Esse protocolo é significativo, pois possibilita o estudo das alterações hemodinâmicas e fisiológicas antes, durante e após asfixia perinatal e parada cardíaca. Esse modelo, por incluir a parada cardíaca, permite estudar os fatores relacionados à ressuscitação cardiopulmonar neonatal e como eles afetam a fisiologia e a hemodinâmica. Esse modelo fornece informações valiosas sobre neonatos asfixiados.
As observações lançam luz sobre a fisiopatologia da parada cardíaca, incluindo a atividade elétrica sem pulso. Isso amplia sua aplicabilidade para outros grupos de pacientes. Este modelo é tecnicamente desafiador e os experimentos devem ser realizados em instalações experientes com pesquisas grandes e longas, preferencialmente grandes subpellets.
O protocolo deve ser estudado detalhadamente. Juntando-se a mim para demonstrar este procedimento estarão Ronnaug Solberg, Anne Lee Solevag e Sera Sebastian, uma enfermeira de centro cirúrgico, de nossas instalações de pesquisa na Universidade de Oslo. Antes de iniciar a intervenção cirúrgica, prepare todo o equipamento necessário e preencha todos os cateteres com soro fisiológico.
Anote o horário de início da cirurgia na ficha de registro do caso ou IRC. Esterilizar a pele do leitão anestesiado com cinco miligramas por mililitro de clorexidina colorida utilizando três a cinco esponjas cirúrgicas e cobrir com um campo de abertura adesiva. Faça uma incisão de pele de 2,5 centímetros de comprimento no lado direito do pescoço do leitão e retraia a pele de ambos os lados da incisão usando afastadores de pálpebras.
Em seguida, com o auxílio de pinças arteriais, disseque e exponha a veia jugular interna e coloque dois fios de fio de náilon zero sob a veia jugular para mantê-la estável. Segurando uma das suturas em uma mão e o cateter venoso central na outra, insira o cateter e retire a agulha. Lave com um mililitro de soro fisiológico normal para confirmar o posicionamento correto do cateter.
Agora amarre um dos fios de sutura que foi usado para segurar a veia ao redor da veia e o cateter na área onde o cateter está dentro da veia. Fechar a pele com pontos absorvíveis de quatro zero e conectar Fentanil IV e uma solução eletrolítica balanceada de carboidratos ao cateter venoso central. Com o bisturi, faça uma incisão cutânea de 2,5 centímetros de comprimento no lado esquerdo do pescoço do leitão, ligeiramente mais medial que a incisão anterior do lado direito.
Em seguida, retraia a pele de ambos os lados da incisão usando afastadores palpebrais. Com a ajuda de pinças arteriais, dissecar e expor a artéria carótida comum medial ao músculo esternocleidomastoideo. Estabilizar a artéria carótida comum colocando um par de fios de sutura de nylon três-zero sob ela.
Segurando uma das suturas em uma mão e o cateter arterial central na outra, insira o cateter arterial central e retire a agulha. Em seguida, amarre um dos fios de sutura que prendem a artéria ao redor da artéria e o cateter na área onde o cateter está dentro da artéria. Após confirmar o posicionamento correto do cateter lavando-o com um mililitro de soro fisiológico, fixe as asas do cateter na pele com pontos absorvíveis de quatro a zero e feche a pele.
Em seguida, conecte o leitão ao sistema de monitoramento invasivo da pressão arterial. Cobrir o cateter com curativo transparente e iniciar a aquisição dos dados. Uma vez implantado o cateter arterial central, observe o tempo de término da cirurgia na IRC.
Anote o tempo de início da asfixia na IRC juntamente com as medidas fisiológicas do leitão. Imediatamente antes de iniciar a asfixia, coletar amostras de sangue do leitão e interromper a administração de Fentanil IV. Para iniciar a asfixia, ligue o mostrador de oxigênio do ventilador mecânico para 100% e reduza a taxa do ventilador em 10 insuflações por minuto.
Ao trocar a mangueira de oxigênio no ventilador para o gás de asfixia, certifique-se de que a saturação de oxigênio do leitão seja reduzida para verificar a indução bem-sucedida da asfixia. Após continuar a asfixia por 10 minutos, reduza a frequência do ventilador em mais 10 insuflações por minuto. A partir deste ponto, após 10 minutos e, a partir daí, a cada cinco minutos até a parada cardíaca.
Acompanhe o estado à base de ácido e anote as medidas fisiológicas do leitão até a IRC. Continue a asfixia até a parada cardíaca. Reduzir a frequência ventilatória em 10 insuflações por minuto a cada 10 minutos e pinçar o tubo endotraqueal ou TET com pinça arterial após 30 minutos de asfixia.
Quando a pressão arterial média cai abaixo de 20 milímetros de mercúrio, inicie a ausculta contínua do coração. Ausculte o coração e informe a equipe quando os batimentos cardíacos se tornarem inaudíveis. Em seguida, remova a pinça do ETT, se aplicável, e defina a fração apropriada de oxigênio inspirado e as configurações do ventilador de acordo com o protocolo.
Ao mesmo tempo, troque a mangueira de gás de asfixia no ventilador para a saída de oxigênio. Finalmente, coletar amostras de sangue correspondentes ao ponto de tempo da parada cardíaca durante o preparo para a ressuscitação cardiopulmonar. Se seguir o Comitê Internacional de Ligação em ressuscitação recomendou três a uma RCP, ventilar mecanicamente o leitão por 30 segundos após a parada cardíaca.
Em seguida, iniciar as compressões torácicas e apontar para uma relação entre compressão torácica e ventilação de três para um. Use a técnica de dois polegares e mãos circulares para comprimir o tórax até uma profundidade de um terço do diâmetro torácico e posterior e permitir o recuo total do tórax. Tem como objetivo gerar uma pressão arterial sistólica maior que 20 milímetros de mercúrio.
Após 30 segundos de compressões torácicas, administrar adrenalina IV e repeti-la a cada três minutos de RCP por no máximo quatro doses. Lave o cateter com um mililitro de soro fisiológico normal após cada administração de adrenalina. Determinar o retorno da circulação espontânea ou RCE observando os traçados da pressão arterial e o ECG e confirmar o mesmo pela ausculta cardíaca.
Continuar os esforços de ressuscitação até o ROSC ou por no máximo 15 minutos. Se a ressuscitação for bem-sucedida, observe o tempo de RCE, a duração da RCP em segundos e o número de doses de adrenalina administradas na IRC. Se a RCP não for bem-sucedida dentro de 15 minutos, interrompa os esforços de ressuscitação e registre o tempo de morte.
Finalmente, após a ROSC, colher amostras de sangue e registros de CRF o mais rápido possível e continuar os registros conforme descrito no manuscrito por mais 9,5 horas. A pressão arterial do leitão caiu gradualmente desde o início da asfixia e tornou-se zero quando ocorreu a parada cardíaca. A PA aumentou uma vez que o RCE foi atingido antes de levar algum tempo para normalizar novamente.
As alterações na fisiologia do leitão durante a asfixia foram claramente indicadas pelas alterações na frequência cardíaca, na pressão arterial média, no pH, na pressão parcial de dióxido de carbono, no excesso de base e no lactato. Como esperado, a pressão arterial média, o pH e o excesso de bases diminuíram durante a asfixia, enquanto a pressão parcial de dióxido de carbono e lactato, significando acidose mista respiratória e metabólica, aumentou. No entanto, os valores normalizaram no final do experimento.
A manutenção de uma boa ventilação durante a ressuscitação cardiopulmonar e a correta coleta de dados ao longo de todo o processo são partes particularmente críticas desse protocolo. Esse modelo de recém-nascido forneceu evidências para o desenvolvimento de diretrizes por meio de pesquisas sobre o uso de oxigênio suplementar e protocolos de ressuscitação. Além disso, fisiopatologia, biomarcadores e novos métodos de monitorização hemodinâmica têm sido investigados.
