Модель аневризмы брюшной аорты мыши, индуцированная периваскулярным применением эластазы

Это стандартизированный протокол для аневризмы брюшной аорты, вызванной эластазой, который значительно повысит воспроизводимость и согласованность исследований с использованием этой модели. Этот метод имеет постоянную скорость индукции аневризмы брюшной аорты. Он также обладает преимуществом низких затрат и короткого времени работы, что приведет к усилению статистической мощности и воспроизводимости.

Вы должны убедиться, что соединительные ткани, покрывающие аорту, были удалены, чтобы эластаза имела больше шансов на проникновение, но будьте осторожны, чтобы не повредить сосуды. Для начала вводят пять миллиграммов на килограмм карпрофена подкожно, за 30 минут до индукции анестезии. Проверьте анестезируемую мышь на отсутствие реакции на защемление пальца ноги перед разрезанием кожи.

Сделайте 2,5-сантиметровый продольный разрез на коже, по средней линии средней и нижней части живота. Осторожно подтяните нижележащую мышцу и сделайте продольный разрез длиной 2,5 сантиметра вдоль linea alba. Используйте смачиваемые хлопковые аппликаторы, чтобы переместить кишечник и желудок в правую сторону мыши и получить доступ к брюшной полости.

Используйте щипцы, чтобы аккуратно удалить соединительную ткань, покрывающую брюшную аорту и нижнюю полую вену. Используйте щипцы, чтобы аккуратно рассечь заднюю сторону брюшной аорты и нижнюю полую вену от нижележащих мышц. Поместите кусок полосы перчаток размером четыре сантиметра на четыре миллиметра через заднюю сторону брюшной аорты и нижнюю полую вену и выпрямите полосу.

Поместите полосу примерно на 0,5 сантиметра от правой почечной артерии. Над полосой поместите кусок втроем на два миллиметра ватным диском через заднюю сторону брюшной аорты и нижнюю полую вену. Затем выпрямите ватный диск.

Чтобы инкубировать эластазу, используйте пипетку, чтобы капнуть 30 микролитров эластазы поджелудочной железы свиней на сегмент аорты над ватным диском. Оберните ватный диск и полоску вокруг аорты и нижней полой вены. Промыть кусок марли размером 10 сантиметров на 10 сантиметров стерильным 0,9% физиологическим раствором и поместить его на брюшко.

Через 30 минут снимите полоску и ватный диск щипцами. Орошайте аорту и брюшную полость 500 микролитрами стерильного 0,9% физиологического раствора. Используйте марлю, чтобы впитать оставшийся физиологический раствор.

Повторно аппроксимируйте мышечные слои с помощью скользящего 6-0 нерассасывающегося монофиламентного шва. Затем закройте кожу тремя-четырьмя прерванными на 6-0 нерассасывающимися монофиламентными швами. Частота развития аневризмы брюшной аорты на 14-й послеоперационный день составила 91,7% для самок, в то время как частота заболеваемости для самцов животных составила 72,7% Среди 19 животных, у которых была развита аневризма брюшной аорты, наблюдалось увеличение максимального диаметра брюшной аорты в 1,7 раза и в 1,6 раза, у самок и самцов соответственно, по сравнению с нехирургическим контролем.

Отображаются репрезентативные изображения аорты из нехирургических и хирургических групп на 14-й послеоперационный день. Этот метод послужил потенциальным инструментом, помогающим препарировать патофизиологию тройного А и помогающим в открытии новых потенциальных терапевтических мишеней.