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Analisi della qualità dell'acqua tramite organismi indicatori

Panoramica

Fonte: Laboratori del Dr. Ian Pepper e del Dr. Charles Gerba -Università dell'Arizona
Autore dimostrativo: Luisa Ikner

L'analisi della qualità dell'acqua monitora le influenze antropogeniche come inquinanti, sostanze nutritive, agenti patogeni e qualsiasi altro componente che possa influire sull'integrità dell'acqua come risorsa. La contaminazione fecale contribuisce ai patogeni microbici che minacciano la salute di piante, animali e umani con malattie o malattie. L'aumento della domanda di acqua e i rigorosi standard di qualità richiedono che l'acqua fornita per le risorse umane o ambientali sia monitorata per bassi livelli di agenti patogeni. Tuttavia, il monitoraggio di ciascun agente patogeno associato all'inquinamento fecale non è fattibile, poiché le tecniche di laboratorio comportano manodopera, tempo e costi estesi. Pertanto, il rilevamento di organismi indicatori fornisce una tecnica semplice, rapida ed economica per monitorare gli agenti patogeni associati a condizioni non igieniche.

Principi

Gli indicatori sono organismi facilmente rilevabili la cui presenza è direttamente correlata a uno o più agenti patogeni che contaminano un ambiente. Per essere considerato un indicatore appropriato, un organismo deve soddisfare i cinque seguenti criteri:

  1. L'organismo indicatore deve essere presente quando l'agente patogeno è presente e l'organismo indicatore deve essere assente quando l'agente patogeno è assente.
  2. La concentrazione dell'organismo indicatore deve essere correlata alla concentrazione dell'agente patogeno. Tuttavia, l'organismo indicatore dovrebbe sempre essere trovato a numeri più alti.
  3. L'organismo indicatore dovrebbe essere in grado di sopravvivere più facilmente e più a lungo nell'ambiente rispetto all'agente patogeno.
  4. Il rilevamento per l'organismo indicatore dovrebbe essere facile, sicuro e poco costoso.
  5. L'organismo indicatore dovrebbe essere efficace per tutti i tipi di acqua.

La maggior parte degli indicatori sono organismi enterici o virus, che si trovano comunemente nei sistemi gastrointestinali di mammiferi e aviari a sangue caldo, dando una connessione diretta alla contaminazione fecale. Tuttavia, molti indicatori possono mancare di efficacia a causa di una scarsa correlazione con alcuni agenti patogeni. Due degli organismi indicatori batterici più ampiamente accettati sono Escherichia coli e coliformi a causa dei loro legami fecali e facilità nelle analisi di laboratorio.

Colilert è un approccio DST (Defined Substrate Technology) per il rilevamento simultaneo, l'identificazione specifica e la conferma per E. coli e coliformi totali nei campioni di acqua. Questa tecnica di laboratorio utilizza nutrienti del substrato specifici per la via metabolica di ciascun organismo indicatore, enumerando solo i microrganismi desiderati, che rilasciano un segnale quando i batteri alterano il composto. In presenza di un coliforme, il nutriente orto-nitrofenil-β-D-galattopiranoside (ONPG) viene idrolizzato dall'enzima β-galattosidasi del coliforme. Il composto del prodotto, l'orto-nitrofenile, è un cromogeno che rilascia un segnale di colore, trasformando l'acqua in giallo (Figura 1).

Figure 1
Figura 1. Schema che mostra l'orto-nitrofenile che rilascia un segnale di colore, trasformando l'acqua in giallo.

In presenza di E. coli,il nutriente metilbebelliferil-β-D-glucuronide (MUG) viene scisso dall'enzima glucuronidasi dei batteri, producendo un prodotto metilumbelliferone che fluoresce blu-verde sotto la luce ultravioletta (Figura 2).

Figure 2
Figura 2. Schema che mostra il nutriente metilumbelliferil-β-D-glucuronide (MUG) scisso dall'enzima glucuronidasi dei batteri, producendo un prodotto metilumberlliferone che fluoresce blu-verde sotto la luce ultravioletta.

Colilert può essere eseguito come test di presenza-assenza (P-A) per indicare se gli organismi esistono o meno nel campione. Questo test viene completato sciogliendo il substrato in campioni di acqua da 100 ml, incubando a 35 ± 0,5 °C per 24 ore e osservando i segnali di colore. La presenza degli indicatori può anche essere quantificata utilizzando un sistema che determina il numero più probabile (MPN) per ciascun organismo. Questa procedura prevede la dissoluzione del substrato in campioni di acqua da 100 ml che vengono sigillati in un vassoio contenente 49 grandi pozzi e 48 piccoli pozzi. Il vassoio viene incubato a 35 ± 0,5 °C per 24 ore, quindi vengono contati i pozzi contenenti cambiamenti di colore positivi. Il rapporto tra pozzi grandi e piccoli contenenti segnali positivi è allineato al grafico MPN che fornisce la quantificazione per la presenza di ciascun organismo indicatore presente. Le normative per l'acqua potabile negli Stati Uniti richiedono che zero coliformi siano presenti in 100 ml di acqua potabile.

Procedura

1. Presenza di Colilert – Test di assenza (P – A)

  1. Aprire la bottiglia di plastica Colilert da 100 ml. La bottiglia include una piccola quantità di reagente in polvere che è necessario per le reazioni corrette, non scartare questa polvere.
  2. Aggiungere 100 ml di campione d'acqua nella bottiglia Colilert.
  3. Aprire il tubo del cuscino contenente il substrato nutritivo e versare il contenuto nel campione d'acqua all'interno della bottiglia Colilert.
  4. Tappare e sigillare la bottiglia Colilert. Agitare vigorosamente la bottiglia, invertendo ripetutamente la bottiglia fino a quando il substrato non è completamente sciolto.
  5. Incubare la miscela di reagente/campione d'acqua all'interno del flacone a 35 ± 0,5 °C per 24 ore.
  6. Osservare il cambiamento di colore giallo nella miscela di reagente/campione d'acqua. Il colore giallo indica la presente coliforme. Acqua limpida o nessun cambiamento di colore indica che i coliformi sono assenti.
  7. Esporre il campione di reagente/acqua alla luce ultravioletta e osservare la fluorescenza blu. La fluorescenza blu indica che E. coli è presente. Nessuna fluorescenza indica che E. coli è assente (Figura 3).

Figure 3
Figura 3. Test P-A negativo (a sinistra), coliforme positivo (al centro) ed E. coli positivo (a destra).

2. Colilert MPN: Quanti-vassoio 2000

  1. Aprire la bottiglia Colilert e 100 ml di campione d'acqua nella bottiglia Colilert.
  2. Aprire il tubo del cuscino contenente substrato nutritivo e versare il contenuto nel campione d'acqua all'interno della bottiglia Colilert.
  3. Tappare e sigillare la bottiglia Colilert. Agitare vigorosamente la bottiglia, invertendo ripetutamente la bottiglia fino a quando il substrato non è completamente sciolto.
  4. Aprire con attenzione Quanti-tray 2000 spremendo i bordi nella parte superiore del vassoio e tirando indietro la linguetta della carta. Continuare a spremere in modo che il vassoio sia aperto.
  5. Versare la miscela di reagente/campione d'acqua nel vassoio, quindi incubare il campione all'interno del vassoio a 35 ± 0,5 °C per 24 ore.
  6. Osservare il cambiamento di colore giallo nella miscela di reagente/campione d'acqua. Contare il numero di pozzi grandi e piccoli che segnalano la presenza positiva per i coliformi. Il colore giallo indica la presente coliforme. Acqua limpida o nessun cambiamento di colore indica che i coliformi sono assenti.
  7. Esporre il campione di reagente/acqua alla luce ultravioletta e osservare la fluorescenza blu. Contare il numero di pozzi grandi e piccoli che segnalano la presenza positiva per E. coli. La fluorescenza blu indica che E. coli è presente. Nessuna fluorescenza indica che E. coli è assente.
  8. Utilizzare il foglio Quanti-tray 2000 MPN (Figura 4) per quantificare la concentrazione per ciascun organismo indicatore presente in 100 ml di acqua. Usa il foglio di calcolo per confrontare il rapporto tra pozzi positivi grandi e piccoli per enumerare la presenza di entrambi gli organismi indicatori.

Figure 4
Figura 4. Quanti-vassoio negativo (a sinistra), coliforme positivo (al centro) ed E. coli positivo (a destra).

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Overview

1:10

Principles of Monitoring Water Quality Using Indicator Organisms

3:49

Coliform Presence-Absence (P-A) Test

5:06

Most Probable Number (MPN) Analysis

6:44

Applications

7:54

Summary

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