to Lactation Period

Changes in the mother-offspring relationship are presumably accompanied by dynamic changes in the autonomic nervous system. Although temporal measurements of autonomic activity have been performed in human mothers and infants, the analysis of long-term changes remains unexplored. Mouse mothers can form social bonds with their pups and have a short period of pregnancy and lactation, which makes them useful for the examination of physiological changes from pregnancy to pup-rearing. Therefore, a telemetry system was used for several weeks to measure the changes in the autonomic nervous system and the behavior of mouse mothers. The current results showed that an electrocardiogram (ECG) could be stably recorded regardless of the movements of mothers and parturition. ECG analysis showed that the heart rate gradually decreased from pregnancy to lactation, and sympathetic activity sharply increased as the pups developed. Furthermore, the simultaneous recording of behavior and ECG in the home cage enabled us to understand the behavior-dependent influences on the ECG, thereby revealing the characteristics of autonomic nervous activity during each behavior. Thus, the present experimental method helps to understand how the physiological characteristics of mothers change from pregnancy through pup rearing, supporting the healthy development of pups.

<meta charset="utf8"></head><body>تحليل تخطيط كهربية القلب والسلوك في الفئران من الحمل إلى فترة الرضاعة

A simultaneous recording of autonomic activity and detailed maternal behavior of mother mice from pregnancy to lactation was achieved using a telemetry system. This method helps to understand the dynamics of the physiological and behavioral characteristics in mothers from pregnancy to weaning.

تحليل تخطيط كهربية القلب والسلوك في الفئران من الحمل إلى فترة الرضاعة

Changes in the mother-offspring relationship are presumably accompanied by dynamic changes in the autonomic nervous system. Although temporal measurements ...

Behavior

Long-term Blood Pressure Measurement in Freely Moving Mice Using Telemetry

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. Indeed, research focusing on the discovery of new potential therapeutic targets using genetically altered mice requires a reliable, long-term assessment of the systemic arterial pressure variation. Currently, the gold standard for obtaining long-term measurements of blood pressure in ambulatory mice uses implantable radio-transmitters, which require&#160;artery cannulation. This technique eliminates the need for tethering, restraining, or anesthetizing the animals which introduce stress and artifacts during data sampling. However, arterial blood pressure monitoring in mice via catheterization can be rather challenging due to the small size of the arteries. Here we present a step-by-step guide to illustrate the crucial key passages for a successful subcutaneous implantation of radio-transmitters and carotid artery cannulation in mice. We also include examples of long-term blood pressure activity taken from freely moving mice after a period of post-surgery recovery. Following this procedure will allow reliable direct blood pressure recordings from multiple animals simultaneously.

The goal of this protocol is to assess systemic blood pressure in conscious freely moving mice using implantable radio-telemetry devices.

على المدى الطويل قياس ضغط الدم في الانتقال بحرية الفئران عن طريق القياس

During the development of new vasoactive agents, arterial blood pressure monitoring is crucial for evaluating the efficacy of the new proposed drugs. ...

Application of Consistent Massage-Like Perturbations on Mouse Calves and Monitoring the Resulting Intramuscular Pressure Changes

Massage is generally recognized to be beneficial for relieving pain and inflammation. Although previous studies have reported anti-inflammatory effects of massage on skeletal muscles, the molecular mechanisms behind are poorly understood. We have recently developed a simple device to apply local cyclical compression (LCC), which can generate intramuscular pressure waves with varying amplitudes. Using this device, we have demonstrated that LCC modulates inflammatory responses of macrophages in situ and alleviates immobilization-induced muscle atrophy. Here, we describe protocols for the optimization and application of LCC as a massage-like intervention against immobilization-induced inflammation and atrophy of skeletal muscles of mouse hindlimbs. The protocol that we have developed can be useful for investigating the mechanism underlying beneficial effects of physical exercise and massage. Our experimental system provides a prototype of the analytical approach to elucidate the mechanical regulation of muscle homeostasis, although further development needs to be made for more comprehensive studies.

Here we describe the protocols for applying defined mechanical loads to mouse calves and for monitoring the concomitant intramuscular pressure changes. The experimental systems that we have developed can be useful for investigating the mechanism behind the beneficial effects of physical exercise and massage.

تطبيق اضطرابات متناسقة تشبه التدليك على عجول الماوس ومراقبة التغيرات الناتجة عن الضغط العضلي العضلي

Massage is generally recognized to be beneficial for relieving pain and inflammation. Although previous studies have reported anti-inflammatory effects of ...

Immunology and Infection

Implantation of Combined Telemetric ECG and Blood Pressure Transmitters to Determine Spontaneous Baroreflex Sensitivity in Conscious Mice

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. The baroreflex is a key homeostatic mechanism to counteract acute, short-term changes in arterial BP and to maintain BP in a relatively narrow physiological range. BP is sensed by baroreceptors located in the aortic arch and carotid sinus. When BP changes, signals are transmitted to the central nervous system and are then communicated to the parasympathetic and sympathetic branches of the autonomic nervous system to adjust HR. A rise in BP causes a reflex decrease in HR, a drop in BP causes a reflex increase in HR.
Baroreflex sensitivity (BRS) is the quantitative relationship between changes in arterial BP and corresponding changes in HR. Cardiovascular diseases are often associated with impaired baroreflex function. In various studies reduced BRS has been reported in e.g., heart failure, myocardial infarction, or coronary artery disease. 
Determination of BRS requires information from both BP and HR, which can be recorded simultaneously using telemetric devices. The surgical procedure is described beginning with the insertion of the pressure sensor into the left carotid artery and positioning of its tip in the aortic arch to monitor arterial pressure followed by the subcutaneous placement of the transmitter and ECG electrodes. We also describe postoperative intensive care and analgesic management. After a two-week period of post-surgery recovery long-term ECG and BP recordings are performed in conscious and unrestrained mice. Finally, we include examples of high-quality recordings and the analysis of spontaneous baroreceptor sensitivity using the sequence method.

The baroreflex is a heart-rate regulation mechanism by the autonomic nervous system in response to blood-pressure changes. We describe a surgical technique to implant telemetry transmitters for continuous and simultaneous measurement of electrocardiogram and blood pressure in mice. This can determine spontaneous baroreflex sensitivity, an important prognostic marker for cardiovascular disease.

زرع جهاز إرسال تخطيط القلب عن بعد وضغط الدم لتحديد حساسية منعكس الضغط التلقائي في الفئران الواعية

Blood pressure (BP) and heart rate (HR) are both controlled by the autonomic nervous system (ANS) and are closely intertwined due to reflex mechanisms. ...

Real-Time Electrocardiogram Monitoring During Treadmill Training in Mice

Regular physical exercise is a major contributor to cardiovascular health, influencing various metabolic as well as electrophysiological processes. However, in certain cardiac diseases such as inherited arrhythmia syndromes, e.g., arrhythmogenic cardiomyopathy (ACM) or myocarditis, physical exercise may have negative effects on the heart leading to a proarrhythmogenic substrate production. Currently, the underlying molecular mechanisms of exercise-related proarrhythmogenic remodeling are largely unknown, thus it remains unclear which frequency, duration, and intensity of exercise can be considered safe in the context of disease(s).
The proposed method allows to study proarrhythmic/antiarrhythmic effects of physical exercise by combining treadmill training with real-time monitoring of the ECG. Implantable telemetry devices are used to continuously record the ECG of freely moving mice over a period of up to 3 months both at rest and during treadmill training. Data acquisition software with its analysis modules is used to analyze basic ECG parameters such as heart rate, P wave duration, PR interval, QRS interval, or QT duration at rest, during and after training. Furthermore, heart rate variability (HRV) parameters and occurrence of arrhythmias are evaluated. In brief, this manuscript describes a step-by-step approach to experimentally explore exercise induced effects on cardiac electrophysiology, including potential proarrhythmogenic remodeling in mouse models.

Electrocardiogram (ECG) is the key variable to understanding cardiac electrophysiology. Physical exercise has beneficial effects but may also be harmful in the context of cardiovascular diseases. This manuscript provides a method of recording real-time ECG during exercise, which can serve to investigate its effects on cardiac electrophysiology in mice.

مراقبة مخطط كهربية القلب في الوقت الحقيقي أثناء تدريب جهاز المشي في الفئران

Regular physical exercise is a major contributor to cardiovascular health, influencing various metabolic as well as electrophysiological processes. ...

القياس عن بعد داخل الرحم لقياس ماوس مقلص الضغط

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

قياس ضغط البطين الأيسر في وقت متأخر من الفئران الجنينية وحديثي الولادة

غرس المرسلات القياسات اللاسلكية استسلام بيانات عن تخطيط القلب ومعدل ضربات القلب الهيئة الأساسية ، درجة الحرارة والنشاط في الفئران المختبرية الحركة الحرة

في قياس الرحم من معدل ضربات القلب في الماوس بواسطة موسع M-وضع ضربات القلب

تحليل تخطيط كهربية القلب والسلوك في الفئران من الحمل إلى فترة الرضاعة

تحليل تخطيط كهربية القلب والسلوك في الفئران من الحمل إلى فترة الرضاعة

تحليل تخطيط كهربية القلب والسلوك في الفئران من الحمل إلى فترة الرضاعة

على المدى الطويل قياس ضغط الدم في الانتقال بحرية الفئران عن طريق القياس

تطبيق اضطرابات متناسقة تشبه التدليك على عجول الماوس ومراقبة التغيرات الناتجة عن الضغط العضلي العضلي

زرع جهاز إرسال تخطيط القلب عن بعد وضغط الدم لتحديد حساسية منعكس الضغط التلقائي في الفئران الواعية

مراقبة مخطط كهربية القلب في الوقت الحقيقي أثناء تدريب جهاز المشي في الفئران