Name: in vivo evaluation of the mechanical and viscoelastic properties of the rat tongue
Uploaded: 2017-07-06T14:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 59 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue at JoVE.com

Bu araştırma iki Ulusal Sağlık Teşviği Enstitüsü tarafından desteklendi: HL089447 (&quot;Obezite ve OSA: Dilde Yağ ve Metabolik Fonksiyonun Önemini Anlamak&quot;) ve HL094307 (&quot;Obezite ve Dil Falı İlişkisini Anlamak&quot;)

Hayvan konuları da dahil olmak üzere tüm prosedürler, Pennsylvania Üniversitesi&#39;nin Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır (Protokol numarası 805822). Tarif edilen prosedür terminaldir ve aseptik koşulların veya farmasötik sınıf ürünlerin kullanılmasını gerektirmez. 1. Cerrahi İşlemler <img alt="Şekil 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56006/56006fig1.jpg" /> Şekil 1: Cerrahi İşlemler. (A) Cerrahi plan sınırlaması. Kırmızı kesikli çizgi insizyonun alanını belirtir. İki siyah çizgi çene pozisyonunu, alttaki siyah çizgi ise toraksın pozisyonunu belirtir. Mavi çizgi hyoid kemiğini gösterir. (B) Yağ dokusunun, dil altı ve submaxill&#39;in künt disseksiyonundan sonra digastrik kasın posterior belininin (oklar ) maruz kalması<html> Bez bezleri. (C) Hipoglossal siniri (beyaz ok) açığa çıkarmak için digastrik kasının posterior karnı (kesikli yeşil çizgi ) rezeksiyonu. (D) Hipoglossal sinir (beyaz ok) çevresindeki fasyadan temizlenir. (E) Trakea çevresindeki düz kası yavaşça çekerek maruz bırakılır (yeşil oklar uygulanan kuvvet yönünü gösterir) ve entübasyona hazırlanmak için kaldırılmıştır (F) . Yıldız, dilin hiyoid kemiğe sokulduğunu gösterir. Yeşil kesik çizgi, entübasyon için insizyon noktasını işaretler. Beyaz ok, yerleştirildikten sonra kanülü yerinde sabitlemek için hazırlanan gevşek düğüm gösterir. (G) Kanülasyon için trakeanın kesilmesi. (H) Trakeal kanül, kare şeklinde bir düğümle yerine yerleştirilir ve sabitlenir. (I) Dikişin dile uygulanması.Target = &quot;_ blank&quot;&gt; Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız. <ol><li> Anestezi ve ameliyat için hazırlık <ol><li> Rat% 4 izofluran anestezi ile indüksiyon odasına yerleştirin. </li><li> Bir ısı kaynağı üzerine yatırın ve dakika başına en az 70 solunum solunum hızı sağlayan bir burun kokusundan% 1 - 3 izofluran ile anestezi uygulayın. </li><li> Boyun bölgesini bir hava kesici ve epilasyon kremi ile tıraş edin. Epilasyon kremi kullanırken, kremi pamuk uçlu bir aplikatör ile kürk çıkana kadar serpiştirin. Epilasyon kremi uzun süreli maruz kalınması cildin tahrişe neden olabilir. </li><li> Cerrahi alanı% 70 alkolle temizleyin ( Şekil 1A ). </li><li> İlk insizyona devam etmeden önce hayvanın solunum modelini ve reflekslerini kontrol edin (ayak parmak refleksi eksikliği). Anestezi derinliğinin sürekli izlenmesi ve değerlendirilmesi önemlidir (tekrarKordon solunum hızı ve her 10 dakikada bir refleks eksikliği); Tüm prosedür boyunca hayvanın derin, cerrahi bir anestezi düzlemi altında olması gerekir. </li></ol></li><li> Hipoglossal Sinirlerin Tanımlanması <ol><li> Şekil 1A&#39;daki kırmızı noktalı çizginin gösterdiği şekilde cildi rezeke ederek ve çıkartarak cerrahi alanı bir çift ameliyat makası ile açın. </li><li> Herhangi bir yağ dokusu, dil altı ve submakseal bezler ve trakeayı çevreleyen kas katmanı yoluyla bulanıklığı kesin. NOT: Diseksiyon süresince muhafazakar olun. Mümkün olduğunca künt diseksiyon uygulayın ve boynun kan damarlarına zarar vermemek için dikkatli olun. </li><li> Trakea lateralindeki digastrik kasının (PD) posterior göbeğini tanımlayın ( Şekil 1B - beyaz oklar). Hipoglossal sinir bu kasın altından geçer ( Şekil 1C - beyaz ok). Elektrokoter ile PD proksisini rezekte edin( Şekil 1C - kesikli çizgi). NOT: Sinirin veya etrafındaki dokunun kurumasına izin vermeyin. Siniri korumak için sinir üzerine bir damla mineral yağ ekleyin. Elektrodlardan uyarıcının alan yayılımına bağlı olarak kas kasılmasını önlemek için, sinir çevresinde olası temas bölgelerindeki kas dokusunu dikkatli bir şekilde koterize edin. </li><li> Bir çift ince forseps kullanarak, hipoglossal siniri çevre fasyadan ayırın. Bir kanca yardımıyla, bipolar elektrot bağlantısı için sinirin en az 3 mm olduğundan emin olun ( Şekil 1D ). </li><li> Mikro hemostatik forseps kullanarak, hipoglossal siniri, uyarıcının retrograd yayılımını önlemek için mümkün olduğunca hipoid kemikten ( Şekil 1D - beyaz ok) distal olarak ezin. Siniri, mikro hemostatik forseps ile 5 sn basınç uygulayarak ezin. Hemostat siniri tuttuğunda, kısa bir tDilin tabanındaki cadı görünür olmalıdır. </li><li> Diğer taraf için prosedürü tekrarlayın. </li></ol></li><li> Trakeal entübasyon <ol><li> Çevredeki düz kasları künt diseksiyonla hafifçe ayırarak trakeaya maruz kalın ( Şekil 1E - yeşil oklarla gösterildiği gibi). NOT: Konservatif olun ve tercihan künt disseksiyonu kullanın. Kanül çapını trakea çapıyla karşılaştırın. Kanül, trakeaya doğru şekilde oturmalıdır ve 1.3.2 ila 1.3.5. Adımlarda anlatıldığı gibi sütüre edildikten sonra stabil şekilde sokulmalıdır. </li><li> Trakeayı, dikiş sıkıştırma forsepsleri kullanarak yavaşça kaldırın ve toraksa yakın bir 4-0 dikiş yerleştirin. 6. ve 7. halka arasındaki başlangıç ​​gevşek düğümünü gırtlaktan bağlayın ( Şekil 1F - beyaz ok). Kanopi yerlerine oturtmak için kanül yerleştirildiğinde bu düğüm kapatılır. </li><li> Bir çubuğu kaydırınKaldırmak ve kanülün (IV 14 gx 3.25 &quot;kanül) takılmasını kolaylaştırmak için trakea altına pipet aktarın (pipetin takılması kolaylaştırmak için mineral yağı ile yağlayın). </li><li> Larenksten 4. ve 5. halkalar arasında küçük bir kesik açın ( Şekil 1G - beyaz ok). İlk insizyondan sonra, açılma eğilimi gösterecektir, bu nedenle trakeanın komplet rezeksiyonundan kaçınmak için başlangıç ​​kesimini yaparken muhafazakar olunuz. NOT: Trakea kesisini yapmadan önce, kanül hazır olduğundan ve anestezi iletiminin açık olduğundan emin olun. </li><li> Kanül yoluyla anestezi uygulamasına başlayın ve nazikçe insizyona yerleştirin, trakea içerisinde nazik bir şekilde yaklaşık 5 zil uzunluğunda ilerleyin. Hava geçirmez bir conta oluşturmak için, kanülü dikişle yerinde sabitleyin ( Şekil İH ). NOT: Kaçınılması önlemek için tırtıklanmış trakeaya hiçbir sıvı girmemesine dikkat edinonumu. Trakea kesecek olursa, hayvan oda havasını soluyor olacaktır. Bu nedenle kanülün hızlı bir şekilde yerleştirilmesi, böylece anestezinin verilmesi korunur. Hayvanı ne zaman / isterse hareket ettirirseniz, trakea içindeki kanülün doğru konumunu izleyin. </li><li> Hayvanı nazikçe nosekondan çıkarın. NOT: İzofluran yerine enjekte edilebilir anestetikler kullanılması, trakeal entübasyon gereksinimini ortadan kaldırarak ve deneysel çalışma alanını fazladan borulardan temizleyerek prosedürü basitleştirebilir. </li></ol></li><li> Dil dikiş <ol><li> PBS&#39;de 20 cm uzunluğunda 5/0 dikiş parçası (ipek, siyah örgülü önerin) koyun. </li><li> Farenin ağzını açık tutarken, dikiş sıkıştırma forsepsiyle dilin ucunu hafifçe tutun. </li><li> Dikişi , potansiyel dokuyu önlemek için dili tuzlu su ile nemli tutmaya dikkat ederek dilin ucundan mediale geçirin ( Şekil 1I - beyaz ok)hasar. </li><li> Yaklaşık 4 cm genişliğinde bir halka bağlayın (çap hayvan ve kuvvet dönüştürücü arasındaki mesafeye bağlı olarak değişebilir). NOT: Eklemeyi kolaylaştırmak ve dokunun gereksiz lezyonlarından kaçınmak için dikişin ve dilden ıslak olduğundan emin olun. </li></ol></li></ol> 2. Deneysel Kurulum <img alt="şekil 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56006/56006fig2.jpg" /> Şekil 2: Hayvan Yerleştirme ve Güvenliğinin Sağlanması. (A) Fare, deney platformuna yerleştirilmiştir. Çene sabitlenir ve ağız dikey gerginlik (yeşil ok) uygulanarak açık tutulur. Dikiş döngüsü kuvvet transdüktörüne bağlanır (beyaz ok). (B) Elektrotlar bağlıdır. (C) Bir mikromanipülatör üzerine monte edilen her elektrot, sinire istikrarlı bir şekilde bağlanır. Kakma tKanca elektrotu. (D) Düğümün optimal uzunluğu, dilin kıvrım tırnağının seviyesine yerleştirildikten dilin ucuna kadar bir Vernier kaliper ile ölçülür. Bu resimde, açıklık sağlamak için elektrotlar çıkarıldı. <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/56006/56006fig2large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.</a> Not: Deney sırasında hareket etmemek için, aşağıdaki önlemleri kullanarak cihazın ısıtılmış tepsisine yatırın. <ol><li> Sıçanın burnunu, ısıtılmış platforma doğrudan bağlı plastik kaplamalı bir metal bükülme tepsisi ile kasete sabitleyin ( Şekil 2A , 2B ). </li><li> Dikey gerginlik uygulayarak fare ağzını açınız (9 kg&#39;lık test monofilament hattına bağlı bir 3 yönlü döndürme kullanın ve bir kamera çubuğuyla yerine tutun) ( Şekil 2A - yeşil ok). NOT: Sıçanın stabilize edilmesine yönelik alternatif bir yaklaşım, kemirgen ağız kancası veya bunun özel bir tadilatı kullanmaktır. Ölçüm kalitesini etkileyebilecek boynun hareketlerinden kaçınmak için ağzın açık ve sabit kalması zorunludur. </li><li> Dikiş döngüsünü kuvvet transdüktörüne bağlayın ( Şekil 2A - beyaz ok). </li><li> Cerrahi bandı kullanarak, uyarılar sırasında hareketleri sınırlandırmak için uzuvları ve sıçanın karnını hareketsiz hale getirin. </li><li> İki stimule edici kanca bipolar elektrotu disseke hipoglossal sinirlere, proksimale ezici bölgeye uygulayın ( Şekil 2C ). <ol><li> Uyarıcı iki kutuplu elektrotlar, bir plastik destek kullanılarak birbirlerinden 2 mm uzakta tutulan, bir çift cerrahi sınıfı çelik 29 gauge iğne elektrodundan yapılmış özel olarak kullanın (burada, birlikte bantlanmış iki adet 1 mL&#39;lik serolojik pipetler kullandık). </li><li> İğne elektrotlarının uçlarını kanca şekline bükünSinirle (~ 1 mm çapında) istikrarlı bir temas oluşturacak kadar küçük ( Şekil 2C - kakma). </li><li> Her bir elektrodun iki telini muz jack x BNC jaklı istiflenebilir bir çift ciltli postaya bağlayın ve daha sonra bir BNC splitter kullanarak bir in situ Kas Test Sisteminin (Tablo 3) stimülatör modülüne bağlayın. NOT: Hayvanın dengeli olduğundan ve boynun ve dilden kuvvet dönüştürücü kola hizalandığından emin olun. Solunum hızını izlemeye devam edin ve sınırlamaların solunum ile etkileşime girmediğinden emin olun. </li></ol></li></ol> 3. Optimum Uzunluk (L 0 ) ve Maksimal İzometrik Kuvveti Belirleme <ol><li> Dil uzunluğunu kademesiz olarak ayarlayın ve maksimum bir kuvvet elde edilinceye kadar izometrik seğirme uyarılarını uygulayın. <ol><li> L 0&#39;ı , izometrik seğirme kuvvetinin ( Tablo 1 ) maksimum olduğu uzunluk olarak tanımlayın ve sonraki normalleştirme için kaydedinHer hayvan için değiştiği gibi kuvvet ölçümleri. Bir Vernier kaliper kullanarak, dilin uzunluğunu, eklemden, hipoid kemik seviyesinde ( Şekil 2D ) dilin ucuna kadar ölçün. NOT: Elektrotların doğru şekilde konumlandırılması, sinirler ile optimal teması sağlamak için şarttır. Optimum konumlandırma, sırasıyla iki sinirden birini veya ikisini de uyarırken benzer ve ek güçler uygulamalıdır. </li></ol></li><li> Denemeye başlamadan önce, hem elektrotları uyarana bağlayın ve bir tetanik tetik stimülasyon uygulayın ( Tablo 1 ). Bu daralma sırasında, pozisyonun dengeli olduğundan emin olmak için hayvanı izleyin ve boyun kaslarının istenmeyen şekilde görülen kasılmalarını kontrol edin. </li><li> Bir tetik uyarısı ile 20 saniye sonra bir seğirme uygulayarak izometrik kuvveti ölçün. Uyarıları 3 kez tekrarlayın, stimülasyon döngüleri arasında 4 dk iyileşme sağlayın (bir döngü bir seğirme veTetanik uyarımı) ve maksimum seğirme ve tetanik kuvvetlerini kaydedin. </li><li> Kasılmalar arasında birkaç damla PBS uygulayarak dili her zaman ıslak tutun. NOT: Boyun kasları küçülürse, elektrotların çevresindeki kas dokusuna dokunmamaları için elektrotların konumunu dikkatli bir şekilde değiştirin ve gerekirse dokuları elektrotlarla temas halinde koterize edin. </li></ol> 4. Viskoelastik Özelliklerin Belirlenmesi (Lissajous Eğrileri) <ol><li> İzometrik kuvvet tespitinden sonra dilin 3-5 dakika dinlendirilmesine izin verin. Lissajous eğrilerini L0&#39;dan başlayarak gerçekleştirin, bu nedenle hayvanın ve kuvvet dönüştürücünün konumu asla değiştirilmemelidir. </li><li> Hipoglossal sinirleri uyarmadan, artan yer değiştirme (d), yani 5, 10, 15, 20, 25, 30, 35, 40,% 50 L0 (daha büyük amplitüdler) ile pasif uzantıların döngüleri uygulayın ( Tablo 2 ) Mod denetleyicisi ile305C-LR&#39;den daha fazla r gezi değeri). Örneğin,% 40 L0 genliği, dildeki deformasyonun +% 20 L0&#39;dan -20% L0 yapmasına neden olacaktır. <ol><li> Her devirde 10 tekrarlarla sabit 2 Hz sinüs frekansı kullanın, her devirde toplam 5 saniye süreyle. Sinüs frekansındaki değişiklikler geçmişte diyafram 24 gibi dokularla kullanılmıştır ve deney protokolünü değiştirmek için kullanılabilir. </li><li> Her döngü arasında 30 saniye bekleyin ve tüm işlem sırasında dilin ıslak olmasını sağlayın. NOT: Prosedür sırasında birkaç damla PBS ekleyerek dili ıslak tutun. Çeneyi tutan kısıtlamanın, uzantılar sırasında, özellikle yer değiştirme% 40&#39;a veya daha yüksek bir hıza ulaştığında, istikrarlı bir şekilde yerinde kalmasını sağlayın. </li></ol></li><li> Deney bittikten hemen sonra, hayvan hala anestezi derin bir cerrahi düzlemi altında iken, hayvan onaylanmış IACUC hayvan protokole göre euthanizeocol. Dilin ileriki işlemler için ayrılması ( örneğin, dondurulmuş kesit alma veya biyokimyasal analizler için depolama). </li></ol>

<ol>
	<li>Sanders, I., Mu, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+three-dimensional+atlas+of+human+tongue+muscles.">A three-dimensional atlas of human tongue muscles.</a> Anat Rec (Hoboken). 296 (7), 1102-1114 (2013).</li><li>Ciucci, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tongue+force+and+timing+deficits+in+a+rat+model+of+Parkinson+disease.">Tongue force and timing deficits in a rat model of Parkinson disease.</a> Behav Brain Res. 222 (2), 315-320 (2011).</li><li>Easterling, C., Antinoja, J., Cashin, S., Barkhaus, P. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Changes+in+tongue+pressure,+pulmonary+function,+and+salivary+flow+in+patients+with+amyotrophic+lateral+sclerosis.">Changes in tongue pressure, pulmonary function, and salivary flow in patients with amyotrophic lateral sclerosis.</a> Dysphagia. 28 (2), 217-225 (2013).</li><li>Wang, Z. J., Huang, X. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Images+in+clinical+medicine.+Myotonia+of+the+tongue.">Images in clinical medicine. Myotonia of the tongue.</a> N Engl J Med. 365 (15), e32 (2011).</li><li>Ota, F., Connor, N. P., Konopacki, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alterations+in+contractile+properties+of+tongue+muscles+in+old+rats.">Alterations in contractile properties of tongue muscles in old rats.</a> Ann Otol Rhinol Laryngol. 114 (10), 799-803 (2005).</li><li>Schwarz, E. C., Thompson, J. M., Connor, N. P., Behan, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+Effects+of+Aging+on+Hypoglossal+Motoneurons+in+Rats.">The Effects of Aging on Hypoglossal Motoneurons in Rats.</a> Dysphagia. 24 (1), 40 (2008).</li><li>Pae, E. -. K., Wu, J., Nguyen, D., Monti, R., Harper, R. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Geniohyoid+muscle+properties+and+myosin+heavy+chain+composition+are+altered+after+short-term+intermittent+hypoxic+exposure.">Geniohyoid muscle properties and myosin heavy chain composition are altered after short-term intermittent hypoxic exposure.</a> J Appl Physiol. 98 (3), 889-894 (2005).</li><li>Fuller, D. D., Fregosi, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fatiguing+contractions+of+tongue+protrudor+and+retractor+muscles:+influence+of+systemic+hypoxia.">Fatiguing contractions of tongue protrudor and retractor muscles: influence of systemic hypoxia.</a> J Appl Physiol. 88 (6), 2123-2130 (2000).</li><li>Ray, A. D., Farkas, G. A., Pendergast, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=In-situ+mechanical+characteristics+of+the+tongue+are+not+altered+in+the+obese+Zucker+rat.">In-situ mechanical characteristics of the tongue are not altered in the obese Zucker rat.</a> Sleep. 32 (7), 957 (2009).</li><li>Brennick, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tongue+fat+infiltration+in+obese+versus+lean+Zucker+rats.">Tongue fat infiltration in obese versus lean Zucker rats.</a> Sleep. 37 (6), 1095-1102 (2014).</li><li>Stedman, H. H., Sweeney, H. L., Shrager, J. B., Maguire, H. C., Panettieri, R. A., Petrof, B., Narusawa, M., Leferovich, J. M., Sladky, J. T., Kelly, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+mdx+mouse+diaphragm+reproduces+the+degenerative+changes+of+Duchenne+muscular+dystrophy.">The mdx mouse diaphragm reproduces the degenerative changes of Duchenne muscular dystrophy.</a> Nature. 352 (6335), 536-539 (1991).</li><li>Goodpaster, B. H., Wolf, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Skeletal+muscle+lipid+accumulation+in+obesity,+insulin+resistance,+and+type+2+diabetes.">Skeletal muscle lipid accumulation in obesity, insulin resistance, and type 2 diabetes.</a> Pediatr Diabetes. 5 (4), 219-226 (2004).</li><li>Loro, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=IL-15R&#945;+is+a+determinant+of+muscle+fuel+utilization,+and+its+loss+protects+against+obesity.">IL-15R&#945; is a determinant of muscle fuel utilization, and its loss protects against obesity.</a> Am J Physiol Regul Integr Comp Physiol. 309 (8), R835-R844 (2015).</li><li>Rahemi, H., Nigam, N., Wakeling, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+intramuscular+fat+on+skeletal+muscle+mechanics:+implications+for+the+elderly+and+obese.">The effect of intramuscular fat on skeletal muscle mechanics: implications for the elderly and obese.</a> J R Soc Interface. 12 (109), 20150365 (2015).</li><li>Kim, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tongue+fat+and+its+relationship+to+obstructive+sleep+apnea.">Tongue fat and its relationship to obstructive sleep apnea.</a> Sleep. 37 (10), 1639-1648 (2014).</li><li>Kim, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Metabolic+activity+of+the+tongue+in+obstructive+sleep+apnea.+A+novel+application+of+FDG+positron+emission+tomography+imaging.">Metabolic activity of the tongue in obstructive sleep apnea. A novel application of FDG positron emission tomography imaging.</a> Am J Respir Crit Care Med. 189 (11), 1416-1425 (2014).</li><li>Gilliam, E. E., Goldberg, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Contractile+properties+of+the+tongue+muscles:+effects+of+hypoglossal+nerve+and+extracellular+motoneuron+stimulation+in+rat.">Contractile properties of the tongue muscles: effects of hypoglossal nerve and extracellular motoneuron stimulation in rat.</a> J Neurophysiol. 74 (2), 547-555 (1995).</li><li>Sokoloff, A. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Localization+and+contractile+properties+of+intrinsic+longitudinal+motor+units+of+the+rat+tongue.">Localization and contractile properties of intrinsic longitudinal motor units of the rat tongue.</a> J Neurophysiol. 84 (2), 827-835 (2000).</li><li>Becker, B. J., Russell, J. A., Connor, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+aging+on+evoked+retrusive+tongue+actions.">Effects of aging on evoked retrusive tongue actions.</a> Arch Oral Biol. 60 (6), 966-971 (2015).</li><li>Connor, N. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tongue+muscle+plasticity+following+hypoglossal+nerve+stimulation+in+aged+rats.">Tongue muscle plasticity following hypoglossal nerve stimulation in aged rats.</a> Muscle Nerve. 47 (2), 230-240 (2013).</li><li>Seo, J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Nerve+cuff+electrode+using+embedded+magnets+and+its+application+to+hypoglossal+nerve+stimulation.">Nerve cuff electrode using embedded magnets and its application to hypoglossal nerve stimulation.</a> J Neural Eng. 13 (6), 066014 (2016).</li><li>Friedman, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+hypoglossal+nerve+stimulation+for+the+treatment+of+obstructive+sleep+apnea:+Six-month+results.">Targeted hypoglossal nerve stimulation for the treatment of obstructive sleep apnea: Six-month results.</a> Laryngoscope. 126 (11), 2618-2623 (2016).</li><li>Heiser, C., Maurer, J. T., Steffen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+outcome+of+tongue+motions+with+selective+hypoglossal+nerve+stimulation+in+patients+with+obstructive+sleep+apnea.">Functional outcome of tongue motions with selective hypoglossal nerve stimulation in patients with obstructive sleep apnea.</a> Sleep Breath. 20 (2), 553-560 (2016).</li><li>Syme, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Passive+viscoelastic+work+of+isolated+rat,+Rattus+norvegicus,+diaphragm+muscle.">Passive viscoelastic work of isolated rat, Rattus norvegicus, diaphragm muscle.</a> J Physiol. 424, 301-315 (1990).</li><li>Connor, N. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+tongue+exercise+on+protrusive+force+and+muscle+fiber+area+in+aging+rats.">Effect of tongue exercise on protrusive force and muscle fiber area in aging rats.</a> J Speech Lang Hear Res. 52 (3), 732-744 (2009).</li><li>Schaser, A. J., Stang, K., Connor, N. P., Behan, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+effect+of+age+and+tongue+exercise+on+BDNF+and+TrkB+in+the+hypoglossal+nucleus+of+rats.">The effect of age and tongue exercise on BDNF and TrkB in the hypoglossal nucleus of rats.</a> Behav Brain Res. 226 (1), 235-241 (2012).</li><li>Puhan, M. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Didgeridoo+playing+as+alternative+treatment+for+obstructive+sleep+apnea+syndrome:+randomised+controlled+trial.">Didgeridoo playing as alternative treatment for obstructive sleep apnea syndrome: randomised controlled trial.</a> BMJ. 332 (7536), 266-270 (2006).</li><li>Guimar&#227;es, K. C., Drager, L. F., Genta, P. R., Marcondes, B. F., Lorenzi-Filho, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effects+of+oropharyngeal+exercises+on+patients+with+moderate+obstructive+sleep+apnea+syndrome.">Effects of oropharyngeal exercises on patients with moderate obstructive sleep apnea syndrome.</a> Am J Respir Crit Care Med. 179 (10), 962-966 (2009).</li><li>Ueda, H., Almeida, F. R., Chen, H., Lowe, A. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Effect+of+2+jaw+exercises+on+occlusal+function+in+patients+with+obstructive+sleep+apnea+during+oral+appliance+therapy:+a+randomized+controlled+trial.">Effect of 2 jaw exercises on occlusal function in patients with obstructive sleep apnea during oral appliance therapy: a randomized controlled trial.</a> Am J Orthod Dentofacial Orthop. 135 (4), 430 (2009).</li><li>Strollo, P. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Upper-airway+stimulation+for+obstructive+sleep+apnea.">Upper-airway stimulation for obstructive sleep apnea.</a> N Engl J Med. 370 (2), 139-149 (2014).</li><li>Perrier, P., Payan, Y., Zandipour, M., Perkell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Influences+of+tongue+biomechanics+on+speech+movements+during+the+production+of+velar+stop+consonants:+A+modeling+study.">Influences of tongue biomechanics on speech movements during the production of velar stop consonants: A modeling study.</a> J Acoust Soc Am. 114 (3), 1582-1599 (2003).</li><li>Connor, N. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tongue+muscle+plasticity+following+hypoglossal+nerve+stimulation+in+aged+rats.">Tongue muscle plasticity following hypoglossal nerve stimulation in aged rats.</a> Muscle &amp; nerve. 47 (2), 230-240 (2013).</li><li>Brady, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=AlphaB-crystallin+in+lens+development+and+muscle+integrity:+a+gene+knockout+approach.">AlphaB-crystallin in lens development and muscle integrity: a gene knockout approach.</a> Invest Ophthalmol Vis Sci. 42 (12), 2924-2934 (2001).</li><li>Spassov, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+expression+of+myosin+heavy+chain+isoforms+in+the+masticatory+muscles+of+dystrophin-deficient+mice.">Differential expression of myosin heavy chain isoforms in the masticatory muscles of dystrophin-deficient mice.</a> Eur J Orthod. , ciq113 (2010).</li><li>Lever, T. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Videofluoroscopic+Validation+of+a+Translational+Murine+Model+of+Presbyphagia.">Videofluoroscopic Validation of a Translational Murine Model of Presbyphagia.</a> Dysphagia. 30 (3), 328-342 (2015).</li><li>Gantois, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ablation+of+D1+dopamine+receptor-expressing+cells+generates+mice+with+seizures,+dystonia,+hyperactivity,+and+impaired+oral+behavior.">Ablation of D1 dopamine receptor-expressing cells generates mice with seizures, dystonia, hyperactivity, and impaired oral behavior.</a> Proc Natl Acad Sci. 104 (10), 4182-4187 (2007).</li></ol>

Yazarların açıklayacak bir şeyi yok.

Dil metabolizması ve / veya bileşimindeki değişiklikler, örneğin obezite sonucu dilde yağ infiltrasyonunun, protokolümüz tarafından değerlendirilen parametrelerin nicelenebilir değişikliklerine neden olduğu tahmin edilmektedir. Diş kuvvetinin nicelendirilmesi büyük önem taşımaktadır, çünkü çıkıntılı ve geriye çekici aktivite veya genel dilde zayıflama arasındaki bir dengesizlik üst hava yolu 15&#39;ün tıkanmasına neden olabilir. Dil kuvvetini artırmayı amaçlayan egzersiz teknikleri sıçanlarda 25 , 26 ve ayrıca 27 , 28 , 29 nolu insanlarda başarılı bir şekilde uygulandı ve burada uyku apnesinin şiddetini azalttılar. Buna ek olarak, hipoglossal sinir stimülasyonu obstrüktif uyku apnesi için cerrahi bir tedavidir22,23,30. <p cLass = &quot;jove_content&quot;&gt; Deneysel protokolümüz, dil kasının mekanik ve viskoelastik özelliklerinin analizinde kullanıcıyı yönlendirmeyi amaçlıyor. Bu parametrelerin değerlendirilmesi, modern görüntüleme sonuçlarının fonksiyonel verilerle korelasyonuna izin veren önemli bir translasyonel değere sahiptir. Özellikle, bu teknik, konuşma terapisi 31 , uyku tıbbı 10 , 25 ve obstrüktif uyku apnesinin patogenezi gibi birçok alanla ilgili olabilir15. Açıklanan stimülasyon protokolü ve parametreleri, kuvvet-frekans ilişkisi, yorgunluk ve yorgunluk giderme kapasitesi gibi diğer fizyolojik bilgileri elde etmek için ve ayrıca stimülasyona yanıt olarak kas kasılmasının kinetiğini elde etmek için kolayca değiştirilebilir. Uyarı uyarılmış kuvvet ölçümleri olmadan kullanıldığında, tarif ettiğimiz pasif kuvvet / deformasyon protokolü tekrarlananDilin minimal invaziv sütürü hariç, sinir uyarımı ve kuvvet ölçümleri için kullanılan cerrahi prosedürlerden herhangi birine gerek duymadığı için zamanla analize tabi tutulur. Bu durumda MR&#39;nin hesapladığı dildeki fizyolojik uzunluk, ölçülen L 0 yerine referans olarak kullanılabilir ( Tablo 2 , parametre d). Bu amaçla, enjekte edilebilir anestezinin kullanılması trakeal entübasyon ihtiyacını ortadan kaldıracaktır. Mevcut yaklaşımın bir kısıtlılığı, dil büzülmesinin çıkıntılı ve geri çekici bileşenlerini ayırt edememesidir. Bu protokolde tarif edilen uyarıcı kanca elektrotları, sinirin bifurkasyona yakın bir yere yerleştirilir, böylece dilin tamamının stimüle edilmesi teşvik edilir. Diğer gruplar sıçan 19 , 32 veya tavşanlar 21&#39;de silikon sinir manşet elektrotlarının kullanımını tarif etmiştir;Düşük selektif erişim ve hipoglossal sinirlerin bir veya her iki dalının uyarılması. Ek olarak, izofluran inhalasyon yerine enjekte edilebilir anestetikler kullanılması, hipoglossal sinirlerin dallandığı submandibular bölgeye daha iyi erişim sağlayacaktır. Uygulama ile bu protokol, fareler gibi hastalık modellerinin büyük çoğunluğunun mevcut olduğu daha küçük hayvanlar için geçerlidir. Özellikle, dil fizyolojisinin değiştirildiği bir dizi fare modeli 33 , 34 , 35 , 36 olarak bilinir. Ölçeklendirme, küçük cerrahi aletlerin, elektrotların ve trakeal kanüllerin (gerekirse) ve isteğe bağlı olarak daha düşük kuvvet aralıkları için tasarlanmış bir kuvvet dönüştürücüsünün kullanılmasını gerektirecektir.

<html> Dil, çiğneme, sökme, tat algılama ve konuşma için gerekli desteği sağlar. Farklı innerve ve anatomi / fonksiyona sahip ekstrinsik ve intrinsik kasların varlığı, bu kaslı hidrostatın tekliğinden sorumludur. Görüntüleme tekniklerindeki son gelişmeler, karmaşık anatomisinin daha ayrıntılı bir görünümünü sağlamıştır 1 . Dil işlevselliklerinde azalma, dil atrofisi, disfaji ve konuşma engelleri, Parkinson 2 , Amyotrofik Lateral Skleroz (ALS) 3 , Myotonic Distrofi (MD) 4 ve diğer miyopatiler gibi miyopatik rahatsızlıkların da belirtileridir. Sık görülen hastalık durumlarıyla ilişkili kas kompozisyonundaki değişiklikler dilin mekanik ve viskoelastik özelliklerini etkiler. Örneğin, dil kuvvetinin işlevsel analizi yaşlanma ile ilişkili kasılma özelliklerinde değişiklikler ortaya çıkarmıştırSs = &quot;xref&quot;&gt; 5 , 6 , hipoksi 7 , 8 ve obezite 9 , 10 . Kas distrofisi durumunda, artmış fibrozis, bir kas gerilmesine neden olur ve bu da bir Lissajous deformasyon protokolü uygulandığında deformasyona daha az uyuma neden olur 11 . Tersine, obez hastalarda belgelenenler gibi kas yağ içeriğindeki değişiklikler hem metabolik 12 hem de iskelet kasının 13 , 14 mekanik özelliklerini değiştirir ve kasın deformasyona uyumunu artırması beklenir. Artan dil fizi, kısmi üst hava yolu tıkanıklığı (apne) noktasına dil hacmini arttırarak, insanlardaki 17 , obstrüktif uyku apnesinin (OSA) gelişimi ile de korelasyon gösterir 15,16. SimObez Zucker sıçanlarında ( 10) dilin yağ infiltrasyonu belgelendi ve bu modelin, dil fızyolojisine yağ infiltrasyonunun etkilerini incelemek için değerli bir araç olduğunu düşündürdü. Dil kuvvetinin ölçülmesi, hipoglossal sinirleri 17 , 18 izole etmek ve çift taraflı olarak stimule etmek için hassas cerrahi teknikler gerektirir. Bu tür teknikler daha önce farelere 5 , 17 , 19 , 20 , tavşanlar 21 ve insanlar 22 , 23&#39;de tarif edilmiş, ancak araştırmacıya sınırlı görsel yardımlar yapılmıştır. Oldukça teknik doğası nedeniyle ayrıntılı bir protokolün varlığı, bu tekniğin erişilebilirliğini ve tekrarlanabilirliğini önemli ölçüde artıracaktır. Deneysel paradigmamızın amacı,Bir sıçan modelinde dilin mukavemet ve viskoelastik özelliklerini ölçmek için geçerli ve güvenilir bir teknik gereklidir. Bunu gerçekleştirmek için sıçan anestezi altına alınıp, hipoglossal sinirlere maruz bırakılır ve hayvanın dile serbestçe erişmesini sağlamak için trakea kanüle edilir. Bir sütür ilmesi daha sonra, iki kuvvet ve uzunluğu kontrol edebilen bir kuvvet dönüştürücüsüne dilin ucunu bağlarken, iki bipolar kanca elektrotu hipoglossal sinirleri dilin kasılmasını başlatmaya teşvik eder. Kuvvet ölçümü tamamlandıktan sonra, kuvvet transdüserinin uzunluk kontrol yetenekleri, sabit amplitüd (Lissajous eğrileri), süresi ve frekansı olan bir sinüs dalgası protokolüne göre, dilin süresini hızla değiştirmek için kullanılır; Viskoelastik özellikleri 11 , 24 . Protokol araştırmacıya diseksiyon aşamaları, hayvanın deneysel platfo üzerinde konumlandırılması konularında rehberlik edecektirRm, elektrot yerleştirilmesi ve son olarak kuvvet ve viskoelastiklik verisinin edinimi ve analizleri.

<table><tbody><tr><td>SurgiSuite (heated Surgical tray)</td><td>Kent Scientific</td><td>SurgiSuite-LG</td><td>Includes heated platform</td></tr><tr><td>LED Lighting and Magnification Kit</td><td>Kent Scientific</td><td>SURGI- 5003</td><td></td></tr><tr><td>RC&lt;sup&gt;2&lt;/sup&gt; Rodent Circuit Controller</td><td>VetEquip</td><td>922100</td><td></td></tr><tr><td>Isoflurane</td><td>Butler Schein Animal Health Supply</td><td>29405</td><td></td></tr><tr><td>Alcohol Prep</td><td>Webcol</td><td>6818</td><td></td></tr><tr><td>Cotton-tipped applicators</td><td>MediChoice</td><td>WOD1002</td><td></td></tr><tr><td>Hair clipper</td><td>Conair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Hair remover lotion</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Medical tape</td><td>Transpore</td><td>3M</td><td></td></tr><tr><td>D-PBS</td><td>Corning</td><td>21-030-CM</td><td></td></tr><tr><td>Operating Scissors</td><td>World Precision Instruments</td><td>503717-12</td><td></td></tr><tr><td>Hemostatic Forceps</td><td>Merit</td><td>97-458</td><td>Any tissue forceps can be used instead</td></tr><tr><td>Microdissecting Forceps, Angled, Serrated, 10.2 cm, SS</td><td>World Precision Instruments</td><td>504479</td><td></td></tr><tr><td>Suture Tying Forceps</td><td>Fine Science Tools</td><td>18025-10</td><td></td></tr><tr><td>Blunt Micro Hook</td><td>Fine Science Tools</td><td>10062-12</td><td></td></tr><tr><td>Microhemostat</td><td>Fine Science Tools</td><td>12075-14</td><td></td></tr><tr><td>Thermal cautery</td><td>WPI</td><td>501292</td><td>Disposable cauteries are available at lower cost</td></tr><tr><td>IV 14g x 3.25&quot; cannula</td><td>BD</td><td>B-D382268H</td><td>For tracheal cannulation</td></tr><tr><td>Braided silk non-absorbable suture size 4-0</td><td>Harvard Apparatus</td><td>SP104</td><td>For stabilization of the tracheal cannula</td></tr><tr><td>Braided non-absorbable silk 5/0 suture</td><td>Surgik LC, USA</td><td>ESILRC15387550</td><td>For suturing the tongue</td></tr><tr><td>Plastic-coated metal twist-tie (or electrical wire)</td><td></td><td></td><td>For securing the rat&#039;s nose to the platform</td></tr><tr><td>Camera stick</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>3 way-swivel and Trilene 9 Kg test monofilament line</td><td>Berkley</td><td></td><td>For securing the jaw and maintaining the mouth open</td></tr><tr><td>Camera stick with adjustable angle</td><td></td><td></td><td>For supporting the 3 way-swivel and maintaining the mouth open.</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;in situ&lt;/em&gt; Muscle Test System</td><td>Aurora Scientific</td><td>809C</td><td>This system is designed for mice and was modified by extending the platform. Alternatively the rat-specific 806D system can be used.</td></tr><tr><td>Dual-Mode Muscle lever (force transducer)</td><td>Aurora Scientific</td><td>305C-LR</td><td>309C offers higher excursion capabilities than 305C-LR. Link for more information and specifications: http://aurorascientific.com/products/muscle-physiology/dual-mode-muscle-levers/</td></tr><tr><td>Needle Electrodes (surgical steel, 29 gauge)</td><td>AD Instruments</td><td>MLA1204</td><td>300C is recommended for use in mice.</td></tr><tr><td>Magnetic Stands</td><td>World Precision Instruments</td><td>M10</td><td>Used for making the bipolar stimulating hook electrodes</td></tr><tr><td>Kite Manual Micromanipulator</td><td>World Precision Instruments</td><td>KITE-R and KITE-L</td><td>Require a steel plate</td></tr><tr><td>Stackable Double Binding Post with Banana Jack x BNC Jack</td><td>McMaster Carr</td><td>6704K13</td><td></td></tr><tr><td>Carbon fiber composites digital caliper</td><td>VWR</td><td>36934-152</td><td></td></tr></tbody></table>

in vivo evaluation of the mechanical and viscoelastic properties of the rat tongue

Dil, omurgalıların çoğunun ağzında çok sinirlendirilmiş ve vaskülarize kas hidrostatıdır. Birincil işlevleri çiğneme ve yalancılaştırmanın yanı sıra tadı algılama ve fonetik desteklemektir. Buna göre, dilin kuvveti ve hacmi, omurgalıların beslenme, iletişim ve nefes alma gibi temel faaliyetleri gerçekleştirme kabiliyetini etkiler. Uyku apneli hastalarda, manyetik rezonans görüntüleme (MRG) ile görülebilen ve nicelenebilen artmış kas tonusu ve intramüsküler yağ artışı ile karakterize genişlemiş dildir. Dengenin kuvvet üretimini ve viskoelastik özelliklerini ölçme yetenekleri, görüntüleme verileri ile ilişkilendirilebilecek işlevsel bilgi elde etmek için önemli araçlar oluşturmaktadır. Burada, anestezi altındaki Zucker sıçanlarında dil kuvvet üretimini ölçmek için hipoglossal sinirlerin elektriksel uyarımı yoluyla ve viskoelastik özelliklerin belirlenmesi için teknikler sunulmaktadırPasif Lissajous kuvvet / deformasyon eğrileri uygulayarak dil.

<img alt="Şekil 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56006/56006fig3.jpg" /> Şekil 3: Temsilcilik Sonuçları. (A) Başarılı seğirme ve tetanik kuvvet izlerinin örnekleri. Karşılık gelen uyarı kırmızı iz ile gösterilir. (B) Alt maksimum kasılmaya (mavi iz) ve boyun kaslarının dolaylı uyarılmasına bağlı başarısız dildeki tetanik kasılma örneği. Her iki koşul da uyarıcı elektrodların yerlerini değiştirerek veya elektrot sonlanmaları ile çevresindeki kas dokusu arasındaki temastan kaçınılarak geliştirilebilir. (C) Dilin viskoelastik özelliklerini belirlemek için kullanılan L0&#39;dan (L0% 25 ) sinüs dalgası yer değiştirmesine örnek. Peak-To-Peak kuvveti 24 hesaplamak için ortalama uzatma (mavi kare) ve kestirme (yeşil kare) kuvvetleri kullanılabilir. Içindeki kırmızı kareAnaliz için dikkate alınan aralığı belirtir (ilk ve son sinüs dalgaları hariç). (D) Lizajöz döngüler olarak kuvvet / yer değiştirme ilişkisinin temsili, yer değiştirmeyi% 5&#39;den% 50&#39;ye arttıran L 0 . Her döngü içindeki alan, kas uzatmak için yapılan işin arasındaki fark olarak tanımlanan enerji kaybına karşılık gelir ve esneme sonrasında kası kısaltırken kas tarafından yapılan işi 24 yapar . <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/56006/56006fig3large.jpg" target="_blank">Bu rakamın daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen tıklayınız.</a> 3 aylık bir Zucker sıçanında (yağsız vücut ağırlığı 400 g ve obez Zucker sıçanları için 700 g) seğirme ve tetanik kuvvetlerin beklenen değerleri Şekil 3A&#39;da gösterilmektedir. Uyarımdan sonra gelişen tetanik kuvvet hızla yükselir (siyah ok başı)Ve daha sonra stimülasyon duruncaya kadar yavaşça azalın. Şekil 3B , uyarının bitiminden önce kuvvet oluşumunun plato seviyesine ulaşmadığı başarısız kasılmaların örneklerini göstermektedir (mavi çizgi - dil uzunluğu L0&#39;dan daha düşük bir değere ayarlanırsa veya hayvanın üst gövdesi Tamamen stabilize) veya uyarıcının boyun kaslarının kasılmasını tetiklediği (yeşil çizgi). Çoğu durumda elektrotların dikkatli bir şekilde yeniden konumlandırılması daralmayı artırabilir. Boyun kasları sinir uyarımı sırasında gözle görülebiliyor ise, kasları koterize ederek veya elektrotları ondan uzaklaştıracak şekilde elektrotlar ve kas dokusu arasındaki temas noktalarını ayırmaya çalışın. Mümkünse, kuvvetler MR ile ölçülen dil hacmiyle normalleştirilebilir. Volumetrik verilerin kullanımına bir alternatif, diseksiyon sonrasında dilin ağırlığına karşı normalize etmektir. Şekil 3C ve 3D&#39;de , dili L0&#39;un% 5 ila% 50&#39;sine kadar uzatarak elde edilen Lissajous çalışma halkalarının bir örneği gösterilmiştir. Şekil 3C , Şekil 3D&#39;de birleştirildiğinde tipik Lissajous döngü izlerini üreten uzunluk ve kuvvet izlerini ayrı ayrı göstermektedir. Birkaç damla PBS ekleyerek dilin her döngü arasında ıslak kalmasını sağlamak önemlidir. L0 dan yer değiştirmenin artması, daha yüksek pasif (uzatma sırasında kas üzerinde yapılan iş) ve aktif (kas tarafından negatif sırasında yapılan iş) karşılık gelir. Bu izlerin analizi karmaşık olabilir. Dilin viskoelastik özelliklerini tanımlamak için, her döngü için maksimum ortalama kuvvet ve / veya kütle merkezi eğrisi uydurma kullanılabilir. Lissajous çalışma döngülerinin daha ayrıntılı bir analizi, DA Syme 24 tarafından,Sıçan diyaframı. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Protokol </td><td> Darbe Gerilimi (V) </td><td> Darbe frekansı (Hz) </td><td> Darbe genişliği (ms) </td><td> Tren başına bakliyat </td><td> Tren süresi (ms) </td></tr><tr><td> Seğirme </td><td> 10 </td><td> 2500 </td><td> 0.2 </td><td> 1 </td><td> 0.2 </td></tr><tr><td> tetanos </td><td> 10 </td><td> 120 </td><td> 0.2 </td><td> 96 </td><td> 800 </td></tr></tbody></table> Tablo 1: Önerilen Kasılma Stimülasyonu Parametreleri. İzometrik büzülme, bilateral sinir uyarımı ile 10 ms&#39;lik tek bir elektrik darbesi ile 0.2 ms sürer. 20 s sonra, tetanik izometrik kasılma bilateral(10 V, 120 Hz frekans, 800 ms için). Trakeotizm / tetanoz uyarımı, her döngü arasında 3-5 dakika aralıklarla üç kez tekrarlanır. Analizde üç tekrardan elde edilen en yüksek seğirme ve en yüksek tetanik kuvvetler dikkate alınır. <table border="1" fo:keep-together.within-page="1" fo:keep-with-next.within-page="always"><tbody><tr><td> Toplam sapma (d), L 0&#39;dan (%) </td><td> Sinüs genliği (% L 0 ) </td><td> Sinüs frekansı (Hz) </td><td> Çevrim sayısı </td><td> Çevrim (ler) arasındaki zaman </td></tr><tr><td> d </td><td> d / 2 </td><td> 2 </td><td> 10 </td><td> 30 </td></tr></tbody></table> Tablo 2: Lissajous Eğrisi Parametreleri (L 0&#39;dan Sinüsoidal Sapma ). Lissaj&#39;ın uygulamasıOus force / displacement protokolü, seğirme / tetanoz stimülasyonundan 3-5 dakika sonra başlar. Her döngü 5 s sürer (2 Hz frekansta 10 tekrar) ve bir önceki döngüden 30 s sonra gerçekleştirilir. L0 (d) &#39;dan% deplasman, her döngüde, keyfi olarak minimum% 5&#39;ten L0&#39;ın% 50&#39;sine kadar artar. Diğer kuvvet dönüştürücü modellerle daha yüksek gezi elde edilebilir ( Tablo 3 ).

Watch this Scientific Journal Video about In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue at JoVE.com

In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue

Anestezik fare modelinde dildeki kas tonusu ve viskoelastik özelliklerini belirlemek için cerrahi bir prosedürü tarif ediyoruz. Prosedür, hipoglossal sinirlerin spesifik olarak uyarılmasını ve kaslara pasif Lissajous kuvvet / deformasyon eğrilerinin uygulanmasını içerir.

Sıçan Dilinin Mekanik ve Viskoelastik Özelliklerinin In Vivo Değerlendirilmesi

The tongue is a highly innervated and vascularized muscle hydrostat on the floor of the mouth of most vertebrates. Its primary functions include ...

in-vivo-evaluation-mechanical-viscoelastic-properties-rat

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Medicine

In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue

8.7K Görüntüleme.  University of Pennsylvania.  Anestezik fare modelinde dildeki kas tonusu ve viskoelastik özelliklerini belirlemek için cerrahi bir prosedürü tarif ediyoruz. Prosedür, hipoglossal sinirlerin spesifik olarak uyarılmasını ve kaslara pasif Lissajous kuvvet / deformasyon eğrilerinin uygulanmasını içerir. 

Video: In Vivo Evaluation of the Mechanical and Viscoelastic Properties of the Rat Tongue

Meal Duration as a Measure of Orofacial Nociceptive Responses in Rodents

A lengthening in meal duration can be used to measure an increase in orofacial mechanical hyperalgesia having similarities to the guarding behavior of humans with orofacial pain. To measure meal duration unrestrained rats are continuously kept in sound attenuated, computerized feeding modules for days to weeks to record feeding behavior. These sound-attenuated chambers are equipped with chow pellet dispensers. The dispenser has a pellet trough with a photobeam placed at the bottom of the trough and when a rodent removes a pellet from the feeder trough this beam is no longer blocked, signaling the computer to drop another pellet. The computer records the date and time when the pellets were taken from the trough and from this data the experimenter can calculate the meal parameters. When calculating meal parameters a meal was defined based on previous work and was set at 10 min (in other words when the animal does not eat for 10 min that would be the end of the animal&#39;s meal) also the minimum meal size was set at 3 pellets. The meal duration, meal number, food intake, meal size and inter-meal interval can then be calculated by the software for any time period that the operator desires. Of the feeding parameters that can be calculated meal duration has been shown to be a continuous noninvasive biological marker of orofacial nociception in male rats and mice and female rats. Meal duration measurements are quantitative, require no training or animal manipulation, require cortical participation, and do not compete with other experimentally induced behaviors. These factors distinguish this assay from other operant or reflex methods for recording orofacial nociception.

A lengthening in meal duration represents orofacial nociceptive behavior in rodents similar to the guarding behavior of humans with orofacial pain. Eating is a behavior that requires no training or animal manipulation, requires cortical participation, and is not competing with other experimentally induced behaviors, distinguishing this assay from alternative reflex or operant measurements.

Kemirgenlerde Orofacial Noseptif Yanıtların Ölçüsü Olarak Yemek Süresi

A lengthening in meal duration can be used to measure an increase in orofacial mechanical hyperalgesia having similarities to the guarding behavior of ...

Davranış

A Novel Procedure for Evaluating the Reinforcing Properties of Tastants in Laboratory Rats: Operant Intraoral Self-administration

This paper describes a novel method for studying the bio-behavioral basis of addiction to food. This method combines the surgical component of taste reactivity with the behavioral aspects of operant self-administration of drugs. Under very brief general anaesthesia, rats are implanted with an intraoral (IO) cannula that allows delivery of test solutions directly in the oral cavity. Animals are then tested in operant self-administration chambers whereby they can press a lever to receive IO infusions of test solutions. IO self-administration has several advantages over experimental procedures that involve drinking a solution from a spout&#160;or operant responding for solid pellets or solutions delivered in a receptacle. Here, we show that IO self-administration can be employed to study self-administration of high fructose corn syrup (HFCS). Rats were first tested for self-administration on a progressive ratio (PR) schedule, which assesses the maximum amount of operant behavior that will be emitted for different concentrations of HFCS (i.e.&#160;8%, 25%, and 50%). Following this test, rats self-administered these concentrations on a continuous schedule of reinforcement (i.e.&#160;one infusion for each lever press) for 10 consecutive days (1 session/day; each lasting 3 hr), and then they were retested on the PR schedule. On the continuous reinforcement schedule, rats took fewer infusions of higher concentrations, although the lowest concentration of HFCS (8%) maintained more variable self-administration. Furthermore, the PR tests revealed that 8% had lower reinforcing value than 25% and 50%. These results indicate that IO self-administration can be employed to study acquisition and maintenance of responding for sweet solutions. The sensitivity of the operant response to differences in concentration and schedule of reinforcement makes IO self-administration an ideal procedure to investigate the neurobiology of voluntary intake of sweets.

The current study evaluates a novel procedure for assessing the reinforcing effects of palatable solutions in laboratory rats: intraoral self-administration. To this end, operant responding (i.e.&#160;lever pressing) for intraoral infusions of sweet solutions at different concentrations was measured on continuous and progressive ratios schedules of reinforcement.

Laboratuar Farelerinde tat yoğunluğu arttırıcı madde Güçlendirme Properties değerlendirilmesi için yeni bir yöntem: Edimsel İntraoral Self-yönetim

This paper describes a novel method for studying the bio-behavioral basis of addiction to food. This method combines the surgical component of taste ...

In situ Compressive Loading and Correlative Noninvasive Imaging of the Bone-periodontal Ligament-tooth Fibrous Joint

This study demonstrates a novel biomechanics testing protocol. The advantage of this protocol includes the use of an in situ loading device coupled to a high resolution X-ray microscope, thus enabling visualization of internal structural elements under simulated physiological loads and wet conditions. Experimental specimens will include intact bone-periodontal ligament (PDL)-tooth fibrous joints. Results will illustrate three important features of the protocol as they can be applied to organ level biomechanics: 1) reactionary force vs. displacement: tooth displacement within the alveolar socket and its reactionary response to loading, 2) three-dimensional (3D) spatial configuration and morphometrics: geometric relationship of the tooth with the alveolar socket, and 3) changes in readouts 1 and 2 due to a change in loading axis, i.e. from concentric to eccentric loads. Efficacy of the proposed protocol will be evaluated by coupling mechanical testing readouts to 3D morphometrics and overall biomechanics of the joint. In addition, this technique will emphasize on the need to equilibrate experimental conditions, specifically reactionary loads prior to acquiring tomograms of fibrous joints. It should be noted that the proposed protocol is limited to testing specimens under ex vivo conditions, and that use of contrast agents to visualize soft tissue mechanical response could lead to erroneous conclusions about tissue and organ-level biomechanics.

In situ Compressive Loading and Correlative Noninvasive Imaging of the Bone-periodontal Ligament-tooth Fibrous Joint

In this study, the use of an in situ loading device coupled with micro-X-ray computed tomography for fibrous joint biomechanics will be discussed. Experimental readouts identifiable with an overall change in joint biomechanics will include: 1) reactionary force vs. displacement, i.e. tooth displacement within the alveolar socket and its reactionary response to loading, 2) three-dimensional (3D) spatial configuration and morphometrics, i.e.&#160;geometric relationship of the tooth with the alveolar socket, and 3) changes in readouts 1 and 2 due to a change in loading axis, i.e. concentric or eccentric loads.

Yerinde Basınç Yükleme ve Kemik-periodontal ligament-diş Lifli Joint Korelatif noninvaziv Görüntüleme

This study demonstrates a novel biomechanics testing protocol. The advantage of this protocol includes the use of an in situ loading device coupled to a ...

Biyomühendislik

Assessment of Midline Lingual Point-Pressure Somatosensation Using Von Frey Hair Monofilaments

Detection and discrimination threshold estimates for oral point pressure are assessed using Von Frey Hair monofilaments. Consistent with previously published protocols, threshold estimates are determined using a two-interval forced choice (2-IFC) paradigm with a three down/one up approach. Detection threshold estimates determine the mean force in which a participant can identify the presence of pressure. During the detection threshold procedure, the participant is instructed to choose which of two sequentially presented observation intervals contained the tactile test stimulus. If the participant performs three correct detections in a row (i.e., 3 &#39;hits&#39;), the researcher decreases the stimulus to the next lower target force level. With one incorrect detection (a &#39;miss&#39;), the researcher increases the force delivered to the next higher level. This threshold estimation approach is known as a 3-down/1-up adaptive staircase. Reponses are recorded on a paper ballot, and a participant&#39;s estimated threshold is defined as the geometric mean of five reversals. During the discrimination threshold procedure, the participant is asked to make a choice between two serially presented stimuli as to which is the &#34;harder&#34; or &#34;stronger&#34; pressure. The same scoring of &#39;hits&#39;, &#39;misses&#39;, and stopping points are used. Detection and discrimination testing for oral point pressure at tongue midline takes approximately 20 min to complete. Using these commercially-available clinical tools, individual touch sensation profiles for the midline tongue can be achieved in a relatively time and cost effective means.

This work describes a standard method to assess tactile sensation at the midline of the tongue tip. Using Von Frey Hair (VFH) monofilaments, this protocol provides estimates of detection and discrimination threshold estimates for oral point pressure (OPP).

Von Frey Saç Monofilamentleri Kullanarak Orta Hat Lingual Nokta-Basınç Somatosensation Değerlendirilmesi

Detection and discrimination threshold estimates for oral point pressure are assessed using Von Frey Hair monofilaments. Consistent with previously ...

Measuring Changes in Tactile Sensitivity in the Hind Paw of Mice Using an Electronic von Frey Apparatus

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain perception in rodents. Withdrawal thresholds can be measured first at baseline and then following drug, venom, injury, allergen,&#160;or otherwise evoked inflammation by applying an accurate force on very specific areas of the skin. An electronic von Frey apparatus allows precise assessment of mouse hind paw withdrawal thresholds that are not limited by the available filament sizes in contrast to classical von Frey measurements. The ease and rapidity of measurements allow for incorporation of assessment of tactile sensitivity outcomes in diverse models of rapid-onset inflammatory and neuropathic pain as multiple measurements can be taken within a short time period. Experimental measurements for individual rodent subjects can be internally controlled against individual baseline responses and exclusion criteria easily established to standardize baseline responses within and across experimental groups. Thus, measurements using an electronic von Frey apparatus represent a useful modification of the well-established classical von Frey filament-based assays for rodent mechanical allodynia that may also be applied to other nonhuman mammalian models.

Electronic von Frey measurements are an effective and improved alternative to classical von Frey filaments, as they allow rapid and precise measurement of changes in rodent mechanical withdrawal thresholds to continuously applied pressure stimuli before and after an inflammatory event.

Measuring inflammation-induced changes in thresholds of hind paw withdrawal from mechanical pressure is a useful technique to assess changes in pain ...

Nörobilim

Assessment of Spatial Lingual Tactile Sensitivity using a Gratings Orientation Test

Individual thresholds by R-index estimates are calculated using a gratings orientation test (6 different tools of increasing grating size from 0.20-1.25 mm) to assess spatial lingual tactile sensitivity. During the experiment, the subjects are blindfolded and asked to specify the orientation of the grating (either horizontal or vertical) placed on the tongue. R-index is based on Signal Detection Theory (SDT), and it is an estimated probability of correctly identifying a target stimulus (the signal, e.g., the correct orientation) compared to an alternative stimulus (the noise, e.g., the incorrect orientation). Once the R-index values for each subject and each tool dimension are calculated, it is possible to derive the individual threshold by interpolating the two R-indices immediately below and above the established cut-off (typically 75%) based on one-sided R-index critical values. This procedure can be helpful in the medical field to study the association between oral tactile sensitivity, speech clarity, and swallowing disorders, as well as in sensory and consumer studies to explore individual variation in texture perception, food preferences, and eating behavior.

This work illustrates a standard procedure and threshold determination by the R-index to assess spatial lingual tactile sensitivity using a gratings orientation test.

Rendeleme Oryantasyon Testi Kullanılarak Mekansal DilSel Dokunsal Duyarlılığın Değerlendirilmesi

Individual thresholds by R-index estimates are calculated using a gratings orientation test (6 different tools of increasing grating size from 0.20-1.25 ...

Assessment of Nerve Injury-Induced Mechanical Hypersensitivity in Rats Using an Orofacial Operant Pain Assay

Pain has sensory and affective components. Unlike traditional, reflex-based pain assays, operant pain assays can produce more clinically relevant results by addressing the cognitive and motivational aspects of pain in rodents. This paper presents a protocol for assessing mechanical hypersensitivity following chronic constriction injury of the infraorbital nerves (CCI-ION) in rats using an orofacial operant pain system. Before CCI-ION surgery, rats were trained in an orofacial pain assessment device (OPAD) to drink sweetened condensed milk while making facial contact with the metal spiked bars and lick-tube.
In this assay, rats can choose between receiving milk as a positive reinforcer or escaping an aversive mechanical stimulus that is produced by a vertical row of small pyramid-shaped spikes on each side of the reward access hole. Following 2 weeks of training in the OPAD and before the CCI-ION surgery, baseline mechanical sensitivity data were recorded for 5 days for each rat during a 10 min testing session. During a session, the operant system automatically records the number of reward bottle activations (licks) and facial contacts, contact duration, and latency to the first lick, among other measures.
Following baseline measurements, rats underwent either CCI-ION or sham surgery. In this protocol, mechanical hypersensitivity was quantified by measuring the number of licks, latency to the first lick, the number of contacts, and the ratio of licks to facial contacts (L/F). The data showed that CCI-ION resulted in a significant decrease in the number of licks and the L/F ratio and an increase in the latency to the first lick, indicating mechanical hypersensitivity. These data support the use of operant-based pain assays to assess mechanical pain sensitivity in preclinical pain research.

This protocol describes the assessment of mechanical hypersensitivity in a rat model of neuropathic orofacial pain using an operant-based orofacial pain assessment device.

Sıçanlarda Sinir Hasarına Bağlı Mekanik Aşırı Duyarlılığın Orofasiyal Operant Ağrı Testi Kullanılarak Değerlendirilmesi

Pain has sensory and affective components. Unlike traditional, reflex-based pain assays, operant pain assays can produce more clinically relevant results ...

Preparation of Rat Tail Tendons for Biomechanical and Mechanobiological Studies

Rat tail tendons (RTTs) are a common biological model used in experimental in vitro studies in the fields of tendon physiology and tendinopathy. Working with those tissues is challenging because they are very fragile, and until now there was no rigorously detailed protocol for their isolation.
Faced with these challenges, we have developed methods and instruments to facilitate manipulation of RTTs and control tissue viability, sterility and integrity. This article describes the experimental procedures used to prepare RTTs for biomechanical and mechanobiological studies. Our work is divided into four main steps: extraction, cross-sectional area measurement, rinsing and loading into the bioreactor chamber.
At each step, all procedures, materials and manipulations are presented in detail so that they can be easily reproduced. Moreover, the specific instruments developed are presented: a manipulation plate used to segregate RTTs, an optic micrometer to position the tissue during the cross-sectional area measurement and an anchoring system to attach the RTTs onto a bioreactor.
Finally, we describe the results obtained after multiple tests to validate our methods. The viability, sterility and integrity evaluations demonstrate that our procedures are sufficiently rigorous for manipulations of fragile tissues such as rat tail tendons.

This article describes the experimental procedures used to prepare rat tail tendons for biomechanical and mechanobiological studies. Several features of the main steps in preparation are demonstrated, beginning with extraction, cross-sectional area measurement, rinsing and loading into the bioreactor chamber.

Biyomekanik ve Mechanobiological Araştırmalar Rat Kuyruk Tendonlar hazırlanması

Rat tail tendons (RTTs) are a common biological model used in experimental in vitro studies in the fields of tendon physiology and tendinopathy. Working ...

Biyoloji

Viscoelastic Characterization of Soft Tissue-Mimicking Gelatin Phantoms using Indentation and Magnetic Resonance Elastography

Characterization of biomechanical properties of soft biological tissues is important to understand the tissue mechanics and explore the biomechanics-related mechanisms of disease, injury, and development. The mechanical testing method is the most straightforward way for tissue characterization and is considered as verification for in vivo measurement. Among the many ex vivo mechanical testing techniques, the indentation test provides a reliable way, especially for samples that are small, hard to fix, and viscoelastic such as brain tissue. Magnetic resonance elastography (MRE) is a clinically used method to measure the biomechanical properties of soft tissues. Based on shear wave propagation in soft tissues recorded using MRE, viscoelastic properties of soft tissues can be estimated in vivo based on wave equation. Here, the viscoelastic properties of gelatin phantoms with two different concentrations were measured by MRE and indentation. The protocols of phantom fabrication, testing, and modulus estimation have been presented.

This article presents a demonstration and summary of protocols of making gelatin phantoms that mimic soft tissues, and the corresponding viscoelastic characterization using indentation and magnetic resonance elastography.

Girinti ve Manyetik Rezonans Elastografisi Kullanılarak Yumuşak Dokuyu Taklit Eden Jelatin Fantomların Viskoelastik Karakterizasyonu

Characterization of biomechanical properties of soft biological tissues is important to understand the tissue mechanics and explore the ...

&#181;Tongue: A Microfluidics-Based Functional Imaging Platform for the Tongue In Vivo

Intravital fluorescence microscopy is a tool used widely to study multicellular dynamics in a live animal. However, it has not been successfully used in the taste sensory organ. By integrating microfluidics into the intravital tongue imaging window, the &#181;Tongue provides reliable functional images of taste cells in vivo under controlled exposure to multiple tastants. In this paper, a detailed step-by-step procedure to utilize the &#181;Tongue system is presented. There are five subsections: preparing of tastant solutions, setting up of a microfluidic module, sample mounting, acquiring functional image data, and data analysis. Some tips and techniques to solve the practical issues that may arise when using the &#181;Tongue are also presented.

 &#181;Tongue: A Microfluidics-Based Functional Imaging Platform for the Tongue In Vivo

The article introduces the &#181;Tongue (microfluidics-on-a-tongue) device for functional taste cell imaging in vivo by integrating microfluidics into an intravital imaging window on the tongue.

μTongue: Dil In Vivo için Mikroakışkan tabanlı fonksiyonel görüntüleme platformu

Intravital fluorescence microscopy is a tool used widely to study multicellular dynamics in a live animal. However, it has not been successfully used in ...