Name: modification and application of a leaf blower-vac for field sampling of arthropods
Uploaded: 2016-08-10T15:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 43 s
Description: Watch this Scientific Journal Video about Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods at JoVE.com

The investigations were financially supported by the Division for Earth and Life Sciences of the Netherlands Organization for Scientific Research (grant 833.13.004), the Sci-Tech Landing Projection of Higher Education of Jiangxi Province (KJLD14030) and The Cultivation Plan for Young Scientists of Jiangxi Province (Jinggang star 20153BCB23014). We thank Daomeng Fu, Zhigang Li and Xiaolong Huang for their help in producing the movie.

שינוי 1. של VAC מפוח עלים עבור דגימת יניקה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאסוף את כל החלקים רשומים חומרי הרשימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חברו את כל פוליוויניל כלוריד (PVC) צינורות עם דבק פוליוויניל כלוריד unplasticized (U-PVC) (צינורות 1-2-3-4-5 ו 6-7). </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מקדחת שלושה חורים המופצות באופן שווה סביב פי היניקה של המכונה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לחבר את המכשיר עד הסוף 1 של צינור PVC 1-5 על ידי החדרת בורג אחד לתוך כל אחד משלושת החורים. אין להשתמש בדבק להתחבר צינור סוף 1 למכונה כי החיבור צריך להיות הפיך לנקות את המאוורר. הערה: במידה בקוטר של פי היניקה של המכונית שונה מהמודל המתואר כאן, הקוטר של צינור סוף 1 צריך להיות מותאם כדי להתאים את המכונה בצורה חלקה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מוסיף 2 שכבות של סרט איטום חוט כדי צינור מסתיים 5 ו -6. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> שימו את פיסת גזת מתכת בין הצינור לבין חלק הפה (צינורות PVC 6 ו -7) כדי למנוע את רשת הדגימה מתוך נשאב לתוך maChine. השתמש גזה מתכת בקוטר רשת בין 0.5 מ&quot;מ ו 0.5 ס&quot;מ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> חברו את צינור אל צינור מסתיים 5 ו -6 עם חישוקים מהדק מתכת. </li></ol> 2. מכינים את מארז דגימה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את תחתית מתוך דלי פלסטיק (50 L, 40 ס&quot;מ קוטר התחתון). גודל זה של המתחם משתרע 2-4 גבעות אורזות בשדה אורז מושתל, תלוי יבול בשלב 24. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> צרף שרוול רשת ניילון, עם אורך של 1 מ &#39;, אל החלק העליון של הדלי באמצעות גומייה. עבור שרוול זה, להשתמש בגודל רשת כי הוא קטן מספיק כדי למנוע בריחה של פרוקי רגליים היעד הקטן. השתמש בקוטר פחות מ -0.5 מ&quot;מ. </li></ol> 3. יישום שדה של VAC המפוח-Modified ליף עבור דגימת יניקה <ol style=";text-align:right;direction:rtl"><li style=";text-align:right;direction:rtl"> השתמש שני אנשים כדי להפעיל את המכשיר בתחום. אדם אחד מפעיל את-VAC המפוח והשני טפל המתחם הדלי ואת רשתות הדגימה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הפעל את המכונה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הכנס ne דגימהt לתוך חלק הפה של VAC-המפוח ולתקן אותה עם גומייה. לעומת זאת, בחישוב, להשתמש בגודל רשת כי הוא קטן מספיק כדי לתפוס את פרוקי רגלי היעד הקטנים, אך אינו יוצר התנגדות זרימת אוויר ברורה. השתמש חומר ניילון האור בקוטר רשת בין 0.2-0.5 מ&quot;מ. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> מניחים את המתחם במהירות מעל הצמחים במיקום אקראי בתחום ולדחוף את בתחתית הדלי בחוזקה לתוך האדמה. ודא כי השרוול סגור כדי למנוע פרוקי רגליים לברוח מן העליון של המתחם. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> הסר את כל פרוקי הרגליים מתוך המתחם בצורה מתפתלת מלמעלה למטה, למשך תקופת דגימה סטנדרטית. לגידולים אורזים בשלבים וגטטיבי והפוריות, השתמשו משכי דגימה של 1 ו -2 דקות, בהתאמה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> לאחר שסיים את המדגם, להסיר את הגומייה מן רשת הדגימה, סוגר מייד את נטו ולקחת אותו מתוך חלק הפה של VAC-המפוח ולסגור אותו עם קשר, תוך שמירה על ריצה המכונה. </li><li style=";text-align:right;direction:rtl"> s חזור3.2 teps ל -3.5 במקומות אקראיים בתחום עבור הדגימות הבאות. מספר חזרות תלוי וריאציה הפריסה המרחבית של פרוקי רגליים בתחום, את הדיוק הנדרש של האומדן ואת מטרת המחקר. בדרך כלל, שישה משכפל ייתן רושם טוב של קהילת פרוקי הרגליים ואת שכיחותם מינים. </li></ol>

<ol>
	<li>Dale, D., Heinrichs, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Biology and management of rice insects. , (1994).</li><li>Settle, W. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Managing+tropical+rice+pests+through+conservation+of+generalist+natural+enemies+and+alternative+prey.">Managing tropical rice pests through conservation of generalist natural enemies and alternative prey.</a> Ecology. 77 (7), 1975-1988 (1996).</li><li>Heong, K. L., Schoenly, K. G., Haskell, P. T., McEwen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Ecotoxicology. , 381-403 (1998).</li><li>Schellhorn, N. A., Bianchi, F., Hsu, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Movement+of+entomophagous+arthropods+in+agricultural+landscapes:+links+to+pest+suppression.">Movement of entomophagous arthropods in agricultural landscapes: links to pest suppression.</a> Annu Rev Entomol. 59, 559-581 (2014).</li><li>Zou, Y., Feng, J., Xue, D., Sang, W., Axmacher, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+terrestrial+arthropod+sampling+methods.">A comparison of terrestrial arthropod sampling methods.</a> J Resour Ecol. 3 (2), 174-182 (2012).</li><li>Saska, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temperature+effects+on+pitfall+catches+of+epigeal+arthropods:+a+model+and+method+for+bias+correction.">Temperature effects on pitfall catches of epigeal arthropods: a model and method for bias correction.</a> J Appl Ecol. 50 (1), 181-189 (2013).</li><li>Vander Werf, W., Evans, E. W., Powell, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Measuring+and+modelling+the+dispersal+of+Coccinella+septempunctata+(Coleoptera+:+Coccinellidae)+in+alfalfa+fields.">Measuring and modelling the dispersal of Coccinella septempunctata (Coleoptera : Coccinellidae) in alfalfa fields.</a> Eur J Entomol. 97 (4), 487-493 (2000).</li><li>Rashid, T., Johnson, D. T., Bernhardt, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Sampling+rice+stink+bug+(Hemiptera+:+Pentatomidae)+in+and+around+rice+fields.">Sampling rice stink bug (Hemiptera : Pentatomidae) in and around rice fields.</a> Environ Entomol. 35 (1), 102-111 (2006).</li><li>Sarwshri, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Aboveground+arthropod+pest+and+predator+diversity+in+irrigated+rice+(Oryza+sativa+L.)+production+systems+of+the+Philippines.">Aboveground arthropod pest and predator diversity in irrigated rice (Oryza sativa L.) production systems of the Philippines.</a> J Trop Agr. 45 (1/2), 1-8 (2007).</li><li>Wade, M. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Temporal+variation+in+arthropod+sampling+effectiveness:+the+case+for+using+the+beat+sheet+method+in+cotton.">Temporal variation in arthropod sampling effectiveness: the case for using the beat sheet method in cotton.</a> Entomol Exp Appl. 120 (2), 139-153 (2006).</li><li>Dietrick, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+Improved+Backpack+Motor+Fan+for+Suction+Sampling+of+Insect+Populations.">An Improved Backpack Motor Fan for Suction Sampling of Insect Populations.</a> J Econ Entomol. 54 (2), 394-395 (1961).</li><li>Munyaneza, J. E., Crosslin, J. M., Upton, J. E., Buchman, J. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Incidence+of+the+beet+leafhopper-transmitted+virescence+agent+phytoplasma+in+local+populations+of+the+beet+leaf+hopper,+Circulifer+tenellus,+in+Washington+State.">Incidence of the beet leafhopper-transmitted virescence agent phytoplasma in local populations of the beet leaf hopper, Circulifer tenellus, in Washington State.</a> J Insect Sci. 10 (1), 1-10 (2010).</li><li>Finke, D. L., Denno, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Intra-guild+predation+relaxes+natural+enemy+impacts+on+herbivore+populations.">Intra-guild predation relaxes natural enemy impacts on herbivore populations.</a> Ecol Entomol. 28 (1), 67-73 (2003).</li><li>Koss, A. M., Snyder, W. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Alternative+prey+disrupt+biocontrol+by+a+guild+of+generalist+predators.">Alternative prey disrupt biocontrol by a guild of generalist predators.</a> Biol Control. 32 (2), 243-251 (2005).</li><li>Elliott, N. C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=D-vac+sampling+for+predatory+arthropods+in+winter+wheat.">D-vac sampling for predatory arthropods in winter wheat.</a> Biol Control. 38 (3), 325-330 (2006).</li><li>Arida, G., Heong, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Blower-Vac:+a+new+suction+apparatus+for+sampling+rice+arthropods.">Blower-Vac: a new suction apparatus for sampling rice arthropods.</a> Int. Rice Res. New. 17, 30-31 (1992).</li><li>Domingo, I., Schoenly, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=An+improved+suction+apparatus+for+sampling+invertebrate+communities+in+flooded+rice.">An improved suction apparatus for sampling invertebrate communities in flooded rice.</a> Int. Rice Res. New. 23 (2), 38-39 (2012).</li><li>Moorman, C. E., Plush, C. J., Orr, D. B., Reberg-Horton, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Beneficial+Insect+Borders+Provide+Northern+Bobwhite+Brood+Habitat.">Beneficial Insect Borders Provide Northern Bobwhite Brood Habitat.</a> PLoS ONE. 8 (12), e83815 (2013).</li><li>Bambaradeniya, C. N. B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Biodiversity+associated+with+an+irrigated+rice+agro-ecosystem+in+Sri+Lanka.">Biodiversity associated with an irrigated rice agro-ecosystem in Sri Lanka.</a> Biodivers Conserv. 13 (9), 1715-1753 (2004).</li><li>Whitehouse, M. E. A., Wilson, L. J., Fitt, G. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparison+of+arthropod+communities+in+transgenic+Bt+and+conventional+cotton+in+Australia.">A comparison of arthropod communities in transgenic Bt and conventional cotton in Australia.</a> Environ Entomol. 34 (5), 1224-1241 (2005).</li><li>Schoenly, K. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Fallowing+did+not+disrupt+invertebrate+fauna+in+Philippine+low-pesticide+irrigated+rice+fields.">Fallowing did not disrupt invertebrate fauna in Philippine low-pesticide irrigated rice fields.</a> J Appl Ecol. 47 (3), 593-602 (2010).</li><li>de Kraker, J., van Huis, A., van Lenteren, J. C., Heong, K. L., Rabbinge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identity+and+relative+importance+of+egg+predators+of+rice+leaffolders+(Lepidoptera+:+Pyralidae).">Identity and relative importance of egg predators of rice leaffolders (Lepidoptera : Pyralidae).</a> Biol Control. 19 (3), 215-222 (2000).</li><li>Hu, Y., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+study+on+population+development+patterns+of+Sogatella+furcifera+between+tropical+and+subtropical+areas.">A comparative study on population development patterns of Sogatella furcifera between tropical and subtropical areas.</a> J Asia-Pacif Entomol. 17 (4), 845-851 (2014).</li><li>Schoenly, K. G., Domingo, I. T., Barrion, A. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Determining+optimal+quadrat+sizes+for+invertebrate+communities+in+agrobiodiversity+studies:+A+case+study+from+tropical+irrigated+rice.">Determining optimal quadrat sizes for invertebrate communities in agrobiodiversity studies: A case study from tropical irrigated rice.</a> Env Entomol. 32 (5), 929-938 (2003).</li><li>Marcos, T., Mew, T. W., Borromeo, E., Hardy, B., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> Exploiting Biodiversity for Sustainable Pest Management. , 23-24 (2001).</li><li>Kraker, d. J., Huis, v. A., Heong, K. L., Lenteren, v. J. C., Rabbinge, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Population+dynamics+of+rice+leaffolders+(Lepidoptera:+Pyralidae)+and+their+natural+enemies+in+irrigated+rice+in+the+Philippines.">Population dynamics of rice leaffolders (Lepidoptera: Pyralidae) and their natural enemies in irrigated rice in the Philippines.</a> Bull Entomol Res. 89 (5), 411-421 (1999).</li></ol>

The authors have nothing to disclose.

דגימת יניקה היא אחת שיטות אפשריות רבות לדגום קהילות פרוקי רגליים בגידולים. למחקר מדעי במערכות אורזות, דגימת יניקה היא אופציה מתאימה כי השיטה מספקת ערכות מוחלטות של צפיפויות פרוקי רגליים, זה שאינו הרסני, ו - בניגוד ספירת ויזואלית - מאפשר איסוף ואחסון של דגימות לעיבוד מאוחר יותר. לעומת הזמין D-VAC המסחרית, המפוח-VAC הוא קטן יותר, קלים יותר קל לטפל ב (הצף) שדות אורזים וגם קל יותר לשלב עם מתחם. לדוגמא, VAC-מפוח שוקל כ 6 קילו, ואילו מודל D-VAC התרמיל, הציג כתקן הבינלאומי לדגימת חרקים, יש קילו משקל 12 11. יתרה מכך, יעילות הדגימה של-VAC המפוח גבוהה D-VAC 16,17, בעוד העלות של-VAC המפוח היא פחות. השינוי של VAC-מפוח עלים לתוך סמפלר יניקה אינו דורש כישורים מיוחדים או ציודולוקח פחות משעה אחרי הכל החלקים הנוספים כבר נאספו. מפוח-VAC המתואר כאן קל יותר להקים ולהפעיל מאשר בגירסאות תיאר בעבר בספרות 16,17, ואת החלקים הדרושים (טבלה 1) הם חומרי בנייה סטנדרטית זמינים באופן נרחב. זה הופך את VAC-המפוח גם נגיש לחוקרים עם תקציבים קטנים במדינות מתפתחות. כוחה ועקירה של המנוע קובע את כוח היניקה של VAC-מפוח. כאן אנו ממליצים מכונים עם כוחות בין 0.7-1.2 חלקיקים כ&quot;ס ו תזוזה בין 25-35 סמ&quot;ק, אשר מספק עבור דגימת קהילת פרוקי רגלי שוכני המפעל אורז. אורכו של צינור הפלסטיק הגמיש בקוטר של חלק הפה המוצץ (צינור 7) הם קריטיים עבור הופעת דגימה טובה. צינור זה ארוך מדי יפחית את עוצמת השאיבה, ואילו גרב כי הוא קצר מדי יהיה נוח לשימוש במהלך דגימה. באופן דומה,חלק בפה עם קוטר גדול מדי יפחית את עוצמת השאיבה, ואילו בקוטר קטן מדי יפחית את יעילות הדגימה בשל פני השטח הקטנים. יעילות הדגימה תלויה באופן קריטי על משך הדגימה. אם הדגימה מתנהלת לאורך כל עונת הגידול, משך הדגימה עשוי להיות מותאם צמח הגודל, המבנה, וצפיפות השתילה לשמור על רמה דומה של יעילות. יעילות דגימה צריכה להיבדק על ידי בדיקה ויזואלית זהירה המתחם לאחר דגימה. אם יש עדיין פרוקי רגליים נוכחיים, משך הדגימה חייב להיות מוגבר. משכי זמן הדגימה המומלצות לגידולים אורזים בשלב וגטטיבי הוא 1 דק בשלבי הרבייה ובשלים זה 2 דקות. דגימת יניקה עם-VAC המפוח יכולה להתנהל בתחומים מוצפים, בעוד שיטות חלופיות, כגון מכשול והכה דגימה וכו &#39;הם לא ריאליים במים עומדים. המפוח-VAC יכול להיות גםנהג לטעום קהילת פרוקי הרגליים על פני המים של שדות אורזים מוצפים (למשל, חרקי מים טורפים), כמו המכונה מסוגלת למצוץ בקצת מים. עם זאת, זה אינו מומלץ לדגום פרוקי רגליים מימיות כמו המנוע עשוי להפסיק לפעול כאשר חלק הפה מוכנס עמוק לתוך המים ואת זרימת האוויר חסומה. מלבד אורז, VAC-המפוח יכול לשמש גם בגידולים אחרים ובתי גידול הלא חקלאי, כל עוד הגובה ומבנה הצמחייה מאפשר מיקום נכון של המתחם 25. המפוח-VAC שיטת דגימת יניקה שלנו היא בלתי הרסנית. כמעט כל פרוקי רגליים הנאספים ברשת הדגימה שרד, לרבות גופים הרכים הללו כגון יתושים ושפיריות. היישום של שיטה זו, לעומת זאת, יש כמה מגבלות וחסרונות. המפוח-VAC צריך להיות מופעל על ידי שני אנשים. הנשיאה-VAC המפוח בתחום תגרום להפרעה כלשהי, ולכן שיטה זו עשויה לזלזלמיני הפרעה רגישה כגון חגבים. מיקום מהיר ופתאומי של המתחם באזור יחסית ללא הפרעה לכיוון התנועה קדימה עלול להגביל הטיה פוטנציאלית זו. הרעש החזק של המכונה-VAC המפוח עלול גם הוא לגרום הפרעה, ולדגום בלילה באזורי מגורים אינו מומלץ. השיטה אינה מתאימה דגימת חרקים מעופפים ניידים מאוד, כגון שפיראים טורף או וטפילים hymenopterous גדולים. כמו בכל שיטת דגימה, שילוב של VAC-המפוח עם שיטות אחרות, כגון דגימה נטתה לטאטא או קציר הרסני של צמחים, יכול לספק הערכה שלמה ומאוזנת יותר של קהילת פרוקי הרגליים 26.

הערכה חוזרת של השפע והמגוון של פרוקי רגליים phytophagous ו entomophagous בגידולים דרוש מחקרים אקולוגיים הדינמיקה באוכלוסייה ואינטראקציות מינים, כולל מצוות תלמוד הדברה ביולוגית. האורז הוא מזון בסיסי גדול, עם פוטנציאל גבוה ביוקונטרול ידי פרוקי רגלי entomophagous 1,2, אבל מה שיכול להיות מופר על ידי חומרי הדברה 3. המגוון של פרוקי רגליים בגידולים אורזים יכול להיות גבוה, ומיני פרוקי רגליים לכבוש שכבות יבול שונות (למשל, קרקע, גזע, חופה, פרחים), שונים במצב של תנועה (למשל, הליכה, קפיצה, עף) ומחפשים מזון אסטרטגיה (למשל, נייח מוצץ חרקים, טורפי ציד ופרח לביקור מאביקים) 4. יש מגוון רחב של טכניקות דגימת פרוקי רגליים, כל אחד עם עוצמות וחולשות. למשל, מלכודות מכשול שניתן להשתמש בם כדי לדגום פרוקי רגלי שוכני קרקע, אלא לספק רלה פעילות תלויהאוכלוסייה מופרזת מעריכת 5,6. ניתן להשתמש ברשתות טאטאו לדגום חרקים-עפו מהר בחופה 7-9, אבל לתת ערכות יחסיות של שפע פרוקי רגליים. שיטת גיליון הפעימה ניתן להשתמש כדי לטעום קהילת פרוקי רגלי שוכני המפעל מספקת ערכות מוחלטות של שפע פרוקי רגליים, אבל זה לא ניתן להשתמש ביעילות בתחומי יבול מוצף כגון שדות אורזים 10. דגימת יניקה, המבוצע בשילוב עם מארז המשתרע על שטח סטנדרטי של השדה, מספקת ערכות מוחלטות של הצפיפויות של פרוקי רגלי שוכני צמח. שיטה זו יכולה לשמש גם אורז מוצף. דוגמאות ניתן לאחסן לעיבוד והזדהות מאוחר יותר. ואקום Dietrick (D-VAC) 11 הוא סמפלר היניקה הראשון שפותח באופן מסחרי. למרות D-vacs עדיין נמצא בשימוש נרחב 12-14, הם יקרים יחסית, יש כוח יניקה מוגבל 15 ו כבדות יחסית, מה שהופך אותם קשהלהתמודד בשדות אורז מוצפים 16. ערידה היאונג 16 פיתח סמפלר יניקה באמצעות-VAC מפוח עלים מונחה בנזין, אבטיפוס זה היה מעודן עוד יותר על ידי דומינגו Schoenly 17. יתרונותיו של סמפלר היניקה-VAC המפוח לעומת D-VAC הם כי זה הרבה יותר זול וקל יותר להתמודד. למרות שיטת דגימת יניקה-VAC המפוח נעשתה שימוש במחקרים רבים אקולוגיים 18-23, הוראות השינוי ויישומה לא תוארו בבירור. כאן אנו מציגים תיאור מבוסס וידאו, מפורט של השינוי והיישום של VAC-מפוח עלים מופעל בנזין לדגימת יניקה של אוכלוסיות פרוקי רגליים בשדות אורז מוצפים. השינוי הוא בהשראת ערידה היאונג 16 ו דומינגו Schoenly 17, אבל העיצוב כבר יותר פשוט לעומת פרסומים מקוריים אלו, הקלת בנייה ושימוש.

<table><tbody><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Machine&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Leaf blower-vac</td><td>We used Oleo-Mac BV300, Made in Italy</td><td>Power: 1.0 kW, Displacement: 30.5 cc, Max air volume: 720 m&amp;sup3;/hr, Max air speed: 70 m/sec, Weight: 4.5 kg, Diameter of suction mouth: 113&amp;nbsp;mm</td><td>There are many different brands and models available. For comparable performance, the specifications concerning power and air speed should be similar to those presented here.</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Additional parts for modification&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>PVC pipe 1</td><td></td><td>Outer &amp;oslash; of end connected to the machine: 112 mm, Inner &amp;oslash; of end connected to PVC pipe 2: 110 mm</td><td>This is the cover of a &amp;oslash; 110 mm PVC pipe</td></tr><tr><td>PVC pipe 2</td><td></td><td>Outer &amp;oslash;: 110 mm, Length: 10 cm</td><td>Normal outer &amp;oslash; 110 mm PVC pipe; to connect PVC pipe 1 and 3</td></tr><tr><td>PVC pipe 3</td><td></td><td>Inner &amp;oslash; of big end: 110 mm, Inner &amp;oslash; of small end: 50 mm</td><td>PVC &amp;oslash; 110 mm to &amp;oslash; 50&amp;nbsp;mm downpipe reducer</td></tr><tr><td>PVC pipe 4</td><td></td><td>Outer &amp;oslash;: 50 mm, Length: 5&amp;nbsp;cm</td><td>Normal &amp;oslash; 50 mm PVC pipe; to connect PVC pipe 3 and 5</td></tr><tr><td>PVC pipe 5</td><td></td><td>Inner &amp;oslash;: 50 mm and 32&amp;nbsp;mm, Outer &amp;oslash; of small part: 38 mm</td><td>PVC &amp;oslash; 50 mm to &amp;oslash; 32 mm downpipe reducer</td></tr><tr><td>Hose</td><td></td><td>Outer &amp;oslash;: 40 mm</td><td>Wire-fortified, flexible plastic hose&amp;nbsp;</td></tr><tr><td>Metal gauze</td><td></td><td>Mesh &amp;oslash;: 1 mm, &amp;oslash;: 60 mm</td><td>Prevent the sampling net from being sucked into the machine</td></tr><tr><td>PVC pipe 6</td><td></td><td>Outer &amp;oslash; of small end: 38&amp;nbsp;mm, Inner &amp;oslash; of big end: 63&amp;nbsp;mm</td><td>PVC &amp;oslash; 32 mm to &amp;oslash; 63 mm reducer</td></tr><tr><td>PVC pipe 7</td><td></td><td>Outer &amp;oslash;: 63 mm, Length: 25 cm</td><td>Normal outer &amp;oslash; 63&amp;nbsp;mm PVC pipe</td></tr><tr><td>U-PVC glue</td><td></td><td></td><td>U-PVC glue; to connect PVC parts</td></tr><tr><td>Metal clamp hoops (2)</td><td>Flexible between &amp;oslash; 35 mm - 51 mm</td><td>To connect the hose with the PVC pipes</td><td></td></tr><tr><td>Thread seal tape</td><td>Width: 18mm</td><td>Seal the hose-PVC connections</td><td></td></tr><tr><td>Screws (3)</td><td></td><td>Length: 25&amp;nbsp;mm</td><td>To connect PVC pipe 1 with the suction mouth of the machine</td></tr><tr><td colspan="4">&lt;strong&gt;Sampling net and enclosure&lt;/strong&gt;</td></tr><tr><td>Sampling net</td><td>Mesh size &amp;oslash;: 0.3 mm, Width of the mouth: 10&amp;nbsp;cm, Height: 30 cm</td><td>The sampling net has a conical shape.</td><td></td></tr><tr><td>Bucket</td><td></td><td>Bottom &amp;oslash;: 40 cm, Volume: 50 L</td><td>Cut the bottom</td></tr><tr><td>Nylon sleeve</td><td></td><td>Mesh size &amp;oslash;: 0.3 mm, Length: 1 m</td><td>To cover the bucket as enclosure</td></tr></tbody></table>

modification and application of a leaf blower-vac for field sampling of arthropods

שדות אורזים לארח מגוון גדול של פרוקי רגליים, אבל חקירת הדינמיקה באוכלוסייה ואת האינטראקציות ביניהם הוא מאתגר. כאן אנו מתארים את השינוי ויישום של VAC-מפוח עלים לדגימת יניקה של אוכלוסיות פרוקי רגליים אורזות. כאשר משתמש בשילוב עם מארז, היישום של מכשיר מדגם זה מספק ערכות מוחלטות של האוכלוסיות של פרוקי רגליים כמספרים ליחידת שטח דגימה סטנדרטי. יעילות הדגימה תלויה באופן קריטי על משך הדגימה. בשנת יבול אורז בוגר, דגימה של שתי דקות בחלל סגור של 0.13 מ &#39;2 מניב יותר מ -90% מאוכלוסיית פרוקי הרגליים. המכשיר גם מאפשר דגימה של פרוקי רגליים שוכני על פני המים או הקרקע בשדות אורז, אבל זה לא מתאים דיגום מהיר חרקים מעופפים, כגון שפיראים טורפים או וטפילים hymenopterous גדול. VAC-המפוח השונה הוא פשוט לבנות, וזול יותר וקל יותר לטפל מאשר sampli יניקה המסורתיהתקני ng, כגון D-VAC. העלות הנמוכה הופכת את VAC-המפוח השונה גם נגיש לחוקרים במדינות מתפתחות.

<html> סך של 295 פרוקי רגליים נאספו 8 דגימות שלוש דקות מפוח-VAC מתוך יבול האורז בשלב הבשלת בפרובינצית ג&#39;יאנג-שי, סין, בשנת 2015. בספטמבר כדי לקבוע את הקשר בין התשואה היחסית (שיעור של פרוקי רגליים שנאספו במדגם משך) ולדגום, כל דגימה הייתה מחולקת לשש-דגימות משנה של 30 שניות כל אחד. המספר הממוצע של אנשים לדגימה היה 36.9 ± 4.1 (ממוצע ± SEM). בסך הכל שמונה הזמנות פרוקי רגליים נמצאו, עם פשפשאים (28.8%), Araneae (27.5%) ו Diptera (17.6%) להיות דומיננטי (איור 1). התשואה היחסית, מבוטא באחוזים של מספר פרוקי רגליים שנאספו לאחר שלוש דקות, הייתה 52.9% ± 5.1, 92.4% ± 1.9 ו 97.3% ± 0.9 לאחר 30 שניות, 2 ו -2.5 דקות, בהתאמה (איור 2). <html> 5 / 54655fig1.jpg &quot;/&gt; המינים בהרכב באיור 1. (ברמת סדר) של דגימות פרוקי הרגליים בפרברי העיר נאנצ&#39;אנג בפרובינצית ג&#39;יאנג-שי, סין. שמונה נלקחו דגימות עם VAC-מפוח של שלוש דקות כל אחד. ברים שגיאה מייצגים את שגיאת התקן של הממוצע. <a href="https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54655/54655fig1large.jpg" target="_blank">אנא לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.</a> <img alt="איור 2" src="/files/ftp_upload/54655/54655fig2.jpg" /> איור 2. תשואה יחסית המצטברת כפונקציה של משך דגימה כולל המבוססת על דגימות משנה של 30 שניות כל אחד. המספר הכולל של פרוקי רגליים שנאספה במשך זמן דגימה של שלוש דקות מוגדרות ב 100%. אין פרוקי רגליים נמצאו על בדיקה ויזואלית אחרי מדגם המפוח-VAC האחרון. ברי שגיאה מייצגים סטיות התקן של הממוצע של שמונה דגימות שלוש דקות.= &quot;Https://www-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/54655/54655fig2large.jpg&quot; target = &quot;_ blank&quot;&gt; לחץ כאן כדי לצפות בגרסה גדולה יותר של דמות זו.

Watch this Scientific Journal Video about Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods at JoVE.com

Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods

הערכת שפע פרוקי רגליים בגידולים היא קריטית על חקירת דינמיקה באוכלוסייה ואינטראקציות מינים. כאן אנו מתארים את השינוי ויישום של VAC-מפוח עלים לדגימת יניקה של פרוקי רגליים אורזים.

שינוי ויישום של VAC מפוח עלים עבור דגימת שדה של פרוקי רגליים

Rice fields host a large diversity of arthropods, but investigating their population dynamics and interactions is challenging. Here we describe the ...

modification-application-leaf-blower-vac-for-field-sampling

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Environment

8.7K Views.  Wageningen University.  הערכת שפע פרוקי רגליים בגידולים היא קריטית על חקירת דינמיקה באוכלוסייה ואינטראקציות מינים. כאן אנו מתארים את השינוי ויישום של VAC-מפוח עלים לדגימת יניקה של פרוקי רגליים אורזים. 

Video: Modification and Application of a Leaf Blower-vac for Field Sampling of Arthropods

Application of Two-spotted Spider Mite Tetranychus urticae for Plant-pest Interaction Studies

The two-spotted spider mite, Tetranychus urticae, is a ubiquitous polyphagous arthropod herbivore that feeds on a remarkably broad array of species, with more than 150 of economic value. It is a major pest of greenhouse crops, especially in Solanaceae and Cucurbitaceae (e.g., tomatoes, eggplants, peppers, cucumbers, zucchini) and greenhouse ornamentals (e.g., roses, chrysanthemum, carnations), annual field crops (such as maize, cotton, soybean, and sugar beet), and in perennial cultures (alfalfa, strawberries, grapes, citruses, and plums)1,2. In addition to the extreme polyphagy that makes it an important agricultural pest, T. urticae has a tendency to develop resistance to a wide array of insecticides and acaricides that are used for its control3-7.
T. urticae is an excellent experimental organism, as it has a rapid life cycle (7 days at 27 &#176;C) and can be easily maintained at high density in the laboratory. Methods to assay gene expression (including in situ hybridization and antibody staining) and to inactivate expression of spider mite endogenous genes using RNA interference have been developed8-10. Recently, the whole genome sequence of T. urticae has been reported, creating an opportunity to develop this pest herbivore as a model organism with equivalent genomic resources that already exist in some of its host plants (Arabidopsis thaliana and the&#160;tomato Solanum lycopersicum)11. Together, these&#160;model organisms could provide insights into molecular bases of plant-pest interactions.
Here, an efficient method for quick and easy collection of a large number of adult female mites, their application on an experimental plant host, and the assessment of the plant damage due to spider mite feeding are described. The presented protocol enables fast and efficient collection of hundreds of individuals at any developmental stage (eggs, larvae, nymphs, adult males, and females) that can be used for subsequent experimental application.

Application of Two-spotted Spider Mite Tetranychus urticae for Plant-pest Interaction Studies

Protocols for efficient preparation of homogenous samples of spider mites, infestation of experimental plants, and assessment of plant damage, as required for studies of plant-pest interaction were developed.

יישום של קרדית העכביש הבחין-Two<em&gt; Tetranychus urticae</em&gt; לאינטראקצית צמח-מזיקים ללימודים

The two-spotted spider mite, Tetranychus urticae, is a ubiquitous polyphagous arthropod herbivore that feeds on a remarkably broad array of species, with ...

Integrated Field Lysimetry and Porewater Sampling for Evaluation of Chemical Mobility in Soils and Established Vegetation

Potentially toxic chemicals are routinely applied to land to meet growing demands on waste management and food production, but the fate of these chemicals is often not well understood. Here we demonstrate an integrated field lysimetry and porewater sampling method for evaluating the mobility of chemicals applied to soils and established vegetation. Lysimeters, open columns made of metal or plastic, are driven into bareground or vegetated soils. Porewater samplers, which are commercially available and use vacuum to collect percolating soil water, are installed at predetermined depths within the lysimeters. At prearranged times following chemical application to experimental plots, porewater is collected, and lysimeters, containing soil and vegetation, are exhumed. By analyzing chemical concentrations in the lysimeter soil, vegetation, and porewater, downward leaching rates, soil retention capacities, and plant uptake for the chemical of interest may be quantified. Because field lysimetry and porewater sampling are conducted under natural environmental conditions and with minimal soil disturbance, derived results project real-case scenarios and provide valuable information for chemical management. As chemicals are increasingly applied to land worldwide, the described techniques may be utilized to determine whether applied chemicals pose adverse effects to human health or the environment.

Field lysimetry and porewater sampling allow researchers to evaluate the fate of chemicals applied to soils and established vegetation. The goal of this protocol is to demonstrate how to install required instrumentation and collect samples for chemical analysis during integrated field lysimetry and porewater sampling experiments.

משולב שדה Lysimetry וPorewater דגימה להערכת כימית ניידות בקרקעות וצמחייה הוקמה

Potentially toxic chemicals are routinely applied to land to meet growing demands on waste management and food production, but the fate of these chemicals ...

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and detritus, and excreting particulate and dissolved compounds, they serve as important agents for benthic-pelagic coupling. Accurately measuring the compounds removed and excreted by suspension feeders (such as sponges, ascidians, polychaetes, bivalves) is crucial for the study of their physiology, metabolism, and feeding ecology, and is fundamental to determine the ecological relevance of the nutrient fluxes mediated by these organisms. However, the assessment of the rate by which suspension feeders process particulate and dissolved compounds in nature is restricted by the limitations of the currently available methodologies. Our goal was to develop a simple, reliable, and non-intrusive method that would allow clean and controlled water sampling from a specific point, such as the excurrent aperture of benthic suspension feeders, in situ. Our method allows simultaneous sampling of inhaled and exhaled water of the studied organism by using minute tubes installed on a custom-built manipulator device and carefully positioned inside the exhalant orifice of the sampled organism. Piercing a septum on the collecting vessel with a syringe needle attached to the distal end of each tube allows the external pressure to slowly force the sampled water into the vessel through the sampling tube. The slow and controlled sampling rate allows integrating the inherent patchiness in the water while ensuring contamination free sampling. We provide recommendations for the most suitable filtering devices, collection vessel, and storing procedures for the analyses of different particulate and dissolved compounds. The VacuSIP system offers a reliable method for the quantification of undisturbed suspension feeder metabolism in natural conditions that is cheap and easy to learn and apply to assess the physiology and functional role of filter feeders in different ecosystems.

VacuSIP, an Improved InEx Method for In Situ Measurement of Particulate and Dissolved Compounds Processed by Active Suspension Feeders

We introduce the VacuSIP, a simple, non-intrusive, and reliable method for clean and accurate point sampling of water. The system was developed and evaluated for the simultaneous collection of the water inhaled and exhaled by benthic suspension feeders in situ, to cleanly measure removal and excretion of particulate and dissolved compounds.

VacuSIP, שיטת INEX משופרת<em&gt; באתרו</em&gt; מדידה של חלקיקים מומס תרכובות מעובד על ידי האכלת השעית Active

Benthic suspension feeders play essential roles in the functioning of marine ecosystems. By filtering large volumes of water, removing plankton and ...

Collection and Extraction of Occupational Air Samples for Analysis of Fungal DNA

Traditional methods of identifying fungal exposures in occupational environments, such as culture and microscopy-based approaches, have several limitations that have resulted in the exclusion of many species. Advances in the field over the last two decades have led occupational health researchers to turn to molecular-based approaches for identifying fungal hazards. These methods have resulted in the detection of many species within indoor and occupational environments that have not been detected using traditional methods. This protocol details an approach for determining fungal diversity within air samples through genomic DNA extraction, amplification, sequencing, and taxonomic identification of fungal internal transcribed spacer (ITS) regions. ITS sequencing results in the detection of many fungal species that are either not detected or difficult to identify to species level using culture or microscopy. While these methods do not provide quantitative measures of fungal burden, they offer a new approach to hazard identification and can be used to determine overall species richness and diversity within an occupational environment.

Determining the fungal diversity within an environment is a method utilized in occupational health studies to identify health hazards. This protocol describes DNA extraction from occupational air samples for amplification and sequencing of fungal ITS regions. This approach detects many fungal species that can be overlooked by traditional assessment methods.

אוסף והפקת האוויר תעסוקתית דוגמאות לניתוח של DNA פטרייתי

Traditional methods of identifying fungal exposures in occupational environments, such as culture and microscopy-based approaches, have several ...

Composition and Distribution Analysis of Bioaerosols Under Different Environmental Conditions

Variable microorganisms in particulate matter (PM) under different environmental conditions may have significant impacts on human health. In this study, we described a protocol for multiple analyses of the biological compositions in environmental PM. Five experiments are presented: (1) PM number monitoring by using a laser particle counter; (2) PM collection by using a cyclonic aerosol sampler; (3) PM collection by using a high-volume air sampler with filters; (4) culturable microbes collection by the Andersen six-stage sampler; and (5) detection of biological composition of environmental PM by bacterial 16SrDNA and fungal ITS region sequencing. We selected hazy days and a livestock farm as two typical examples of the application in this protocol. In this study, these two sampling methods, cyclonic aerosol sampler and filter sampler, showed different sampling efficiency. The cyclonic aerosol sampler performed much better in terms of collecting bacteria, while these two methods showed the same efficiency in collecting fungi. Filter samplers can work under low temperature conditions while cyclonic aerosol samplers have a sampling limitation for temperature. A solid impacting sampler, such as an Andersen six-stage sampler, can be used to sample bioaerosols directly into the culture medium, which increases the survival rate of culturable microorganisms. However, this method mainly relies on culture while more than 99% of microbes cannot be cultured. DNA extracted from the culturable bacteria collected by the Andersen six-stage sampler and samples collected by cyclonic aerosol sampler and filter sampler were detected by bacterial 16S rDNA and fungal ITS region sequencing.All the methods above may have wide application in many fields of study, such as environmental monitoring and airborne pathogen detection. From these results, we can conclude that these methods can be used under different conditions and may help other researchers further explore the health impacts of environmental bioaerosols.

Understanding the biological composition of environmental particulate matter is important for the study of its significant impacts on human health and disease spread. Here, we used three types of bioaerosol sampling methods and a biological analysis of airborne microbes to better explore airborne microbial communities under different environmental conditions.

הלחנה וניתוח הפצה Bioaerosols בתנאים סביבתיים שונים

Variable microorganisms in particulate matter (PM) under different environmental conditions may have significant impacts on human health. In this study, ...

A Method for Quantifying Foliage-Dwelling Arthropods

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density requires a method with high detection probability and a known sampling area. While most described methods provide a qualitative or semi-quantitative estimate adequate for describing species presence, richness, and diversity, few provide an adequately consistent detection probability and known or consistent sampling areas to provide an index or estimate with adequate precision to detect differences in abundance across environmental, spatial, or temporal variables. We describe how to quantify leaf-dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate and quantify them. As we demonstrate, this method can be used at a landscape scale to quantify leaf-dwelling arthropods with adequate precision to test for and describe how spatial, temporal, environmental, and ecological variables influence arthropod richness and abundance. This method allowed us to detect differences in density, richness, and diversity of leaf-dwelling arthropods among 5 genera of trees commonly found in southeastern deciduous forests.

We describe how to quantify leaf dwelling arthropods by sealing the leaves and end of branches in a bag, clipping and freezing the bagged material, and rinsing the previously frozen material in water to separate arthropods from the substrate for quantification.

שיטה לכימות עלווה-מגורים פרוקי רגליים

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimates of density ...

Quantifying Corticolous Arthropods Using Sticky Traps

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density requires a method with high detection probability and a consistent sampling area. We used manufactured sticky traps to compare abundance, total length (a surrogate for biomass), richness, and Shannon diversity of corticolous arthropods among the boles of 5 tree species. Efficacy of this method was adequate to detect variation in corticolous arthropods among tree species and provide a standard error of the mean that was &#60;20% of the mean for all estimates with sample sizes from 7 to 15 individual trees of each species. Our results indicate, even with these moderate sample sizes, the level of precision of arthropod community metrics produced with this approach is adequate to address most ecological questions regarding temporal and spatial variation in corticolous arthropods. Results from this method differ from other quantitative approaches such as chemical knockdown, visual inspection, and funnel traps in that they provide an indication of corticolous arthropod activity over a relatively long-term, better including temporary bole residents, flying arthropods that temporarily land on the tree bole and crawling arthropods that use the tree bole as a travel route from the ground to higher forest foliage. Furthermore, we believe that commercially manufactured sticky traps provide more precise estimates and are logistically simpler than the previously described method of directly applying a sticky material to tree bark or applying a sticky material to tape or other type of backing and applying that to the tree bark.

We describe a semi-quantitative approach of measuring characteristics of corticolous (bark-dwelling) arthropod communities. We placed commercially manufactured sticky traps on tree boles to estimate abundance, total length (a surrogate to biomass), richness, and Shannon diversity for comparison among tree species.

כימות Corticolous פרוקי רגליים באמצעות מלכודות דביק

Terrestrial arthropods play an important role in our environment. Quantifying arthropods in a way that allows for a precise index or estimate of density ...

Low-Cost Automated Flight Intercept Trap for the Temporal Sub-Sampling of Flying Insects Attracted to Artificial Light at Night

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive sampling of flying insects have a poor temporal resolution because it is time-consuming, costly and/or logistically difficult to perform. Effective sampling of flying insects attracted to artificial light at night (ALAN) requires sampling at user-defined time points (nighttime only) across well-replicated sites resulting in major time and labor-intensive survey effort or expensive automated technologies. Described here is a low-cost automated intercept trap that requires no specialist equipment or skills to construct and operate, making it a viable option for studies that require temporal sub-sampling across multiple sites. The trap can be used to address a wide range of other ecological questions that require a greater temporal and spatial scale than is feasible with previous trap technology.

To study the impacts of artificial light at night (ALAN) on nocturnal flying insects, sampling needs to be confined to nighttime. The protocol describes a low-cost automated flight intercept trap that allows researchers to sample at user-defined periods with increased replication.

מלכודת יירוט טיסה אוטומטית בעלות נמוכה עבור תת-דגימה זמנית של חרקים מעופפים הנמשכים לאור מלאכותי בלילה

Sampling methods are selected depending on the targeted species or the spatial and temporal requirements of the study. However, most methods for passive ...

Rapid Isolation of Wild Nematodes by Baermann Funnel

Beyond being robust experimental model organisms, Caenorhabditis elegans and its relatives are also real animals that live in nature. Studies of wild nematodes in their natural environments are valuable for understanding many aspects of biology, including the selective regimes in which distinctive genomic and phenotypic characters evolve, the genetic basis for complex trait variation, and the natural genetic diversity fundamental to all animal populations. This manuscript describes a simple and efficient method for extracting nematodes from their natural substrates, including rotting fruits, flowers, fungi, leaf litter, and soil. The Baermann funnel method, a classical nematology technique, selectively isolates active nematodes from their substrates. Because it recovers nearly all active worms from the sample, the Baermann funnel technique allows for the recovery of rare and slow-growing genotypes that co-occur with abundant and fast-growing genotypes, which might be missed in extraction methods that involve multiple generations of reproduction. The technique is also well suited to addressing metagenetic, population-genetic, and ecological questions. It captures the entire population in a sample simultaneously, allowing an unbiased view of the natural distribution of ages, sexes, and genotypes. The protocol allows for deployment at scale in the field, rapidly converting substrates into worm plates, and the authors have validated it through fieldwork on multiple continents.

This protocol outlines a method for efficiently extracting live nematodes from natural substrates in the field.

בידוד מהיר של נמטודות פראיות על ידי משפך ברמן

Beyond being robust experimental model organisms, Caenorhabditis elegans and its relatives are also real animals that live in nature. Studies of wild ...

Genetics

Electroantennographic Bioassay as a Screening Tool for Host Plant Volatiles

Plant volatiles play an important role in plant-insect interactions. Herbivorous insects use plant volatiles, known as kairomones, to locate their host plant.1,2 When a host plant is an important agronomic commodity feeding damage by insect pests can inflict serious economic losses to growers. Accordingly, kairomones can be used as attractants to lure or confuse these insects and, thus, offer an environmentally friendly alternative to pesticides for insect control.3 Unfortunately, plants can emit a vast number volatiles with varying compositions and ratios of emissions dependent upon the phenology of the commodity or the time of day. This makes identification of biologically active components or blends of volatile components an arduous process. To help identify the bioactive components of host plant volatile emissions we employ the laboratory-based screening bioassay electroantennography (EAG). EAG is an effective tool to evaluate and record electrophysiologically the olfactory responses of an insect via their antennal receptors. The EAG screening process can help reduce the number of volatiles tested to identify promising bioactive components. However, EAG bioassays only provide information about activation of receptors. It does not provide information about the type of insect behavior the compound elicits; which could be as an attractant, repellent or other type of behavioral response. Volatiles eliciting a significant response by EAG, relative to an appropriate positive control, are typically taken on to further testing of behavioral responses of the insect pest. The experimental design presented will detail the methodology employed to screen almond-based host plant volatiles4,5 by measurement of the electrophysiological antennal responses of an adult insect pest navel orangeworm (Amyelois transitella) to single components and simple blends of components via EAG bioassay. The method utilizes two excised antennae placed across a "fork" electrode holder. The protocol demonstrated here presents a rapid, high-throughput standardized method for screening volatiles. Each volatile is at a set, constant amount as to standardize the stimulus level and thus allow antennal responses to be indicative of the relative chemoreceptivity. The negative control helps eliminate the electrophysiological response to both residual solvent and mechanical force of the puff. The positive control (in this instance acetophenone) is a single compound that has elicited a consistent response from male and female navel orangeworm (NOW) moth. An additional semiochemical standard that provides consistent response and is used for bioassay studies with the male NOW moth is (Z,Z)-11,13-hexdecadienal, an aldehyde component from the female-produced sex pheromone.6-8

A method to rapidly screen host plant volatiles by measurement of the electrophysiological response of adult navel orangeworm (Amyelois transitella) antennae to single components and blends via electroantennographic analysis is demonstrated.

המבדק Electroantennographic ככלי מיון עבור נדיפים צמחים מארח

Plant volatiles play an important role in plant-insect interactions. Herbivorous insects use plant volatiles, known as kairomones, to locate their host ...

שינוי ויישום של VAC מפוח עלים עבור דגימת שדה של פרוקי רגליים

Summary

Explore More Videos

Chapters in this video

יישום של קרדית העכביש הבחין-Two