Name: tracking drosophila larval behavior in response to optogenetic stimulation of olfactory neurons
Uploaded: 2018-03-21T14:30:00.000+00:00
Duration: 6 min 49 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Tracking Drosophila Larval Behavior in Response to Optogenetic Stimulation of Olfactory Neurons at JoVE.com

이 작품은 네바다, Reno의 대학에서에서 시작 자금 및 NIGMS 부여 번호 P20 GM103650 건강의 국립 연구소에 의해 지원 되었다.

1. 동작 경기장 건물과 행동 분야에서 Optogenetic 자극 수 있도록 하드웨어 준비
<ol><li>빛을 박탈 행동 경기장을 구축, 66 cm3 x 61 x 89의 차원으로 상자를 만들 (35"L x 24" W x 26"H) 블랙 컬러 플 렉 시 글라스 아크릴 시트 (두께 3 m m) ( 재료의 표참조)의 만든. 이러한 상자를 만들려고 재료 로컬 하드웨어 매장에서 사용할 수 있어야. (그림 1A) 동작 방에 테이블 탑에이 상자를 배치 합니다.</li>
	<li>흑백 USB 3.0 CCD 카메라는 IR 긴 통과 830 nm 필터와 8 m m F1.4 C 마운트 렌즈를 장착 하는 마운트 ( 재료의 표참조) 블랙 박스 천장의 센터에. 장소 2 개의 적외선 LED 스트립 ( 재료의 표참조) 테이블 위에 어두운 경기장 (그림 1A)에서 애벌레를 조명 하기 위하여.</li>
	<li>LED 플랫폼 구축, 22 c m × 22 c m 평방 알루미늄 접시 (선호 그린 매트 블랙으로 마무리 한 반사를 제거 하는 스프레이)를 얻을. 격판덮개의 센터에서 CCD 카메라 주위에 맞게 충분히 큰 구멍을 뚫고 금속 커터를 사용 하 여.</li>
	<li>빨간색 LED 스트립 조명 ( 재료의 표참조)와 금속 플레이트 커버. 시리즈에서 LED 빛 스트립 와이어 솔더와 라즈베리 파이 2B 마이크로프로세서에 의해 제어 되는 커플러 릴레이에 스트립 와이어 피드 ( 재료의 표참조) (그림 1B 와 2).</li>
	<li>설치 하 고 LED 스트립 광 커플러 릴레이 연결 하기 전에 라즈베리 파이 프로세서에 우분투 친구/Raspian 제시/리눅스 기반의 운영 체제를 구성 합니다. 전원 공급 장치 LED 스트립 및 커플러 (그림 2)를 연결 ( 재료의 표참조). (그림 1B) CCD 카메라는 LED 플랫폼을 탑재 합니다. 참고: 우분투 메이 트 v16.04 운영 체제는 자유롭게 사용할 수 있습니다. 간단한 파이썬 기반 명령 집합 LED 가벼운 자극 (구문 파일 참조)의 프로그램 패턴을 쉽게 적용할 수 있습니다.</li>
	<li>행동 분야에서 여러 지점에서 동질적인 irradiance를 확인 합니다. 계의 도움으로 경기장의 표면에 절대 방사를 측정 하 고 경기장의 표면에 걸쳐 ~1.3 W/m2 로 그것을 결정 합니다. 참고:이 강도에서 더 중대 한 변화에서에서 관찰 되었다 온도 실험의 과정을 통해. 또 다른 연구10 ~1.9 W/m2 의 높은 방사를 사용 하 고 실험의 과정을 통해 온도에 아무런 변화를 관찰.</li>
</ol>2. 동작 분석 초파리 애벌레의 준비
<ol><li>표준 비행 거리 음식에 파리를 유지 ( 재료의 표참조) 25 ° C, 50-60 %RH, 그리고 12 h/12 h 명암 주기에서.</li>
	<li>
한 쌍의 ORNs에서 CsChrimson 을 표현 하기 위하여 처녀 여성에서에서 교차 UAS-벨트-CsChrimson 선 OrX Gal4 선에서 남성 (21 애벌레 냄새 수용 체 중 하나에 해당 하는 'X' (또는) 각 고유 하 게 표현 되는 유전자 ORNs의 21 쌍)의9,11.
	<ol>
<li>또는, 모든 21 애벌레 ORNs에서 CsChrimson 을 표현 하기 위하여 UAS-벨트-CsChrimson 에서 처녀 여성 크로스 라인 남성에 게는 Orco Gal4 선 ('Orco'는 모든 21 ORNs에 표현 되는 공동 수용 체)에서.</li>
		<li>이 실험에서 컨트롤로 자체로 UAS-벨트-CsChrimson 라인을 사용 합니다. 참고: 여기에 나열 된 비행 주식 모두에서 사용할 수 있습니다 블루밍턴 초파리 재고 센터 ( 재료의 표참조).</li>
	</ol>
</li>
	<li>
십자가에서 남성과 여성의 파리 친구 및 48 h에 대 한 알 수 있습니다, 일단 성인 신선한 유리병에 전송.
	<ol>
<li>계란을 포함 하는 식품 유리병의 표면에 400 µ M, 모든 trans 망막 (ATR) 디 메 틸 sulfoxide (DMSO)에 용 해 및 89 m m 자당 증류수에 용 해를 포함 하는 혼합물의 400 µ L를 추가 합니다. 참고: 작은 양의 자당 ATR 솔루션의 애벌레 먹이 촉진 합니다. ATR은 CsChrimson 식9,10upregulating에 필요한 공동 인자 이다. ATR은 빛에 민감한.</li>
		<li>ATR 계란을 포함 하는 음식 튜브에 추가 되 면 추가 72 h에 대 한 어둠 속에서 튜브를 품 어. 참고:이 연구 및 위의 두 연구 ATR 먹이 인 애벌레 행동에 효과 관찰 하지, 하는 동안 제어 ATR ATR를 포함 하지 않는 위의 혼합물의 동일한 금액을 테스트 라인을 쓰는 하 여 먹이의 효과 대 한 것이 좋습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>높은 밀도 (15%) 자당 솔루션을 사용 하 여 부유 하 여 제 3 탈피 애벌레 (달걀 누워 후 ~ 120 h) 비행 식품의 표면에서 추출. 한 P1000 사용 micropipette 1000 mL 유리 비 커에 자당 솔루션의 표면에 떠 있는 애벌레를 구분 합니다.</li>
	<li>워시 애벌레 때마다 유리 비 커에 800 mL 신선한 증류수를 교환 하 여 3-4 회. 애벌레 동작 분석 결과를 그들을 복종 하기 전에 10 분 동안 휴식을 하실 수 있습니다.</li>
</ol>3. 동작 분석 결과
<ol><li>(22-25 ° C) 사이 일관 된 온도 유지 및 동작 방에 습도 (50와 60 %RH) 사이.</li>
	<li>
22 cm x 22 cm 광장 페 트리 접시에 녹은 agarose (1.5%)의 따르는 150 mL로 애벌레 크롤링 매체를 준비 합니다. 1 페 트리 접시의 분석 결과, 실험 당 8-10 시험의 각 재판 부 어 있다. 응고 및 동작 분석 결과에서 그들을 사용 하기 전에 접시에 1-2 시간 기다린 agarose를 허용 합니다.
	<ol>
<li>전송 준비 3-탈피 애벌레의 20 개 이상 하는 센터의 페 트리 접시 (그림 1C). 페 트리 접시의 뚜껑을 커버. CCD 카메라 아래 행동 분야에서 페 트리 접시를 놓습니다. 참고: 실험에 따라 동작 분석 실험 일반적으로 수행 됩니다 3-5 분. odorant 지도 단서를 제공 하는 분석 결과에 사용 되 면 그것은 관찰 되었다 결과 냄새 그라데이션 약 5 분의1에 대 한 안정적인 유지. 긴 시험 시간은 권장 하지 않습니다. 탈수 또는 장기간된 630 nm 빨간불을 노출에서 애벌레에 해로운 효과 하지이 시간 포인트 내에서 관찰 되었습니다.</li>
	</ol>
</li>
	<li>설정에 850 nm 적외선 LED 가벼운 소스 동영상에 애벌레를 시각화. 애벌레 움직임을 기록 하는 CCD 카메라를 시작 합니다.</li>
	<li>라즈베리 파이 프로세서, 프로그램 레드 빛 자극의 적절 한 패턴을 관리 하는 절차와 관련 된 소프트웨어를 사용 하 여. 참고: 일련의 간단한 파이썬 기반 명령 (구문 파일 참조) LED 가벼운 자극의 프로그램 패턴을 쉽게 적용할 수 있습니다.</li>
</ol>4. 데이터 처리 및 분석
<ol><li>Matlab 같은 모든 사용 가능한 프로그래밍 소프트웨어에 각 재판의 녹화 된 비디오를 가져옵니다.</li>
	<li>시간의 기능으로 동영상에 있는 모든 애벌레의 XY 좌표를 가져옵니다. 추적 소프트웨어의 한계에 따라 15-20 제 3 탈피 애벌레 단일 영화1,8에서 추적할 수 있습니다. 참고: 세트 (구문 파일 참조) 적절 한 조건에 맞게 쉽게 적응 될 수 있는 간단한 Matlab 코드 ('Tracklarva')이 제공 됩니다. 이 실험에서 모든 시험을 결합 하 여 프로그램과 분석 결과의 전체 기간에 대 한 모든 유 충의 XY 좌표를 출력 (아래 코드 구문 참조). 또는, 한 연구자에 자유롭게 사용할 수 있는 여러 가지 오픈 소스 기반된 프로그램을 사용할 수 있습니다. 예: JAABA (http://jaaba.sourceforge.net/)12.</li>
	<li>
생성 된 XY 좌표를 사용 하 여 애벌레 궤적 플롯을 추가 애벌레 운동 분석.
	<ol>
<li>행동 분석에 대 한 시퀀스 실행의 교류로 개별 애벌레 궤적 세그먼트 속도, 경로 곡률, 제목 각도, 탐색 통계를 사용 합니다.</li>
		<li>실행은 앞으로 운동의 연속 기간으로 정의 됩니다. 회전 연속 실행을 구분합니다. 궤적 방향 각도 변경 했다 회전 표시 > 45 ° (구문 파일 참조).</li>
	</ol>
</li>
	<li>필요에 따라 길이, 실행된 방향 및 다른 매개 변수를 실행 하는 실행된 속도 대 한 평균 값을 계산 합니다. 참고: 애벌레 궤도에서 '실행' 하 고 '중지'를 추출 하는 간단한 구문 집합이 제공 됩니다 (구문 파일 참조). 간단한 Matlab 또는 Excel 기반된 함수 '실행된 속도'에 대 한 값을 계산 실행' 길이'를 추출 된 데이터에 적용할 수 있는 등.</li>
	<li>± SEM. 의미 각 행동 메트릭에 대 한 데이터를 나타내는</li>
</ol>

<ol>
	<li>Mathew, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Functional+diversity+among+sensory+receptors+in+a+Drosophila+olfactory+circuit.">Functional diversity among sensory receptors in a Drosophila olfactory circuit.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 110, 2134-2143 (2013).</li><li>Ramaekers, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Glomerular+maps+without+cellular+redundancy+at+successive+levels+of+the+Drosophila+larval+olfactory+circuit.">Glomerular maps without cellular redundancy at successive levels of the Drosophila larval olfactory circuit.</a> Current biology : CB. 15, 982-992 (2005).</li><li>Couto, A., Alenius, M., Dickson, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular,+anatomical,+and+functional+organization+of+the+Drosophila+olfactory+system.">Molecular, anatomical, and functional organization of the Drosophila olfactory system.</a> Current biology : CB. 15, 1535-1547 (2005).</li><li>Kreher, S. A., Kwon, J. Y., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+molecular+basis+of+odor+coding+in+the+Drosophila+larva.">The molecular basis of odor coding in the Drosophila larva.</a> Neuron. 46, 445-456 (2005).</li><li>Kreher, S. A., Mathew, D., Kim, J., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Translation+of+sensory+input+into+behavioral+output+via+an+olfactory+system.">Translation of sensory input into behavioral output via an olfactory system.</a> Neuron. 59, 110-124 (2008).</li><li>Hallem, E. A., Carlson, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Coding+of+odors+by+a+receptor+repertoire.">Coding of odors by a receptor repertoire.</a> Cell. 125, 143-160 (2006).</li><li>Monte, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+the+larval+olfactory+response+in+Drosophila+and+its+genetic+basis.">Characterization of the larval olfactory response in Drosophila and its genetic basis.</a> Behav Genet. 19, 267-283 (1989).</li><li>Gershow, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Controlling+airborne+cues+to+study+small+animal+navigation.">Controlling airborne cues to study small animal navigation.</a> Nature methods. 9, 290-296 (2012).</li><li>Klapoetke, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Independent+optical+excitation+of+distinct+neural+populations.">Independent optical excitation of distinct neural populations.</a> Nature methods. 11, 338-346 (2014).</li><li>Hernandez-Nunez, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reverse-correlation+analysis+of+navigation+dynamics+in+Drosophila+larva+using+optogenetics.">Reverse-correlation analysis of navigation dynamics in Drosophila larva using optogenetics.</a> eLife. 4, (2015).</li><li>Brand, A. H., Perrimon, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Targeted+gene+expression+as+a+means+of+altering+cell+fates+and+generating+dominant+phenotypes.">Targeted gene expression as a means of altering cell fates and generating dominant phenotypes.</a> Development. 118, 401-415 (1993).</li><li>Kabra, M., Robie, A. A., Rivera-Alba, M., Branson, S., Branson, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=JAABA:+interactive+machine+learning+for+automatic+annotation+of+animal+behavior.">JAABA: interactive machine learning for automatic annotation of animal behavior.</a> Nature methods. 10, 64-67 (2013).</li><li>Newquist, G., Novenschi, A., Kohler, D., Mathew, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Differential+contributions+of+Olfactory+Receptor+Neurons+in+a+Drosophila+olfactory+circuit.">Differential contributions of Olfactory Receptor Neurons in a Drosophila olfactory circuit.</a> eNeuro. 3, (2016).</li><li>Schulze, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Dynamical+feature+extraction+at+the+sensory+periphery+guides+chemotaxis.">Dynamical feature extraction at the sensory periphery guides chemotaxis.</a> eLife. 4, (2015).</li><li>Tastekin, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Role+of+the+Subesophageal+Zone+in+Sensorimotor+Control+of+Orientation+in+Drosophila+Larva.">Role of the Subesophageal Zone in Sensorimotor Control of Orientation in Drosophila Larva.</a> Current Biology. 25, 1448-1460 (2015).</li><li>Famiglietti, E. V., Kolb, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Structural+basis+for+ON-and+OFF-center+responses+in+retinal+ganglion+cells.">Structural basis for ON-and OFF-center responses in retinal ganglion cells.</a> Science. 194, 193-195 (1976).</li><li>Luo, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Bidirectional+thermotaxis+in+Caenorhabditis+elegans+is+mediated+by+distinct+sensorimotor+strategies+driven+by+the+AFD+thermosensory+neurons.">Bidirectional thermotaxis in Caenorhabditis elegans is mediated by distinct sensorimotor strategies driven by the AFD thermosensory neurons.</a> Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 111, 2776-2781 (2014).</li><li>Berck, M. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+wiring+diagram+of+a+glomerular+olfactory+system.">The wiring diagram of a glomerular olfactory system.</a> eLife. 5, (2016).</li></ol>

저자는 공개 없다.

여기, 우리가 초파리 애벌레 동작 동시 optogenetic 후 각 뉴런의 활성화에 대 한 응답에서의 측정을 허용 하는 방법을 설명 합니다. 앞에서 설명한 방법1,를 추적 애벌레8 기술을 사용 하 여 다른 냄새 배달 ORNs를 활성화. 그러나, 이러한 방법은 특이성 또는 온 활성화의 시간적 패턴에 대해 제어할 수 없습니다. 우리의 방법은 온 활성화의 더 정밀 하 게 제어 냄새 자극 대신 가벼운 자극을 사용 하 여 이러한 적자를 극복 했다.
동작 경기장을 빌드하는 데 필요한 자료 지역 철물점에서 쉽게 구할 수 있습니다 하 고 어셈블리에서 최소의 노력을 요구 한다. Optogenetics 모듈을 준비 하는 데 필요한 전자도 쉽게 사용 가능 하 고 생성 된 있습니다. 설명 하는 방법을 여기를 사용 하 여 빨간 불 채널 레드 이동 rhodopsin 활성화 (CsChrimson) 특정 신경 세포에 표현. 여기 제공 되는 사용자 지정 작성 된 소프트웨어를 사용 하 여 측정 및 CCD 카메라를 사용 하 여 해당 ORN 활성화에 대 한 응답에서 결과 애벌레 동작 기록 됩니다. 우리의 메서드 수 있습니다 전에 가능한 되지 않은 몇 가지 질문에 대 한 답변에 게 연구원: 1) 냄새를 향해 이동 하는 동물의 능력에 다른 후 각 자극 패턴의 영향? 2) ON-OFF 센터 포유류 망막16에 신경 절 세포와 유사한, 거기 증가 후 각 자극에 응답 하는 ORNs 외에 후 각 자극에 감소에 구체적으로 응답 하는 ORNs는? 마지막으로, 우리의 방법은 애벌레 탐색 (PNs 및 LNs) 후 각 회로에 다운스트림 신경의 영향을 측정을 포함 하 여 향후 응용 프로그램의 다양 한을 허용 합니다.
우리의 방법에 몇몇 이점이 있다, 그러나 우리는 특정 제한이 인정 합니다. 그것은 분명 여부 집중 효과 odorants 관찰 복제 될 수 있습니다 쉽게이 시스템을 사용 하 여입니다. 우리의 현재 설치가를 허용 하지 않습니다, optogenetics 모듈 증가 또는 감소는 가벼운 자극의 강도에 맞게 쉽게 수정 될 수 있습니다. 미래에, 우리 것 이다 확인 여부 가벼운 자극의 변화 강도 odorants의 집중 효과 모방. 간단한 비행 유전자 기술은 CsChrimson ORNs (Orco Gal4 사용)의 모든 21 쌍 중 또는 한 쌍 ORNs (를 사용 하 여 개별 또는-Gal4s)의 표현에 사용할 수 있습니다. 그러나 복잡 한 유전학 표현 CsChrimson ' 1를 요구 하는 것입니다, < n < 21' 신경. 이 때문에, 혼합물의 개별 구성 요소 둘 이상의 온에서 응답을 이끌어내는 냄새 혼합물으로 관찰 하는 효과 복제 하기 어려울 것 이다. 애벌레 탐색 동작 낮은 차원 동작으로 간주 됩니다, 하지만 우리는 우리의 애벌레 추적 프로그램 향상 될 수 더 미래에서 동물 자세에 따라 추가 행동 설명자를 고려 하 여 인정 (예: 확률 머리의 회전, 바디 벤드 등)8,17. 우리의 연구는 유 충에서 첫 번째 순서 감각 뉴런을 제한 했다. 추가 조사는 우리의 방법은 두 번째 순서 프로젝션 신경 및 뇌18의 뇌 두 엽 영역에 포함 된 로컬 뉴런에 적용할 수 있습니다 전에 필요 합니다.
요약 하면, 우리의 방법 초파리 유 충의 간단 하 고, 그러므로 후 각 회로에 모든 온의 기능 해 부 수를 제공 합니다. 이렇게 함으로써, 우리의 방법은 냄새 신호는 다른 행동 출력으로 변환 하는 방법을 설명 하는 더 정밀한 계산 모델의 개발을 수 있게 된다.

초파리 애벌레의 환경에서 후 각 정보는 궁극적으로 애벌레 동작1,2,3,4결정만 21 기능적으로 뚜렷한 ORNs, 활동에 의해 감지입니다. 그러나, 상대적으로 작은 논리는 감각 정보를 인코딩하는이 21 ORNs의 활동에 대 한 알려져 있다. 따라서 실험적으로 측정 하는 동작을 각 애벌레 ORN의 기능적 기여 필요가 있다.
하지만 초파리 애벌레 ORNs의 전체 레 퍼 토리의 감각 응답 프로필 세부1,,45, 후 각 회로 하 고 그로 인하여 개별 ORNs의 기여에서에서 공부 하고있다 탐색 동작 크게 알려지지 않은 남아 있습니다. 애벌레 행동 연구에 어려움 공간 및 일시적으로 활성화 한 ORNs 하는 무 능력 때문에 지금까지 발생 한다. 특히 21 초파리 애벌레 ORNs의 19를 활성화 하는 odorants의 패널이 했다 최근 설명된1. 낮은 농도에서 패널에서 각 odorant 그것의 동족 온 에서만에서 생리 응답 elicits. 그러나, 기존의 행동 분석에 일반적으로 사용 되는 높은 농도에서 각 odorant 여러 ORNs1,,56생리 응답 elicits. 또한,이 패널에서 odorants volatilities 안정적인 냄새 그라디언트7,8의 형성에 의존 하는 행동 연구의 해석을 복잡 하 게 하는 다양 한 있다. 마지막으로, 자연스럽 게 발생 냄새 자극 실험실 조건 하에서 복제 하기 어려운 일시적인 구성 요소가 있다. 그것은 따라서 동시에 공간 및 시간적으로 개별 ORNs를 활성화 하는 동안 애벌레 동작을 측정할 수 있는 방법을 개발 하는 것이 중요.
여기, 우리는 앞에서 설명한 애벌레 추적 이점이 메서드 분석 실험1,8보여 줍니다. Gershow 외 에 설명 된 추적 분석 결과 동작 경기장8에서 냄새의 안정 그라디언트를 유지 하기 위해 전자 제어 밸브를 사용 합니다. 그러나, 냄새 자극 설정 구축에 관련 된 복잡 한 엔지니어링의 수준 때문에이 메서드는 다른 실험실에서 복제 어렵다. 또한, 특히 단일 ORNs를 활성화 하기 위해 odorants를 사용 하 여 관련 문제는 해결 되지 않은 남아 있습니다. 매튜 외 에 설명 된 추적 분석 결과 간단 하 게 냄새 배달 시스템을 사용 하지만 결과 냄새 그라데이션 테스트 odorant의 변동에 따라 달라 집니다1분석 결과 긴 기간에 대 한 안정적입니다. 따라서, 가벼운 자극으로 냄새 자극을 대체 하 여 우리의 방법은 특이성의 장점과 온 활성화의 정확한 시간 제어 하 고 다른 힘의 기온 변화도 냄새의 형성에 종속 되지 않습니다.
우리의 방법은 쉽게 설정 이며 연구자 초파리 애벌레 탐색의 측면을 측정 하는 데 관심이 대 한 적절 한입니다. 이 기술은 연구원은 드라이브 선택의 그들의 마음에 드는 시스템의 neuron(s)에서 CsChrimson 의 식 수는 다른 모델 시스템에 적응 될 수 있습니다. CsChrimson 채널 rhodopsin의 빨간색 이동 버전입니다. 그것은 애벌레의 phototaxis 시스템에 표시 되지 않는 파장에서 활성화 됩니다. 따라서 특이성, 안정성 및 재현성9뉴런의 활동을 조작할 수 있습니다. 계정 과목의 크기 변화에 대 한 소프트웨어를 작성 하는 사용자 정의 수정 하 여이 방법을 쉽게 다른 곤충 종의 크롤링 애벌레에 맞게 수 있습니다.

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Video camera to capture larval movement&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>CCD Camera&amp;nbsp;</td><td>Edmund Optics</td><td>106215</td><td></td></tr><tr><td>M52 to M55 Filter Thread Adapter</td><td>Edmund Optics</td><td>59-446</td><td></td></tr><tr><td>2&quot; Square Threaded Filter Holder for Imaging Lenses&amp;nbsp;</td><td>Edmund Optics</td><td>59-445</td><td></td></tr><tr><td>RG-715, 2&quot; Sq. Longpass Filter</td><td>Edmund Optics</td><td>46-066</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Electronics for optogenetic setup&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Raspberry Pi 2B</td><td>RASPBERRY-PI.org</td><td>RPI2-MODB-V1.2</td><td></td></tr><tr><td>3 Channel programmable power supply</td><td>newegg.com</td><td>9SIA3C62037092</td><td></td></tr><tr><td>8 Channel optocoupler relay</td><td>amazon.com</td><td>6454319</td><td></td></tr><tr><td>630nm Quad-row LED strip lights</td><td>environmentallights.com</td><td>red3528-450-reel</td><td></td></tr><tr><td>850nm LED strips</td><td>environmentallights.com</td><td>wp-4000K-CC5050-60x2-kit</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Software&amp;nbsp;&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Matlab</td><td>Mathworks Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ubuntu MATE v16.04</td><td>Nubuntu</td><td>https://github.com/yslo/nubuntu</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Other items&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Plexiglass black acrylic</td><td>Home Depot</td><td>MC1184848bl</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Fly food and other reagents&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Nutrifly fly food</td><td>Genesee Scientific</td><td>66-112</td><td></td></tr><tr><td>Agarose powder</td><td>Genesee Scientific</td><td>20-102</td><td></td></tr><tr><td>22cm X 22cm square petri-dish</td><td>VWR Inc.</td><td>25382-327</td><td></td></tr><tr><td>DMSO</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>D2650</td><td></td></tr><tr><td>Sucrose</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>84097</td><td></td></tr><tr><td>All trans-retinal</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>R2500</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Flies&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;UAS-IVS-CsChrimson&amp;nbsp;&lt;/em&gt;</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>55134</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Orco-Gal4&lt;/em&gt;</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>26818</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Or42a-Gal4&lt;/em&gt;</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>9970</td><td></td></tr><tr><td>&lt;em&gt;Or7a-Gal4&lt;/em&gt;</td><td>Bloomington Drosophila Stock Center</td><td>23907</td><td></td></tr></tbody></table>

tracking drosophila larval behavior in response to optogenetic stimulation of olfactory neurons

냄새 소스 쪽으로 이동 하는 곤충의 능력은 그들의 1 차 후 각 수용 체 신경 (ORNs)의 활동을 기반으로 합니다. Odorants 온 응답에 대 한 상당한 양의 정보를 생성 하는 동안 운전 행동 응답에 특정 ORNs의 역할 제대로 이해 남아 있습니다. 개별 ORNs, 여러 ORNs 단일 odorants, 그리고 어려움을 자연스럽 게 관찰된 시간적 변화 후 각 자극을 사용 하 여 복제에 의해 활성화 활성화 하는 odorants의 다른 volatilities 인해 발생 하는 동작 분석에 합병증 실험실에서 기존의 냄새 배달 방법입니다. 여기, 우리는 분석 초파리 애벌레 동작의 ORNs의 동시 optogenetic 자극에 응답에서 하는 프로토콜을 설명 합니다. 여기에 사용 된 optogenetic 기술 ORN 활성화의 특이성 ORN 활성화의 시간적 패턴의 정밀 하 게 제어 가능 합니다. 해당 애벌레 움직임 추적, 디지털 기록, 및 사용자 정의 작성 된 소프트웨어를 사용 하 여 분석. 가벼운 자극으로 냄새 자극을 대체 하 여이 메서드 애벌레 행동에 미치는 영향을 연구 하기 위해 개별 ORN 활성화 더 정밀 하 게 제어할 수 있습니다. 우리의 방법은 애벌레 행동에 로컬 뉴런 (LNs) 뿐만 아니라 2 차 프로젝션 뉴런 (PNs)의 영향을 공부 더 연장 될 수 있습니다. 이 방법은 따라서 후 각 회로 기능의 포괄적인 절 개 하면 그리고 어떻게 후 각 신경 활동에 대 한 보완 연구에 행동 반응 번역.

ORN 활성화의 특이성을 보여 우리의 방법 성공적으로 두 다른 온 (ORN::7a & ORN::42a)의 영향을 결정 하기 위해 적용 된 애벌레 동작 (그림 3)에 (ORNs Or7a 또는 Or42a을 표현) 활성화. 최근 연구는 개별 일치 애벌레 ORNs 기능적으로 뚜렷한1,10,13, 우리의 대표적인 데이터 표현 CsChrimson ORN::7a 빛에 의해 자극 되었다 때 했음을 보여 줍니다 한 실행 길이 제어 동물에 비해 상당한 감소. 반대로, CsChrimson을 표현 하는 ORN::42a는 빛에 의해 자극 했다 때 있었다 크게 증가 제어 동물 (그림 3)에 비해 실행된 길이에. 집단 데이터 분석 ~ 100-120에서 애벌레 트랙에서 가져온 (n = 8) 각 유전자 형에 대 한 시험 수행. 오차 막대 표시 SEM. 우리가 여기만 단일 동작 매개 변수 (실행된 길이)를 설명 하는 동안 우리 주의 각 애벌레 트랙 속도, 경로 곡률에 대 한 매개 변수를 계산 하 더 분석 될 수 있다 고 바디 벤드1,8,13, , 1415. 더 많은 매개 변수 제목 각도 같은 방향, 길이 및 실행으로 속도 관련 냄새에서 얻어질 수 있다 냄새 소스 경기장1,8,13의 1 개의 측에 제공 하는 경우.
ORN 활성화의 시간적 패턴 변경 우리의 방법의 능력을 보여 우리 조명 끄고 사이 대체 우리의 자극을 다양 합니다. 우리가 복종 애벌레 (0.04 Hz, 1hz, 및 상수) 빛에 기간 UAS-CsChrimson ORN::42a에 가벼운 자극의 3 개의 다른 시간적 패턴 표현. 우리는 다음 → OFF 단계에 조명 OFF → ON 단계 및 조명 하는 동안 발생 하는 행동 매개 변수 변화 측정. 우리는 ORN::42a에 대 한 가벼운 자극의 다른 시간적 패턴 elicited 다른 행동 응답 (그림 4) 발견. 이러한 변화 했다 어떤 ORNs. 에 UAS-CsChrimson 을 표현 하지 않는 제어 애벌레에서 관찰 되지 않는 이 결과 강조 ORN 활성화의 어떻게 시간적 패턴을 이해의 중요성 동물 행동에 기여 한다.
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57353/57353fig1.jpg"> 그림 1 : 동작 아레나와 애벌레 크롤링 매체. (A) 앞면 블랙 박스 동작 경기장의 모습. 경기장의 열기 문 상자 천장에서 중단 된 CCD 카메라를 보여준다. (B) 빨간 LED 빛 스트립 optogenetic stimulations에 대 한 사용을 포함 하는 금속 플랫폼의 하단 보기 주위 CCD 카메라 장착 됩니다. ((C)) 분석 결과에 사용 되는 애벌레 크롤링 매체의 최고 볼 수 있습니다. 이전 애벌레 운동 기록의 시작, ~ 20 씻어 애벌레 22 cm x 22 cm 배양 접시의 중앙에 따라 누워 있다 1.5 %agarose 계층. 애벌레를 포함 하는 페 트리 접시는 CCD 카메라 아래와 사이 두 개의 적외선 LED 빛 스트립 카메라에 대 한 광원으로 사용 되는 경기장의 중앙에 배치 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57353/57353fig1large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 2" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57353/57353fig2.jpg"> 그림 2 : Optogenetics 설치. infographic optogenetics 설치에 대 한 전자 배치를 보여주는. 간단히, LED 빛 (630 nm) 스트립 시리즈에 연결 되어 있고 스트립에서 전선 라즈베리 파이 2B 마이크로프로세서에 연결 된 광 커플러에 먹이. LED 빛 스트립 및 커플러는 전원 공급 장치에 의해 구동 됩니다. <a href="//ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57353/57353fig2large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 3" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57353/57353fig3.jpg"> 그림 3 : 애벌레 행동에 개별 ORNs의 빛 활성화의 영향. CsChrimson ORN::7a 및 ORN::42a을 표현 하는 애벌레의 실행된 길이 빛 활성화 시 애벌레 제어에 비해 영향을 다르게 했다. 각 막대는 평균 RI ± SEM을 나타냅니다 (n = 8). 실행된 길이 ORN::7a 활성화 하는 때 애벌레의 컨트롤 보다 훨씬 낮은 했다. 애벌레 때 활성화 되었다 ORN::42a의 실행된 길이 제어 보다 크게 높았다. 바 대표 평균 ± SEM (n = 8, 학생 t-검정; "*" p < 0.05, "* *" p < 0.001). <a href="//ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57353/57353fig3large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Figure 4" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/57353/57353fig4.jpg"> 그림 4 : 애벌레 행동에 온 활성화의 다른 시간적 패턴의 영향. (A) ORNs 활성화에 사용 되는 자극의 3 시간 패턴. A: 자극 1 분 상수 중, 자극 b: 0.04 Hz 빛 자극, 자극 c: 1 빛 자극 분 2 LED에 기간 동안 빛. (B) 애벌레는 a.에 설명 된 빛 자극의 세 가지 다른 패턴을 복종 되었다 각 점 빛 활성화 ON에서 OFF로 전환 될 때 애벌레 동작, 빛 자극, 각 패턴에 변화를 나타냅니다. '길이 실행 하 는' 변화 (길이 (OFF)-(에) 길이 실행 하는 유명 유명)는 x 축에 그려집니다. '실행 속도'에 변경 (유명 실행 속도 (OFF)-유명 실행 속도 ())는 y 축에 그려집니다. 왼쪽된 그래프 (회색 점) 측정 제어 애벌레에서 나타내고 오른쪽 그래프 (빨간 점) ORN::42a에서 CsChrimson 을 표현 하는 애벌레에서 측정을 나타냅니다. <a href="//ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57353/57353fig4large.jpg" target="_blank">이 그림의 더 큰 버전을 보려면 여기를 클릭 하십시오.</a>
<img alt="Final Code PDF" src="/files/ftp_upload/57353/57353code.jpg"> 추가 파일 구문: 쉽게 적절 한 조건에 맞게 적응 될 수 있는 간단한 Matlab 코드 ('Tracklarva')의 집합. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/57353/Final_Code.pdf" target="_blank">이 파일을 다운로드 하려면 여기를 클릭 하십시오.</a>

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Tracking Drosophila Larval Behavior in Response to Optogenetic Stimulation of Olfactory Neurons

이 프로토콜 분석 초파리 애벌레 동시 optogenetic 그것의 후 각 신경의 자극에 대 한 응답에서의 탐색 동작 합니다. 630 nm 파장의 빛은 빨간색 이동 채널 rhodopsin 표현 개별 후 각 신경 세포를 활성화 하는 데 사용 됩니다. 애벌레의 움직임이 동시에 추적 하 고 디지털 기록, 사용자 작성 소프트웨어를 사용 하 여 분석.

초파리 애벌레 동작 Optogenetic 후 각 신경의 자극에 대 한 응답 추적

The ability of insects to navigate toward odor sources is based on the activities of their first-order olfactory receptor neurons (ORNs). While a ...

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Universidad San Sebastian

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Tracking Drosophila Larval Behavior in Response to Optogenetic Stimulation of Olfactory Neurons

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7.2K 조회수.  University of Nevada. 이 프로토콜 분석 초파리 애벌레 동시 optogenetic 그것의 후 각 신경의 자극에 대 한 응답에서의 탐색 동작 합니다. 630 nm 파장의 빛은 빨간색 이동 채널 rhodopsin 표현 개별 후 각 신경 세포를 활성화 하는 데 사용 됩니다. 애벌레의 움직임이 동시에 추적 하 고 디지털 기록, 사용자 작성 소프트웨어를 사용 하 여 분석.

비디오: Tracking Drosophila Larval Behavior in Response to Optogenetic Stimulation of Olfactory Neurons

High-resolution Measurement of Odor-Driven Behavior in Drosophila Larvae

Olfactory responses in Drosophila larvae have been traditionally studied in Petri dishes comprising a single peripheral odor source. In this behavioral paradigm, the experimenter usually assumes that the rapid diffusion of odorant molecules from the source leads to the creation of a stable gradient in the dish. To establish a quantitative correlation between sensory inputs and behavioral responses, it is necessary to achieve a more thorough characterization of the odorant stimulus conditions. In this video article, we describe a new method allowing the construction of odorant gradients with stable and controllable geometries. We briefly illustrate how these gradients can be used to screen for olfactory defects (full and partial anosmia) and to study more subtle features of chemotaxis behavior.

In this video article, we describe a new method allowing the construction of odorant gradients with stable and controllable geometries. We briefly illustrate how these gradients can be used to screen for olfactory defects (full and partial anosmia) and to study more subtle features of chemotaxis behavior.

Drosophila의 유충에서 냄새 기반 행동의 고해상도 측정

Olfactory responses in Drosophila larvae have been traditionally studied in Petri dishes comprising a single peripheral odor source. In this behavioral ...

연구

생물학

Calcium Imaging of Odor-evoked Responses in the Drosophila Antennal Lobe

The antennal lobe is the primary olfactory center in the insect brain and represents the anatomical and functional equivalent of the vertebrate olfactory bulb1-5. Olfactory information in the external world is transmitted to the antennal lobe by olfactory sensory neurons (OSNs), which segregate to distinct regions of neuropil called glomeruli according to the specific olfactory receptor they express. Here, OSN axons synapse with both local interneurons (LNs), whose processes can innervate many different glomeruli, and projection neurons (PNs), which convey olfactory information to higher olfactory brain regions.
Optical imaging of the activity of OSNs, LNs and PNs in the antennal lobe - traditionally using synthetic calcium indicators (e.g. calcium green, FURA-2) or voltage-sensitive dyes (e.g. RH414) - has long been an important technique to understand how olfactory stimuli are represented as spatial and temporal patterns of glomerular activity in many species of insects6-10. Development of genetically-encoded neural activity reporters, such as the fluorescent calcium indicators G-CaMP11,12 and Cameleon13, the bioluminescent calcium indicator GFP-aequorin14,15, or a reporter of synaptic transmission, synapto-pHluorin16 has made the olfactory system of the fruitfly, Drosophila melanogaster, particularly accessible to neurophysiological imaging, complementing its comprehensively-described molecular, electrophysiological and neuroanatomical properties2,4,17. These reporters can be selectively expressed via binary transcriptional control systems (e.g. GAL4/UAS18, LexA/LexAop19,20, Q system21) in defined populations of neurons within the olfactory circuitry to dissect with high spatial and temporal resolution how odor-evoked neural activity is represented, modulated and transformed22-24.
Here we describe the preparation and analysis methods to measure odor-evoked responses in the Drosophila antennal lobe using G-CaMP25-27. The animal preparation is minimally invasive and can be adapted to imaging using wide-field fluorescence, confocal and two-photon microscopes.

Calcium Imaging of Odor-evoked Responses in the Drosophila Antennal Lobe

We describe an established technique to measure and analyze odor-evoked calcium responses in the antennal lobe of living Drosophila melanogaster.

의 냄새-evoked 응답의 칼슘 이미징 Drosophila Antennal 엽

The antennal lobe is the primary olfactory center in the insect brain and represents the anatomical and functional equivalent of the vertebrate olfactory ...

신경과학

Appetitive Associative Olfactory Learning in Drosophila Larvae

In the following we describe the methodological details of appetitive associative olfactory learning in Drosophila larvae. The setup, in combination with genetic interference, provides a handle to analyze the neuronal and molecular fundamentals of specifically associative learning in a simple larval brain.
Organisms can use past experience to adjust present behavior. Such acquisition of behavioral potential can be defined as learning, and the physical bases of these potentials as memory traces1-4. Neuroscientists try to understand how these processes are organized in terms of molecular and neuronal changes in the brain by using a variety of methods in model organisms ranging from insects to vertebrates5,6. For such endeavors it is helpful to use model systems that are simple and experimentally accessible. The Drosophila larva has turned out to satisfy these demands based on the availability of robust behavioral assays, the existence of a variety of transgenic techniques and the elementary organization of the nervous system comprising only about 10,000 neurons (albeit with some concessions: cognitive limitations, few behavioral options, and richness of experience questionable)7-10.
Drosophila larvae can form associations between odors and appetitive gustatory reinforcement like sugar11-14. In a standard assay, established in the lab of B. Gerber, animals receive a two-odor reciprocal training: A first group of larvae is exposed to an odor A together with a gustatory reinforcer (sugar reward) and is subsequently exposed to an odor B without reinforcement 9. Meanwhile a second group of larvae receives reciprocal training while experiencing odor A without reinforcement and subsequently being exposed to odor B with reinforcement (sugar reward). In the following both groups are tested for their preference between the two odors. Relatively higher preferences for the rewarded odor reflect associative learning - presented as a performance index (PI). The conclusion regarding the associative nature of the performance index is compelling, because apart from the contingency between odors and tastants, other parameters, such as odor and reward exposure, passage of time and handling do not differ between the two groups9.

Appetitive Associative Olfactory Learning in Drosophila Larvae

Drosophila larvae are able to associate odor stimuli with gustatory reward. Here we describe a simple behavioral paradigm that allows the analysis of appetitive associative olfactory learning.

에 Appetitive 연관 강한 학습<em&gt; Drosophila</em&gt; 애벌레

In the following we describe the methodological  details of appetitive associative olfactory learning in Drosophila larvae. The setup, in combination with ...

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

A growing number of genetically encoded tools are becoming available that allow non-invasive manipulation of the neural activity of specific neurons in Drosophila melanogaster1. Chief among these are optogenetic tools, which enable the activation or silencing of specific neurons in the intact and freely moving animal using bright light. Channelrhodopsin (ChR2) is a light-activated cation channel that, when activated by blue light, causes depolarization of neurons that express it. ChR2 has been effective for identifying neurons critical for specific behaviors, such as CO2 avoidance, proboscis extension and giant-fiber mediated startle response2-4. However, as the intense light sources used to stimulate ChR2 also stimulate photoreceptors, these optogenetic techniques have not previously been used in the visual system. Here, we combine an optogenetic approach with a mutation that impairs phototransduction to demonstrate that activation of a cluster of loom-sensitive neurons in the fly's optic lobe, Foma-1 neurons, can drive an escape behavior used to avoid collision. We used a null allele of a critical component of the phototransduction cascade, phospholipase C-&beta;, encoded by the norpA gene, to render the flies blind and also use the Gal4-UAS transcriptional activator system to drive expression of ChR2 in the Foma-1 neurons. Individual flies are placed on a small platform surrounded by blue LEDs. When the LEDs are illuminated, the flies quickly take-off into flight, in a manner similar to visually driven loom-escape behavior. We believe that this technique can be easily adapted to examine other behaviors in freely moving flies.

Optogenetic Stimulation of Escape Behavior in Drosophila melanogaster

Genetically encoded optogenetic tools enable noninvasive manipulation of specific neurons in the Drosophila brain. Such tools can identify neurons whose activation is sufficient to elicit or suppress particular behaviors. Here we present a method for activating Channelrhodopsin2 that is expressed in targeted neurons in freely walking flies.

의 이스케이프 문제의 Optogenetic의 자극<em&gt; Drosophila melanogaster</em

A  growing number of genetically encoded tools are becoming available that allow non-invasive  manipulation of the neural activity of specific neurons in ...

Optogenetic Perturbation of Neural Activity with Laser Illumination in Semi-intact Drosophila Larvae in Motion

Drosophila larval locomotion is a splendid model system in developmental and physiological neuroscience, by virtue of the genetic accessibility of the underlying neuronal components in the circuits1-6. Application of optogenetics7,8 in the larval neural circuit allows us to manipulate neuronal activity in spatially and temporally patterned ways9-13. Typically, specimens are broadly illuminated with a mercury lamp or LED, so specificity of the target neurons is controlled by binary gene expression systems such as the Gal4-UAS system14,15. In this work, to improve the spatial resolution to "sub-genetic resolution", we locally illuminated a subset of neurons in the ventral nerve cord using lasers implemented in a conventional confocal microscope. While monitoring the motion of the body wall of the semi-intact larvae, we interactively activated or inhibited neural activity with channelrhodopsin16,17 or halorhodopsin18-20, respectively. By spatially and temporally restricted illumination of the neural tissue, we can manipulate the activity of specific neurons in the circuit at a specific phase of behavior. This method is useful for studying the relationship between the activities of a local neural assembly in the ventral nerve cord and the spatiotemporal pattern of motor output.

Optogenetic Perturbation of Neural Activity with Laser Illumination in Semi-intact Drosophila Larvae in Motion

Here we describe a protocol for optogenetic manipulation of motoneuronal activity while monitoring changes in motor output (muscle contraction) in semi-intact Drosophila larvae using lasers within a conventional confocal microscope. This technique enables researchers to achieve local perturbation of neural activity in a few neuromeres to elucidate the dynamics of motor circuits.

세미 그대로의 레이저 조명과 신경 활동의 Optogenetic 섭동<em&gt; 초파리</em모션&gt; 유충

Drosophila larval locomotion is a splendid model system in developmental and physiological neuroscience, by virtue of the genetic accessibility of the ...

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To complicate matters even further, the odors detected by the insect nervous system usually are not single compounds but mixtures whose composition and concentration ratios vary. This leads to an almost infinite amount of different olfactory stimuli which have to be evaluated by the nervous system.
To understand which aspects of an odor stimulus determine its evaluation by the fly, it is therefore desirable to efficiently examine odor-guided behavior towards many odorants and odor mixtures. To directly correlate behavior to neuronal activity, behavior should be quantified in a comparable time frame and under identical stimulus conditions as in neurophysiological experiments. However, many currently used olfactory bioassays in Drosophila neuroethology are rather specialized either towards efficiency or towards resolution.
Flywalk, an automated odor delivery and tracking system, bridges the gap between efficiency and resolution. It allows the determination of exactly when an odor packet stimulated a freely walking fly, and to determine the animal&#180;s dynamic behavioral reaction.

High-resolution Quantification of Odor-guided Behavior in Drosophila melanogaster Using the Flywalk Paradigm

The automated tracking system Flywalk is used for high-resolution quantification of odor-guided behavior in Drosophila melanogaster.

에서 냄새 유도 행동의 고해상도 정량화<em&gt; 초파리</em사용&gt;<em&gt; Flywalk</em&gt; 패러다임

In their natural environment, insects such as the vinegar fly Drosophila melanogaster are bombarded with a huge amount of chemically distinct odorants. To ...

Olfactory Behaviors Assayed by Computer Tracking Of Drosophila in a Four-quadrant Olfactometer

A key challenge in neurobiology is to understand how neural circuits function to guide appropriate animal behaviors. Drosophila melanogaster is an excellent model system for such investigations due to its complex behaviors, powerful genetic techniques, and compact nervous system. Laboratory behavioral assays have long been used with Drosophila to simulate properties of the natural environment and study the neural mechanisms underlying the corresponding behaviors (e.g. phototaxis, chemotaxis, sensory learning and memory)1-3. With the recent availability of large collections of transgenic Drosophila lines that label specific neural subsets, behavioral assays have taken on a prominent role to link neurons with behaviors4-11. Versatile and reproducible paradigms, together with the underlying computational routines for data analysis, are indispensable for rapid tests of candidate fly lines with various genotypes. Particularly useful are setups that are flexible in the number of animals tested, duration of experiments and nature of presented stimuli. The assay of choice should also generate reproducible data that is easy to acquire and analyze. Here, we present a detailed description of a system and protocol for assaying behavioral responses of Drosophila flies in a large four-field arena. The setup is used here to assay responses of flies to a single olfactory stimulus; however, the same setup may be modified to test multiple olfactory, visual or optogenetic stimuli, or a combination of these. The olfactometer setup records the activity of fly populations responding to odors, and computational analytical methods are applied to quantify fly behaviors. The collected data are analyzed to get a quick read-out of an experimental run, which is essential for efficient data collection and the optimization of experimental conditions.

Olfactory Behaviors Assayed by Computer Tracking Of Drosophila in a Four-quadrant Olfactometer

We describe here a behavioral setup and data analysis method for assaying olfactory responses of up to 100 vinegar flies (Drosophila melanogaster). This system may be used with single or multiple olfactory stimuli, and adaptable for optogenetic activation or silencing of neuronal subsets.

의 컴퓨터 추적하여있는 분석 후각 행동<em&gt; 초파리</em&gt; 네 사분면의 후각에

A key challenge in neurobiology is to understand how neural circuits function to guide appropriate animal behaviors. Drosophila melanogaster is an ...

In Vivo Optical Calcium Imaging of Learning-Induced Synaptic Plasticity in Drosophila melanogaster

Decades of research in many model organisms have led to the current concept of synaptic plasticity underlying learning and memory formation. Learning-induced changes in synaptic transmission are often distributed across many neurons and levels of processing in the brain. Therefore, methods to visualize learning-dependent synaptic plasticity across neurons are needed. The fruit fly Drosophila melanogaster represents a particularly favorable model organism to study neuronal circuits underlying learning. The protocol presented here demonstrates a way in which the processes underlying the formation of associative olfactory memories, i.e., synaptic activity and their changes, can be monitored in vivo. Using the broad array of genetic tools available in Drosophila, it is possible to specifically express genetically encoded calcium indicators in determined cell populations and even single cells. By fixing a fly in place, and opening the head capsule, it is possible to visualize calcium dynamics in these cells whilst delivering olfactory stimuli. Additionally, we demonstrate a set-up in which the fly can be subjected, simultaneously, to electric shocks to the body. This provides a system in which flies can undergo classical olfactory conditioning - whereby a previously na&#239;ve odor is learned to be associated with electric shock punishment - at the same time as the representation of this odor (and other untrained odors) is observed in the brain via two-photon microscopy. Our lab has previously reported the generation of synaptically localized calcium sensors, which enables one to confine the fluorescent calcium signals to pre- or postsynaptic compartments. Two-photon microscopy provides a way to spatially resolve fine structures. We exemplify this by focusing on neurons integrating information from the mushroom body, a higher-order center of the insect brain. Overall, this protocol provides a method to examine the synaptic connections between neurons whose activity is modulated as a result of olfactory learning.

In Vivo Optical Calcium Imaging of Learning-Induced Synaptic Plasticity in Drosophila melanogaster

Here we present a protocol with which pre- and/or postsynaptic calcium can be visualized in the context of Drosophila learning and memory. In vivo calcium imaging using synaptically localized calcium sensors is combined with a classical olfactory conditioning paradigm such that the synaptic plasticity underlying this type of associative learning may be determined.

초파리 멜라노가스터에서 학습 유발 시냅스 가소성의 생체 내 광학 칼슘 이미징

Decades of research in many model organisms have led to the current concept of synaptic plasticity underlying learning and memory formation. ...

Behavioral Assays for Optogenetic Manipulation of Neural Circuits in Drosophila melanogaster

Optogenetics has become a fundamental technique in neuroscience, enabling precise control of neuronal activity through light stimulation. This study introduces easy-to-implement setups for applying optogenetic methods in Drosophila melanogaster. Two optogenetic tools, CsChrimson, a red-light-activated cation channel, and GtACR2, a blue-light-activated anion channel, were employed in four experimental approaches. Three of these approaches involve single-fly experiments: (1) a blue-light optogenetic thermotactic positional preference assay targeting temperature-sensitive heating cells, (2) a red-light optogenetic positional preference assay activating bitter sensing neurons, and (3) a proboscis extension response assay activating the sweet-sensing neurons. The fourth approach (4) is a fly maze setup to assess avoidance behaviors using multiple flies. The ability to manipulate neural activity temporally and spatially offers powerful insights into sensory processing and decision-making, underscoring the potential of optogenetics to advance our knowledge of neural function. These methods provide an accessible and robust framework for future research in neuroscience to enhance the understanding of specific neural pathways and their behavioral outcomes.

This paper presents methods for optogenetic manipulation in Drosophila melanogaster, utilizing CsChrimson and GtACR2 to activate and silence specific neurons. Four experiments are described to utilize optogenetics to explore thermotactic and gustatory behaviors, providing insights into the underlying neural mechanisms governing these processes.

Drosophila melanogaster에서 신경 회로의 광유전학적 조작을 위한 행동 분석

Optogenetics has become a fundamental technique in neuroscience, enabling precise control of neuronal activity through light stimulation. This study ...

Navigational Behavior of Drosophila Larvae in Response to Optogenetic Stimulation of Olfactory Sensory Neurons

Source: Clark, D. A., et al. <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/57353">Tracking Drosophila Larval Behavior in Response to Optogenetic Stimulation of Olfactory Neurons.</a> J. Vis. Exp. (2018).
This video demonstrates a study of the navigational behavior of Drosophila larvae in response to optogenetic stimulation of olfactory sensory neurons (ORNs). Transgenic Drosophila larvae expressing light-sensitive ion channels in the ORNs are placed on agarose within a behavior arena. Optogenetic stimulation with light opens the channels, causing a cation influx that triggers the transmission of the signal to the brain, and the navigation behavior is recorded.

후각 감각 뉴런의 광유전학적 자극에 반응하는 초파리 유충의 탐색 행동

1. Building a Behavior Arena and Preparing Hardware to Enable Optogenetic Stimulation in the Behavior Arena

	To build a light-deprived behavior arena, ...

초파리 애벌레 동작 Optogenetic 후 각 신경의 자극에 대 한 응답 추적

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의 냄새-evoked 응답의 칼슘 이미징 Drosophila Antennal 엽

에 Appetitive 연관 강한 학습

의 이스케이프 문제의 Optogenetic의 자극

세미 그대로의 레이저 조명과 신경 활동의 Optogenetic 섭동

에서 냄새 유도 행동의 고해상도 정량화

의 컴퓨터 추적하여있는 분석 후각 행동

초파리 멜라노가스터에서 학습 유발 시냅스 가소성의 생체 내 광학 칼슘 이미징

Drosophila melanogaster에서 신경 회로의 광유전학적 조작을 위한 행동 분석

후각 감각 뉴런의 광유전학적 자극에 반응하는 초파리 유충의 탐색 행동