Diese Arbeit wurde durch das Nationale Institut für neurologische Erkrankungen und Schlaganfall R43 / R44 NS064661 finanziert.

Folgen Sie den Richtlinien des Instituts für Tierpflege für chirurgisches Werkzeug Sterilisation und das Protokoll, wie erforderlich sind, um den Richtlinien und erhalten Genehmigung durch Institutional Animal Care und Verwenden Committee Ihrer Institution (IACUC) zu ändern. 1. Chirurgische Vorbereitung <ol><li> Reinigen Sie und bereiten Sie den Sender, um sichere und sterile Operation zu gewährleisten. Nehmen Sie den Sender aus der antistatischen Verpackung und entweder Spray oder Einweichen in 70% Ethanol. Rinse-Sender mit steriler Kochsalzlösung und zwischen sterilen Watte Schwämme in steriler Kochsalzlösung getränkt oder halten Sie in steriler Kochsalzlösung eingetaucht. </li><li> Sammeln und sterilisieren die Instrumente für die Chirurgie erforderlich ist; Dampfautoklaven zur Sterilisation. Siehe Tabelle von Materialien und Reagenzien für die Liste von Operationswerkzeugen. </li></ol> 2. Chirurgische Implantation <ol><li> Betäuben Tier- und Aufrechterhaltung einer Narkose nach IACUC genehmigten Protokoll. Am Beginn und während surgery überprüfen Sie die Zehen Prise Reflex alle 15 min. Die mangelnde Reaktion zeigt ausreichende Anästhesie. <ol><li> Für Welpen, benutzen Anästhesie durch Isofluran (4%) mit O 2 (100%). Für Erwachsene, verwenden Ketamin (100 mg / kg) mit Xylazin (10 mg / kg). </li></ol></li><li> Fix Position in stereotaktischen Rahmen. Setzen Sie die Ohrspitzen bar in den Gehörgang. Nicht übermäßig anziehen Ohr Bars wie der Schädel ist sehr weich in jungen Rattenjungen. Sichern Sie die Anästhesie Nasenkegel. <ol><li> Halten Sie das Tier warm während der Operation, indem sie auf dem Heizkissen auf 37 ° C eingestellt. Bei erwachsenen Tieren gelten Schmiersalbe auf die Augen des Tieres. </li></ol></li><li> Sterilisieren Inzisionsstelle und pflegen sterile OP-Feld. <ol><li> Wischen Sie die Kopfhaut mit wechselnden Anwendungen von 70% Ethanol und betadine. Beginnen Sie in der Mitte der Kopfhaut und machen zunehmend breiteren konzentrischen Kreisen. </li><li> Decken Sie das Tier mit drapieren und Durchführung der Operation über drapiert Tier. Pflegen Sie die Sterile OP-Feld durch Auskleiden der OP-Set-up mit sterilen Tüchern, Spritzanlagen mit 70% Ethanol. </li><li> Tragen sterile Handschuhe und Mantel (oder als von der Institution erforderlich). Zur Aufrechterhaltung des sterilen Feldes, mit einem chirurgischen Assistenten. </li></ol></li><li> Einen Einschnitt auf der Kopfhaut des Tieres leicht hinter den Augen entlang der Mittellinie von etwa 2 cm. Seien Sie vorsichtig beim Einlegen der Skalpell als der Schädel ist immer noch sehr weich in jungen Rattenjungen. Einen einzigen Schnitt so der Schnitt blutet weniger und schneller heilt. </li><li> Setzen Sie den Schädel. Bereiten Sie einen sauberen und trockenen Bereich, um die Bindung zwischen dem Sender und den Knochen des Schädels zu maximieren. Verwenden Aneurysma-Clips auf die Kopfhaut zu erreichen. <ol><li> Ziehen Sie die Kopfhaut weg von der Mittellinie an vier Ecken. Geben Sie für anatomische Orientierungspunkte wie Bregma und Lambda in den Schädel. Denken Sie daran, Schädelknochen sind nicht Tiere in diesem Alter fusioniert. Verwenden Sie die Paxinos Atlas der stereotaktischen Koordinaten, um die richtige Position für die Bohrloch zu finden. </li></ol&gt; </li><li> Verwenden Sie einen Dremel-Text-Werkzeug mit einem Bohrer Klett. Erstellen Sie zwei Bohrlöcher in gewünschte Aufnahmepositionen wobei die Löcher größer als 300 &amp; mgr; m im Durchmesser. Legen Sie das Bohrloch für die Referenzelektrode über das Kleinhirn hinter der Lambda des Schädels. </li><li> Sicherzustellen, dass die Drähte an den Sender mit den Bohrlöchern ausgerichtet sind. Wenn die Elektrodendrähte nicht ausgerichtet sind, wird Klebstoff Kontamination der Elektroden wahrscheinlich, und führt zu einer schlechten Signals. Um die Drähte ausrichten, überprüfen Sie die Passform des Senders und vorsichtig biegen Elektroden, über die vorgesehenen Stellen für Bohrlöcher antreten. </li><li> Trim Elektrodenleitungen. Verwenden chirurgische Schere, um die Elektroden auf die gewünschte Länge zu trimmen. Die Elektrodentiefe ist wichtig für die Art der Aufzeichnung für das Experiment erforderlich ist (dh die Elektroden müssen dann über dura für EEG-Aufzeichnungen oder verwenden stereotaktischen Koordinaten definierten Gehirnstrukturen). </li><li> Cyanacrylat auf der Basis des Senders t Zügigo decken den Bereich zu vermeiden, achten Sie darauf, die Beschichtung der Elektroden. Cyanacrylatkleber ein elektrischer Isolator ist, kontaminierende Elektroden mit Leim wird in keinem Signal führen. <ol><li> Wenn die Aufnahme von tiefen Hirnstrukturen, montieren Sie den Sender auf dem Kanülenhalter und legen Sie sie in der stereotaktischen Arm für z-Achsen-Steuerung. Senken Sie den Sender mit der stereotaktischen Arm in die Tiefe anzueignen und legen Cyanacrylat Gel um den Sender. </li></ol></li><li> Gründlich trocknen, bevor Sie Schädel Sender zu starke Klebeverbindung zu gewährleisten. Apply Sender mit Cyanacrylat auf den Schädel überzogen. Achten Sie darauf, Elektroden mit entsprechenden Bohrlöchern auszurichten. <ol><li> Versuchen Sie, schädigende großen Gefäßstrukturen zu vermeiden. Halten Sie den Sender in Ort mit leichtem Druck für eine Minute. Verwenden Sie leichten Druck auf eine starke Bindung zwischen dem Sender und dem Schädel zu bilden. </li></ol></li><li> Gelten zusätzliche Cyanacrylat, genug, um vollständig zu versiegeln Sender / Schädel-Schnittstelle. Um sicherzustellen, agood Passform und starkes Band, maximieren die Oberfläche der Leim, der in Kontakt mit dem Schädel. Übernehmen Sie die Cyanacrylatklebstoff in einem Kreis um den Sender, um sicherzustellen, sowohl Schädel und die Wand des Senders sind abgedeckt. </li><li> Gelten chemischen Beschleuniger (0,1 ml) durch eine Spritze auf der Cyanoacrylat an der Basis des implantierten Sender. Verwenden Beschleuniger sparsam, dabei nicht auf benachbarte Gewebe anwenden. Anmerkung: Chemical Beschleunigung des Cyanoacrylat Aushärten gewährleistet, dass die feste Verbindung zwischen dem Sender und dem Schädel schnell gebildet. Cyanacrylat Beschleuniger ist nützlich, um schnelle Aushärtung des Klebstoffs, aber nicht notwendig ist. </li><li> Entfernen Sie den Beschleuniger durch Waschen der Bereich gründlich mit steriler Kochsalzlösung. Cyanacrylat-Beschleuniger kann Gewebereizung führen, wenn nicht aus dem Bereich der Schnitt gewaschen. Um den Bereich zu waschen, füllen Sie ein 1,0-ml-Spritze mit steriler Kochsalzlösung und spülen Sie den Bereich durch eine Spritzennadel. Im allgemeinen 0,5 ml Kochsalzlösung ist genug, um auszuwaschendas Gaspedal. </li><li> Naht der Haut rund um die Basis des Senders, aber nicht den Sender ab. Top der Sender muss über die Haut sein, neuronale Signale effizient zu übertragen. Haut vernünftigerweise eng um den Sender und den Kleber auf der Einheit sein. Verwenden Vicryl oder Seidenfaden (soft Gewinde); Haut in unreifen Tieren ist weich und kann leicht beschädigt werden, wenn weiche Nähte werden nicht verwendet. Für erwachsene Tiere, verwenden Sie Nahtmaterial. </li><li> Entfernen Tier von stereotaktischen Rahmen und legen Sie auf Heizdecke für die Wiederherstellung. </li><li> Stellen Sie sicher, Tiere warm (37 ° C) und ambulante (dh vollständig erholt) vor der Rückkehr in den Damm sind. Stellen Sie sicher, dass das Tier durch Kneifen der Haut auf dem Rücken des Tieres (wenn das Tier dehydriert, wird die Haut verformt bleiben) hydratisiert. Wenn Tier dehydriert ist, verwalten subkutane Injektion von Ringer-Laktat-Puffer. Stellen Sie das Tier nicht unbeaufsichtigt lassen, bis es ausreichend, das Bewusstsein wiedererlangt zu pflegenBrustlage. <ol><li> Verabreichen Buprenorphin (0,05 mg / kg) den Tieren zur postoperativen Schmerzbehandlung und einer subkutanen Injektion von 0,1 ml Bupivacain um die Injektionsstelle. Hinweis: Von Anfang bis Ende das gesamte Verfahren sollte in 5-10 Minuten für die Tiere in diesem Alter (postnatalen Tag 6) abgeschlossen sein. Operationszeit kann länger bei älteren Tieren zu nehmen. </li></ol></li></ol> 3. Pflege und Wohnen Hinweis: Einige Dämme nicht Welpen mit dem Gerät implantiert zu tolerieren. Dams müssen möglicherweise ausgewählt werden, die tolerant sind. Es ist akzeptabel für die Mutter zu Welpen um den Käfig, indem abholen vom Sender zu bewegen. <ol><li> Sobald die Tiere entwöhnt, einzeln haus sie, um das Entfernen der Geräte aus ihrem Käfig Kollegen zu vermeiden. </li><li> Euthanize Tiere letale Dosis von Pentobarbital (25 mg / kg) oder Isofluran (in einer Glasglocke), wenn Anzeichen von Leiden vorhanden sind. </li><li> Beachten Sie, einige Tierhaltung Käfige mit Drahteinlagen können unterKonflikt mit implantierten Sender. Achten Sie darauf, die Höhe der Drahteinlage überprüfen, um sicherzustellen, dass die Tiere den Sender zwischen den &#39;Bars&#39; der Drahteinlage gefangen nicht bekommen. Fragen Sie Ihren Tierarzt um Hilfe. </li></ol> 4. Aufnahme EEG <ol><li> Legen Sie das Tier in einem Käfig von selbst oder mit Wurfgeschwistern und dem Damm zusammengebracht. Jedoch nur an einer Stelle implantiert Tier in einem Käfig. Welpen in Ruhe lassen Sie nicht im Aufnahmeraum für mehr als 2 Stunden. Überwachen Sie die Tiere auf Anzeichen von Stress und Austrocknung. </li><li> Verbinden Sie das mitgelieferte Netzteil an den Empfänger Basis und überprüfen die Betriebsanzeige leuchtet. Schließen Sie den Empfänger an einen Basisdatenerfassungssystem mit (Bayonet Neil-Concelman) BNC-Kabel. </li><li> Legen Sie das Tier Käfig auf der Oberseite des Empfängers Basis (Abbildung 2). Das &quot;Signal&quot; Licht sollte leuchten, das einen Sender gefunden wurde. Daten können jetzt aufgezeichnet werden. </li><li> To Aufzeichnungsdaten, schließen Sie den Empfänger Basis, um einen Analog-Digital-Wandler und verbinden Sie den Konverter an einen Computer (Abbildung 1). </li><li> Stellen Sie die Abtastrate der Aufnahme. Sicherstellen, dass die Daten korrekt abgetastet. Wählen Sie mindestens 250 Hz Abtastrate (500 Hz empfohlen) für die Aufnahme (Bandbreite des Senders ist 0,1 bis 100 Hz). </li><li> Speichern digitalisierter Daten und Analyse mit Signalverarbeitungs-Softwarepakete wie Matlab. </li></ol> 5. EEG-Analyse - Allgemeine <ol><li> FFTs durchzuführen (schnelle Fouriertransformationen), um zeitliche EEG-Daten in den Frequenzbereich von 0-100 Hz umzuwandeln. </li><li> Führen Sie eine Schätzung der spektralen Leistungsdichte (PSD) von der FFT mit 256 Hann-Fenster Segmenten auf Basis der Welch-Verfahren und normalisiert von 10 x log 10 (PSD). Leistungsspektren zeigen die spezifischen Frequenzen, die das EEG-Signal über den gewünschten Zeitraum zu dominieren. </li><li> Gruppe von Daten über Tiere aus dem Mittelwert der PSD jedes Tieresim Laufe der Zeit abgestimmte Behandlungen. Erstellen Sie 95% Konfidenzintervall von 1,96 x Mittelwert (PSD) / Wurzel (n), wobei n die Anzahl der Tiere (PSD Spuren). Plotten die mittleren und 95% Vertrauensintervalle der Daten, um eine quantitative Bericht des gesamten Frequenzgehalt des EEG in Kohorten von Tieren wie dem Vergleich behandelten Gruppen gegenüber der Kontrollgruppe zu erzeugen. </li></ol> 6. Perinatale Hypoxie-Ischämie (HALLO) Model Protocol <ol><li> Betäuben P6 - 7 Rattenjungen mit Isofluran Anästhesie (4% bei 100% O 2), indem das Tier in einer Anästhesie (Feld mit Eingang von Anästhesie-Verdampfer). Am Beginn und während der Operation zu überprüfen die Zehen Prise Reflex alle 15 min. Die mangelnde Reaktion zeigt ausreichende Anästhesie. </li><li> Setzen Sie den Welpen auf dem Rücken, setzen den Hals und Gestrüpp mit wechselnden Anwendungen von 70% Ethanol und 10% betadine. Wiederholen Sie die Ethanol / betadine Peeling 3 mal. </li><li> Machen Sie eine 1 cm Inzision in der Haut des Halses mit scissors an der Mittellinie des Halses. Heben Sie die Haut mit einer Pinzette und den Schnitt mit einer Schere. Darauf achten, dass das Muskelgewebe geschnitten, wenn Sie den Schnitt. </li><li> Verwenden stumpf Technik zur Arteria carotis freizulegen. Um stumpf durchzuführen, verwenden Sie zwei Paare von stumpfen Nase Pinzette. Stecken Sie die Spitzen in das Gewebe ein und lassen Sie die Federwirkung des chirurgischen Instruments zu verbreiten das Gewebe. Wiederholen, bis der Halsschlagader freigelegt ist. Identifizieren Sie die Halsschlagader durch eine leuchtend rote Farbe und das Vorhandensein von sichtbaren Impuls. </li><li> Separate Halsschlagader von der Vagusnerv mit stumpfen Pinzette. Legen Sie die stumpfen Zange zwischen der Arterie und der Nerv. Lassen Sie die Zange und lassen Federwirkung des Werkzeugs trennen die Halsschlag vom Nervus vagus. </li><li> Ort Aneurysma Klemmen 4-5 mm voneinander entfernt auf der Halsschlagader. Achten Sie darauf, um die Arterie mit den Klemmen nicht beschädigen durch die Vermeidung von schnellen Bewegungen. </li><li> Cauterize der Halsschlagader zwischen den Aneurysma Schellen. Um die Arterie zu ätzen, Berühren Sie die Arterie zwischen den Klemmen mit einem heißen Ausbrenner Spitze. Nachdem die Arterie geschnitten wird, sicherzustellen, beide Enden richtig kauterisiert zu Blutungen zu vermeiden. </li><li> Entfernen Sie die Klammern, schließen Sie den Halsschnitt mit 3 Nähten. Nur Naht der Haut, darauf achten, dass das Muskelgewebe zu vernähen. </li><li> Bieten, damit sie für 1 Stunde zu erholen. Überwachen des Tieres Atmung und Blutungen aus dem Hals. Wenn die Blutung vorliegt, Funktionen darf das Tier HALLO (Schritt 6.10). </li><li> Legen Sie das Tier in einer temperaturgesteuerten Kammer bei 37 ° C und kontinuierlich einzuführen 8% O 2/92% N 2 -Gemisch in die Kammer während 2 Stunden. </li></ol>

<ol>
	<li>Boylan, G. B., Stevenson, N. J., Vanhatalo, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Monitoring+neonatal+seizures.">Monitoring neonatal seizures.</a> Semin. Fetal Neonatal Med. 18 (4), 208-208 (2013).</li><li>Panzica, F., Varotto, G., Rotondi, F., Spreafico, R., Franceschetti, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Identification+of+the+Epileptogenic+Zone+from+Stereo-EEG+Signals:+A+Connectivity-Graph+Theory+Approach.">Identification of the Epileptogenic Zone from Stereo-EEG Signals: A Connectivity-Graph Theory Approach.</a> Front Neurol. 6 (4), 175 (2013).</li><li>Arciniegas, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Clinical+electrophysiologic+assessments+and+mild+traumatic+brain+injury:+state-of-the-science+and+implications+for+clinical+practice.">Clinical electrophysiologic assessments and mild traumatic brain injury: state-of-the-science and implications for clinical practice.</a> Int J Psychophysiol. 82 (1), 41-52 (2011).</li><li>Mizrahi, E. M., Kellaway, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cerebral+concussion+in+children:+assessment+of+injury+by+electroencephalography.">Cerebral concussion in children: assessment of injury by electroencephalography.</a> Pediatrics. 73 (4), 419-425 (1984).</li><li>Pisarenco, I., Caporro, M., Prosperetti, C., Manconi, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=High-density+electroencephalography+as+an+innovative+tool+to+explore+sleep+physiology+and+sleep+related+disorders.">High-density electroencephalography as an innovative tool to explore sleep physiology and sleep related disorders.</a> Int J Psychophysiol. S0167-8760 (14), 3-8 (2014).</li><li>Konadhode, R. R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Stimulation+of+MCH+neurons+increases+sleep.">Stimulation of MCH neurons increases sleep.</a> J. Neurosci. 33 (25), 10257-10263 (2013).</li><li>Bertram, E. H., Williamson, J. M., Cornett, J. F., Spradlin, S., Chen, Z. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Design+and+construction+of+a+long-term+continuous+video-EEG+monitoring+unit+for+simultaneous+recording+of+multiple+small+animals.">Design and construction of a long-term continuous video-EEG monitoring unit for simultaneous recording of multiple small animals.</a> Brain Res. Protoc. 1-2 (1), 85-97 (1997).</li><li>Stables, J. P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Therapy+discovery+for+pharmacoresistant+epilepsy+and+for+disease-modifying+therapeutics:+Summary+of+the+NIH/NINDS/AES+Models+II+Workshop.">Therapy discovery for pharmacoresistant epilepsy and for disease-modifying therapeutics: Summary of the NIH/NINDS/AES Models II Workshop.</a> Epilepsia. 44 (12), 1472-1478 (2003).</li><li>White, A. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Efficient+unsupervised+algorithms+for+the+detection+of+seizures+in+continuous+EEG+recordings+from+rats+after+brain+injury.">Efficient unsupervised algorithms for the detection of seizures in continuous EEG recordings from rats after brain injury.</a> J. Neurosci. Methods. 152 (1-2), 255-266 (2006).</li><li>Bertram, E. H., Cornett, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+ontogeny+of+seizures+in+a+rat+model+of+limbic+epilepsy:+evidence+for+a+kindling+process+in+the+development+of+chronic+spontaneous+seizures.">The ontogeny of seizures in a rat model of limbic epilepsy: evidence for a kindling process in the development of chronic spontaneous seizures.</a> Brain Res. 625 (2), 295-300 (1993).</li><li>Bertram, E. H., Cornett, J. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+evolution+of+a+rat+model+of+chronic+spontaneous+limbic+seizures.">The evolution of a rat model of chronic spontaneous limbic seizures.</a> Brain Res. 661 (1-2), 157-162 (1994).</li><li>Williams, P. A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+spontaneous+recurrent+seizures+after+kainate-induced+status+epilepticus.">Development of spontaneous recurrent seizures after kainate-induced status epilepticus.</a> J. Neurosci. 29 (7), 2103-2112 (2009).</li><li>Kadam, S. D., White, A. M., Staley, K. J., Dudek, F. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Continuous+electroencephalographic+monitoring+with+radio-telemetry+in+a+rat+model+of+perinatal+hypoxia-ischemia+reveals+progressive+post-stroke+epilepsy.">Continuous electroencephalographic monitoring with radio-telemetry in a rat model of perinatal hypoxia-ischemia reveals progressive post-stroke epilepsy.</a> J. Neurosci. 30 (1), 404-415 (2010).</li><li>Galanopoulou, A. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Basic+mechanisms+of+catastrophic+epilepsy+--+overview+from+animal+models.">Basic mechanisms of catastrophic epilepsy -- overview from animal models.</a> Brain Dev. 35 (8), 748-756 (2013).</li><li>Lerche, H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Ion+channels+in+genetic+and+acquired+forms+of+epilepsy.">Ion channels in genetic and acquired forms of epilepsy.</a> J Physiol. 591 (Pt 4), 753-764 (2013).</li><li>Rossignol, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=WONOEP+appraisal:+new+genetic+approaches+to+study+epilepsy).">WONOEP appraisal: new genetic approaches to study epilepsy).</a> Epilepsia. 55 (8), 1170-1186 (2014).</li><li>Westmark, C. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Reversal+of+fragile+X+phenotypes+by+manipulation+of+A&#946;PP/A&#946;+levels+in+Fmr1KO+mice.">Reversal of fragile X phenotypes by manipulation of A&#946;PP/A&#946; levels in Fmr1KO mice.</a> PLoS One. 6 (10), e26549 (2011).</li><li>Sukhotinsky, I., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Optogenetic+delay+of+status+epilepticus+onset+in+an+in+vivo+rodent+epilepsy+model.">Optogenetic delay of status epilepticus onset in an in vivo rodent epilepsy model.</a> PLoS One. 8 (4), e62013 (2013).</li><li>Krook-Magnuson, E., Armstrong, C., Oijala, M., Soltesz, I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=On-demand+optogenetic+control+of+spontaneous+seizures+in+temporal+lobe+epilepsy.">On-demand optogenetic control of spontaneous seizures in temporal lobe epilepsy.</a> Nat Commun. 4, 1376 (2013).</li><li>Paz, J. T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Closed-loop+optogenetic+control+of+thalamus+as+a+tool+for+interrupting+seizures+after+cortical+injury.">Closed-loop optogenetic control of thalamus as a tool for interrupting seizures after cortical injury.</a> Nat Neurosci. 16 (1), 64-70 (2013).</li><li>Monod, N., Pajot, N., Guidasci, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=The+neonatal+EEG:+statistical+studies+and+prognostic+value+in+full-term+and+pre-term+babies.">The neonatal EEG: statistical studies and prognostic value in full-term and pre-term babies.</a> Electroecephalogr Clin Neurophysiol. 32 (5), 529-544 (1972).</li><li>Deshpande, L. S., Carter, D. S., Blair, R. E., DeLorenzo, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+a+Prolonged+Calcium+Plateau+in+Hippocampal+Neurons+in+Rats+surviving+Status+Epilepticus+Induced+by+the+Organophosphate+Diisopropylfluorophosphate.">Development of a Prolonged Calcium Plateau in Hippocampal Neurons in Rats surviving Status Epilepticus Induced by the Organophosphate Diisopropylfluorophosphate.</a> Toxicol Sci. 116 (2), 623-631 (2010).</li><li>Todorovic, M. S., Cowan, M. L., Balint, C. A., Sun, C., Kapur, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Characterization+of+status+epilepticus+induced+by+two+organophosphates+in+rats.">Characterization of status epilepticus induced by two organophosphates in rats.</a> Epilpsy Res. 101 (3), 268-276 (2012).</li><li>Lehmkuhle, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+simple+quantitative+method+for+analyzing+electrographic+status+epilepticus+in+rats.">A simple quantitative method for analyzing electrographic status epilepticus in rats.</a> J. Neurophysiol. 101 (3), 1660-1670 (2009).</li><li>Zayachkivsky, A., Lehmkuhle, M. J., Fisher, J. H., Ekstrand, J. J., Dudek, F. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Recording+EEG+in+immature+rats+with+a+novel+miniature+telemetry+system.">Recording EEG in immature rats with a novel miniature telemetry system.</a> J. Neurophysiol. 109 (3), 900-911 (2013).</li><li>Pouliot, W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+comparative+electrographic+analysis+of+the+effect+of+sec-butyl-propylacetamide+on+pharmacoresistant+status+epilepticus.">A comparative electrographic analysis of the effect of sec-butyl-propylacetamide on pharmacoresistant status epilepticus.</a> Neuroscience. 12 (231), 145-156 (2012).</li><li>Levine, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Anoxic-ischemic+encephalopathy+in+rats.">Anoxic-ischemic encephalopathy in rats.</a> Am J Pathol. 36, 1-17 (1960).</li><li>Vannucci, R. C., Vaccucci, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+model+of+perinatal+hypoxic-ischemic+brain+damage.">A model of perinatal hypoxic-ischemic brain damage.</a> Ann N Y Acad Sci. 835, 234-249 (1997).</li><li>Paxinos, G., Franklin, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Mouse Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2012).</li><li>Paxinos, G., Watson, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=.">.</a> The Rat Brain in Stereotaxic Coordinates. , (2013).</li><li>Bolkvadze, T., Pitkanen, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Development+of+post-traumatic+epilepsy+after+controlled+cortical+impact+and+lateral+fluid-percussion-induced+brain+injury+in+the+mouse.">Development of post-traumatic epilepsy after controlled cortical impact and lateral fluid-percussion-induced brain injury in the mouse.</a> J. Neurotrauma. 29 (5), 789-812 (2012).</li></ol>

Drs. Lehmkuhle und Dudek haben ein finanzielles Interesse an epitel, Inc., Entwickler der Epoch drahtlose Biopotential Aufzeichnungssystem.

Es kann sehr teuer in der langfristigen elektrographischen Aufnahmen in Kleintiermodellen von Krankheiten machen. Indem sie sich auf einfache Stromkreise und betont geringen Stromverbrauch haben wir in der Lage, einen Sendersystem (Abbildungen 1 und 2), die die Kosten für die langfristige Überwachung Experimente reduziert erstellen. Die Gesamtkosten von 6 Monaten Monitoring Experiment konnte so günstig wie $ 470 die Kosten für das Tier (~ $ 1,5 Tier pro Tag, $ 200 Sender), plus. Die geringe Größe des Senders ermöglicht eine kontinuierliche ununterbrochene elektrographischen Aufnahmen für Kleintiere, vorklinischen Modellen der menschlichen Krankheit, die nur sehr schwer mit angebundenen oder funkfrequenzbasierten drahtlosen Aufzeichnungssystemen (Figur 4) erhalten sind. Schließlich wird der Schädel montierten Art des Senders verringert die Operationszeit und die Belastung auf das Tier, das sonst beeinträchtigen können ein Experiment. Hier zeigen wir proof-of-principle Experimente aus drei diffErent experimentellen Modellen von Anfällen: perinatale Hypoxie-Ischämie 13, 27, 28 in einem Rattenjunges (Abbildung 4), DFP-induzierten Status epilepticus (Abbildung 5) und Beschlagnahmen in einem genetisch induzierten Modell der höhlenartigen Gefäßmissbildungen (Abbildung 6). Möglicherweise ist der wichtigste Aspekt für den Erhalt von artefaktfreie, langfristige elektrographischen Aufnahmen ist es, ungehemmt Elektrode Zugriff auf die kortikale Region von Interesse (Bild 4-6) zu überprüfen. Dazu gehört auch die gemeinsame Bezugs / Masseelektrode. Besonders kritisch ist Befestigung der Sender an den Schädel für epidurale EEG-Anwendungen. Während dieses Prozesses ist es versehentlich Mantel die Spitze der Elektroden mit Cyanoacrylat sichts der sehr kurzen Länge der Elektroden möglich. Beschichtung der Elektroden in Cyanacrylat können die EEG-Signale zu dämpfen oder vollständig zu isolieren, sie in den schlimmsten Fall. Ähnlich fehlende gute elektrische Verbindung bwischen der gemeinsame Bezugs / Boden und dem Gehirn des Tieres wird der ordnungsgemäße Betrieb des Differentialverstärkers in dem Sender zu verhindern, was zu einem elektrisch &quot;lauten&quot; Signal ausgegeben. Häufig nach der Operation, einwand Signale können für bis zu 48 Stunden aufgrund von Ödemen Umgebung der Bohrlöcher in den Schädel beeinträchtigt werden. Wie das Ödem nachlässt, Signale im Allgemeinen zu verbessern. Dies kann durch Plazieren der Elektroden auf der Oberfläche des Schädels, ohne Bohrlöcher vermieden werden. Die Folgen dieses Prozesses werden zur Beschichtung erhöhtes Potenzial der Elektroden mit Cyanacrylat, reduziert hochfrequente Aktivität aufgrund des Tiefpass elektrischen Eigenschaften der Schädelknochen und das Potential, um elektrisch zu isolieren die gemeinsame Bezugs / Boden Rendering Rauschen in den Signalen. Üben korrekte Platzierung der Elektroden mit einem dünnen Stück Holz oder Furnier, die die Dicke der Maus oder Ratte Schädel imitiert erfolgen. Die Ergebnisse in diesem Manuskript vorgestellt veranschaulichen die quakeit der Aufnahmen, die mit WLAN-Telemetrie-Technologie erhältlich ist. Chirurgische Implantation unter Verwendung der hierin beschriebenen Verfahren kann so wenig wie 10 Minuten dauern, abhängig von der Komplexität der Operation. Chirurgischer Zugang zu tiefen Hirnstrukturen, wie beispielsweise die CA1-Region des Hippocampus, ist es am besten, den Sender an einen Mikromanipulator zu einem stereotaktischen Rahmen befestigt zu befestigen. Der Mikromanipulator wird der Chirurg mit der Genauigkeit liefern, um die Sender nach veröffentlicht stereotaktischen Koordinaten im Atlas der Maus 29 und 30 Ratten Gehirn zu implantieren. Dies kann durch einfaches Verriegeln ein Stück hypodermischen Nadel Schlauch an den Sender mit Cyanoacrylat und dann Montieren der Injektionsnadel in den Mikromanipulator ausgeführt werden. Mikromanipulator Steuerung der x-, y- und z-Koordinaten werden zusätzliche Stabilität bei der Montage der Sender an den Schädel vor dem Nähen die Haut verschlossen. Die Zugabe von Knochenschrauben auf der ganzen perimeter des Senders kann helfen, zu verankern Sie den Sender auf den Schädel, auch wenn sie nicht notwendig sind. Knochenschrauben wirksam sein könnte, jedoch in bestimmten Tiermodellen von Anfällen oder Epilepsie, wie zum Beispiel der Lithium-Pilocarpin behandelten erwachsenen Ratte. Diese Tiere sind in der Regel spontaner Krampfanfälle mit intensiven motorische Aktivität, die den Sender während des Anfalls beschädigen können. Zusätzliche Komplexität könnte diesen Versuchen zugegeben werden. Zum Beispiel ist der Sender mit vielen verschiedenen Modellen von traumatischen Hirnverletzung, wie kontrollierte kortikalen Auswirkungen 31 kompatibel. Die Haltbarkeit der Sendervorrichtung wurde durch Implantieren Tiere mit Sendern an P7 und dann das Gehäuse sie im Tieranlage getestet. Nach 12 Monaten, die meisten Implantate intakt auf dem Schädel. Als Tiere wurden eingeschläfert, erschien die Schädel, normal zu sein und der Sender wurde in den Schädelknochen eingebettet ist, erfordern erhebliche Kraft auf sie zu extrahieren. Vorsicht beim tiefen Hirnstrukturenuntersucht; so wächst das Gehirn, und die Elektroden stationär bleiben, würde die endgültige Position der Elektroden sich ändern könnte werden. Für die hier beschriebenen Techniken wurden die Elektroden in der Regel oberhalb der Dura, die sowohl das Gehirn und Schädel wachsen gelassen und für die Elektroden positioniert sind, um in ihren ursprünglichen Positionen verbleiben. Der limitierende Faktor in wie lange der Sender kann verwendet werden, ist die Batteriegröße (dh bis der Akku leer ist). Ein in sich geschlossenes monolithischer Bauweise (dh der Sender in harten Epoxid eingebettet) des Gehäuses des Senders bietet sich mit unreifen Jungtiere mit der Staumauer und ihre Wurfgeschwister untergebracht zu verwenden. Oft Co-Gehäuse implantiert Tiere mit verdrahteten Anbindehaltung Ergebnisse in der Zerstörung des implantierten Hardware oder Kannibalisierung der Jungtiere durch den Damm. Die glattwandige Form des Senders ermöglicht die Implantation praktisch ohne Hardware-Ausfall oder Verlust der Jungtiere durch Kannibalisierung. <p class = &quot;jove_content&quot;&gt; Die Low-Power-kapazitive gekoppelte Übertragungsschema in diesem System eignet sich gut für den Einsatz in vielen verschiedenen experimentellen Szenarien wie die Platzierung in einem temperaturgeregelten Inkubator oder sogar für die Verwendung mit Versuchsvorrichtungen wie Plethysmographie Kammern. Ebenso kann die Form der Empfängerantenne manipuliert werden, um in verschiedenen Verhaltens Umgebungen, wie die erhöhte T-maze.The Reichweite des Senders angepasst werden nur wenige Zoll da der Sender in der Lage zu sein, &quot;drive&quot; (kapazitiv to) der Empfängerantenne und stützt sich auf das Tier in Standardnagetierkäfighaltung oder geeigneten Käfig von der Empfangsantenne behandelte Oberfläche untergebracht werden. Der Sender dient als ein Pol eines elektrischen Feldes, während die Körper des Tieres nach einem anderen Pol wirkt. Das Feld ist derart, dass bestimmte Orientierungen, wie zum Beispiel 90 ° außer Phase mit der Empfangsantenne, wird fehlschlagen, um die Empfangsantenne, was zu fahren ein &quot;drop out&quot;. Dies ist ein ziemlich seltenes Ereignis. Zukünftige Arbeiten mit dieser Technologie ermöglicht die Aufzeichnung von mehreren Tieren in der gleichen Käfig, der Internatskosten zu senken und damit für die soziale Interaktion werden. Die weitere Entwicklung wird beinhalten die Erhöhung der Anzahl der Kanäle, einschließlich Temperatur und Elektromyogramm. Das aktuelle Design des Gerätes bietet eine Bandbreite, die für die Umkodierung der klassischen EEG Bands, die nicht geeignet für die Aufnahme von schnellen Wellen oder hochfrequenten Schwingungen ist optimiert ist. In der Zukunft kann die Vorrichtung modifiziert werden, um die Hochfrequenzkomponenten des Signals aufnehmen, aber auf Kosten der Lebensdauer der Batterie. Verschiedene Arten von Wandlern wird der Blutdruck und der Druck-Volumen und sogar beim Aufbau einer Sendeelektrodenanordnung durch den Anwender spezifizierte Abmessungen nach der stereotaktischen Koordinaten des gewünschten Gehirnstrukturen umfassen.

Die älteste - und immer noch die am weitesten verbreitete - Technik zum Aufzeichnen Biopotentialen im Gehirn ist das Elektroenzephalogramm (EEG). Es ist klinisch für neurologische Anomalien verwendet, einschließlich Anfallserkennung 1, Lokalisierung von Anfallsherde 2, und die Diagnose von Gehirnerschütterung 3,4. Diese Technik wird auch häufig verwendet, um grundlegende Informationen über die Mechanismen der Schlaf bereitzustellen und Schlafstörungen 5,6 diagnostizieren. Wie in der klinischen Diagnose der Epilepsie hat das EEG werden für translationale Forschung in Tiermodellen sowohl genetische und erworbene Epilepsie unverzichtbar. In aktuellen Forschungsanwendungen, &quot;verdrahtet&quot; oder &quot;tethered&quot; Aufnahmen sind Standard und werden routinemäßig bei erwachsenen Nagetieren für Wochen zu einer Zeit 7 durchgeführt. , Elektrisches Rauschen, Bewegungsartefakte, und die Gefahr, dass Tiere sich durch Ziehen am Kabel zu verletzen angebunden haben jedoch lange compromised diese Experimente. So verbessert experimentellen Bedingungen und Erfolgsquoten, müssen wir neue Technologien, die für die Beseitigung der drahtgebundenen Schnittstelle zwischen dem Tier und Instrumentierung erlauben würde zu entwickeln. Der offensichtlichste Bereich der Entwicklung ist Konzeption und Umsetzung von Telemetriesysteme, die für hochwertige Aufnahmen ermöglicht, und gleichzeitig eine lange Lebensdauer und die Minimierung von Beschwerden für tierische Subjekte. Die Reduzierung der physischen Größe dieser Geräte wird die translationale Forschung in neugeborenen und jungen Nagetiermodellen neurologischer Erkrankungen ermöglichen. Low Kanalanzahl EEG bei Ratten werden in großem Umfang eingesetzt, um neue Therapien zu entwickeln, um zu unterdrücken epileptische Anfälle in der Lage, Übersetzung auf den Menschen. Aufnahmen von einer oder mehreren Stellen für längere Zeit öffnen viele Möglichkeiten für den Einsatz von Tiermodellen der Epilepsie in der translationalen Forschung. Ein Großteil der zeitgenössischen Forschung in diesem Bereich zielt darauf ab, das Auftreten von chronischen Seiz blockierenmen oder die Entwicklung von Epilepsie (dh Epileptogenese), und solche Forschungsanstrengungen erfordern umfangreiche wenn nicht kontinuierliche EEG-Monitoring der Wirksamkeit der vorgeschlagenen Therapie 8 zu untersuchen; eine kleine, einfache, Telemetriesystem mit einem, zwei oder vier Kanälen, die zwischen 0,1 bis 100 Hz pro Kanal wird stark fördern diese Art der translationalen Forschung. Elektrographisches Anfälle treten oft mit minimalem Verhalten (bestimmt ohne Krämpfe), die die Nützlichkeit des Assays, die auf Verhaltens Anfälle einschränkt. Die Strategie der Kombination von EEG-Aufzeichnung und gleichzeitige Videoüberwachung erlaubt es die Möglichkeit der Erfassung jedes Beschlagnahme; und darüber hinaus können diese Analyseansätze quantitative Bewertung der interiktalen Spitzen, die im epileptischen Gehirn zwischen &quot;iktale&quot; (oder Beschlagnahme) Ereignisse 9 auftreten kann. Darüber hinaus, für die die Wireless-Technologie ist die Fähigkeit, kontinuierlich qualitativ hochwertige Low-Artefakt EEG-Aufzeichnungen zu erhalten, in der Regelüberlegen, werden für die Entwicklung der Nutzung von Computer-basierte Algorithmen zum Studium spezifischer EEG-Wellenformen (zB theta, gamma), sowie die automatische Erfassung der Anfälle, die Arbeitsbelastung des Experimentators erheblich reduziert ermöglichen. Der primäre präklinischen Modell für die Untersuchung chronischer Epilepsie nach einer Hirnschädigung ist die erwachsenen Ratte oder Maus, entweder durch eine chemokrampf (dh Kainsäure oder Pilocarpin) oder elektrisch induzierten Status epilepticus (SE), die durch eine chronische Epilepsie folgt. Unter diesen Bedingungen können die schweren Krämpfen mit SE oder den nachfolgenden Anfälle bei epileptischen Tieren verbunden, um Verletzungen durch das Tier Reißen oder Ziehen an der Leine und Lösen der Schrauben, die die Befestigung des Kopfhaube halten führen. Letztlich ist dieses Problem in der Regel beendet diese Experimente und dennoch die Notwendigkeit, die langfristige Hochauflösung EEG Aufnahmen für Versuche zur Entwicklung neuer Therapien für chronische Ziel erreichen, ist esEpilepsie ist von größter Bedeutung. Zusätzlich Gehäuse, Überwachung und Analyse der Daten aus Langzeit implantierten Tieren ist eine erhebliche Investition in beiden direkten Kosten und Ermittler Zeit; daher kann eine vorzeitige Beendigung des Versuchs in erheblichen Kosten für die Forscher führen. Da diese Modelle von Epilepsie Fortschritte, die Anfälle in der Regel häufiger und schwerer 10-12, erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass die Tiere verletzt, ebenso wie ihre Nützlichkeit für die Entwicklung neuer Therapien am größten wird. Diese Tiere können routinemäßig entwickeln Dutzende von Krampfanfälle pro Tag, häufig in Clustern 13 auftritt. Wahrscheinlich eine der wichtigsten Entwicklungen in der biomedizinischen Wissenschaft ist die Verwendung von Gen-Targeting in Mausmodellen. Dieser Ansatz hat erlaubt, und wird auch weiterhin zu ermöglichen, die Entwicklung von Tiermodellen für genetische Epilepsie, die tatsächlichen menschlichen Syndrome 14-16 reproduzieren. Genetische Manipulationen durchgeführt werden kann alsProof-of-Prinzip Therapien zur epileptische Anfälle unterdrücken oder sogar die Entwicklung von Epilepsie nach einer Hirnschädigung 17-20 blockieren. Diese Art der Forschung dramatisch aus der Fähigkeit, Hochdurchsatz-kontinuierliche Erfassung der EEG führen profitieren. Derzeit ist es möglich, von Mäusen, die entweder tethered oder Telemetriesysteme aufzuzeichnen; aber die Herausforderungen der Beschaffung qualitativ hochwertiger sind artefaktfreie Aufnahmen wesentlich schwieriger als Ratten und oft erfordert verschiedene Formen von Rucksäcken, die Mäuse kontinuierlich versuchen, zu entfernen. Stress könnte Beschlagnahme Schwere, Häufigkeit und / oder Dauer zu erhöhen, und damit letztlich die Epilepsie der Versuchstiere zu ändern, damit verwechseln die Studie. Eine kleine, leichte und flache Minitelemetriesystem wird die Aufnahme des Langzeit-EEG von genetischen Mausmodelle für menschliche Krankheiten zu erleichtern. Zusätzlich zu den oben beschriebenen Problemen, Aufzeichnungs EEG in unreifen Nagetiermodells Krankheit hat seine eigene einzigartige Reihe von Herausforderungen. Jungtieren kann so wenig wie 6 g (P8 Maus) 17 g (P6 Ratte) wiegen. Es ist praktisch unmöglich, serielle Mehrtages tethered EEG-Aufzeichnungen aufgrund der erhöhten Belastung durch Fangband und die Unfähigkeit zu machen, um natürliche Aufzucht der Welpen durch den Damm zu ermöglichen. Bis Tiere entwöhnt sind, müssen sie in der Obhut des Staudamms zu bleiben. Der Damm ist anfällig für jede externalisiert Verbindungsanordnung auf der Welpe zu zerstören, beenden Sie den Welpen, und in einigen Fällen zu kündigen die gesamte Wurf. Darüber hinaus macht die unreifen Nagetier Schädel es schwierig, jede Elektrode Sockel auf den Schädel mit mechanische Integrität zu montieren. Diese Herausforderungen, die spezifisch für unreife Nagetiere, erfordern eine neue Lösung für die Herstellung von robusten, langfristige elektrografischen Aufnahmen. Hier konzentrieren wir uns auf was die Implantation und Aufzeichnung von EEG mit einem neuartigen Mini-Funksender und Gegenwart drei Proof-of-principle Experimente als Beispiele für die Verwendung der Miniatur drahtlose Telemetriesystem: 1) die imreifen Rattenjunges Modell der Hypoxie-Ischämie, 2) erwachsenen Mäusen mit DFP behandelt, um Status epilepticus und anschließende spontane Anfälle, und 3) genetisches Modell von Gefäßmissbildungen, die in höhlenartigen Anfällen und Tod in erwachsenen Mäusen führen zu induzieren. Die Miniatur drahtlose Telemetrie-System wurde entwickelt, um vier Hauptanforderungen erfüllen: (1) minimal invasiven chirurgischen Implantation; (2) die Kompatibilität für die Unterbringung von Nagetier-Welpen mit dem Damm und Wurf; (3) geringer Stromverbrauch des Geräts, so dass für Monate kontinuierlicher Überwachung ohne erneuten chirurgischen Implantation; und (4) die Fähigkeit, qualitativ hochwertige EEG-Wellenformen mit minimaler Bewegungsartefakte zu erfassen. Der Funksender wiegt &lt;0,6, 2,3 und 4 g und &lt;0,3, 0,8 und 1,4 cm 3, je nach Batterie mit einer Grundfläche von 5 x 7, 7 x 9 oder 7 x 12 mm, die leicht montiert auf den Schädel des Tieres mit Cyanoacrylat-Gel. Keine Knochendübel sind notwendig, um sicher zu befestigen Sie das Gerät ander Schädel, die Verringerung der Anzahl der Löcher, die in den Schädel und die Operationszeit gebohrt werden müssen. Das Gerät ist zur Amplifikation zwei EEG-Kanäle oder lokale Feldpotentiale von Hirnstrukturen, wie dem Hippocampus, als 2 Wochen, 2 Monaten oder 6 Monaten bei dieser Konfiguration. Die geringe Größe des drahtlosen Senders verringert das Infektionsrisiko erhöht Tier Mobilität und senkt die Morbidität und Mortalität, die sonst erhöht die Zeit, Geld und Anzahl der Tiere für ein Experiment benötigt. Die gesamte Elektronik und Batterie sind in medizinischer Qualität Epoxy, die das Gerät wasserdicht und widerstandsfähig macht, die Verhinderung der Staumauer aus Kauen auf dem Sender, die sonst machen das Gerät funktionsunfähig könnte vergossen. Im Gegensatz zu Hochfrequenzsender, verwendet das Telemetriesystem eine kapazitive Kopplung zwischen dem Sender und einer Empfangsantenne, die unter dem Tierkäfig befindet, so dass der Benutzer, um Tiere in Standardnagetier Gehäuse halten. Mehrere Kanäle recording ermöglichen die Erfassung von multimodalen Biopotentialen, wie EKG und Elektroenzephalogramm. Tiermodelle von Komorbiditäten wird durch die Fähigkeit, während Biopotentiale Verhalten 21-23 aufzeichnen profitieren. Die Kombination von Verhalten mit EEG-Monitoring wird den Forschern ein besseres Werkzeug für die Forschung und vorklinischen Studien.

<table><tbody><tr><td>Sterile Surgical Gloves</td><td>Protective Industrial Products</td><td>100-3201 PF</td><td>Powder Free Sterile Latex Surgical Glove</td></tr><tr><td>Scalpel Handle</td><td>FST</td><td>10003-12</td><td></td></tr><tr><td>Scalpel Blade #15</td><td>FST</td><td>10015-00</td><td></td></tr><tr><td>Fine Scissors</td><td>FST</td><td>14090-09</td><td></td></tr><tr><td>Burr tool</td><td>Ram Products, Inc.</td><td>Microtorque II</td><td></td></tr><tr><td>Fine burr</td><td>FST</td><td>19007-07</td><td></td></tr><tr><td>Aneurism clip</td><td>ROBOZ</td><td>RS-5422</td><td></td></tr><tr><td>Toothed Forceps</td><td>FST</td><td>11022-14</td><td></td></tr><tr><td>Cotton-Tipped applicators</td><td>McKesson</td><td>24-103</td><td></td></tr><tr><td>Needle Driver</td><td>WPI</td><td>521725</td><td>Olsen-Hegar Needle Holder</td></tr><tr><td>Cyanoacrylate gel</td><td>Henkel</td><td>Loctite 4541</td><td></td></tr><tr><td>Cyanoacrylate accelerant</td><td>Henkel</td><td>Loctite 7452</td><td></td></tr><tr><td>Suture</td><td>Ethicon</td><td>Vicryl RB-1 J304</td><td></td></tr><tr><td>Elecrocautery disposable</td><td>Bovie</td><td>AA01</td><td>Fine Tip</td></tr><tr><td>Surgical Tray</td><td>FST</td><td>20311-21</td><td></td></tr><tr><td>Epitel Receiver Base</td><td>Epitel Inc</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Epitel wireless transmitter</td><td>Epitel Inc</td><td>N/A</td><td></td></tr><tr><td>Biopac digitizer</td><td>Biopac</td><td>MP-150</td><td></td></tr><tr><td>PC-compatible computer</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

long-term continuous eeg monitoring in small rodent models of human disease using the epoch wireless transmitter system

Viele progressive neurologische Erkrankungen des Menschen, wie Epilepsie, erfordern präklinische Tiermodelle, die sich langsam entwickeln die Krankheit, um Eingriffe in den verschiedenen Stadien des Krankheitsprozesses zu testen. Diese Tiermodelle sind besonders schwierig zu implementieren in unreifen Nagetiere, eine klassische Modellorganismus für Laborstudie dieser Erkrankungen. Aufnahme kontinuierliche EEG in jungen Tiermodellen von Anfällen und anderen neurologischen Erkrankungen stellt eine technische Herausforderung aufgrund der geringen Baugröße der jungen Nagetiere und ihre Abhängigkeit von der Staumauer vor der Entwöhnung. Deshalb gibt es nicht nur ein eindeutiger Bedarf an der Verbesserung der präklinischen Forschung, die eine bessere Identifizierung werden diese Therapien geeignet für die Übersetzung in die Klinik, sondern auch eine Notwendigkeit für neue Geräte zur Aufzeichnung kontinuierliche EEG in unreifen Nagetiere. Hier beschreiben wir die Technologie und demonstrieren die Verwendung einer neuen Miniaturtelemetriesystem, das speziell für die Verwendung in unreifen Ratten o konstruiertr Mäusen, die auch wirksam für die Verwendung bei erwachsenen Tieren ist.

Wir entwickelt und das Konzept der Aufnahme EEG aus einer erwachsenen Nagetieren, in Abbildung 1 schematisch umgesetzt Für die IACUC Genehmigungsprozess muss das Design auch in die bestehenden institutionellen Tieranlagen zu integrieren. Daher wurde das System entwickelt, um einfach in eine Standard-Tierhaltung, ohne Verwendung zusätzlicher Raum installiert werden: das Tier in einem regelmäßigen &quot;Tierhaltung-issue&quot; Gehäusekäfig, der innerhalb eines Empfängers mit integriertem Faraday-Käfig gebracht wird, zu reduzieren untergebracht elektrisches Rauschen. Das Signal von jedem Empfängerbasis über Seile mit einem Digitalisierer, der an den Computer (1) verbunden ist, durchgeführt. Ein einzelner Computer benötigt wird, um Daten von bis zu 32 Tieren aufgezeichnet gleichzeitig, je nach der Fähigkeit des Datenerfassungssystems des Benutzers zu sammeln. Diese Art von Setup wenig Energie verbraucht und erzeugt wenig Wärme, eine Funktion, mit klimatisierten Tieranlagen kompatibel. Daten könnendargestellt in Echtzeit auf dem Monitor, so dass experimentelle Beobachtung und gespeicherte langfristig auf externe Festplatten (10 TB-Speichereinheit). Um Schäden durch Wurf Kollegen und pup Kannibalisierung durch den Damm zu minimieren, haben wir getestet, verschiedene Sender Formfaktoren. Der letzte Entwurf war eine gewölbte Zylinder; eine Form schwierig für Ratten zu beißen und Schäden. Ein einzelner Sender auf dem Schädel eines erwachsenen Ratte ist in 2A gezeigt, und eine frühe Version mit hoher Dichte (32 Tier) -Empfänger Basen und Aufzeichnen Riggs, in dem Standard-Nagetier Gehäuse platziert ist in 2B gezeigt. Energieeffizienz war ein äußerst wichtiger Aspekt; wählten wir kapazitive Kopplung als ein Datenübertragungsprotokoll. Die folgende Konstruktion ermöglicht die Aufzeichnung kontinuierlicher EEG für über 6 Monate, je nach Batteriekapazität (2A). Mäuse im Alter von postnatalen Tag 12 (P12, 3A) und Ratten im Alter von P6 (Figure 3B) vertragen den Sender ganz gut. Kleben der Sender an den Schädel mit Cyanacrylat können Tiere mit dem Sender in das Erwachsenenalter (3C) zu wachsen, während die kontinuierliche Erfassung von EEG-Daten. Die einzigartige miniaturisierten Formfaktor des Senders und Wireless-Schnittstelle eignet sich für die Arbeit mit Tiermodellen der neo- und perinatale Erkrankungen. Die Daten in Abbildung 4 zeigt zwei Kanäle des EEG-Aufzeichnung von subakuter Anfallsaktivität, die hypoxisch-ischämischen (HALLO) Infarkt (Karotis Ligation, gefolgt von 2 Stunden nach der Hypoxie mit 8% O &amp; sub2; -Mischung) in einem P7 Sprague-Dawley folgt Rattenjunges, 13. Die HALLO-Behandlung führt zu einer starken Schädigung der Hemisphäre ipsilateral zur ligiert carotis. Hier werden die Aufnahmen zeigen einen Cluster aus zwei Anfälle über beide Hemisphären des Gehirns verletzt verallgemeinert. Die schwarze Kurve zeigt EEG-Aktivität in der Hemisphäre kontralateral zur Läsion, dieblaue Kurve zeigt EEG in der ipsilateralen Hemisphäre (also im Bereich der Läsion). Während die Anfallsaktivität in beiden Hemisphären des Gehirns vorhanden ist, die ispilateral Hemisphäre zeigt EEG Hintergrundausblendung, was auf anhaltende Hirnschäden 21 ist. Status epilepticus kann bei erwachsenen Ratten durch Injektion der Tiere mit dem Organophosphat, DFP 22,23 induziert werden. Die Daten in 5 zeigen, sich wiederholenden EEG-Entladungen, was auf Status epilepticus (siehe zeitliche Erweiterungen 5A, B). Unterhalb der Probe Spuren hat der Zeitverlauf der Status epilepticus über 12 Stunden mit einer nichtlinearen Mischeffekte Modell, das die Intensität der Anfälle über die Zeit quantifiziert analysiert. Der Schweregrad der Status epilepticus durch EEG-Strom in der Gamma-Band (20-60 Hz) definiert. Dabei wurde die oben beschriebene Leistung über 12 Tieren gemittelt und aufgetragen über 12 Stunden mit 95% Vertrauensintervallen. Th<html> e Daten zeigen einen deutlichen Anstieg der Gamma-Energie innerhalb der ersten Stunde des DFP-Behandlung, die über 12 Stunden, in der Tiere wurden kontinuierlich überwacht fortbesteht. Die folgenden Analyseverfahren ermöglicht ein quantitatives Maß für die Schwere der akuten Status epilepticus, ein Phänomen, das vorstehend untersucht primär Verhaltensmaßnahmen. Wir sind diese Analysetechnik als Beispiel, denn es nutzt Stromberechnung in klassischen EEG-Bands und wurde ausgiebig in präklinischen Studien zur Überprüfung der Wirksamkeit der Antikonvulsiva Medikamente in unserem Labor 24-26 verwendet. Möglicherweise ist der wertvollste Aspekt der Herstellung von kontinuierlichen, ununterbrochenen drahtlosen Aufnahmen mit der kabellosen Telemetrie ist die Fähigkeit, anomale spontane Ereignisse, die mit geringer Häufigkeit auftreten, aufzuzeichnen. Diese Arten von Daten zeigen die breite Anwendbarkeit des drahtlosen Senders Systems. 554fig1.jpg &quot;/&gt; Abb. 1: Schematische Darstellung der Epoch Aufzeichnungssystem Die drahtlose Aufnahmesystem besteht aus zwei Komponenten: 1) eine drahtlose Schädel-Wandsender, die das Biosignal verstärkt, und 2) eine Aufnahmeplatte unter Standardnagetier Gehäuse platziert. Der Ausgang der Empfangsgrundlage ist ein analoges Signal, das aus dem demodulierten Biosignal zu einem Maximum von 4 V Spitze-Spitze verstärkt. Dieses Signal kann dann in einem Datenerfassungssystem für die Aufzeichnung zugeführt werden. <img alt="Figur 2" src="/files/ftp_upload/52554/52554fig2.jpg" /> Fig. 2: Der Sender und Empfänger dieser bestimmten drahtlosen Sender (A) wiegt 4 g und verdrängt &lt;1,4 cm 3 Volumen und mit einer Grundfläche von 7 x 12 mm ist leicht an dem Schädel von Ratten und Mäusen montiert. Der Sender 2 Kanäle von Biopotentialen für bis zu 6 Monaten zu verstärken, wonach die Batterie Drained. Größere Batterien für längere Aufnahmezeit verwendet werden. Die Tiere werden in Standard-Nagetierkäfighaltung auf dem Epoch Empfänger (B) platziert. Gezeigt im rechten ist ein frühes Beispiel von zwei getrennten Aufzeichnungs Rigs jeder Lage die Aufnahme von 16 Tiere gleichzeitig was die relativ geringen Platzbedarf (2 &#39;x 4&#39;, ca. 60 cm x 120 cm) von jedem der Aufzeichnungs Anlagen. <img alt="Figur 3" src="/files/ftp_upload/52554/52554fig3.jpg" /> Abb. 3: Implantation des Funksender bei Ratten und Mäusen Der Sender ermöglicht eine kontinuierliche EEG-Aufzeichnungen für bis zu 6 Monaten bei Mäusen im Alter von postnatalen Tag 12 (P12, oben). Das mittlere Foto ist eines P7 Rattenjunges mit der Miniatursender implantiert. Der Sender bleibt fest an dem Schädel angebracht ist, wie das Tier reift. Das Tier im Grunde ist P280 und wurde mit einem Schein-Sender im Alter von P7 implantiert. Das System ermöglicht simultazeitiger und kontinuierlicher EEG-Aufzeichnungen von mehreren alten Tieren P7 durch Entwöhnung, die Verringerung der Anzahl der Würfe für präklinische, langfristige, EEG-Monitoring Studien erforderlich. <img alt="Figur 4" src="/files/ftp_upload/52554/52554fig4.jpg" /> Abbildung 4: Zweikanalige Aufzeichnung Hypoxie-Ischämie induzierte Anfälle mit dem Telemetriesystem Dual-Channel-Aufnahmen von abnormen EEG mit dem Wireless-Telemetrie in einem P7 Rattenjunges nach Karotis-Ligatur (Ischämie) während 8% O 2 -Behandlung (Hypoxie).. (A) und (B), erweiterten Blick auf die Wellenformen. Anfallsaktivität ist in beiden Hemisphären (schwarz, blau) mit erheblichen EEG Unterdrückung in der Hemisphäre mit ischämischer Infarkt (blau) vorhanden vorhanden. <img alt="Figur 5" src="/files/ftp_upload/52554/52554fig5.jpg" /> Abbildung 5: Aufnahmestatus epilepticus bei erwachsenen Ratten. Oberflächen EEG (dh Dura) mit der drahtlosen Miniaturtelemetriesystem in Reaktion auf Diisopropylfluorphosphat (DFP) Behandlung in einer erwachsenen Ratte. Die schraffierten Perioden in der oberen Kurve (A und B) in Spuren unterhalb erweiterten Blick auf die Wellenformen. Mit dem drahtlosen Sender aufgezeichneten Daten können dann in dem Frequenzbereich ermöglichen statistische Vergleiche in einer Kohorte von Tieren untersucht werden. (C) Die Daten sind die mittlere und 95% -Konfidenzintervalle gamma Bandleistung (20-60 Hz) folgende DFP-induzierten Status epilepticus (N = 12) über 12 Stunden nach Verabreichung von DFP. <img alt="Figur 6" src="/files/ftp_upload/52554/52554fig6.jpg" /> Abb. 6: Aufnahme der Sicherstellungen und Änderungen im EEG in einem transgenen Mausmodell von Gefäßmissbildungen Schwellkörper Hier haben wir von einer transgenen Maus aufzeichnen (A) thwird derzeit bei Anfallsaktivität. Zunächst ist normal EEG-Muster vorhanden (1); unmittelbar vor dem Anfall gibt es eine Periode von vorge ictal Vertiefung (2), das durch einen Cluster von fünf Anfälle (3) folgt. Im Anschluss an die Anfälle, sind abnorme iktale Entladungen in dem Signal (4) vorhanden ist. Kontrolltier hat keine Anfälle und keine anormalen Merkmale EEG (B).

Watch this Scientific Journal Video about Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System at JoVE.com

Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

Here we demonstrate the use of a wireless enabling technology for electroencephalogram (EEG) in neonatal rodent models of human disease. With telemetry, there are no encumbering connections, thus allowing natural behaviors.

Langfristige kontinuierliche EEG-Monitoring in Kleintier Models of Human Disease Mit dem Epoch Wireless Transmitter-System

Many progressive neurologic diseases in humans, such as epilepsy, require pre-clinical animal models that slowly develop the disease in order to test ...

long-term-continuous-eeg-monitoring-small-rodent-models-human-disease

Universidad San Sebastian

Research

JoVE Journal

Neuroscience

25.5K Aufrufe.  Yale University School of Medicine. Here we demonstrate the use of a wireless enabling technology for electroencephalogram (EEG) in neonatal rodent models of human disease. With telemetry, there are no encumbering connections, thus allowing natural behaviors.

Serie: Long-term Continuous EEG Monitoring in Small Rodent Models of Human Disease Using the Epoch Wireless Transmitter System

Simultaneous Video-EEG-ECG Monitoring to Identify Neurocardiac Dysfunction in Mouse Models of Epilepsy

In epilepsy, seizures can evoke cardiac rhythm disturbances such as heart rate changes, conduction blocks, asystoles, and arrhythmias, which can potentially increase risk of sudden unexpected death in epilepsy (SUDEP). Electroencephalography (EEG) and electrocardiography (ECG) are widely used clinical diagnostic tools to monitor for abnormal brain and cardiac rhythms in patients. Here, a technique to simultaneously record video, EEG, and ECG in mice to measure behavior, brain, and cardiac activities, respectively, is described. The technique described herein utilizes a tethered (i.e., wired) recording configuration in which the implanted electrode on the head of the mouse is hard-wired to the recording equipment. Compared to wireless telemetry recording systems, the tethered arrangement possesses several technical advantages such as a greater possible number of channels for recording EEG or other biopotentials; lower electrode costs; and greater frequency bandwidth (i.e., sampling rate) of recordings. The basics of this technique can also be easily modified to accommodate recording other biosignals, such as electromyography (EMG) or plethysmography for assessment of muscle and respiratory activity, respectively. In addition to describing how to perform the EEG-ECG recordings, we also detail methods to quantify the resulting data for seizures, EEG spectral power, cardiac function, and heart rate variability, which we demonstrate in an example experiment using a mouse with epilepsy due to Kcna1 gene deletion. Video-EEG-ECG monitoring in mouse models of epilepsy or other neurological disease provides a powerful tool to identify dysfunction at the level of the brain, heart, or brain-heart interactions.

Here, we present a protocol to record brain and heart bio signals in mice using simultaneous video, electroencephalography (EEG), and electrocardiography (ECG). We also describe methods to analyze the resulting EEG-ECG recordings for seizures, EEG spectral power, cardiac function, and heart rate variability.

Gleichzeitige Video-EEG-EKG Monitoring Neurocardiac Dysfunktion in Mausmodellen der Epilepsie zu identifizieren

In epilepsy, seizures can evoke cardiac rhythm disturbances such as heart rate changes, conduction blocks, asystoles, and arrhythmias, which can ...

Forschung

Genetik

Simultaneous Electroencephalography, Real-time Measurement of Lactate Concentration and Optogenetic Manipulation of Neuronal Activity in the Rodent Cerebral Cortex

Although the brain represents less than 5% of the body by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body at rest1. The function of non rapid eye movement sleep (NREMS), the largest portion of sleep by time, is uncertain. However, one salient feature of NREMS is a significant reduction in the rate of cerebral glucose utilization relative to wakefulness2-4. This and other findings have led to the widely held belief that sleep serves a function related to cerebral metabolism. Yet, the mechanisms underlying the reduction in cerebral glucose metabolism during NREMS remain to be elucidated.
	One phenomenon associated with NREMS that might impact cerebral metabolic rate is the occurrence of slow waves, oscillations at frequencies less than 4 Hz, in the electroencephalogram5,6. These slow waves detected at the level of the skull or cerebral cortical surface reflect the oscillations of underlying neurons between a depolarized/up state and a hyperpolarized/down state7. During the down state, cells do not undergo action potentials for intervals of up to several hundred milliseconds. Restoration of ionic concentration gradients subsequent to action potentials represents a significant metabolic load on the cell8; absence of action potentials during down states associated with NREMS may contribute to reduced metabolism relative to wake.
	Two technical challenges had to be addressed in order for this hypothetical relationship to be tested. First, it was necessary to measure cerebral glycolytic metabolism with a temporal resolution reflective of the dynamics of the cerebral EEG (that is, over seconds rather than minutes). To do so, we measured the concentration of lactate, the product of aerobic glycolysis, and therefore a readout of the rate of glucose metabolism in the brains of mice. Lactate was measured using a lactate oxidase based real time sensor embedded in the frontal cortex. The sensing mechanism consists of a platinum-iridium electrode surrounded by a layer of lactate oxidase molecules. Metabolism of lactate by lactate oxidase produces hydrogen peroxide, which produces a current in the platinum-iridium electrode. So a ramping up of cerebral glycolysis provides an increase in the concentration of substrate for lactate oxidase, which then is reflected in increased current at the sensing electrode. It was additionally necessary to measure these variables while manipulating the excitability of the cerebral cortex, in order to isolate this variable from other facets of NREMS.
	We devised an experimental system for simultaneous measurement of neuronal activity via the elecetroencephalogram, measurement of glycolytic flux via a lactate biosensor, and manipulation of cerebral cortical neuronal activity via optogenetic activation of pyramidal neurons. We have utilized this system to document the relationship between sleep-related electroencephalographic waveforms and the moment-to-moment dynamics of lactate concentration in the cerebral cortex. The protocol may be useful for any individual interested in studying, in freely behaving rodents, the relationship between neuronal activity measured at the electroencephalographic level and cellular energetics within the brain.

A procedure is described for manipulating the activity of cerebral cortical pyramidal neurons optogenetically while the electroencephalogram, electromyogram, and cerebral lactate concentration are monitored. Experimental recordings are performed on cable-tethered mice while they undergo spontaneous sleep/wake cycles. Optogenetic equipment is assembled in our laboratory; recording equipment is commercially available.

Gleichzeitige Elektroenzephalographie, Real-time Messung der Laktat-Konzentration und optogenetische Manipulation der neuronalen Aktivität in der Nagetier Cerebral Cortex

Although the brain represents less than 5% of the body  by mass, it utilizes approximately one quarter of the glucose used by the body  at rest1. The ...

Neurowissenschaften

Use of a Wireless Video-EEG System to Monitor Epileptiform Discharges Following Lateral Fluid-Percussion Induced Traumatic Brain Injury

The lateral fluid percussion injury (FPI) model is well established and has been used to study TBI and post-traumatic epilepsy (PTE). However, considerable variability has been reported for the specific parameters used in different studies that have employed this model, making it difficult to harmonize and interpret the results between laboratories. For example, variability has been reported regarding the size and location of the craniectomy, how the Luer lock hub is placed relative to the craniectomy, the atmospheric pressure applied to the dura and the duration of the pressure pulse. Each of these parameters can impact injury severity, which directly correlates with the incidence of PTE. This has been manifested as a wide range of mortality rates, righting reflex times and incidence of convulsive seizures reported. Here we provide a detailed protocol for the method we have used to help facilitate harmonization between studies. We used FPI in combination with a wireless EEG telemetry system to continuously monitor for electrographic changes and detect seizure activity.&#160; FPI is induced by creating a 5 mm craniectomy over the left hemisphere, between the Bregma and Lambda and adjacent to the lateral ridge. A Luer lock hub is secured onto the skull over the craniectomy. This hub is connected to the FPI device, and a 20-millisecond pressure pulse is delivered directly to the intact dura through pressure tubing connected to the hub via a twist lock connector. Following recovery, rats are re-anesthetized to remove the hub. Five 0.5 mm, stainless steel EEG electrode screws are placed in contact with the dura through the skull and serve as four recording electrodes and one reference electrode. The electrode wires are collected into a pedestal connector which is secured into place with bone cement. Continuous video/EEG recordings are collected for up to 4 weeks post TBI.

Here we present a protocol to induce severe TBI with the lateral fluid percussion injury (FPI) model in adult, male Wistar rats. We also demonstrate the use of a wireless telemetry system to collect continuous video-EEG recordings and monitor for epileptiform discharges consistent with post-traumatic epileptogenesis.&#160;

Einsatz eines drahtlosen Video-EEG-Systems zur Überwachung von epileptiforlen Entladungen nach lateraler Fluid-Percussion-induzierter traumatischer Hirnverletzung

The lateral fluid percussion injury (FPI) model is well established and has been used to study TBI and post-traumatic epilepsy (PTE). However, ...

Verhalten

Simultaneous Monitoring of Wireless Electrophysiology and Memory Behavioral Test as a Tool to Study Hippocampal Neurogenesis

Brainwaves amplitude obtained from electroencephalography (EEG) has been well-recognized as a basis for cognitive capacity, memory, and learning on animals and humans. Adult neurogenesis mechanism is also linked to memory and learning improvement. Traditionally, researchers used to assess learning and memory parameters in rodent models by behavioral tasks. Therefore, the simultaneous monitoring of behavioral changes and EEG is particularly interesting in correlating data between brain activity and task-related behaviors. However, most of the equipment required to perform both studies are either complex, expensive, or uses a wired setup network that hinders the natural animals&#8217; movement. In this study, EEG was recorded with a wireless electrophysiology device along with the execution of a novel object recognition task (NORT). The animal&#8217;s behavior was monitored simultaneously by a video tracking system. Both recordings were analyzed offline by their timestamps which were synched to link EEG signals with the animal&#8217;s actions. Subjects consist of adult Wistar rats after medium-term environmental enrichment treatment. Six skull screw electrodes were fixed in pairs on both hemispheres over frontal, central, and parietal regions and were referenced to an electrode located posterior of the nasal bone. NORT protocol consists of exposing the animal to two identical objects for 10 min. After 2 h and 24 h, one of the objects was replaced with a novel one. Exploration time for each object was monitored by a behavioral tracking software (BTS) and EEG data recording. The analysis of the EEG synced with behavioral data consists of estimations of alpha and beta relative band power and comparisons between novel object recognition versus familiar object exploration, between three experimental stages. In this manuscript, we have discussed electrodes manufacturing process, epidural electrodes implantation surgery, environmental enrichment protocol, NORT protocol, BTS setup, EEG &#8211; BTS coupling for simultaneous monitoring in real-time, and EEG data analysis based on automatic events detection.

The protocol presented here provides information on the simultaneous electroencephalography (EEG) and behavioral assessment in real-time. We have discussed all steps involved in this protocol as an attractive solution for researchers in many fields of neuroscience, particularly in learning and memory areas.

Simultane Überwachung der drahtlosen Elektrophysiologie und des Gedächtnisverhaltenstests als Werkzeug zur Untersuchung der Neurogenese des Hippocampus

Brainwaves amplitude obtained from electroencephalography (EEG) has been well-recognized as a basis for cognitive capacity, memory, and learning on ...

Wireless Intramuscular EMG System for Locomotion Studies in Stroke Model Rats

A Real-Time Wearable Electromyography Measurement System for Small Animals

The intramuscular electromyography (EMG) measurement method for experimental animals has been implemented in various ways. Among these methods, tethering cables to external measurement devices can restrict the movement of experimental animals, while implantable devices may cause unwanted side effects due to the constant presence of a device with considerable size and weight. To address these issues, we propose a low-cost, wireless, detachable EMG measurement system and experimental procedure. This article focuses on the surgical installation of intramuscular wire electrodes with small connectors and the development of the wireless system. Notably, in this system, only the wire electrodes are inserted into the animal's body. Using this system, EMG measurements can be easily performed by attaching the circuit system to a connector installed on the animal's back, with real-time monitoring achievable on a laptop. The proposed method is explained in a detailed, step-by-step manner, followed by a demonstration involving the insertion of intramuscular electrodes into the hindlimbs of a rat. A treadmill experiment is conducted for a locomotion study, and the resulting electrophysiological signals are subsequently obtained and analyzed.

A protocol is presented for the installation and preparation of intramuscular electrodes, along with an animal-mountable, miniaturized measurement device for electromyography (EMG) analysis in locomotion studies. This system enables the wireless transmission of real-time EMG data for investigating locomotion recovery in stroke model rats.

The intramuscular electromyography (EMG) measurement method for experimental animals has been implemented in various ways. Among these methods, tethering ...

Ingenieurwesen

Non-restraining EEG Radiotelemetry: Epidural and Deep Intracerebral Stereotaxic EEG Electrode Placement

Implantable EEG radiotelemetry is of central relevance in the neurological characterization of transgenic mouse models of neuropsychiatric and neurodegenerative diseases as well as epilepsies. This powerful technique does not only provide valuable insights into the underlying pathophysiological mechanisms, i.e., the etiopathogenesis of CNS related diseases, it also facilitates the development of new translational, i.e., therapeutic approaches. Whereas competing techniques that make use of recorder systems used in jackets or tethered systems suffer from their unphysiological restraining to semi-restraining character, radiotelemetric EEG recordings overcome these disadvantages. Technically, implantable EEG radiotelemetry allows for precise and highly sensitive measurement of epidural and deep, intracerebral EEGs under various physiological and pathophysiological conditions. First, we present a detailed protocol of a straight forward, successful, quick and efficient technique for epidural (surface) EEG recordings resulting in high-quality electrocorticograms. Second, we demonstrate how to implant deep, intracerebral EEG electrodes, e.g., in the hippocampus (electrohippocampogram). For both approaches, a computerized 3D stereotaxic electrode implantation system is used. The radiofrequency transmitter itself is implanted into a subcutaneous pouch in both mice and rats. Special attention also has to be paid to pre-, peri- and postoperative treatment of the experimental animals. Preoperative preparation of mice and rats, suitable anesthesia as well as postoperative treatment and pain management are described in detail.

Non-restraining EEG radiotelemetry is a valuable methodological approach to record in vivo long-term electroencephalograms from freely moving rodents. This detailed protocol describes stereotaxic epidural and deep intracerebral electrode placement in different brain regions in order to obtain reliable recordings of CNS rhythmicity and CNS related behavioral stages.

Nicht beschränkende EEG Radiotelemetrie: epidurale und Deep Intrazerebrale Stereotaktische EEG Elektrodenplatzierung

Implantable EEG radiotelemetry is of central relevance in the neurological characterization of transgenic mouse models of neuropsychiatric and ...

High-density Electroencephalographic Acquisition in a Rodent Model Using Low-cost and Open-source Resources

Advanced electroencephalographic analysis techniques requiring high spatial resolution, including electrical source imaging and measures of network connectivity, are applicable to an expanding variety of questions in neuroscience. Performing these kinds of analyses in a rodent model requires higher electrode density than traditional screw electrodes can accomplish. While higher-density electroencephalographic montages for rodents exist, they are of limited availability to most researchers, are not robust enough for repeated experiments over an extended period of time, or are limited to use in anesthetized rodents.1-3 A proposed low-cost method for constructing a durable, high-count, transcranial electrode array, consisting of bilaterally implantable headpieces is investigated as a means to perform advanced electroencephalogram analyses in mice or rats.

Procedures for headpiece fabrication and surgical implantation necessary to produce high signal to noise, low-impedance electroencephalographic and electromyographic signals are presented. While the methodology is useful in both rats and mice, this manuscript focuses on the more challenging implementation for the smaller mouse skull. Freely moving mice are only tethered to cables via a common adapter during recording. One version of this electrode system that includes 26 electroencephalographic channels and 4 electromyographic channels is described below.

Instructions for the low-cost construction and surgical implantation of a chronic transcranial high-density electroencephalographic montage into mice are provided. Signal recording, extraction, and processing techniques are also described.

Mit hoher Dichte Elektroenzephalographische Acquisition in einem Nagetiermodell unter Verwendung von Low-Cost-und Open-Source-Ressourcen

Advanced electroencephalographic analysis techniques requiring high spatial resolution, including electrical source imaging and measures of network ...

The Pilocarpine Model of Temporal Lobe Epilepsy and EEG Monitoring Using Radiotelemetry System in Mice

Temporal lobe epilepsy (TLE) is a common neurological disorder in adulthood. For translational studies of chronic epilepsy, pilocarpine-induced status epilepticus (SE) is frequently selected to recapitulate spontaneous recurrent seizures (SRS). Here we present a protocol of SE induction by intraperitoneal (i.p.) injection of pilocarpine and monitoring of chronic recurring seizures in live animals using a wireless telemetry video and electroencephalogram (EEG) system. We demonstrated notable behavioral changes that need attention after pilocarpine injection and their correlation with hippocampal neuronal loss at 7 days and 6 weeks post-pilocarpine. We also describe the experimental procedures of electrode implantation for video and EEG recording, and analysis of the frequency and duration of chronic recurrent seizures. Finally, we discuss the possible reasons why the expected results are not achieved in each case. This provides a basic overview of modeling chronic epilepsy in mice and guidelines for troubleshooting. We believe this protocol can serve as a baseline for suitable models of chronic epilepsy and epileptogenesis.

This manuscript describes a method of inducing status epilepticus by systemic pilocarpine injection and of monitoring spontaneous recurrent seizures in live animals using a wireless telemetry video and electroencephalogram system. This protocol can be utilized for studying the pathophysiologic mechanisms of chronic epilepsy, epileptogenesis, and acute seizures.

Das Pilocarpin Modell der Temporallappen-Epilepsie und EEG Monitoring mittels Radiotelemetrie System bei Mäusen

Temporal lobe epilepsy (TLE) is a common neurological disorder in adulthood. For translational studies of chronic epilepsy, pilocarpine-induced status ...

Medizin

Analyzing Long-Term Electrocardiography Recordings to Detect Arrhythmias in Mice

Arrhythmias are common, affecting millions of patients worldwide. Current treatment strategies are associated with significant side effects and remain ineffective in many patients. To improve patient care, novel and innovative therapeutic concepts causally targeting arrhythmia mechanisms are needed. To study the complex pathophysiology of arrhythmias, suitable animal models are necessary, and mice have been proven to be ideal model species to evaluate the genetic impact on arrhythmias, to investigate fundamental molecular and cellular mechanisms, and to identify potential therapeutic targets.
Implantable telemetry devices are among the most powerful tools available to study electrophysiology in mice, allowing continuous ECG recording over a period of several months in freely moving, awake mice. However, due to the huge number of data points (&gt;1 million QRS complexes per day), analysis of telemetry data remains challenging. This article describes a step-by-step approach to analyze ECGs and to detect arrhythmias in long-term telemetry recordings using the software, Ponemah, with its analysis modules, ECG Pro and Data Insights, developed by Data Sciences International (DSI). To analyze basic ECG parameters, such as heart rate, P wave duration, PR interval, QRS interval, or QT duration, an automated attribute analysis was performed using Ponemah to identify P, Q, and T waves within individually adjusted windows around detected R waves. 
Results were then manually reviewed, allowing adjustment of individual annotations. The output from the attribute-based analysis and the pattern recognition analysis was then used by the Data Insights module to detect arrhythmias. This module allows an automatic screening for individually defined arrhythmias within the recording, followed by a manual review of suspected arrhythmia episodes. The article briefly discusses challenges in recording and detecting ECG signals, suggests strategies to improve data quality, and provides representative recordings of arrhythmias detected in mice using the approach described above.

Here we present a step-by-step protocol for a semiautomated approach to analyze murine long-term electrocardiography (ECG) data for basic ECG parameters and common arrhythmias. Data are obtained by implantable telemetry transmitters in living and awake mice and analyzed using Ponemah and its analysis modules.

Analyse von Langzeit-Elektrokardiographie-Aufnahmen zum Nachweis von Arrhythmien bei Mäusen

Arrhythmias are common, affecting millions of patients worldwide. Current treatment strategies are associated with significant side effects and remain ...

<meta charset="utf8"></head><body>Kontinuierliche EEG/EKG-Aufzeichnungen bei Kaninchen mit subdermaler Elektrodenplatzierung

Surgical Implant Procedure and Wiring Configuration for Continuous Long-Term EEG/ECG Monitoring in Rabbits

A multi-system approach that includes the continuous collection of electroencephalogram (EEG) and electrocardiogram (ECG) recordings facilitates a comprehensive assessment of electrical activity in the brain and heart, particularly leading up to and surrounding episodic events. Building on our previous protocol that facilitates the collection of intermittent EEG/ECG recordings from conscious restrained rabbits, we developed a protocol for the collection of continuous EEG/ECG recordings from unrestrained rabbits. This new method enables high-quality 24/7 recordings in the housing cage, which captures the normal range of physiological states and enables the rabbits to move, eat, drink, and sleep freely. It enables comprehensive assessments of the prevalence, incidence, and susceptibility to EEG/ECG abnormalities, seizures, arrhythmias, and sudden death. This procedure involves the surgical placement of subdermal electrodes and the design and manufacturing of a robust wiring system that is impervious to damage by the rabbits. The surgical procedure includes two incisions and the sub-dermal tunneling of nine electrodes and wires that exit through a custom-made port. The external connector attaches to a wire harness that includes an electrical swivel, which allows for&#160;free range of rabbit motion throughout its cage. Additionally, the wires are enclosed in a metal sheath suspended by a retractor cable from the ceiling of the rabbit&#39;s cage. The wires are then connected to an amplifier/digitizer for the acquisition of high-quality continuous EEG/ECG recordings.

<meta charset="utf8"></head><body>Chirurgisches Implantatverfahren und Verdrahtungskonfiguration für die kontinuierliche Langzeit-EEG/EKG-Überwachung bei Kaninchen

The study outlines a protocol for the design, manufacturing, and placement of a novel continuous EEG/ECG recording system in rabbits. This hard-wired system allows for continuous EEG/ECG recordings from nine distinct electrodes on the head and chest, which facilitates comprehensive assessments of electrical activity in the brain and heart.