Name: the fibular nerve injury method: a reliable assay to identify and test factors that repair neuromuscular junctions
Uploaded: 2016-08-11T15:00:00.000+00:00
Duration: 6 min 1 s
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The authors thank members of the Valdez laboratory for intellectual input on experiments and comments on the manuscript.

全ての実験は、NIHガイドラインとバージニア工科大学施設内動物管理使用委員会によって承認された動物プロトコルの下で行いました。 外科1.準備動物<ol><li>滅菌した1 mlのインスリンシリンジで、皮下鼠径注射ケタミンの混合物（90ミリグラム/ kg）およびキシラジン（10mg / kg）でマウスを麻酔。キャリア溶液は、0.9％生理食塩水、17.4 mg / mlでケタミン、および2.6 mg / mlとキシラジンの混合物が含まれています。有効にする薬を待っている間にケージに戻って動物を置きます。 注：負荷用量は処置の持続時間のために十分な麻酔を提供しない場合は、負荷用量の追加の25％が注入されてもよいです。 </li><li>モニターの動物は着実に呼吸数と覚醒レベルの適切なうつ病をチェックするために注射を投稿してください。十分に麻酔をかけたときに何の応答を惹起してはならない後足のピンチで覚醒レベルを確認します。 注：これは通常3-5かかります25〜30グラムを平均し、若い成体マウス分間。動物は、10分後の注射後も応答する場合、麻酔負荷用量の追加の25％が注入されてもよいです。 </li><li>乾燥を防ぐために動物の目にワセリンと軽鉱油眼軟膏を適用します。ケージから動物を取り外し、きれいな、平らな面に置きます。手足の唯一の外側面を露出させ、電気ヘアトリマーを使用して、骨盤に足から所望の後肢を剃ります。 </li><li> 1分間剃らサイトに化学脱毛剤を適用します。手動の実験室ワイプを使用して髪を削除します。実験室できれいに脱毛エリアをエタノールに浸したワイプ。 </li></ol> 2.外科的手順<ol><li>オートクレーブまたは他の適切なメソッドを介して手術器具を滅菌します。 80％エタノール/ H 2 0と、手術部位や手術用ボードを清掃してください。 proviodineで手術部位を消毒します。手術用ボード上にマウスを置き、手足の拘束と合わせます。キープ膝関節と解剖学的に自然な位置にターゲット後肢がわずかに内部または外部回転させずに拡張しました。 </li><li>手術用顕微鏡下で動物とボードを置きます。表面的なランドマークの触診、特に骨膝関節と前脛骨筋と腓腹筋の筋肉の間の尾根を経由して、適切な切開部位へのオリエント。 </li><li>把持するための一般的な鉗子を使用しながら、メスやスプリングはさみを使って皮膚を介して約3cmの切開を行います。共通の腓骨神経の基礎となるコースに垂直切開を行います。 </li><li>大腿二頭筋と外側広筋の筋肉を露出させ、浅筋膜を通して切開を続けます。接続深い筋膜を切断することにより、これらの筋肉を分離します。 1〜2センチメートルカットが十分でなければなりません。 </li><li>上腕二頭筋を撤回共通腓骨神経を明らかにし、機械的なリトラクターを使って尾側筋肉大腿。 </li><li>そのインターまで近位に神経をトレース腓腹筋の外側頭の腱を持つセクションが発見されました。注：暴露は後退し、皮膚と筋肉の追加の操作が必要な場合があります。この交点は、神経損傷のための安定したランドマークとして使用されます。 </li><li>腓腹筋腱の外側縁に平行にヒントを合わせて、細かい鉗子で神経をつかみます。 5秒間安定し、ハード圧力を加えることにより、共通の腓骨神経をつぶします。 </li><li>外科手術用スコープを通して目視検査で神経の完全なクラッシュを裏付けます。これは、損傷部位で半透明表示されます。末梢軸索内の蛍光タンパク質を発現するマウスを使用している場合、蛍光が損傷部位から消えます。 </li><li>開創器を取り外し、その解剖学的位置に筋肉を再調整。 6-0絹縫合糸で切開部位を閉じます。 1-3単純結節縫合で十分です。クリーンケージ内の加熱パッド上療養マウスを置きます。 </li><li> 2時間後にオペラのためのすべての動物を監視しますションは、呼吸や麻酔への副作用をチェックします。すぐに手術からの回復次の皮下鼠径部の注射を介してブプレノルフィン0.05から0.10まで10mg / kgの初期用量を投与。 3追加の用量次の48時間にわたって12時間毎に与えます。完全に回復した後、動物のケア施設にマウスを返します。 </li></ol> 3.単離と染色伸展のDigitorum長い（EDL）筋肉<ol><li>イソフルランを使用して動物を生け贄に捧げます。吸収性labwipesを詰めた50ミリリットルチューブに0.5ミリリットルに液体イソフルランを分注します。密封された2500センチメートル3チャンバー内の動物でキャップされていないチューブを置きます。曝露の少なくとも4分で十分です。二国間の眼瞼、つま先のピンチ、およびテールピンチ反射の損失のための試験各動物は灌流を続行する前に、無意識であることを保証します。 </li><li>経最初の10mLの0.1M PBSで16匹の動物を灌流し、0.1M PBS（pH7.4）中の4％パラホルムアルデヒドを25ml。ヘパリン（30単位/ 20G動物の体重）の灌流の結果を向上させる、小さな毛細血管床に血液凝固を防ぐために、（10単位/ ml）のPBSを添加してもよいです。 </li><li>腹部の周囲の皮膚を通って横方向にカットするはさみを使用して、後肢を覆っている皮膚を取り除きます。ピンセットを用いて、後肢と足を過ぎて皮膚をピールダウン。 </li><li>把持鉗子で剥がして後肢の浅筋膜を削除します。末梢軸索内の蛍光タンパク質を発現するマウスを使用している場合は、50mlチューブに4％PFA中で一晩全体のマウスをポスト修正。 PBSで3回洗浄します。 注：固定したマウスは、4℃でPBS中に保存することができます。ない場合は、このステップをスキップし、定着後の動物せず3.6に進みます。 </li><li>できるだけ無傷の近位および遠位腱を維持することを確認され、マウス後肢からEDL筋18を解剖。 </li><li>少なくとも1時間、緩衝液（0.5％トリトンX-100を、3％BSAおよび5％ヤギ血清を含む1×PBS）でブロッキングEDL筋をインキュベートします。 </li><liシナプトタグミン-2（1：250）3日間ブロッキング緩衝液中に希釈した抗体：&gt;ニューロフィラメント（千1）を含有する試験管に運動軸索とその神経終末、場所の筋肉を可視化するために。筋肉を1×PBSで3回、10分毎の時間を洗ってください。注：末梢軸索内の蛍光タンパク質（XFP）を発現するマウスを使用している場合、この手順を省略してください。 </li><li>完全なNMJの神経支配のための陽性対照として、反対無傷EDLを染色します。陰性対照は、4日後の傷害、NMJが完全に除神経された時点で得られEDLだけでなく、二次抗体のみで染色したEDLを含める必要があります。 </li><li> 1日のニューロフィラメントおよびシナプトタグミン-2を検出するために、適切な蛍光タグ付けされた二次抗体を用いて筋肉をインキュベートします。筋肉を1×PBSで3回、10分毎の時間を洗ってください。注：このステップは、ステップ3.10と一緒に行うことができます。末梢軸索内の蛍光タンパク質を発現するマウスを使用している場合、この手順を省略してください。 </li><li> postsyを可視化するために、NMJのnaptic領域は、5μg/ mlの少なくとも2時間、ブロッキング緩衝液中に希釈したアレクサ555共役アルファ - ブンガロトキシンで筋肉をインキュベートします。筋肉を1×PBSで3回、10分毎の時間を洗ってください。 </li><li>正に荷電したガラススライド上に全体の筋肉をマウントするには、スライド上のメディアをマウントベースグリセロールの数滴を追加し、カバーガラスで覆い、スライド上に直接筋肉を置きます。筋肉を平らにするスライドに対してカバーガラスを押してください。実験用ワイプを使用してスライドとカバーガラスの周囲から取り付けメディアをオフに浸します。カバースリップとスライドの間のエッジをシールするためにマニキュアを適用します。 </li></ol> 4.イメージングとデータ解析<ol><li> NMJ、画像488、555および633 nmの光を励起し、20X及び40Xの目的で放出された光を捕捉するように装備共焦点レーザー走査顕微鏡を用いてEDL筋の構造を解析します。 </li><li>全体のNMJを視覚化するために、光秒の最大値投影画像を作成しますションは離れてNMJのに最高の可視領域の最下位から伸びる1〜2μmで間隔をあけ。市販のイメージングソフトウェアを使用して、最大強度の投影を作成します。 </li><li> 1）完全に除神経=シナプス後部位が軸索とAChRs間の軸索と接触し、5％未満の共局在を完全に欠いている：として神経再生の速度を決定するために、のNMJを分類。 2）部分的に神経支配=軸索は、部分的に軸索とAChRs間postsynapse 5〜95％の共局在と重なります。 3）全神経支配=前後シナプス間のほぼ完全な同格、軸索とAChRsの間、95％を超える共局在。撮像面に対して垂直に位置するか、完全に画像で視覚化されていないのNMJを除外します。注：すべてのこれらの実験では、少なくとも3匹の動物および動物あたり50のNMJを調べました。結果は、0.05未満のP値はスチューデントt検定を用いて有意とみなしました。 </li><li>演算子を盲目にするには、別々の個人が実行することができます手術および画像解析。治療群の知識がなくても、アナライザは、NMJの得点と客観することができます。代替的に、画像はランダム化原料動物の知識なしに分析のためにオペレータに提示することができます。 </li></ol> 5.定量PCR <ol><li>イソフルランと頸椎脱臼を使用して動物を生け贄に捧げます。皮膚とステップ3.3に応じて足の筋肉を覆う浅筋膜を削除します。 3.4段階に応じて前脛骨とEDL筋肉を解剖。 </li><li> Flashは、液体窒素に対する1.5mlチューブ全体の前脛骨とEDL筋肉を凍結します。部分的に液体窒素中に沈め予め冷却乳鉢でチューブと場所から組織を削除します。乳鉢と乳棒を用いて微粉末に凍結された筋肉を挽きます。 </li><li>市販のRNA抽出試薬に凍結筋肉粉末を溶解し、市販のキットを製造業者のIに従っててRNA抽出およびゲノムDNAの除去を行いますnstructions。 </li><li>製造元の説明書に従って市販の逆転写酵素ミ​​ックスを用いて逆転写を行います。 </li><li> （材料の表を参照）、適切なハウスキーピング遺伝子を用いて、市販のキットを用いて定量PCRを実行します。 （材料の表を参照）、PCRを実施するために、市販の定量的PCRサーマルサイクラーを使用してください。 </li><li> 58℃に設定し、アニール温度。 Taqポリメラーゼ/ SYBRグリーンミックスの製造業者の仕様書に追加のサイクリングパラメーターを調整します。プライマー特異性についてテストし、プライマーダイマー形成するために95℃まで65℃から0.5℃の増分増加からなるサーマルサイクラープログラムの最終融解曲線ステップを含みます。 </li><li>コントロール遺伝子として18S RNAを用いて、ΔΔCT法 21から2による相対mRNA発現レベルを決定します。 </li></ol>

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The authors have nothing to disclose.

この原稿に提示された方法は、神経筋接合部（NMJ）の修復に関与するメカニズムを識別するためのユニークな機会を提供しています。それは膝の近くに腓腹筋腱上を通過するように、この方法は、共通の腓骨神経を破砕することを含みます。私たちは、ピンセットで神経圧迫のわずか5秒後に、完全な変性は、損傷後4日までに指摘されていることを示しています。若い成体マウスでは、アルファモーター軸索は12日までに損傷していないマウスのものと区別できないシナプス前部位の改革で最高潮に達する、損傷後7日目に長指伸筋筋（EDL）の前のシナプス部位を神経再支配し始めます。加えて、我々は選択NMJ関連分子のレベルが密接にNMJの神経支配の状況と相関することを示しています。重要なことは、これらの細胞および分子の変化は、識別するための機会とTESを提供し、同じ性別と年齢（ 図5a-B）の動物間で高度に再現可能ですNMJを修復するように作用するT因子。それは周囲の筋肉や血管系にはほとんど損傷をもたらすだけ小さな切開を必要とする、腓腹筋腱上を通過する外科的手技の面では、共通の腓骨神経枝は非常にアクセス可能です。 再生のNMJに関連する細胞および分子の変化を調べるために、共通の腓骨神経を使用する利点は多数あります。腓腹筋腱は、一貫して、ターゲットの筋肉から同じ位置との距離に共通腓骨神経を傷つけるために安定した解剖学的ランドマークとして機能します。これは、確実に、軸索と同じ年齢および性別の動物間筋の再神経支配の再生の速度を比較することができます。このような成功への重要なステップは、完全な神経挫滅は、すべての動物で得られ、かつ最小限の損傷が周囲の構造に維持され、損傷部位は、手術の間に一貫性があることを確実にすることが含まれます。 cで神経支配筋のうち、腓骨神経ommon、前脛骨（TA）および長指伸筋（EDL）筋肉はNMJ修復を評価するための優れた標的です。これら二つの筋肉は主に深刻な損傷、加齢や疾病5の影響を受けている高速タイプの筋線維で構成されています。全体に取り付けられた歪みなしですべてのNMJの画像にすることができるためNMJ分析のために、EDL筋は、特に魅力的です。また、筋線維、運動軸索および周囲の細胞中の他の場所の変化とのNMJでの変化を相関させることができます。 TAとEDL筋が広く、それらの解剖学的位置20の筋肉とNMJ修理上の異なる分子やライフスタイル介入の影響を評価するために使用されています。しかし、長期的除神経は、それがより困難細胞および分子のCHを評価すること、筋線維、活性化免疫細胞、衛星細胞の12-14萎縮に重要な機能を有する遺伝子の発現を変化させます特にのNMJの再生を促進するために必要なアンジェス。ここで説明する方法では腓骨神経は、神経は、若い成体マウスにおける7日後のクラッシュ内でそれらに到達することを可能にする、TAおよびEDL筋に近接して粉砕します。したがって、この方法は、筋肉量とTAとEDL筋肉の萎縮筋線維に関連する分子の変化の損失を最小限に抑える必要があります。 腓骨神経圧挫プロトコルは、複数の異なる様式で修飾することができます。神経切断損傷は容易に、末梢神経再生のインビボイメージングにおけるより良いリアルタイムのを可能にする、クラッシュのために置換することができます。カットは、再成長のための障害物として死んだ軸索材料を除去し、神経内膜チューブ内のすべての軸索の均質なダメージを保証します。 正しく実行すると腓骨神経粉砕は、いくつかの関連する合併症を持っています。遭遇することができた一つの問題は、元のNMJ目標を神経再支配する神経の障害です。これは、ACCが原因で発生することができ手術中に神経の損傷をカットidental。任意のシャープなエッジのために先の細い破砕鉗子を確認してください。手術中の任意の時点で神経挫滅の品質が疑わしい場合には、元の切開は、より良好な神経を可視化するために広げることができます。これは傷の大きさを増大させ、付加的な構造に損傷を与えることができますが、それは正しく腓骨神経を識別し、完全なクラッシュが達成されたかどうかを評価するに役立つことができます。 ここに記載された技術は、いくつかの制限を持って行います。これらの動物における構造を操作するのに十分な大きさであるように、まず、それが成体マウスにおいて主に有用です。新生児と思春期のマウスが大幅に手術の難易度が高く、非常に小さいです。第二に、腓骨神経はNMJ再生の速度に影響を与える可能性が標的組織の脱神経で、その結果、感覚と運動軸索が含まれています。 NMJは、筋萎縮性側索緯度における病理の焦点サイトとして認識されていますERAL硬化症（ALS）と老化。また、運動能力を損なうと筋肉量を失うことを避けるために、末梢神経への損傷後の修復することがあります。腓骨神経挫滅方法は、NMJの修復に重要な役割を有する分子の同定および試験に役立つはずです。 1つのアプローチでは、この方法は、RNAの配列分析を使用して、NMJの再生の様々な段階で重要な役割を有するmRNAおよびマイクロRNAのプロファイルを使用することができます。また、選択的に導入され、筋肉から削除候補遺伝子の機能を決定するために適用することができます。また、この方法は、静的およびライブイメージングを用いて、神経とNMJ再生を高速化する外因性分子の能力を試験によく適しています。

In young adult and healthy animals, the neuromuscular junction (NMJ) is a highly stable connection between the presynapse, the nerve ending of an &#945;-motor axon, and the postsynapse, the specialized region of an extrafusal muscle fiber where nicotinic acetylcholine receptors (AChRs) selectively aggregate1. The nearly perfect apposition of the pre- and post-synaptic apparatuses is necessary for proper neurotransmission, survival of &#945;-motor neurons and muscle fibers and motor function. Unfortunately, the function of the NMJ is adversely affected by aging, diseases such as amyotrophic lateral sclerosis (ALS), autoimmune diseases and injury to muscles and peripheral nerves2-5. These insults often result in degeneration of presynaptic nerve endings, leaving muscles denervated and significantly altering motor skills. For this reason, the identification of molecules that function to maintain and repair the NMJ has become a priority. Because peripheral nerves regenerate and reinnervate targets, peripheral nerve injury models have been used to identify molecular changes associated with regenerating NMJs. 
Peripheral nerve injury models often involve either completely cutting or crushing specific nerve branches6. Following a cut, the endoneurial tube has to be reformed, delaying axonal regeneration and reinnervation of target cells and tissues. The severity of this type of injury also causes axons to meander away from their original path, resulting in their failure to reach original targets. This is in contrast to nerves injured via crush where the endoneurium remains contiguous, providing a path for efficient and proper regrowth of regenerating axons. It also allows axons to find and reinnervate their original muscle fiber partners. Irrespective of injury model, there are a number of cellular and molecular changes that must occur for axons to regenerate and reinnervate targets. After an injury, the nerve segment proximal to the target is broken down and removed via a process termed Wallerian Degeneration7. This process involves reprogramming and de-differentiation of Schwann cells into non-myelinating cells that secrete regenerative factors, clear myelin, and recruit macrophages to the site of injury8. Macrophages in turn complete the clearance of myelin and axonal debris, which would otherwise impede growth of the regenerating axon9. In parallel, motor and sensory neurons activate mechanisms needed to promote regeneration of their severed axons. Once the regenerating axon reaches the target, it must transform from a growth cone to a nerve ending capable of properly transmitting (for motor axons) or receiving (for sensory axons) information10. In this regard, alpha-motor axons undergo a series of well-orchestrated changes that culminate in their growth cone differentiating into a fully functional presynaptic nerve ending that nearly perfectly opposes the post-synaptic site on the target muscle fiber11. 
The sciatic, tibial and accessory nerves have been the primary choices for studying axonal and NMJ regeneration12-14. However, there are a number of drawbacks when using these models to examine cellular and molecular changes associated with regenerating NMJs between animals and under different conditions. Firstly, the sciatic nerve supplies the majority of the muscles of the hind limb, with injury significantly limiting both movement and sensation. It is therefore not possible to use this method to study the impact of exercise alone or in combination with other factors. Additionally, the sciatic nerve is a rather thick structure and thus requires a large amount of compressive force to fully injure all axons. This in turn may result in complete transection of the more superficial axons while leaving the endoneurial tube of deeper lying axons intact, introducing significant variability in the rate and fidelity of regeneration among these axons. Complete transection of this nerve is even less desirable given that many axons will fail to reconnect with the same muscle fibers. Complicating matters, the sciatic nerve possesses intrinsic anatomic variability, both in the number and site of origin of its terminal nerve branches. It is therefore very difficult to lesion the same site. While the tibial nerve is smaller and more amenable to crush injuries, there is also no readily available landmark to serve as a lesion site for this nerve branch. 
The accessory nerve branch (part of cranial nerve XI) that supplies the sternocleidomastoid muscle has also been used to study regeneration of NMJs15. This nerve is particularly attractive because NMJs in the sternocleidomastoid muscle can be more readily imaged in live animals compared to NMJs in other muscles. But similar to the sciatic and tibial nerves, there is no specific landmark that can be used to injure this nerve in the same location, limiting it as a model for comparing regeneration of NMJs among individual animals of an experimental cohort. An inconsistent lesion site introduces variability in the rates of NMJ reinnervation. Due to these shortcomings, the procedure presented here utilizes the injury of a different peripheral nerve branch to examine regenerating NMJs. 
The common fibular nerve, also called the common peroneal nerve, contains many features that make it a reliable nerve to examine regeneration of NMJs between animals and across different treatments. The common fibular nerve has a predictable anatomic course as it runs over the tendon of the lateral head of the gastrocnemius muscle in the knee, the intersection serving as a stable landmark for lesions. The nerve is accessed through a small and minimally invasive incision near but anatomically segregated from the muscles of interest. The findings presented here demonstrate that regenerating motor axons begin to reform NMJs in the extensor digitorum longus (EDL) muscle 8 days after crushing the fibular nerve in 70 days old young adult female mice. Importantly, the pattern and rate of reinnervation is consistent among animals of the same age and sex and therefore provide a reliable injury model that will significantly hasten our understanding of the cellular and molecular changes required to maintain and repair NMJs.

<table><tbody><tr><td>Ketamine</td><td>VetOne</td><td>501072</td><td></td></tr><tr><td>Xylazine</td><td>Lloyd Inc.&amp;nbsp;</td><td>003437&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorphine</td><td>&amp;nbsp;Zoopharm</td><td>1Z-73000-150910&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Nair</td><td>Nair</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Kim-wipes</td><td>Kimtech</td><td>34155</td><td></td></tr><tr><td>Electric Razor</td><td>Braintree Scientific</td><td>CLP-64800</td><td></td></tr><tr><td>80% EtOH/H&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;0</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10% Proviodine</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 ml Insulin Syringe</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Spring Scissors</td><td>Vannas</td><td>91500-09</td><td></td></tr><tr><td>No. 15 scalpel</td><td>Braintree Scientific</td><td>SSS 15</td><td></td></tr><tr><td>#5 Forceps</td><td>Dumont</td><td>11252-00</td><td></td></tr><tr><td>6-0 silk suture on reverse cutting needle</td><td>&amp;nbsp;Suture Express</td><td>752B&amp;nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Rodent Heating Pad</td><td>Braintree Scientific</td><td>AP-R-18.5</td><td></td></tr><tr><td>Alexa 555 conjugated alpha-BTX</td><td>Molecular Probes</td><td>B35451</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Vector Labs</td><td>H-1000</td><td></td></tr><tr><td>Olympus Stereo Zoom Microscope</td><td>Olympus</td><td>562037192</td><td></td></tr><tr><td>Zeiss 700 Confocal Microscope</td><td>Zeiss</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Variable-flow peristaltic perfusion pump</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-876-3</td><td></td></tr><tr><td>Aurum Total RNA Mini Kit</td><td>Bio-Rad</td><td>7326820</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rad iScript RT Supermix</td><td>Bio-Rad</td><td>1708840</td><td></td></tr><tr><td>SsoFast Evagreen Supermix</td><td>Bio-Rad</td><td>1725200</td><td></td></tr><tr><td>Bio-Rad CFX96</td><td>Bio-Rad</td><td>1855196</td><td></td></tr><tr><td>Puralube Vet ointment</td><td>Puralube</td><td>1621</td><td></td></tr><tr><td>Synaptotagmin-2 antibody</td><td>Antibodies-Online</td><td>ABIN401605</td><td></td></tr><tr><td>Neurofilament antibody</td><td>Antibodies-Online</td><td>ABIN2475842</td><td></td></tr></tbody></table>

the fibular nerve injury method: a reliable assay to identify and test factors that repair neuromuscular junctions

神経筋接合部（NMJ）が加齢、損傷および疾患の結果として有害な構造的および機能的変化を受けます。したがって、のNMJの維持及び修復に関与する細胞および分子の変化を把握することが不可欠です。この目的のために、我々は、確実かつ一貫してマウスでのNMJの再生検査する方法を開発しました。それは膝の近くに腓腹筋腱の外側頭の上を通過するように、この神経損傷の方法は、共通の腓骨神経を破砕することを含みます。 70日齢の雌のマウスを使用して、我々は運動軸索がポストクラッシュ7日以内に、前シナプス後の標的を神経再支配し始めることを示しています。彼らは完全に12日までに、以前のシナプス領域を再占拠します。この傷害の方法の信頼性を決定するために、我々は個々の70日齢の雌マウスとの間神経再支配率を比較しました。我々はreinnervatedシナプス後サイトの数は7、9でマウスの間で類似していたことがわかった、と12日後にクラッシュ。かどうかを確認するにはこの傷害アッセイはまた、筋肉の分子の変化を比較するために使用することができ、我々は、筋肉ニコチン性受容体（γ-のAChR）および筋特異的キナーゼ（ムスク）のγサブユニットのレベルを調べました。ガンマのAChRサブユニットとムスクは非常に次の除神経をアップレギュレートし、のNMJの再神経支配次の通常のレベルに戻っているします。我々は、これらの遺伝子と筋肉の神経支配の状態のための転写レベルの間の密接な関係を発見しました。我々は、このメソッドはNMJや他のシナプスを修復に関与する細胞および分子変化の我々の理解を加速すると考えています。

共通腓骨神経は、また、総腓骨神経と呼ばれる、それは脚部（ 図1A）の前方側面に腓骨の頭の周りに揺動膝窩、上記の坐骨神経から生じます。そこに浅と深い腓骨神経に分岐し、一緒に（前脛骨筋、長指伸筋とブレビス、および伸筋halluces長い筋）足の背屈筋とつま先を供給し、足のeverters（腓骨筋）。この神経はまた、足の甲と足の下半分の外側面に突出感覚線維を運びます。それは、運動および感覚軸索から成る比較的薄い構造です。この神経枝は、予測可能な解剖学的経過をたどります。それは腓腹筋（ 図1および図2）の外側頭の腱上で実行されるように膝に横方向、神経は主に表面的です。目場所は容易に皮膚および筋膜（ 図1A）への損傷を制限し、小さな切開で到達することができ安定したランドマークとして機能しています。坐骨及び脛骨神経に比較して、この神経の小さい直径は、完全より表面軸索を切断する可能性を減少させる、より少ない力を使用して、すべての軸索を粉砕することができます。 ニューロンのみ17で黄色蛍光タンパク質（YFP）を発現するマウスは、共通の腓骨神経の挫滅手順を最適化し、明確再生軸索を可視化するために使用されました。このサイトは、切開の位置からよりアクセス可能であるため、神経をターゲットの筋肉に最も近い腓腹筋腱の縁で粉砕しました。このサイトには、同じ年齢および性別の動物の間でのNMJの再生を比較することが可能となる、信頼性の高い解剖学的ランドマークとして機能します。細かい鉗子解像度を使用して5秒間神経を圧迫損傷部位（ 図2B）からのYFPの消失でults。しかし、結合組織および神経上膜に存在する細胞は、それらの元のターゲット（ 図2B）への軸索の迅速かつ正確な再生のための導管として、連続したまま。 70日齢の雌マウスでは、この傷害は、神経細胞体（ 図4B）から遠位のすべての軸索セグメントの変性を引き起こすのに十分です。 この傷害法の信頼性と再現性を決定するために、長指伸筋（EDL）筋肉の再神経支配を調べました。この筋肉は、いくつかの理由のために選択した：1）は、近位まだ物理的に切開し、神経損傷部位（ 図3A）から分離されます。したがって、筋肉だけ切断神経支配軸索の変性によって変更されます。圧潰部位への接近は、reinnervatedおよび筋肉atrophするために必要な時間を最小化しますY。 2）それは、主に老化と疾病の影響を受けやすい高速型骨格筋線維で構成されています。 3）そののNMJは、運動とカロリー制限によって減衰させることができる病気や老化の進行の間に有意な構造変化を受けます。 4）それは、ライブイメージングと分子操作（ 図3D）のために容易にアクセス可能です。 5）これは、容易にその神経支配の軸索とその接続のすべてが光学顕微鏡（ 図3B）を用いて完全にイメージすることが可能となる全マウントすることができ、その4つの指節成分に分離することができます。 右足の腓骨神経を破砕した後、以前に空いたポストシナプス部位の再神経支配は、モータ軸索にYFPを発現している3 70日齢の雌マウスで評価しました。シナプス後部位を蛍光筋肉NACに選択的かつ高親和性で結合するαブンガロトキシン（BTX）を、タグ付けされたを使用して可視化しましたHRS。筋肉が、除神経されたものとみなさ部分的または完全にこれらの基準以下reinnervatedた：1）除神経筋線維では、モータの軸索は完全にシナプス後部位から欠落していたと軸索とAChRs間の5％未満の共局在が観察されました。 2）部分的に神経支配筋線維は軸索とAChRs間のシナプス後部位および5から95パーセントの共局在と運動軸索の不完全な並置が、いくつかによって分類されたが観察されました。 3）完全に神経支配筋線維では、軸索とAChRsが観察された間の運動神経終末とシナプス後部位と95％を超える共局在の間ほぼ完全な並置がありました。自分のエンドプレートは、撮像面に垂直に置くか、全体NMJが可視化されなかった場合は、個々のNMJはカウントから除外しました。これらの基準を用いて、神経再生の速度と程度の高い一致を調べ、すべてのマウスの間で観察されました。 4日後にクラッシュでは、筋肉はすべての動物のエクサで完全に除神経発見されました採掘された（ 図4B）。この発見は、上記のように、5秒間の共通腓骨神経を破砕は、すべての軸索を切断するのに十分であることを示しています。 7日後に破砕することにより、神経終末は、以前に空いたポストシナプス部位（ 図4C、4E-F） を reoccupyingの過程にありました。しかし、ほとんどの筋線維は、まだ部分的にしか支配が見出されました。追加日後にクラッシュすると、神経終末がシナプス前部位とのNMJに分化し続け、完全に12日間（ 図4D、4E-F）によってreinnervated発見されました。重要なことは、マウスの間ではほとんど変動は、腓骨神経を破砕すると、同じ年齢および性別の動物の間の筋肉の再支配を比較するためのアッセイとして使用することができることを実証し、同じ長さの時間（ 図4E-F）のための除神経がありました。 忠実に動物との間で再生のNMJを比較する能力は、機会を提供します完全にこのシナプスを修復するために必要な各ステップに関連した細胞の特徴を理解します。神経再生の速度を比較するために上記で使用し70日齢マウスから除神経と再生のNMJの構造を調べるために、のNMJの高解像度の共焦点顕微鏡画像が得られました。予想されたように、この分析は、彼らが筋線維（ 図4G-I）の神経再支配としてα-運動軸索神経終末に起こる変化の数を明らかにしました。軸索成長円錐は、彼らがシナプス後部位（ 図 4G）に連絡のように分岐するように拡張し始めるように見えます。これらの軸索の枝は、その後、シナプス後部位（ 図4H-I）で終わる軸索神経のほぼ完全な並置で最高潮に達する、postsynapseの特定の領域の上に成長します。開発中に見られるものが秒間競合する複数の軸索を含む、観察された非常に似ている運動神経終末の再生中に追加の構造的特徴唯一の軸索で最高潮に達する雨ターゲット（ 図4H）は 、ポストクラッシュ12日までに1筋線維を支配します。さらに、もやしのようにここでいうシナプス後部位、を越えて延びる軸索の枝は、全く損傷後は（ 図4I）が観察されたステージ。これらの芽があっても、軸索修復の最終段階はextrajunctional軸索の枝の後退を伴うことを示唆している、完全に神経支配のNMJで、非常に流行していました。神経終末でのこれらの明らかな変化にもかかわらず、シナプス後サイトは、筋線維が完全に除神経発見された場合、ポストクラッシュ4日目を含む無傷の筋肉のものと比較して、すべてのステージ、損傷後で、ほとんど見分けがつかないままでした。 AChRsの余分なシナプス領域への断片化または重大な損失と再分配の明らかな兆候はありませんでした。これらの知見は、腓骨神経挫滅法は、分子、薬理学的およびライフスタイル介入Tを特定し、試験するためのアッセイとして使用され得ることを示します帽子はNMJを含む、シナプスで神経終末の修復を促進します。 最近の進歩にもかかわらず、非常に小さな進歩が必要とNMJを維持し、修復するのに十分な筋肉由来の因子を同定してなされたもの。共通腓骨神経損傷方法は、神経再生プロセスの特定の段階で及びNMJを修復における潜在的な役割に変更する分子を同定するために使用することができる場合、そこで尋ね。プリンシパルの証明二NMJ関連遺伝子の発現解析のAChRのガンマサブユニットおよび筋肉特異的キナーゼとして、ムスク18を行いました。定量的PCRを用いて実証されたように、これらの遺伝子は、除神経の後に増加しているとのNMJは、（ 図5A-B）を reinnervatedされる減少しました。以前に完全に除神経筋19を使用して報告されているように、これらの遺伝子は、4日後にクラッシュでアップレギュレートされます。神経神経再支配、筋線維のように、これらの遺伝子のレベルが減少し、RAPIDLYにベースラインに戻ります。調べた動物の中でも、両方の遺伝子についての発現パターンは、再生のNMJでの分子と細胞の変化との間の密接な相関関係を実証し、ほぼ同一です。したがって、この方法はNMJ再生の異なる段階に関連した分子の変化を識別するためのユニークな機会を提供しています。 <img alt="図1" src="/files/ftp_upload/54186/54186fig1.jpg" /> 図1： 一般的な腓骨神経解剖学 （A）は概略坐骨神経のコースと表面的と骨のランドマークとの関係でその末端枝を詳述。 SCN =坐骨神経、TN =脛骨神経、SRN =腓腹神経、CPN =共通腓骨神経、SPN =浅腓骨神経、DPN =ディープ腓骨神経。所望の切開部位が示されています。削除皮膚と周囲の筋肉に関連した共通の腓骨神経の場所の（B）図。相対的な切開部位は、投資筋膜の上にある示されています。 TA =前脛骨筋EDL =伸筋Digitorum長い筋肉。 （C）露出坐骨と共通腓骨神経。 CPNは、膝のレベルでの腓腹筋（GN）腱を横切ります。示さ腱に比べてクラッシュサイト。 <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54186/54186fig1large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図2" src="/files/ftp_upload/54186/54186fig2.jpg" /> 図2：共通腓骨神経挫滅手術は、（A）最初の切開の長さは数cmである必要があります。皮膚や表在筋膜を貫通した後、切開部は大腿二頭筋とTA筋の間にある投資/深い筋膜を介して継続する必要があります。 （A1）、共通の腓骨神経を簡単に顕微鏡トンせずに可視化されます切開（GN =腓腹筋）hrough。切開は、（のみ、写真の目的のために必要な）広くされている場合（A2）共通腓骨神経及び腓腹筋腱の交点を容易に可視化することができます。クラッシュは、Gnの腱に神経と並列に垂直な赤線でマークされた場所に配置する必要があります。 （B）CPNは一層容易に蛍光解剖スコープの下でYFPトランスジェニックマウスを用いて可視化されます。 （B1）神経は完全な圧挫損傷を事前に確認でき、クラッシュのサイトで蛍光を失います。 （B2）フルCPNクラッシュはまだ肉眼や部屋の照明で可視化することができます。神経は半透明になります。この画像は、同時に近くの組織および血管への損傷を制限しながらCPNの神経上膜と上部構造が無傷のままであるという事実を強調しています。この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。 <img alt="図3" src="/files/ftp_upload/54186/54186fig3.jpg" /> 図 3： 伸筋Digitorum長い（EDL）筋の解剖学 （A）マウスの後肢の骨に関連したEDLの3次元画像。 JAtlasView（B）部分的に切開したEDL筋その4趾骨部門に分離し、各部門によって制御される数字をマーキングを使用して生成されます。それは二桁目を制御EDL部門のエンドプレートのバンドを神経支配するように（C）YFPは深い腓骨神経の枝のラベル。 （D）軸索の枝とその接触部位が容易に選択のNMJの一貫性の検査を可能にする、識別することができます。 <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54186/54186fig3large.jpg" target="_blank">拡大版のOを表示するには、こちらをクリックしてください。</a>この図F。 <img alt="図4" src="/files/ftp_upload/54186/54186fig4.jpg" /> 図4： 同じ年齢および性別の動物間の再神経支配の同様の料金のNMJの分析EDL筋における腓骨神経を破砕した後。 （A）ポストシナプス部位が完全に損傷していないマウスでは軸索によって占有されています。 （B）4日後にクラッシュで、筋肉が完全に除神経発見されました。 （C）軸索は、ポストクラッシュおよび（D）完全に12日によってシナプス後サイトを再占拠する7日間の筋肉を神経再支配し始めます。 （E - F）は 、同じ時間の長さのための除神経NMJの再占有率は動物の間ほぼ見分けがつきません。 （G - I）成熟したシナプス前部位への再分化する軸索神経終末の代表的な画像。シナプス後部位の再占領が続きます予測可能なパターンは、最終的には完全に開発にNMJ region.Similarを越えて延びることなく、後シナプス部位を占める枝を開発する成長円錐で始まる、シナプス後部位は、最初に、複数の再成長軸索によって神経支配されているが、NMJが完全に再生した後にのみ1軸索が残っています。 （H）あふれんばかりの軸索発芽、示された複数の軸索によってフルプレとシナプス後装置間のオーバーラップ、および神経支配のない部分の神経支配の例を。 70日齢の雌マウスを調べました。スケールバー=50μmの （AD）、20ミクロン（GI）。エラーバー= SEM。 N = 3匹。 <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54186/54186fig4large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a> <img alt="図5" src="/files/ftp_upload/54186/54186fig5.jpg" /> 図5： として腓骨神経挫滅法nはNMJの修復に関与する候補遺伝子を同定するためのアッセイ（A - B）。2 NMJ関連遺伝子のmRNAレベル、のAChRのγサブユニットとムスクが、同様にマウスのTA筋に変化している時間の同じ長さのための除神経。時間後の神経損傷が増加すると、両方の転写物のレベルはのNMJの漸進的な再神経支配を示す組織学的分析を裏付け、ベースラインに戻って、減少します。各行は、個々のマウスを表しています。エラーバー=技術的反復の平均の標準誤差。 <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54186/54186fig5large.jpg" target="_blank">この図の拡大版をご覧になるにはこちらをクリックしてください。</a>

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The Fibular Nerve Injury Method: A Reliable Assay to Identify and Test Factors That Repair Neuromuscular Junctions

We have developed a nerve injury method to reliably examine muscle reinnervation, and thus regeneration of neuromuscular junctions in mice. This technique involves injuring the common fibular nerve via a simple and highly reproducible surgery. Muscle reinnervation in then assessed by whole-mounting the extensor digitorum longus muscle.

腓骨神経損傷方法：神経筋接合部を修復信頼性の高い同定するためのアッセイおよびテスト要因

The neuromuscular junction (NMJ) undergoes deleterious structural and functional changes as a result of aging, injury and disease. Thus, it is imperative ...

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Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Neuroscience

15.6K ビュー.  Virginia Tech. We have developed a nerve injury method to reliably examine muscle reinnervation, and thus regeneration of neuromuscular junctions in mice. This technique involves injuring the common fibular nerve via a simple and highly reproducible surgery. Muscle reinnervation in then assessed by whole-mounting the extensor digitorum longus muscle. 

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Reproducible Mouse Sciatic Nerve Crush and Subsequent Assessment of Regeneration by Whole Mount Muscle Analysis

Regeneration in the peripheral nervous system (PNS) is widely studied both for its relevance to human disease and to understand the robust regenerative response mounted by PNS neurons thereby possibly illuminating the failures of CNS regeneration1. Sciatic nerve crush (axonotmesis) is one of the most common models of peripheral nerve injury in rodents2. Crushing interrupts all axons but Schwann cell basal laminae are preserved so that regeneration is optimal3,4. This allows the investigator to study precisely the ability of a growing axon to interact with both the Schwann cell and basal laminae4. Rats have generally been the preferred animal models for experimental nerve crush. They are widely available and their lesioned sciatic nerve provides a reasonable approximation of human nerve lesions5,4. Though smaller in size than rat nerve, the mouse nerve has many similar qualities. Most importantly though, mouse models are increasingly valuable because of the wide availability of transgenic lines now allows for a detailed dissection of the individual molecules critical for nerve regeneration6, 7. Prior investigators have used multiple methods to produce a nerve crush or injury including simple angled forceps, chilled forceps, hemostatic forceps, vascular clamps, and investigator-designed clamps8,9,10,11,12. Investigators have also used various methods of marking the injury site including suture, carbon particles and fluorescent beads13,14,1. We describe our method to obtain a reproducibly complete sciatic nerve crush with accurate and persistent marking of the crush-site using a fine hemostatic forceps and subsequent carbon crush-site marking. As part of our description of the sciatic nerve crush procedure we have also included a relatively simple method of muscle whole mount we use to subsequently quantify regeneration.

In this report we describe a method to crush mouse sciatic nerve. This method uses readily available hemostatic forceps and easily and reproducibly produces complete sciatic nerve crush. In addition, we describe a method to prepare muscle whole mounts suitable for analysis of nerve regeneration after sciatic nerve crush.

ホールマウントマッスル分析による再現性のあるマウスの坐骨神経クラッシュと再生のその後の評価

Regeneration in the peripheral nervous system (PNS) is widely studied both for its relevance to human disease and to understand the robust regenerative ...

神経科学

Assessment of Neuromuscular Function Using Percutaneous Electrical Nerve Stimulation

Percutaneous electrical nerve stimulation is a non-invasive method commonly used to evaluate neuromuscular function from brain to muscle (supra-spinal, spinal and peripheral levels). The present protocol describes how this method can be used to stimulate the posterior tibial nerve that activates plantar flexor muscles. Percutaneous electrical nerve stimulation consists of inducing an electrical stimulus to a motor nerve to evoke a muscular response. Direct (M-wave) and/or indirect (H-reflex) electrophysiological responses can be recorded at rest using surface electromyography. Mechanical (twitch torque) responses can be quantified with a force/torque ergometer. M-wave and twitch torque reflect neuromuscular transmission and excitation-contraction coupling, whereas H-reflex provides an index of spinal excitability. EMG activity and mechanical (superimposed twitch) responses can also be recorded during maximal voluntary contractions to evaluate voluntary activation level. Percutaneous nerve stimulation provides an assessment of neuromuscular function in humans, and is highly beneficial especially for studies evaluating neuromuscular plasticity following acute (fatigue) or chronic (training/detraining) exercise.

We present a protocol to assess changes in neuromuscular function. Percutaneous electrical nerve stimulation is a non-invasive method that evokes muscular responses. Electrophysiological and mechanical properties of these responses permit the evaluation of neuromuscular function from brain to muscle (supra-spinal, spinal and peripheral levels).

経皮的電気神経刺激を使用した神経筋機能の評価

Percutaneous electrical nerve stimulation is a non-invasive method commonly used to evaluate neuromuscular function from brain to muscle (supra-spinal, ...

Measuring Neuromuscular Junction Functionality

Neuromuscular junction (NMJ) functionality plays a pivotal role when studying diseases in which the communication between motor neuron and muscle is impaired, such as aging and amyotrophic lateral sclerosis (ALS). Here we describe an experimental protocol that can be used to measure NMJ functionality by combining two types of electrical stimulation: direct muscle membrane stimulation and the stimulation through the nerve. The comparison of the muscle response to these two different stimulations can help to define, at the functional level, potential alterations in the NMJ that lead to functional decline in muscle.
Ex vivo preparations are suited to well-controlled studies. Here we describe an intensive protocol to measure several parameters of muscle and NMJ functionality for the soleus-sciatic nerve preparation and for the diaphragm-phrenic nerve preparation. The protocol lasts approximately 60 min and is conducted uninterruptedly by means of a custom-made software that measures the twitch kinetics properties, the force-frequency relationship for both muscle and nerve stimulations, and two parameters specific to NMJ functionality, i.e. neurotransmission failure and intratetanic fatigue. This methodology was used to detect damages in soleus and diaphragm muscle-nerve preparations by using SOD1G93A transgenic mouse, an experimental model of ALS that ubiquitously overexpresses the mutant antioxidant enzyme superoxide dismutase 1 (SOD1).

A functional assessment of the neuromuscular junction (NMJ) can provide essential information on the communication between muscle and nerve. Here we describe a protocol to comprehensively evaluate both the NMJ and muscle functionality using two different muscle-nerve preparations, i.e. soleus-sciatic and diaphragm-phrenic.

神経筋接合部機能を測定

Neuromuscular junction (NMJ) functionality plays a pivotal role when studying diseases in which the communication between motor neuron and muscle is ...

Functional and Physiological Methods of Evaluating Median Nerve Regeneration in the Rat

The main goal of this investigation is to show how to create and repair different types of median nerve (MN) lesions in the rat. Moreover, different methods of simulating postoperative physiotherapy are presented. Multiple standardized strategies are used to assess motor and sensory recovery using an MN model of peripheral nerve lesion and repair, thus permitting easy comparison of the results. Several options are included for providing a postoperative physiotherapy-like environment to rats that have undergone MN injuries. Finally, the paper provides a method to evaluate the recovery of the MN using several noninvasive tests (i.e., grasping test, pin prick test, ladder rung walking test, rope climbing test, and walking track analysis), and physiological measurements (infrared thermography, electroneuromyography, flexion strength evaluation, and flexor carpi radialis muscle weight determination). Hence, this model seems particularly appropriate to replicate a clinical scenario, facilitating extrapolation of results to the human species.
Although the sciatic nerve is the most studied nerve in peripheral nerve research, analysis of the rat MN presents various advantages. For example, there is a reduced incidence of joint contractures and automutilation of the affected limb in MN lesion studies. Furthermore, the MN is not covered by muscle masses, making its dissection easier than that of the sciatic nerve. In addition, MN recovery is observed sooner, because the MN is shorter than the sciatic nerve. Also, the MN has a parallel path to the ulnar nerve in the arm. Hence, the ulnar nerve can be easily used as the nerve graft for repairing MN injuries. Finally, the MN in rats is located in the forelimb, akin to the human upper limb; in humans, the upper limb is the site of most peripheral nerve lesions.

Presented is a protocol to produce different types of median nerve (MN) lesions and repair in the rat. Additionally, the protocol shows how to evaluate the functional recovery of the nerve using several noninvasive behavioral tests and physiological measurements.

ラットの神経再生の中央値を評価する機能と生理学的方法

The main goal of this investigation is to show how to create and repair different types of median nerve (MN) lesions in the rat. Moreover, different ...

医学

Automated Gait Analysis to Assess Functional Recovery in Rodents with Peripheral Nerve or Spinal Cord Contusion Injury

Peripheral and central nerve injuries are mostly studied in rodents, especially rats, given the fact that these animal models are both cost-effective and a lot of comparative data has been published in the literature. This includes a multitude of assessment methods to study functional recovery following nerve injury and repair. Besides evaluation of nerve regeneration by means of histology, electrophysiology, and other in vivo and in vitro assessment techniques, functional recovery is the most important criterion to determine the degree of neural regeneration. Automated gait analysis allows recording of a vast quantity of gait-related parameters such as Paw Print Area and Paw Swing Speed as well as measures of inter-limb coordination. Additionally, the method provides digital data of the rats&#8217; paws after neuronal damage and during nerve regeneration, adding to our understanding of how peripheral and central nervous injuries affect their locomotor behavior. Besides the predominantly used sciatic nerve injury model, other models of peripheral nerve injury such as the femoral nerve can be studied by means of this method. In addition to injuries of the peripheral nervous systems, lesions of the central nervous system, e.g., spinal cord contusion can be evaluated. Valid and reproducible data assessment is strongly dependent on meticulous adjustment of the hard- and software settings prior to data acquisition. Additionally, proper training of the experimental animals is of crucial importance. This work aims to illustrate the use of computerized automated gait analysis to assess functional recovery in different animal models of peripheral nerve injury as well as spinal cord contusion injury. It also emphasizes the method&#8217;s limitations, e.g., evaluation of nerve regeneration in rats with sciatic nerve neurotmesis due to limited functional recovery. Therefore, this protocol is thought to help researchers interested in peripheral and central nervous injuries to assess functional recovery in rodent models.

Automated gait analysis is a feasible tool to evaluate functional recovery in rodent models of peripheral nerve injury and spinal cord contusion injury. While it requires only one setup to assess locomotor function in various experimental models, meticulous hard- and soft-ware adjustment and training of the animals is highly important.

末梢神経または脊髄損傷を伴うげっ歯類の機能回復を評価する自動歩行分析

Peripheral and central nerve injuries are mostly studied in rodents, especially rats, given the fact that these animal models are both cost-effective and ...

Maximum Isometric Tetanic Force Measurement of the Tibialis Anterior Muscle in the Rat

Traumatic nerve injuries result in substantial functional loss and segmental nerve defects often necessitate the use of autologous interposition nerve grafts. Due to their limited availability and associated donor side morbidity, many studies in the field of nerve regeneration focus on alternative techniques to bridge a segmental nerve gap. In order to investigate the outcomes of surgical or pharmacological experimental treatment options, the rat sciatic nerve model is often used as a bioassay. There are a variety of outcome measurements used in rat models to determine the extent of nerve regeneration. The maximum output force of the target muscle remains the most relevant outcome for clinical translation of experimental therapies. Isometric force measurement of tetanic muscle contraction has previously been described as a reproducible and valid technique for evaluating motor recovery after nerve injury or repair in both rat and rabbit models. In this video, we will provide a step-by-step instruction of this invaluable procedure for assessment of functional recovery of the tibialis anterior muscle in a rat sciatic nerve defect model using optimized parameters. We will describe the necessary pre-surgical preparations in addition to the surgical approach and dissection of the common peroneal nerve and tibialis anterior muscle tendon. The isometric tetanic force measurement technique will be detailed. Determining the optimal muscle length and stimulus pulse frequency is explained and measuring the maximum tetanic muscle contraction is demonstrated.

Evaluation of motor recovery remains the benchmark outcome measure in experimental peripheral nerve studies. The isometric tetanic force measurement of the tibialis anterior muscle in the rat is an invaluable tool to assess functional outcomes after reconstruction of sciatic nerve defects. The methods and nuances are detailed in this article.

ラットにおける脛表筋前筋の最大等角体テタニック力測定

Traumatic nerve injuries result in substantial functional loss and segmental nerve defects often necessitate the use of autologous interposition nerve ...

Dissection of Single Skeletal Muscle Fibers for Immunofluorescent and Morphometric Analyses of Whole-Mount Neuromuscular Junctions

The neuromuscular junction (NMJ) is a specialized point of contact between the motor nerve and the skeletal muscle. This peripheral synapse exhibits high morphological and functional plasticity. In numerous nervous system disorders, NMJ is an early pathological target resulting in neurotransmission failure, weakness, atrophy, and even in muscle fiber death. Due to its relevance, the possibility to quantitatively assess certain aspects of the relationship between NMJ components can help to understand the processes associated with its assembly/disassembly. The first obstacle when working with muscles is to gain the technical expertise to quickly identify and dissect without damaging their fibers. The second challenge is to utilize high-quality detection methods to obtain NMJ images that can be used to perform quantitative analysis. This article presents a step-by-step protocol for dissecting extensor digitorum longus and soleus muscles from rats. It also explains the use of immunofluorescence to visualize pre and postsynaptic elements of whole-mount NMJs. Results obtained demonstrate that this technique can be used to establish the microscopic anatomy of the synapsis and identify subtle changes in the status of some of its components under physiological or pathological conditions.

The ability to accurately detect neuromuscular junction components is crucial in evaluating modifications in its architecture because of pathological or developmental processes. Here we present a complete description of a straightforward method to obtain high-quality images of whole-mount neuromuscular junctions that can be used to perform quantitative measurements.

全山神経筋接合部の免疫蛍光解析と形態測定解析のための単一骨格筋線維の解剖

The neuromuscular junction (NMJ) is a specialized point of contact between the motor nerve and the skeletal muscle. This peripheral synapse exhibits high ...

Implantation and Control of Wireless, Battery-free Systems for Peripheral Nerve Interfacing

Peripheral nerve interfaces are frequently used in experimental neuroscience and regenerative medicine for a wide variety of applications. Such interfaces can be sensors, actuators, or both. Traditional methods of peripheral nerve interfacing must either tether to an external system or rely on battery power that limits the time frame for operation. With recent developments of wireless, battery-free, and fully implantable peripheral nerve interfaces, a new class of devices can offer capabilities that match or exceed those of their wired or battery-powered precursors. This paper describes methods to (i) surgically implant and (ii) wirelessly power and control this system in adult rats. The sciatic and phrenic nerve models were selected as examples to highlight the versatility of this approach. The paper shows how the peripheral nerve interface can evoke compound muscle action potentials (CMAPs), deliver a therapeutic electrical stimulation protocol, and incorporate a conduit for the repair of peripheral nerve injury. Such devices offer expanded treatment options for single-dose or repeated dose therapeutic stimulation and can be adapted to a variety of nerve locations.

This is a protocol for the surgical implantation and operation of a wirelessly powered interface for peripheral nerves. We demonstrate the utility of this approach with examples from nerve stimulators placed on either the rat sciatic or phrenic nerve.

末梢神経インターフェースのためのワイヤレス、バッテリーレスシステムの移植と制御

Peripheral nerve interfaces are frequently used in experimental neuroscience and regenerative medicine for a wide variety of applications. Such interfaces ...

Traumatic Peripheral Nerve Injury in Mice

Traumatic peripheral nerve injury (TPNI) is a common cause of morbidity following orthopedic trauma. Reproducible and precise methods of injuring nerve and denervating muscle have long been a goal in musculoskeletal research. Many traumatically injured limbs have nerve trauma that defines the long-term patient outcome. Over several years, precise methods of producing microsurgical nerve injuries have been developed, including crush, lacerations, and nerve-gap grafting, allowing for reproducible outcome assessments. Moreover, newer methods are created for calibrated crush injuries that offer clinically relevant correlations with outcomes used to assess human patients. The principles of minimal manipulation to ensure low variability in nerve injury allow for adding still more associated tissue injuries into these models. This includes direct muscle crush and other components of limb injury. Finally, atrophy assessment and precise analysis of behavioral outcomes make these methods a complete package for studying musculoskeletal trauma that realistically incorporates all the elements of human traumatic limb injury.

<meta charset="utf8"></head><body>マウスにおける外傷性末梢神経損傷

The present protocol describes traumatic peripheral nerve injuries (TPNIs), including precisely calibrated crush, strictly aligned and misaligned laceration, as well as grafted and non-grafted gaps of the sciatic nerve in mice. Custom-designed sensors are developed to gauge nerve trauma, induced with commonly available tools to ensure reproducible post-TPNI outcomes.

マウスにおける外傷性末梢神経損傷

Traumatic peripheral nerve injury (TPNI) is a common cause of morbidity following orthopedic trauma. Reproducible and precise methods of injuring nerve ...

腓骨神経損傷方法：神経筋接合部を修復信頼性の高い同定するためのアッセイおよびテスト要因

要約

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ホールマウントマッスル分析による再現性のあるマウスの坐骨神経クラッシュと再生のその後の評価

経皮的電気神経刺激を使用した神経筋機能の評価

神経筋接合部機能を測定

ラットの神経再生の中央値を評価する機能と生理学的方法

末梢神経または脊髄損傷を伴うげっ歯類の機能回復を評価する自動歩行分析

ラットにおける脛表筋前筋の最大等角体テタニック力測定

全山神経筋接合部の免疫蛍光解析と形態測定解析のための単一骨格筋線維の解剖

末梢神経インターフェースのためのワイヤレス、バッテリーレスシステムの移植と制御

マウスにおける外傷性末梢神経損傷

マウスにおける外傷性末梢神経損傷