この作品は NIH の研究によってサポートされている (A1R03AI120027 (RN) と 1R21AI20012 (RN))、機関研究グラント (RN)、スタートアップは (RN) を付与、および MD アンダーソン CIC 種子 (RN) を付与します。

ここで説明するすべての方法は、制度的動物ケアおよび使用委員会 (IACUC) テキサス大学 MD アンダーソンがんセンターのによって承認されています。
1. ワクチンのペプチドの作製
<ol><li>リン酸緩衝生理食塩水 (PBS) 30 の渦・適切な濃度と凍結乾燥ペプチドを溶解 s。 注: hgp10025-33, 最終濃度が 1 mg/mL、OVA257-264, 最終濃度は 0.5 mg/mL です。注入前にペプチドを再構成します。溶解後は格納しないでください。</li>
</ol>2. トランスジェニック マウスの脾細胞の分離
注: 脾臓からの細胞分離は、滅菌方法で実行する必要があります。
<ol><li>
メソッドを使用して、承認された CO2窒息 OT 1 トランスジェニック マウスを安楽死させるし、脾臓を削除します。 注: 適切なトランスジェニック マウスは、このステップで選択したペプチドの特定に利用されています。<ol>
<li>右側にマウスを置きます。スプレーの 70% エタノール (エタノール) マウスの左側にあります。鉗子を使用して皮膚をプルアップし、手術用のはさみを使用して皮膚をカット脾臓は、腹腔内に表示されます。優しくカット オープン脾臓にアクセスする腹腔内。鉗子を用いた脾臓を削除します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>
(1% ウシ胎児血清 (FBS) を持つ PBS) 中 2 mL をシャーレに 70 μ m フィルターにそれを置き、プランジャーの終わりと脾臓を破り、脾臓の分解および。
	<ol>
<li>ペトリ皿と 50 mL の円錐管の場所から脾細胞を収集します。5 ml 中のすべてのセルを収集するために 2 回のペトリ皿を洗います。25 mL に媒体までを追加し、室温 475 x g で 5 分間細胞を遠心分離します。</li>
	</ol>
</li>
	<li>細胞を吸引し、脾臓赤血球 (RBC) 換散バッファー/1 mL に再懸濁します。孵化 5 分間室温で媒質 A の追加 10 mL と 475 x g に室温で遠心する媒質 A の 10 mL にペレットを再懸濁し、きれいな 50 mL の円錐形に 70 μ m のフィルターを通して細胞懸濁液をフィルタ リングによって残骸を取除きます。</li>
	<li>
トリパン ブルーと診断を使用してセルをカウントします。10 の最終的な集中に PBS で細胞を再懸濁します6 - 1006セル/mL。OVA257-の264特定殺害, 106セル/mL で再懸濁し、hgp100 の25-33特定殺害, 1006セル/mL で再懸濁します。
	<ol>
<li>スピン 475 x g に 5 分間室温で残りのセルは、上清を吸引し、血球を洗浄する 15 mL 冷 PBS に再懸濁します。洗浄手順をもう一度繰り返します。スピン 475 x g に 5 分間室温で細胞培養上清を吸引し、ステップ 2.4 で決定した最終巻によると冷 PBS に再懸濁します。</li>
		<li>単一細胞懸濁液を 1.5 mL 遠心チューブに転送し、受信者の C57/BL6 マウス注入まで氷の上を保ちます。</li>
	</ol>
</li>
</ol>3. トランスジェニック マウスの脾細胞の注入
<ol><li>背側の落で受信者の C57/BL6 マウスを上に置きます。70% イソプロピル アルコールをスプレー噴射尾基本領域。27 G 針を用いた傾斜面を上向きの尾静脈に静脈内の単一細胞懸濁液 (セクション 2) 100 μ L を管理します。</li>
</ol>4. Covax 管理
注: セルは、午後に注入される場合、covax 投与すべき細胞の注入の 18 h で次の朝。
<ol><li>1-3% イソフルランとクリア麻酔ボックスにマウスを配置します。マウスは麻酔が完全に後、は、麻酔室でマニホールドに接続されている鼻の円錐形にマウスを転送します。マウスを背側に拘束をしてください。 注: Anesthetization は、撤退の応答を誘発しないことを確認する簡単なつま先ピンチによって確認されます。連邦法は、認可された獣医の順序イソフルランの使用を制限します。</li>
	<li>70% イソプロピル アルコールをスプレー噴射尾基本領域。(セクション 1) からペプチド溶液 100 μ L を皮下注入 27 G 針を用いた注射器針ベベル面を上に向けて尻尾ベース領域に 4 ~ 5 mm を貫通します。 注: マウス、10尾の基部皮下注射と 1 つのフランクのワクチンを接種します。</li>
	<li>ワクチン注射部位に 100 μ L 抗 CD40 抗体 (0.5 mg/mL 在庫) 横を注入します。</li>
	<li>慎重に予防接種のサイトに imiquimod クリーム 50 mg/マウスを適用します。クリームは表示されなくなりますし、十分に吸収されるまで、imiquimod クリームを表面にこする。</li>
	<li>100,000 IU/mL 以上より 2 蛋白質の 100 μ L を腹腔内注入 (i. p.)、下腹部の領域で。彼らは完全に麻酔から回復後、5 分間マウスを観察します。 注: 実験が 3 日間この時点で一時停止です。</li>
</ol>5. CFSE とラベリングのためのターゲットの脾細胞の分離
注: 脾臓からの細胞分離は、滅菌方法で実行する必要があります。
<ol><li>承認された CO2窒息法によると c57bl/6 マウスを安楽死させます。2.1.1 の手順と spleen(s) を削除します。脾臓の分解および、脾細胞の手順で 2.2.1 - 2.2.3 を洗ってください。手順 2.3 - 2.3.2 のように赤血球を溶解させます。</li>
	<li>診断をカウントするための細胞を除去し、106セル/mL CFSE 分類ソリューション (手順 7 で説明) でセルの最終的な集中の計算。G. 吸引清 x 475 で 5 分間室温で残りのセルをスピンします。</li>
</ol>6. ペプチド パルス ターゲット脾細胞の
注: ペプチド パルスは、滅菌方法で実行する必要があります。
<ol><li>完全なメディアで 10 の6セル/mL の細胞を再懸濁します (RPMI 1640 メディア 10% と 1% FBS L-グルタミン (L Gln)、1% ペニシリン/ストレプトマイシン (ペン/連鎖球菌))。2 チューブ (15 mL 円錐曲線) に、セルを分割します。パルスまたはパルス成分を含まないとして各チューブ ラベルを付けます。</li>
	<li>
ラベルの付いた管ペプチド パルスを追加します。OVA257-264パルス、1 μ g/mL を追加し、hgp10025-33パルス、2 μ G/ml を追加します。 注: パルス成分を含まない細胞ペプチド添加せずただパルスのセルとして同じのインキュベーションを受けます。<ol>
<li>セル + 1 h 37 ° C でペプチドを孵化させなさい。</li>
	</ol>
</li>
	<li>完全なメディアの 10 mL を追加 (RPMI 1640 メディア 10% と 1% FBS L-グルタミン (L Gln)、1% ペニシリン/ストレプトマイシン (ペン/連鎖球菌)) を洗うように各管に両方パルスとパルス成分を含まない標的細胞。G. 吸引清 x 475 で 5 分間室温で残りのセルをスピンします。</li>
</ol>7. CFSE のターゲットの脾細胞の分類のための準備
<ol><li>
6.3; の手順で洗浄セル中に CFSE 分類ソリューションを準備します。パルスのセルは、CFSEloとして CFSEこんにちはと、パルス成分を含まないと名づけられます。10 の6セルの CFSE 分類溶液 1 mL を準備します。 注: CFSE は、光感受性のすべての回で光から保護する必要があります。<ol>
<li>CFSEこんにちは準備-RPMI 1640 メディア 2% で 5 μ M/mL の最終濃度 1 uL/mL CFSE (5 mM 原液) を追加することによってメディアのラベル付け FBS。</li>
		<li>CFSEloの準備-最終濃度 2% と 0.5 の μ M/mL RPMI メディア 1640 1 uL/mL CFSE (原液 0.5 mM) を追加することによってメディアのラベル付け FBS。</li>
	</ol>
</li>
</ol>8. CFSE とターゲットの脾細胞の分類
注: CFSE 分類は、滅菌方法で実行する必要があります。
<ol><li>106セル/mL CFSE 分類メディア (手順 6.3) からパルスとパルス成分を含まない標的細胞を再懸濁します。準備 CFSEこんにちはとパルスの細胞を再懸濁します-CFSElo準備メディアおよびパルス成分を含まない細胞ラベリング-メディアのラベル付け。</li>
	<li>セルと穏やかな反転または旋回 CFSE 分類メディアをミックスします。ボルテックスを混在させないでください。インキュベート細胞と 37 ° C で 15 分間でのメディアの CFSE 分類リミックス セル 5 分ごと。</li>
	<li>475 x g で 5 分間室温で各細胞の懸濁液とスピンの細胞に完全なメディアの 10 mL を追加します。</li>
	<li>上清を吸引し、10 mL の冷 PBS で細胞を再懸濁します。475 x g で 5 分間の 4 ° C でセルをスピンします。</li>
	<li>8.4 手順を繰り返します。</li>
	<li>セルとミックス ペプチド パルス CFSEこんにちはカウント-パルス成分を含まない、CFSEloとラベル-受信者マウス注入の 1:1 の比率で細胞を標識します。1 x 106基準フロー フローサイトメトリー評価 (セクション 11) のために使用するセルの混合の因数を維持します。 注: 注入の最終巻は 100 μ L/マウスです。最後のセル数は 10e6 セルです。注射器と針のボリュームの損失を考慮する必要があります、500 μ L で推定する必要があります。</li>
</ol>9. ターゲット細胞の注入
注意: CFSE ラベル セルの前に、できるだけ多くの射出時の光から保護します。
<ol><li>背側の落で受信者の c57bl/6 マウスを上に置きます。70% イソプロピル アルコールをスプレー噴射尾基本領域。ベベル面を上に尾静脈に静脈内の単一細胞懸濁液 100 μ L を管理します。</li>
</ol>10. 標的細胞の再分離
注: このステップのタイミングが重要な CTL 細胞毒性と刺激の抗原の強度に依存しています。OVA257-264のパルス ターゲットを殺すの評価、細胞は注入後収穫 4-6 h をする必要があります。以来、CFSE 分類された細胞は、暗闇の中で光の敏感なプロセスの脾臓です。
<ol><li>承認された CO2窒息方法に従って受信者 c57bl/6 マウスを安楽死させます。</li>
	<li>2.1.1 の手順と spleen(s) を削除します。脾臓の分解および、脾細胞の手順で 2.2.1 - 2.2.3 を洗ってください。手順 2.3 - 2.3.2 のように赤血球を溶解させます。</li>
	<li>フローサイトメトリーによる評価 (FACs) バッファー (1 %bsa + PBS) 1 mL 蛍光活性化細胞の細胞を再懸濁します。</li>
</ol>11. フローサイトメトリーによる CTL 活性を決定するロジックのゲート
<ol><li>
標準的な流れ cytometry のプロトコルを使用して CTL 活性の評価を実行します。励起11488 nm レーザを用いた流れの cytometer で FITC チャンネルを使用してセルを取得します。
	<ol>
<li>前方散乱 (FSC) 対側散布 (SSC) パラメーターを使用してライブのリンパ球のゲート。総 CFSE 肯定的な人口の生きているリンパ球ゲート内 subgate します。 注: 総リンパ球の脾臓に存在の小さなサブセットを注入された CFSE 分類された細胞になります。CSFE 陽性細胞は、対数スケールで 2 つの異なる集団として表示されます。</li>
		<li>ヒストグラム形式を使用して、パルス成分を含まない (左ピーク、CFSElo) とパルス (右ピーク、CFSEこんにちは) の割合を決定する集団。CFSEこんにちは細胞の損失は、抗原特異的 CTL アクティビティを示します。</li>
	</ol>
</li>
</ol>

<ol>
	<li>Liu, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Visualization+and+quantification+of+T+cell-mediated+cytotoxicity+using+cell-permeable+fluorogenic+caspase+substrates.">Visualization and quantification of T cell-mediated cytotoxicity using cell-permeable fluorogenic caspase substrates.</a> Nat Med. 8 (2), 185-189 (2002).</li><li>Wherry, E. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Lineage+relationship+and+protective+immunity+of+memory+CD8+T+cell+subsets.">Lineage relationship and protective immunity of memory CD8 T cell subsets.</a> Nat Immunol. 4 (3), 225-234 (2003).</li><li>He, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+sensitive+flow+cytometry-based+cytotoxic+T-lymphocyte+assay+through+detection+of+cleaved+caspase+3+in+target+cells.">A sensitive flow cytometry-based cytotoxic T-lymphocyte assay through detection of cleaved caspase 3 in target cells.</a> J Immunol Methods. 304 (1-2), 43-59 (2005).</li><li>Barber, D. L., Wherry, E. J., Ahmed, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cutting+edge:+rapid+in+vivo+killing+by+memory+CD8+T+cells.">Cutting edge: rapid in vivo killing by memory CD8 T cells.</a> J Immunol. 171 (1), 27-31 (2003).</li><li>Quah, B. J., Wijesundara, D. K., Ranasinghe, C., Parish, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+use+of+fluorescent+target+arrays+for+assessment+of+T+cell+responses+in+vivo.">The use of fluorescent target arrays for assessment of T cell responses in vivo.</a> J Vis Exp. (88), e51627 (2014).</li><li>Johansson, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Natural+killer+cell+education+in+mice+with+single+or+multiple+major+histocompatibility+complex+class+I+molecules.">Natural killer cell education in mice with single or multiple major histocompatibility complex class I molecules.</a> J Exp Med. 201 (7), 1145-1155 (2005).</li><li>Hailemichael, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Persistent+antigen+at+vaccination+sites+induces+tumor-specific+CD8(+)+T+cell+sequestration,+dysfunction+and+deletion.">Persistent antigen at vaccination sites induces tumor-specific CD8(+) T cell sequestration, dysfunction and deletion.</a> Nat Med. 19 (4), 465-472 (2013).</li><li>Overwijk, W. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Tumor+regression+and+autoimmunity+after+reversal+of+a+functionally+tolerant+state+of+self-reactive+CD8++T+cells.">Tumor regression and autoimmunity after reversal of a functionally tolerant state of self-reactive CD8+ T cells.</a> J Exp Med. 198 (4), 569-580 (2003).</li><li>Cho, H. I., Celis, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optimized+peptide+vaccines+eliciting+extensive+CD8+T-cell+responses+with+therapeutic+antitumor+effects.">Optimized peptide vaccines eliciting extensive CD8 T-cell responses with therapeutic antitumor effects.</a> Cancer Res. 69 (23), 9012-9019 (2009).</li><li>Ya, Z., Hailemichael, Y., Overwijk, W., Restifo, N. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Mouse+model+for+pre-clinical+study+of+human+cancer+immunotherapy.">Mouse model for pre-clinical study of human cancer immunotherapy.</a> Curr Protoc Immunol. 108, 21-43 (2015).</li><li>Menon, V., Thomas, R., Ghale, A. R., Reinhard, C., Pruszak, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Flow+cytometry+protocols+for+surface+and+intracellular+antigen+analyses+of+neural+cell+types.">Flow cytometry protocols for surface and intracellular antigen analyses of neural cell types.</a> J Vis Exp. (94), (2014).</li><li>Durward, M., Harms, J., Splitter, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Antigen+specific+killing+assay+using+CFSE+labeled+target+cells.">Antigen specific killing assay using CFSE labeled target cells.</a> J Vis Exp. (45), (2010).</li></ol>

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このプロトコルは簡単ですが、慎重に行う必要がありますいくつかの重要なステップがあります。テストされている抗原特異的 T 細胞の注入 covax プライミングはパルスのターゲットのいずれかの殺害を参照する必要。短時間の水ベースの製剤を置き換えて遅い抗原の放出性油ベースのアプローチより生じる水ベースの covax 予防接種、慢性炎症期の急性炎症性疾患を作成することが可能ですが結果7,12。
また、CFSE 分類標的細胞は、理想的な流れの cytometry 読み出しで統一する抗原パルス必要があります、次の。簡単に区別することができる人口のログの違いを提供するこのシステムに理想的であると、CFSEこんにちは 5 μ m と、CFSElo 0.5 μ m のラベルが見つかりました。
このプロトコルはテストされている特定の抗原システムを変更する簡単です。まず、ペプチド、covax の一部として投与濃度を確認すべき。この適切な濃度を決定する簡単な方法は、予防接種し、血液に注入、抗原特異的 T 細胞の拡大を追跡することです。この場合、弱い抗原 (hgp10025-33) 強い抗原 (OVA257-264) として二倍のペプチドが必要です。このプロトコルで使用される有効濃度をテスト刺激の強さに基づいて他の抗原のための合理的な出発点となります。変更の 1 つのポイントを単にペプチド続いて興味の抗原を持つ野生型マウスを免疫するパルス CTL 機能を評価の対象となります。ただし、この変更は活性化し、内因性抗原特異的応答の拡張に頼るし、ターゲット セル転送のタイミング発生予防接種後 7-14 日に必要とするでしょう。さらに、抗原特異的殺害のレベルが大幅に低下に比べて遺伝子導入 T 細胞を転送するときに観察しました。この変更で注意点は、ターゲットに CTL 応答のレベルを検出するのには低すぎるかもしれないことです。
T 細胞のプライミングに必要な抗原量に加えて特定の仮説の CFSE 分類されたターゲット細胞の再分離のタイミングを最適化する必要があります。変更中の T 細胞には微分でその結果をテスト再分離のタイミング調整機能を殺す必要があります。機能の強化された殺す T 細胞はターゲットの野生タイプ同等よりはるかに高速に評価する必要があります。この運動のプロファイルは、テストの仮説に対処する最適な timepoint を決定するため慎重に検討必要があります。一般的に、我々 は標的細胞の注入後 4 と 24 h 間で変わるためにこれを発見しました。
アッセイの制限の 1 つは、疲れの状態を誘導するために、エフェクター細胞を慢性的刺激ないです。したがって、CTL 機能は、最近アクティブ化されたエフェクター細胞に制限されます。このメソッドを変更して将来のアプリケーションのための興味深いなる慢性的な活性化抗原特異的 T 細胞サブセットのメモリ人口または殺害の能力のリコール機能を評価することが可能です。
CTL 機能生体内テスト法体内の殺害の高速検出体外の設定の制限の一部を克服可能します。そのまま免疫システムは場所で、ペプチドのプレゼンテーションと内因性抗原提示細胞による共刺激に依存する covax メソッドを介して転送された T 細胞のプライミング。他体内アッセイを殺すとは異なり、感染症や腫瘍ターゲットの存在、このメソッドは必要ありません。ただし、腫瘍ターゲットの追加追加のコンパレータを提供して抗原特異的 T 細胞と covax このメソッドの将来のアプリケーション管理の注入前に試金に追加できます。

複数のプロトコルは、cd8 陽性の細胞傷害性 (CTL) の可能性を評価するために、+または CD4+ T 細胞。この評価は体外で制御された条件1,2,3の下で容易に行うことができます。さらに、脈絡などの感染症モデルは古典的な差動 CFSE (5-(and 6) Carboxyfluorescein ジアセテート サクシニミジルエステル) 標識ターゲット細胞を使用して CTL 機能を検討してきたところ、CFSEこんにちは-標識細胞がペプチドと CFSEloパルス-パルス成分を含まない細胞が残っているターゲット。セルが 1:1 の比率で注入し、CFSEこんにちはの損失を評価-流れ cytometry4パルス ターゲットをラベル付けします。ワクチンと拒絶反応のモデル生体内で両方 CD8 によって殺害の評価のため同様の戦略を使用しているも+と CD4+ T 細胞も NK 細胞5,6。プライム対象注入前に免疫システム感染エージェントを使用する必要が強力な試金。
このプロトコルは、他の一方で、ホストの先行感染を必要とせず、代わりにプライム対象注入前に免疫システムに予防接種戦略を利用します。このワクチン接種は免疫刺激、カクテルと呼ばれる covax7Toll 様受容体 7 (TLR7) から成るの規定を必要とするペプチド ワクチンの水ベースの製剤から成るアゴニスト (imiquimod クリーム)、アゴニスト抗 CD40抗体およびインターロイキン 2 (IL-2) ペプチドごとのプライミングと強力な免疫反応の免疫刺激剤の相乗組み合わせに 。など、この試金はワクチンが標的細胞の投与前に 3 日間だけ関数の評価のための細胞と一緒に投与は CTL 機能の迅速な読み出しを提供します。さらに、covax プライミング プライミングの抗原特異的 T 細胞の殺害容量を注入後 4 と 24 h の間見ることができる十分に強いです。
このプロトコルの主な制限は、タイムライン、生体内で抗原とテストされる仮説の両方に適している殺害の対象を検出するため見つけることです。慎重に評価を行う必要があります、遺伝的変化と同様に、抗原の強さの変動として T 細胞でテストされている可能性がありますターゲット殺害の異なるタイミング検出が必要となる微分の CTL 機能。また、一方、ペプチド濃度の適切なワクチン接種がヒトメラノーマ抗原ペプチド 100 (hgp10025-33) に最適化されています, 卵白アルブミン257-264 (OVA257-264)8,9 、が特定の調査に適している別の抗原モデルの使用はさらに検証が必要があります。アジュバントとして、covax との組み合わせで CTL エフェクター機能を刺激するためにターゲット抗原の能力の予想される違いは、希望する目標を達成するために不可欠である IL-2 投与濃度、投与頻度の最適化があります。全体的に、このプロトコルは生体内での機能を殺すの迅速な評価を可能し、任意の特定の抗原に適応することができます。

<table><tbody><tr><td>6 to 12 week old female C57BL/6 mice&amp;nbsp;</td><td>Charles River</td><td>027</td><td>C57 Black 6 mice</td></tr><tr><td>OT-1 6-12 week old female mice&amp;nbsp;</td><td>Jackson Labs</td><td>003831</td><td></td></tr><tr><td>hgp100&lt;sub&gt;25&amp;ndash;33&lt;/sub&gt;&amp;nbsp;</td><td>CPCScientific</td><td>834139</td><td>KVPRNQDWL</td></tr><tr><td>OVA &lt;sub&gt;257&amp;ndash;264&lt;/sub&gt;&amp;nbsp;</td><td>CPCScientific</td><td>MISC-012</td><td>SIINFEKL</td></tr><tr><td>Imiquimod cream 5%&amp;nbsp;</td><td>Fougera</td><td>51672-4145-6</td><td>Aldara Cream</td></tr><tr><td>CD40-specific mAb&amp;nbsp;</td><td>BioXcell</td><td>BE0016-2</td><td>clone FGK4.5</td></tr><tr><td>rhIL-2 protein&amp;nbsp;</td><td>Hoffman LaRoche Inc</td><td>136</td><td>Recombinant human IL-2 protein</td></tr><tr><td>70% isopropyl alcohol Prep&amp;nbsp;</td><td>Kendall</td><td>S-17474</td><td></td></tr><tr><td>PBS</td><td>Life Technologies</td><td>10010-023</td><td>Phosphate Buffered Saline</td></tr><tr><td>FBS</td><td>Life Technologies</td><td>26140-079</td><td>fetal bovine serum</td></tr><tr><td>RBC lysis buffer&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>A10492-01</td><td>red blood cell lysis buffer</td></tr><tr><td>RPMI 1640 Media</td><td>Life Technologies</td><td>11875119</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamine&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>25030081</td><td></td></tr><tr><td>Pen/Strep</td><td>Life Technologies</td><td>15140122</td><td>penicillin/streptomycin</td></tr><tr><td>CFSE</td><td>Life Technologies</td><td>C34554</td><td>5-(and 6)-Carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester</td></tr><tr><td>Bovine serum albumin (BSA)</td><td>Sigma&amp;nbsp;</td><td>A4503</td><td></td></tr><tr><td>1.5 mL MCT graduated natural&amp;nbsp;</td><td>Fisher</td><td>05-408-129</td><td>microcentrifuge tube</td></tr><tr><td>70% ethanol</td><td>Fisher</td><td>BP8201500</td><td>EtOH</td></tr><tr><td>Trypan blue solution, 0.4%&amp;nbsp;&amp;nbsp;</td><td>Life Technologies</td><td>15250-061</td><td></td></tr><tr><td>Hemocytometer</td><td>Fisher</td><td>267110</td><td></td></tr><tr><td>27 gauge needle</td><td>BD</td><td>305109</td><td></td></tr><tr><td>1 mL syringe</td><td>BD</td><td>309659</td><td></td></tr></tbody></table>

in vivo assay for detection of antigen-specific t-cell cytolytic function using a vaccination model

抗原特異的殺害のための現在の方法論は生体外での使用に制限されるか伝染病モデルで利用します。しかし、抗原特異的感染せず殺害を測定する対象プロトコルではありませんがあります。このプロトコルは設計されています、特定の抗原の検出のため許可することでこれらの制限を克服する方法について説明します+ T 細胞の生体内でCD8 による標的細胞の殺害します。これは、アッセイを殺す伝統的な CFSE 分類されたターゲットと予防接種モデルのマージで。この組み合わせでは、アッセイは腫瘍の増殖や感染症に依存するないと直接かつ迅速に抗原特異的 CTL の可能性を評価するために研究者をことができます。また、読み出しはフローサイトメトリーに基づいており、ほとんどの研究者によって簡単にアクセスする必要があります。研究の主な制限は、タイムラインは、生体内でテストされる仮説に適切な見つけることです。抗原強度の変動と微分細胞傷害性機能可能性があります T 細胞における突然変異細胞収穫と評価のための最適な時間を決定するため慎重に評価する必要があります。Hgp10025-33の OVA257-264, ペプチド ワクチン接種のための適切な濃度を最適化されていますが、さらに検証が特定の調査により適切な場合があります他のペプチドの必要になります。全体的にみて、このプロトコルにより、体内の機能を殺すの迅速な評価と任意の特定の抗原に適応することができます。

CFSE 分類されたターゲット細胞の注入前にセルの 1:1 混合物が両方、CFSEこんにちはと CFSElo標的細胞の基準周波数を決定する流れの cytometer で実行されます。図 1FSC と SSC のパラメーターを使った初期のゲート、 Aは CFSE 個体数の変化を検出するゲートの戦略を示しています。この人口はラベルのない内因性脾細胞と比較されたとき比較的小さく、合計 CFSE 陽性細胞は周波数変化を評価する前に subgated します。CFSEこんにちはCFSElo集団の相対頻度は、100% で合計 CFSE 肯定的な人口を設定計算です。この分析を行うことができますヒストグラムまたはドット プロット形式を使用します。図 1Bに注入前 CFSE 集団の相対頻度の例を示します。この比率はほとんど正確に 1:1 になりますが、合理的にする必要があります。Covax プライミングの必要性は、CFSEこんにちは標的細胞は注射後 24 時間観測図 1C抗原の殺害がパルスないどこに表示されます。図 1D抗原の有効な殺害のパルス、CFSEこんにちはを示します-標識ターゲット細胞注入の前に観察されたピークがほとんど検出されないと、50% から 1% の検出に比率を大幅にシフトします。抗原の速度パルス、CFSEこんにちはまた図-6 h、24 h のポスト噴射でこの人口の損失を評価することによって殺害の対象セルをラベルします。
<img alt="Figure 1" class="xfigimg" src="/files/ftp_upload/56255/56255fig1.jpg"> 図 1:ベースラインと CFSE 分類されたターゲット細胞の注入で標識細胞の比較。(A) CTL 機能の評価のためのゲートの戦略が表示されます。簡単に言えば、ライブのリンパ球は、前方散乱 (FSC) 対側散布 (SSC) パラメーターを使用してゲートが。合計 CSFE 陽性細胞は生きているセル ゲート内で subgated が。CFSEこんにちはと CFSEloの比率は総 CFSE 肯定的な人口内のそれぞれの周波数に基づいています。(B) 次 CFSE 分類、標的細胞に 1:1 の混合、フローサイトメトリーによる CFSEこんにちはと CFSElo細胞の比率を評価しました。数字 (左) ヒストグラムと CFSE 対 SSC ドット プロット (右) 形式上それぞれのピークの周波数を示します。(C) これは covax 療法を接種せず殺す標的細胞の欠如を示しています。脾細胞注入後収穫の 24 h であった。(D) 抗原パルス CFSEこんにちは標的細胞 6 h (トップ グラフ) の殺害を示しますこれと 24 h (下のグラフ) ポスト噴射。数字は、ヒストグラム (左) と CFSE 対 SSC ドット プロット (右) 形式の両方で CFSE 分類されたピークの頻度を示します。<a href="//cloudflare-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/56255/56255fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版を表示するのにはここをクリックしてください</a>。

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In Vivo Assay for Detection of Antigen-specific T-cell Cytolytic Function Using a Vaccination Model

このプロトコルの目的は、抗原特異的マウスモデルにおける標的細胞の殺害の生体内での検出を実現することです。

生体内で予防接種モデルを用いた抗原特異的 T 細胞細胞傷害性関数の検出のための試金

Current methodologies for antigen-specific killing are limited to in vitro use or utilized in infectious disease models. However, there is not a protocol ...

in-vivo-assay-for-detection-antigen-specific-t-cell-cytolytic

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

In Vivo Assay for Detection of Antigen-specific T-cell Cytolytic Function Using a Vaccination Model

9.8K ビュー.  University of Texas MD Anderson Cancer Center. このプロトコルの目的は、抗原特異的マウスモデルにおける標的細胞の殺害の生体内での検出を実現することです。

ビデオ: In Vivo Assay for Detection of Antigen-specific T-cell Cytolytic Function Using a Vaccination Model

Antigen Specific In Vivo Killing Assay using CFSE Labeled Target Cells

Carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester (CFSE) can be used to easily and quickly label a cell population of interest for in vivo investigation. This labeling has classically been used to study proliferation and migration. In the method presented here, we have shortened the timeline after adoptive transfer to look at survival and killing of epitope specific CFSE labeled target cells4-6. The level of specific killing of a CD8 + T cell clone can indicate the quality of the response, as their quantity may be misleading. Specific CD8+ T cells can become functionally exhausted over time with a decline in cytokine production and killing7,8. Also, certain CD8 + T cell clones may not kill as well as others with differing TCR specificities9. For effective Cell Mediated Immunity (CMI), antigens must be identified that produce not only adequate numbers of responding T cells, but also functionally robust responding T cells. Here we assess the percent cell specific killing of two peptide specific T cell clones in BALB/c mice.

Antigen Specific In Vivo Killing Assay using CFSE Labeled Target Cells

Many infections elicit a strong CTL response, but occasionally, the quantity of responding cells does not correlate to control of the pathogen1. One measure of CTL quality is their ability to kill specifically2. CFSE labeling of target cells can be used to investigate this CTL response quality in vivo3,4.

抗原特異的インビボでの</emCFSE標識した標的細胞を用いた>キリングアッセイ

Carboxyfluorescein diacetate succinimidyl ester (CFSE) can be used to easily and quickly label a cell population of interest for in vivo investigation.  ...

免疫・感染学

Generation of Orthotopic Pancreatic Tumors and Ex vivo Characterization of Tumor-Infiltrating T Cell Cytotoxicity

In vivo models of pancreatic cancer provide invaluable tools for studying disease dynamics, immune infiltration and new therapeutic strategies. The orthotopic murine model can be performed on large cohorts of immunocompetent mice simultaneously, is relatively inexpensive and preserves the cognate tissue microenvironment. The quantification of T cell infiltration and cytotoxic activity within orthotopic tumors provides a useful indicator of an antitumoral response.
This protocol describes the methodology for surgical generation of orthotopic pancreatic tumors by injection of a low number of syngeneic tumor cells resuspended in 5 &#181;L basement membrane directly into the pancreas. Mice bearing orthotopic tumors take approximately 30 days to reach endpoint, at which point tumors can be harvested and processed for characterization of tumor-infiltrating T cell activity. Rapid enzymatic digestion using collagenase and DNase allows a single-cell suspension to be extracted from tumors. The viability and cell surface markers of immune cells extracted from the tumor are preserved; therefore, it is appropriate for multiple downstream applications, including flow-assisted cell sorting of immune cells for culture or RNA extraction, flow cytometry analysis of immune cell populations. Here, we describe the ex vivo stimulation of T cell populations for intracellular cytokine quantification (IFN&#947; and TNF&#945;) and degranulation activity (CD107a) as a measure of overall cytotoxicity. Whole-tumor digests were stimulated with phorbol myristate acetate and ionomycin for 5 h, in the presence of anti-CD107a antibody in order to upregulate cytokine production and degranulation. The addition of brefeldin A and monensin for the final 4 h was performed to block extracellular transport and maximize cytokine detection. Extra- and intra-cellular staining of cells was then performed for flow cytometry analysis, where the proportion of IFN&#947;+, TNF&#945;+ and CD107a+ CD4+ and CD8+ T cells was quantified.
This method provides a starting base to perform comprehensive analysis of the tumor microenvironment.

Generation of Orthotopic Pancreatic Tumors and Ex vivo Characterization of Tumor-Infiltrating T Cell Cytotoxicity

This protocol describes the surgical generation of orthotopic pancreatic tumors and the rapid digestion of freshly isolated murine pancreatic tumors. Following digestion, viable immune cell populations can be used for further downstream analysis, including ex vivo stimulation of T cells for intracellular cytokine detection by flow cytometry.

直交トピック膵腫瘍の生成と腫瘍浸潤T細胞細胞傷害のEx生体内特性評価

In vivo models of pancreatic cancer provide invaluable tools for studying disease dynamics, immune infiltration and new therapeutic strategies. The ...

がん研究

In Vivo Immunogenicity Screening of Tumor-Derived Extracellular Vesicles by Flow Cytometry of Splenic T Cells

Immunogenic cell death of tumors, caused by chemotherapy or irradiation, can trigger tumor-specific T cell responses by releasing danger-associated molecular patterns and inducing the production of type I interferon. Immunotherapies, including checkpoint inhibition, primarily rely on preexisting tumor-specific T cells to unfold a therapeutic effect. Thus, synergistic therapeutic approaches that exploit immunogenic cell death as an intrinsic anti-cancer vaccine may improve their responsiveness. However, the spectrum of immunogenic factors released by cells under therapy-induced stress remains incompletely characterized, especially regarding extracellular vesicles (EVs). EVs, nano-scale membranous particles emitted from virtually all cells, are considered to facilitate intercellular communication and, in cancer, have been shown to mediate cross-priming against tumor antigens. To assess the immunogenic effect of EVs derived from tumors under various conditions, adaptable, scalable, and valid methods are sought-for. Therefore, herein a relatively easy and robust approach is presented to assess EVs' in vivo immunogenicity. The protocol is based on flow cytometry analysis of splenic T cells after in vivo immunization of mice with EVs, isolated by precipitation-based assays from tumor cell cultures under therapy or steady-state conditions. For example, this work shows that oxaliplatin exposure of B16-OVA murine melanoma cells resulted in the release of immunogenic EVs that can mediate the activation of tumor-reactive cytotoxic T cells. Hence, screening of EVs via in vivo immunization and flow cytometry identifies conditions under which immunogenic EVs can emerge. Identifying conditions of immunogenic EV release provides an essential prerequisite to testing EVs' therapeutic efficacy against cancer and exploring the underlying molecular mechanisms to ultimately unveil new insights into EVs' role in cancer immunology.

In Vivo Immunogenicity Screening of Tumor-Derived Extracellular Vesicles by Flow Cytometry of Splenic T Cells

This manuscript describes how to assess in vivo immunogenicity of tumor cell-derived extracellular vesicles (EVs) using flow cytometry. EVs derived from tumors undergoing treatment-induced immunogenic cell death seem particularly relevant in tumor immunosurveillance. This protocol exemplifies the assessment of oxaliplatin-induced immunostimulatory tumor EVs but can be adapted to various settings.

インビボ 脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

Immunogenic cell death of tumors, caused by chemotherapy or irradiation, can trigger tumor-specific T cell responses by releasing danger-associated ...

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

The ability to monitor T cell responses in vivo is important for the development of our understanding of the immune response and the design of immunotherapies. Here we describe the use of fluorescent target array (FTA) technology, which utilizes vital dyes such as carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE), violet laser excitable dyes (CellTrace Violet: CTV) and red laser excitable dyes (Cell Proliferation Dye eFluor 670: CPD) to combinatorially label mouse lymphocytes into &#62;250 discernable fluorescent cell clusters. Cell clusters within these FTAs can be pulsed with major histocompatibility (MHC) class-I and MHC class-II binding peptides and thereby act as target cells for CD8+ and CD4+ T cells, respectively. These FTA cells remain viable and fully functional, and can therefore be administered into mice to allow assessment of CD8+ T cell-mediated killing of FTA target cells and CD4+ T cell-meditated help of FTA B cell target cells in real time in vivo by flow cytometry. Since &#62;250 target cells can be assessed at once, the technique allows the monitoring of T cell responses against several antigen epitopes at several concentrations and in multiple replicates. As such, the technique can measure T cell responses at both a quantitative (e.g.&#160;the cumulative magnitude of the response) and a qualitative (e.g.&#160;functional avidity and epitope-cross reactivity of the response) level. Herein, we describe how these FTAs are constructed and give an example of how they can be applied to assess T cell responses induced by a recombinant pox virus vaccine.

The Use of Fluorescent Target Arrays for Assessment of T Cell Responses In vivo

The ability to monitor T cell responses in detail in vivo is important for the development of our understanding of the immune response. Here we describe the use of fluorescent target arrays (FTAs) in an in vivo T cell assay that assesses &#62;250 parameters simultaneously by flow cytometry.

T細胞応答の評価のための蛍光ターゲット配列の使用<em&gt;インビボ</em

The ability to monitor T cell responses in vivo is important for the development of our understanding of the immune response and the design of ...

Whole-animal Imaging and Flow Cytometric Techniques for Analysis of Antigen-specific CD8+ T Cell Responses after Nanoparticle Vaccination

Traditional vaccine adjuvants, such as alum, elicit suboptimal CD8+ T cell responses. To address this major challenge in vaccine development, various nanoparticle systems have been engineered to mimic features of pathogens to improve antigen delivery to draining lymph nodes and increase antigen uptake by antigen-presenting cells, leading to new vaccine formulations optimized for induction of antigen-specific CD8+ T cell responses. In this article, we describe the synthesis of a &#8220;pathogen-mimicking&#8221; nanoparticle system, termed interbilayer-crosslinked multilamellar vesicles (ICMVs) that can serve as an effective vaccine carrier for co-delivery of subunit antigens and immunostimulatory agents and elicitation of potent cytotoxic CD8+ T lymphocyte (CTL) responses. We describe methods for characterizing hydrodynamic size and surface charge of vaccine nanoparticles with dynamic light scattering and zeta potential analyzer and present a confocal microscopy-based procedure to analyze nanoparticle-mediated antigen delivery to draining lymph nodes. Furthermore, we show a new bioluminescence whole-animal imaging technique utilizing adoptive transfer of luciferase-expressing, antigen-specific CD8+ T cells into recipient mice, followed by nanoparticle vaccination, which permits non-invasive interrogation of expansion and trafficking patterns of CTLs in real time. We also describe tetramer staining and flow cytometric analysis of peripheral blood mononuclear cells for longitudinal quantification of endogenous T cell responses in mice vaccinated with nanoparticles.

We describe whole-animal imaging and flow cytometry-based techniques for monitoring expansion of antigen-specific CD8+ T cells in response to immunization with nanoparticles in a murine model of vaccination.

ナノ粒子ワクチン接種後の抗原特異的CD8 + T細胞応答の分析のための全動物イメージングとフローサイトメトリー技術

Traditional vaccine adjuvants, such as alum, elicit suboptimal CD8+ T cell responses. To address this major challenge in vaccine development, various ...

A Suction Blister Protocol to Study Human T-cell Recall Responses In Vivo

Cutaneous antigen-recall models allow for studies of human memory responses in vivo. When combined with skin suction blister (SB) induction, this model offers accessibility to rare populations of antigen-specific T-cells representative of the cellular memory response as well as the cytokine microenvironment in situ.
This report describes the practical procedure of a cutaneous recall, an SB induction, and a harvest of antigen-specific T-cells. To exemplify the method, the tuberculin skin test is used for antigenic recall in individuals who, prior to this study, underwent a Bacillus Calmette-Gu&#233;rin vaccination against an infection with Mycobacterium tuberculosis. Finally, examples of multiplex and flow cytometric analyses of SB specimens are provided, illustrating high fractions of antigen-specific polyfunctional CD4+ T-cells available by this sampling method compared with cells isolated from the blood.
The method described here is safe and minimally invasive, provides a unique opportunity to study both innate and adaptive immune responses in vivo, and may be beneficial to a broad community of researchers working with cell-mediated immunity and human memory responses, in the context of vaccine development.

A Suction Blister Protocol to Study Human T-cell Recall Responses In Vivo

Here, we provide a demonstration of the suction blister cutaneous recall model. The model allows a simple access to study human in vivo adaptive immune responses, for instance in the context of vaccine development.

勉強する人間の T 細胞のリコール反応体内吸引水疱プロトコル

Cutaneous antigen-recall models allow for studies of human memory responses in vivo. When combined with skin suction blister (SB) induction, this model ...

Simultaneous Quantification of Anti-vector and Anti-transgene-Specific CD8+ T Cells Via MHC I Tetramer Staining After Vaccination with a Viral Vector

Upon viral infection, antigen-specific CD8+ cytotoxic T cells (CTLs) arise and contribute to the elimination of infected cells to prevent the spread of pathogens. Therefore, the frequency of antigen-specific CTLs is indicative of the strength of the T cell response against a specific antigen. Such analysis is important in basic immunology, vaccine development, cancer immunobiology and the adaptive immunology. In the vaccine field, the CTL response directed against components of a viral vector co-determines how effective the generation of antigen-specific cells against the antigen of interest (i.e., transgene) is. Antigen-specific CTLs can either be detected by stimulation with specific peptides followed by intracellular cytokine staining or by the direct staining of antigen-specific T cell receptors (TCRs) and analysis by flow cytometry. The first method is rather time-consuming since it requires sacrificing of animals to isolate cells from organs. Also, it requires isolation of blood from small animals which is difficult to perform. The latter method is rather fast, can be easily done with small amounts of blood and is not dependent on specific effector functions, such as cytolytic activity. MHC tetramers are an ideal tool to detect antigen-specific TCRs.
Here, we describe a protocol to simultaneously detect antigen-specific CTLs for the immunodominant peptides of the viral vector VSV-GP (LCMV-GP, VSV-NP) and transgenes (OVA, HPV 16 E7, eGFP) by MHC I tetramer staining and flow cytometry. Staining is possible either directly from blood or from single cell suspensions of organs, such as spleen. Blood or single cell suspensions of organs are incubated with tetramers. After staining with antibodies against CD3 and CD8, antigen-specific CTLs are quantified by flow cytometry. Optionally, antibodies against CD43, CD44, CD62L or others can be included to determine the activation status of antigen-specific CD8+T cells and to discriminate between na&#239;ve and effector cells.

Simultaneous Quantification of Anti-vector and Anti-transgene-Specific CD8+ T Cells Via MHC I Tetramer Staining After Vaccination with a Viral Vector

Here, we present a protocol for the ex vivo qualitative detection of antigen-specific CD8+ T cells. Analysis is possible with single cell suspensions from organs or from small amounts of blood. A broad range of studies require the analysis of cytotoxic T cell responses (vaccination and cancer immunotherapy studies).

反ベクトルと反遺伝子特定 CD8 の同時定量+ T はマイク ウイルスベクターを用いたワクチン後染色テトラマー MHC を介して細胞

Upon viral infection, antigen-specific CD8+ cytotoxic T cells (CTLs) arise and contribute to the elimination of infected cells to prevent the spread of ...

Tailoring In Vivo Cytotoxicity Assays to Study Immunodominance in Tumor-specific CD8+ T Cell Responses

Carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE)-based in vivo cytotoxicity assays enable sensitive and accurate quantitation of CD8+ cytolytic T lymphocyte (CTL) responses elicited against tumor- and pathogen-derived peptides. They offer several advantages over traditional killing assays. First, they permit the monitoring of CTL-mediated cytotoxicity within architecturally intact secondary lymphoid organs, typically in the spleen. Second, they allow for mechanistic studies during the priming, effector and recall phases of CTL responses. Third, they provide useful platforms for vaccine/drug efficacy testing in a truly in vivo setting. Here, we provide an optimized protocol for the examination of concomitant CTL responses against more than one peptide epitope of a model tumor antigen (Ag), namely, simian virus 40 (SV40)-encoded large T Ag (T Ag). Like most other clinically relevant tumor proteins, T Ag harbors many potentially immunogenic peptides. However, only four such peptides induce detectable CTL responses in C57BL/6 mice. These responses are consistently arranged in a hierarchical order based on their magnitude, which forms the basis for TCD8 &#8220;immunodominance&#8221; in this powerful system. Accordingly, the bulk of the T Ag-specific TCD8 response is focused against a single immunodominant epitope while the other three epitopes are recognized and responded to only weakly. Immunodominance compromises the breadth of antitumor TCD8 responses and is, as such, considered by many as an impediment to successful vaccination against cancer. Therefore, it is important to understand the cellular and molecular factors and mechanisms that dictate or shape TCD8 immunodominance. The protocol we describe here is tailored to the investigation of this phenomenon in the T Ag immunization model, but can be readily modified and extended to similar studies in other tumor models. We provide examples of how the impact of experimental immunotherapeutic interventions can be measured using in vivo cytotoxicity assays.

Tailoring In Vivo Cytotoxicity Assays to Study Immunodominance in Tumor-specific CD8+ T Cell Responses

We describe here a flow cytometry-based in vivo killing assay that enables examination of immunodominance in cytotoxic T lymphocyte (CTL) responses to a model tumor antigen. We provide examples of how this elegant assay may be employed for mechanistic studies and for drug efficacy testing.

腫瘍特異的 CD8+ T 細胞応答における Immunodominance を研究するためのインビボ細胞毒性アッセイ

Carboxyfluorescein succinimidyl ester (CFSE)-based in vivo cytotoxicity assays enable sensitive and accurate quantitation of CD8+ cytolytic T lymphocyte ...

Rapid In Vivo Assessment of Adjuvant's Cytotoxic T Lymphocytes Generation Capabilities for Vaccine Development

The assessment of modern sub-unit vaccines reveals that the generation of neutralizing antibodies is important but not sufficient for adjuvant selection. Therefore, adjuvants with both humoral and cellular immuno-stimulatory capabilities that are able to promote cytotoxic T lymphocytes (CTL) responses are urgently needed. Thus, faithful monitoring of adjuvant candidates that induce cross-priming and subsequently enhance CTL generation represents a crucial step in vaccine development. In here we present an application for a method that uses SIINFEKL-specific (OT-I) T cells to monitor the cross-presentation of the model antigen ovalbumin (OVA) in vivo in the presence of different adjuvant candidates. This method represents a rapid test to select adjuvants with the best cross-priming capabilities. The proliferation of CD8+ T cells is the most valuable indication of cross-priming and it is also regarded as a correlate of adjuvant-induced cross-presentation. This feature can be evaluated in different immune organs like lymph nodes and spleen. The extent of the CTL generation can also be monitored, thereby giving insights on the nature of a local (draining lymph node mainly) or a systemic response (distant lymph nodes and/or spleen). This technique further allows multiple modifications for testing drugs that can inhibit specific cross-presentation pathways and also offers the possibility to be used in different strains of conventional and genetically modified mice. In summary, the application that we present here will be useful for vaccine laboratories in industry or academia that develop or modify chemical adjuvants for vaccine research and development.

Rapid In Vivo Assessment of Adjuvant's Cytotoxic T Lymphocytes Generation Capabilities for Vaccine Development

We present here an application for a standard immunological technique (CFSE stained OT-I proliferation) intended to rapidly monitor adjuvant-mediated cytotoxic T lymphocyte (CTL) generation in vivo. This fast estimation of CTL capacities is useful for the development of prophylactic vaccines against intracellular pathogens as well as therapeutic cancer vaccines.

急速なIn Vivo評価補助の細胞傷害性 T リンパ球生成機能のワクチン開発のため

The assessment of modern sub-unit vaccines reveals that the generation of neutralizing antibodies is important but not sufficient for adjuvant selection. ...

医学

An Immunological Technique to Monitor Adjuvant-Mediated Cytotoxic T Lymphocyte Generation

Source: Lirussi, D. et al., <a href="https://app-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/v/57401">Rapid In Vivo&#160;Assessment of Adjuvant&#39;s Cytotoxic T Lymphocytes Generation Capabilities for Vaccine Development.</a> J. Vis. Exp. (2018)
The video demonstrates an immunological method to monitor in vivo adjuvant-induced cytotoxic T lymphocyte or CTL production. A mouse is pre-injected with genetically engineered, proliferative dye-stained donor CD8+ T lymphocytes. Subcutaneous injection of ovalbumin with adjuvants generates cytotoxic CD8+ T lymphocytes that are identified post-harvesting through immunostaining and flow cytometry.

アジュバント媒介性細胞傷害性Tリンパ球の生成をモニターする免疫学的手法

All procedures involving animal models have been reviewed by the local institutional animal care committee and the JoVE veterinary review board.
All mice ...

生体内で予防接種モデルを用いた抗原特異的 T 細胞細胞傷害性関数の検出のための試金

要約

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抗原特異的インビボでのキリングアッセイ

直交トピック膵腫瘍の生成と腫瘍浸潤T細胞細胞傷害のEx生体内特性評価

インビボ脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

T細胞応答の評価のための蛍光ターゲット配列の使用

ナノ粒子ワクチン接種後の抗原特異的CD8 + T細胞応答の分析のための全動物イメージングとフローサイトメトリー技術

勉強する人間の T 細胞のリコール反応体内吸引水疱プロトコル

反ベクトルと反遺伝子特定 CD8 の同時定量⁺ T はマイクウイルスベクターを用いたワクチン後染色テトラマー MHC を介して細胞

腫瘍特異的 CD8⁺ T 細胞応答における Immunodominance を研究するためのインビボ細胞毒性アッセイ

急速なIn Vivo評価補助の細胞傷害性 T リンパ球生成機能のワクチン開発のため

アジュバント媒介性細胞傷害性Tリンパ球の生成をモニターする免疫学的手法

生体内で予防接種モデルを用いた抗原特異的 T 細胞細胞傷害性関数の検出のための試金

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抗原特異的インビボでのキリングアッセイ

直交トピック膵腫瘍の生成と腫瘍浸潤T細胞細胞傷害のEx生体内特性評価

インビボ 脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

T細胞応答の評価のための蛍光ターゲット配列の使用

ナノ粒子ワクチン接種後の抗原特異的CD8 + T細胞応答の分析のための全動物イメージングとフローサイトメトリー技術

勉強する人間の T 細胞のリコール反応体内吸引水疱プロトコル

反ベクトルと反遺伝子特定 CD8 の同時定量+ T はマイク ウイルスベクターを用いたワクチン後染色テトラマー MHC を介して細胞

腫瘍特異的 CD8+ T 細胞応答における Immunodominance を研究するためのインビボ細胞毒性アッセイ

急速なIn Vivo評価補助の細胞傷害性 T リンパ球生成機能のワクチン開発のため

アジュバント媒介性細胞傷害性Tリンパ球の生成をモニターする免疫学的手法

インビボ脾臓T細胞のフローサイトメトリーによる腫瘍由来細胞外小胞の免疫原性スクリーニング

反ベクトルと反遺伝子特定 CD8 の同時定量⁺ T はマイクウイルスベクターを用いたワクチン後染色テトラマー MHC を介して細胞

腫瘍特異的 CD8⁺ T 細胞応答における Immunodominance を研究するためのインビボ細胞毒性アッセイ