Name: caprresi: chimera assembly by plasmid recovery and restriction enzyme site insertion
Uploaded: 2017-06-25T13:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 37 s
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这项工作得到了墨西哥国家科学委员会，墨西哥国家科学委员会（ACACYT），墨西哥国家科学院（154833）和墨西哥国立自治大学的支持。作者希望感谢VíctorGonzález，Rosa I.Santamaría，Patricia Bustos和SoledadJuárez的行政和技术咨询。

CAPRRESI协议注意: 图1表示总体CAPRRESI协议。该技术基于计算机设计和随后构建期望的嵌合体。 <ol><li> 选择克隆质粒pUC18或pUC19。 <ol><li>选择最适合技术需求的pUC载体。 注意:两个载体具有相同的序列，但多克隆位点的方向除外。这对于寡核苷酸的设计和PCR质粒破坏是重要的。 </li></ol></li><li> 在野生型基因和pUC18 / 19序列的计算机分析中。 <ol><li>获取野生型基因的DNA序列，并将其保存在FASTA格式文件（ 例如， gene.fas）中。 注意:pUC18 / 19载体的序列包含在pUC.fas文件中（ 图1 ，步骤1）。 </li><li>确定哪个限制enz通过运行REsearch.pl脚本，ymes不切割野生型基因和pUC18 / 19序列。或者，使用在线工具执行限制酶位点搜索（ 图1 ，步骤2）。 <ol><li>在终端中键入以下内容: perl REsearch.pl基因 perl REsearch.pl pUC.fas 注意:这些命令将创建以下输出文件:genes_lin.fas，genes_re.fas，pUC_lin.fas和pUC_re.fas。 </li><li>选择适当的限制酶，通过比较genes_re.fas和pUC.fas文件，将野生型基因克隆到选定的pUC18 / 19载体的多克隆位点。选择插入物相对于pUC18 / 19载体的氨苄青霉素抗性基因（ ampR ）的方向。 </li></ol></li><li>设计正向和反向寡核苷酸以扩增野生型基因（外部寡核苷酸）的编码区。在每个5&#39;端包含适当的限制酶位点的寡核苷酸;这将定义插入方向。 <ol><li>在正向寡核苷酸中包含功能性核糖体结合位点。 </li><li>在载体内插入相同方向的两个野生型基因。 </li></ol></li></ol></li><li> 选择嵌合体装配和质粒破坏的断裂区域。 <ol><li>通过运行translate.pl脚本获取野生型和ampR基因的氨基酸序列（ 图1 ，步骤3）。 <ol><li>在终端中键入以下内容: perl translate.pl基因 perl translate.pl ampR.fas 注意:此脚本将创建以下输出文件:genes_aa.fas和ampR_aa.fas。 </li></ol></li><li>将两个野生型氨基酸序列与适当的软件（ 如 MUSCLE）全局对齐9 。 </li><li>为嵌合体选择所需的断裂区域（3-6个氨基酸）基于序列比对。将它们保存为FASTA格式的文件（ 例如 ，区域 .fas）。 </li><li>找到编码所选氨基酸的两个野生型基因的DNA序列。 </li></ol></li><li> 含有限制酶位点的同义词DNA序列的计算机生成。 <ol><li>获得编码每个氨基酸序列拉伸的所有同义词DNA序列，选择为断裂区（ 图1 ，步骤4）;这些序列存储在regions.fas文件中。 <ol><li>在终端中键入以下内容: perl synonym.pl regions.fas 注意:此脚本将创建regions_syn.fas输出文件。 </li></ol></li><li>搜索同义词DNA序列上发现的限制酶位点。 <ol><li>在终端中键入以下内容: perl REsynonym.pl regions_syn.fas 注意:此脚本将创建regions_syn-re.fas输出文件。 </li></ol></li><li>选择一种在野生型基因的同义词序列之间共享的限制酶;该网站将用于通过限制酶消化装配嵌合体。验证选择的限制酶既不切割野生型基因也不切割pUC18 / 19载体序列。 <ol><li>比较在genes_re.fas，pUC_re.fas和regions_syn-re.fas文件中找到的限制酶。 </li></ol></li><li> 在两个野生型基因的相应位点处，将原始DNA替代为同义词DNA序列。将同义词DNA序列添加到野生型序列文件（genes.fas）中。 </li><li>获取基因中包含的基因的氨基酸序列。文件（ perl translate.pl genes.fas ）。 </li><li>对齐从野生型和同义词DNA序列翻译的氨基酸序列。验证两个序列是否相同。 </li><li>用pU上存在的ampR基因重复本节的所有步骤C18 / 19载体。 注意:目标是将ampR基因（文件ampR.fas）分解成两个互补的部分。选择用于破坏ampR基因的限制酶应与用于嵌合体装配的限制酶不同。 </li></ol></li><li> 将两种野生型基因独立克隆到选择的pUC18 / 19载体中（图1，步骤3）。 <ol><li>使用质粒DNA纯化试剂盒纯化所选择的pUC18 / 19质粒DNA。 <ol><li>例如，用pUC18质粒转化大肠杆菌 DH5α，并在37℃下在固体LB-0.3mg / mL氨苄青霉素（Amp）上生长转化体过夜。挑取转化体集落，接种新的LB-0.3mg / mL Amp板，并在37℃下生长过夜。 </li><li>取部分先前的培养物，并在液体LB-0.3mg / mL Amp中在37℃下生长6-8h。使用试剂盒提取质粒DNA。 </li></ol></li><li> PCR使用approp从整个基因组DNA扩增野生型基因对抗外部寡核苷酸。如果可能，请使用高保真DNA聚合酶。选择最大化产量的DNA聚合酶。根据制造商的指导和寡核苷酸的解链温度进行PCR。 <ol><li>根据DNA聚合酶，扩增子大小，模板和寡核苷酸，进行PCR循环。例如，为了扩增rpoD DNA，制备50μL的反应物:5μL的10×缓冲液， 2μL的 50mM MgSO 4，1μL的 10mM dNTP混合物，2μL的每个10μM寡核苷酸（表2），2 μL模板DNA（ 大肠杆菌 DH5α总DNA），35.8μL超纯水和0.2μL高保真DNA聚合酶。进行以下PCR循环:94℃1分钟进行初始变性，然后进行30个循环的扩增（94℃至30℃，变性30秒，寡核苷酸退火30秒，68℃退火2分钟）扩展）。 </li><li>溶解1.2克通过在微波炉中加热将它们在100mL双蒸水中进行琼脂糖。组装凝胶托盘并梳理，并将其放入水平凝胶浇铸机。用熔化的琼脂糖溶液填充凝胶托盘，使其凝固。取下梳子。 </li><li>将凝胶放入电泳室。用1x Tris-acetate-EDTA缓冲液填充室。将50μLPCR产物载入凝胶孔。电泳样品（ 例如 ，在110V下1小时）。 </li><li>电泳后，将缓慢振荡的含有100μL1mg / mL溴化乙锭溶液的100mL双蒸水中的凝胶染色10分钟。在缓慢摇动下，用双蒸水洗涤凝胶10分钟;使用水平摇床。 注意:溴化乙锭是一种有毒化合物;戴防护手套和棉花实验室外套。 </li><li>使用试剂盒从凝胶的相应条带纯化野生型基因DNA。通过将染色的凝胶置于UV室中可视化条带（推荐波长:300nm）。保持凝胶的暴露至少。使用DNA纯化试剂盒，并按照制造商的说明进行操作。 注意:紫外线辐射是危险的;戴防护罩，眼镜和棉花实验室外套。 </li></ol></li><li>根据制造商的说明书，用限制性内切酶纯化野生型基因和pUC18 / 19质粒DNA。尽可能使用快速消化酶。例如，在10μL超纯水，2μL10X缓冲液， 1μLKpn I限制酶和1μLXba I限制酶中消化6μLpUC18 DNA（300 ng /μL）。在37℃下保持反应30分钟。 <ol><li>根据制造商的指南禁用限制酶。例如，将80℃下的双消化反应Kpn I- Xba I灭活5分钟。 </li></ol></li><li>混合插入:体积比例的载体DNAo为3:1。按照制造商的说明进行连接反应。尽可能使用快速连接酶（在25℃下保持10分钟）。 注意:通常，使用试剂盒纯化后的DNA浓度足以进行消化和连接反应。例如，加入6μL的rpoD DNA（ KpnI - XbaI ，150ng /μL），3μL的pUC18 DNA（ KpnI - XbaI ，150ng /μL），10μL的2x缓冲液，1μL的超纯水和1μLT4 DNA连接酶。在25℃保持连接反应10分钟。 </li><li>用2-4μL的连接反应转化大肠杆菌 DH5α，如补充材料所述。将转化的细胞平板化成固体LB / Amp / X-gal / IPTG平板。将板在37℃下过夜。 </li><li>选择白色的转化体大肠杆菌菌落，并在新的LB / Amp平板上条纹。将板在37℃下过夜/ LI&gt; <li>进行菌落PCR以选择用于测序反应的候选物，如补充材料中所述。从候选物中提取质粒DNA。或者，使用用于克隆插入片段的相同限制酶的消化候选质粒DNA。 </li><li>具有测序服务提供商的序列候选结构10 。使用DNA汇编器11 （ 图1 ，步骤5） 以计算机方式组装序列。 </li></ol></li><li> 通过PCR进行质粒破坏，然后进行限制酶消化。 <ol><li>分别设计用于野生型和ampR基因的断裂区域的硅片正向和反向寡核苷酸。将其相应的同义词DNA序列（在步骤1.4中获得）替换为野生型片段。 注意:该同义词DNA序列含有限制酶位点。正向和反向寡核苷酸在t处重叠他限制酶位点。寡核苷酸应在21-27个核苷酸的范围内，以胞嘧啶或鸟嘌呤结束，并含有限制酶位点。正向寡核苷酸与模板DNA上的靶区域具有相同的序列。反向寡核苷酸是模板DNA上靶区域的相反互补序列。 </li><li>使用两个野生型基因构建作为PCR反应的DNA模板（ 例如， pUC18 rpoD和pUC18 sigA ）。获得每个结构的两个互补部分（pUC18 rpoDσ1 -σ2，pUC18 rpoDσ3 -σ4，pUC18 sigAσ1 -σ2和pUC18 sigAσ3 -σ4）（ 图1 ，步骤6）。 </li><li>将DNA样品加入琼脂糖凝胶1-1.2％[w / v]。通过电泳（ 例如 110V，1小时）将PCR产物与DNA模板分离。或者，用Dpn I消化PCR反应以破坏DNA模板。 注意: DpnI酶仅识别甲基化DNA序列（5&#39;-GATC-3&#39;）。 <ol><li>使用DNA纯化试剂盒纯化样品。按照制造商的指导。 </li></ol></li><li>根据制造商的指示，用合适的限制性酶将所有互补DNA片段双重消化。尽可能使用快速消化限制酶。例如，使用Afl II和Spe I使用制造商的方案双重消化pUC18rpoDσ1-σ2DNA片段。将消化反应在37℃下保持15分钟。 </li><li>根据制造商的指南禁用限制酶。例如，将Afl II- Spe I在80℃下灭活20分钟。 </li></ol></li><li> 使用DNA连接和细菌转化的质粒回收。 <ol><li>将合适的DNA片段以1:1的比例混合以组装所需的嵌合基因（ 图1）1，步骤7）。 注意:以这种方式，恢复ampR基因的完整性，产生功能性蛋白质。 <ol><li>例如，混合4μLpUC18 rpoDσ1 - σ2DNA （用Afl II- Spe I消化，150ng /μL）， 4μLpUC18 sigAσ3 -σ4DNA（ Afl II- Spe I，150ng /μL） 10μL2x缓冲液，2μL超纯水和1μLT4DNA连接酶;试剂盒纯化后的DNA浓度足以消化和随后的连接。将连接反应在25℃保持10分钟。 </li></ol></li><li>用3-5μL的嵌合体装配连接反应（补充材料）转化大肠杆菌 DH5α。将LB / Amp / X-gal / IPTG板中的转化体细胞在37℃下培养过夜一夜。 </li><li>选择白色的转化体大肠杆菌菌落，并在新的LB / Amp平板上条纹。在37分钟过夜C。 </li><li>进行菌落PCR以选择候选物进行测序反应，如补充材料中所述。通过进行电泳（在步骤2.3.2.1中描述）可视化1-1.2％（w / v）琼脂糖凝胶中的条带。 </li><li>从积极的候选人培养文化。使用质粒DNA纯化试剂盒从其中提取质粒DNA。 </li></ol></li></ol>序列候选嵌合结构<ol><li>通过遵循序列服务提供商的指导，确保质粒DNA的质量对于测序反应是足够好的。使用纯化工具提取DNA。例如，在序列服务提供商的互联网页面上，请特别注意样品推荐的DNA浓度。使用DNA定量仪器获取样品的浓度。 </li><li>具有测序服务提供商的序列候选嵌合构建体10 。 </li><li>组合se<html>使用电脑 DNA汇编器11进行排序读取。 </li><li>使用序列比对工具9,12对齐组装和使用硅片设计的嵌合序列。验证嵌合基因是否融合成功。 </li></ol>做准备注意:涉及活细胞的所有步骤都应在本生灯开启的干净的层流罩内进行。 <ol><li> 生产大肠杆菌 DH5α感受态细胞。 <ol><li>为了生产大肠杆菌感受态细胞，遵循已公布的方案13或参见补充材料 。或者，使用市售的感受态细胞。 </li></ol></li><li> 转化大肠杆菌 DH5α感受态细胞。 <ol><li>对于大肠杆菌培养物的化学转化，遵循已公布的方案class ="xref"&gt; 13或查看补充材料 。或者，使用电穿孔进行细菌转化。如果使用市售的感受态细胞，请遵循制造商的指导。 </li></ol></li><li> 从大肠杆菌 DH5α中纯化基因组和质粒DNA。 <ol><li>按照补充材料中所述 ，使用市售的试剂盒或以下公开的方案进行核酸提取13 。 </li></ol></li><li> 进行菌落PCR。 <ol><li>使用该技术鉴定候选转化体集落用于随后的测序反应。 注意:此方法不代表序列完整性的最终验证。 补充材料中有详细的说明。 </li></ol></li><li> 准备解决方案 <ol><li>看到<strong&gt;表1有关溶液制备的更多信息。 </li></ol></li><li> 下载CAPRRESI协议所需的脚本和序列文件。 <ol><li>下载含有所需物种完整基因组序列的基因库文件，使用基因组浏览器提取所选基因的DNA序列，并以fasta文件格式保存。下载CAPRRESI协议所需的Perl脚本。将脚本和序列文件存储在同一目录中。 </li></ol></li></ol>

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	<li>Horton, R. M., Hunt, H. D., Ho, S. N., Pullen, J. K., Pease, L. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Engineering+hybrid+genes+without+the+use+of+restriction+enzymes:+gene+splicing+by+overlap+extension.">Engineering hybrid genes without the use of restriction enzymes: gene splicing by overlap extension.</a> Gene. 77 (1), 61-68 (1989).</li><li>Vos, M. J., Kampinga, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=A+PCR+amplification+strategy+for+unrestricted+generation+of+chimeric+genes.">A PCR amplification strategy for unrestricted generation of chimeric genes.</a> Anal. Biochem. 380 (2), 338-340 (2008).</li><li>Hawkins, N. C., Garriga, G., Beh, C. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Creating+Precise+GFP+Fusions+in+Plasmids+Using+Yeast+Homologous+Recombination.">Creating Precise GFP Fusions in Plasmids Using Yeast Homologous Recombination.</a> Biotechniques. 34 (1), 1-5 (2003).</li><li>Sander, J. D., Joung, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=CRISPR-Cas+systems+for+editing,+regulating+and+targeting+genomes.">CRISPR-Cas systems for editing, regulating and targeting genomes.</a> Nat Biotechnol. 32 (4), 347-355 (2014).</li><li>Nagy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Cre+recombinase:+The+universal+reagent+for+genome+tailoring.">Cre recombinase: The universal reagent for genome tailoring.</a> Genesis. 26 (2), 99-109 (2000).</li><li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases.">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nature Methods. 6 (5), 343-345 (2009).</li><li>Norrander, J., Kempe, T., Messing, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Construction+of+improved+M13+vectors+using+oligodeoxynucleotide-directed+mutagenesis.">Construction of improved M13 vectors using oligodeoxynucleotide-directed mutagenesis.</a> Gene. 26 (1), 101-106 (1983).</li><li>Gruber, T. M., Gross, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+sigma+subunits+and+the+partitioning+of+bacterial+transcription+space.">Multiple sigma subunits and the partitioning of bacterial transcription space.</a> Annu Rev Microbiol. 57, 441-466 (2003).</li><li>Edgar, R. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=MUSCLE:+multiple+sequence+alignment+with+high+accuracy+and+high+throughput.">MUSCLE: multiple sequence alignment with high accuracy and high throughput.</a> Nucleic Acids Res. 32 (5), 1792-1797 (2004).</li><li>Thompson, J. D., Gibson, T. J., Higgins, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Multiple+sequence+alignment+using+ClustalW+and+ClustalX.">Multiple sequence alignment using ClustalW and ClustalX.</a> Curr Protoc Bioinformatics. , 1-22 (2002).</li><li>Sambrook, J., Russell, D. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Molecular+Cloning:+A+laboratory+manual.">Molecular Cloning: A laboratory manual.</a> CSHLP. , (2001).</li><li>Rutherford, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/query.fcgi?db=PubMed&cmd=Search&doptcmdl=Citation&defaultField=Title+Word&term=Artemis:+sequence+visualization+and+annotation.">Artemis: sequence visualization and annotation.</a> Bioinformatics. 16 (10), 944-945 (2000).</li></ol>

作者宣称他们没有竞争的经济利益。

CAPRRESI被设计为PRM 2的替代品。原来的PRM是一种强大的技术;它允许沿所选基因的任何部分融合DNA序列。对于PRM，野生型基因应该被克隆到相同的质粒中。之后，在质粒内发现野生型和抗生素抗性基因内设计寡核苷酸。通过使用平端，高保真DNA聚合酶和先前设计的寡核苷酸的PCR实现质粒破坏。互补PCR产物的连接组装嵌合基因并恢复抗生素抗性盒，导致功能质粒恢复。 PRM使得能够在同一质粒背景上构建嵌合基因文库。不幸的是，平端DNA序列的连接在技术上是艰巨的。通过重叠PCR片段1的嵌合体装配也需要DNA聚合酶产生平端产物和每次反应的DNA纯化。通过该技术组装的嵌合基因是线性DNA产物。将每个结构克隆到目标载体中可能会延迟进一步分析。 CAPRRESI受益于PRM的许多优点，并且通过在同义词DNA序列区域上使用限制酶位点简化了互补DNA片段的连接。由于这些原因，CAPRRESI不需要平端DNA聚合酶。同义词DNA序列的使用限制了嵌合体装配的融合位点，但是提高了连接效率。 CAPRRESI中引入的另一个重要修改是在pUC18 / 19载体中组装和处理嵌合体。这些载体具有如前所述的几个有利特征。通过在大肠杆菌宿主中繁殖构建载体可获得嵌合DNA。有时将嵌合基因克隆到最终质粒（ 例如表达载体）中需要。 CAPRRESI还依赖于电脑处理DNA和氨基酸序列。 Ad hoc脚本使得能够选择合适的限制性内切酶来克隆野生型基因，计算对应于断裂区域的所有同义词DNA序列（用于嵌合体装配），以及鉴定用于简化质粒回收的限制酶。鉴于这些条件，CAPRRESI是融合蛋白质编码基因的替代方法。 CAPRRESI方案的关键步骤是:1）断裂区域的选择和2）PCR产物的纯化。断裂区是计算同义词序列的片段，产生在野生型序列上未发现的限制酶位点。限制酶位点用于嵌合体装配消除了产生平端产物的DNA聚合酶的需要并且简化了连接反应。并非所有地区都将有可用的限制酶位点; FOr这个原因，建议一次移动一个氨基酸的断裂区域，直到发现最佳序列伸展。如果计算机设计不允许断裂区域的运动或序列片段缺乏具有适当限制酶位点的同义词DNA序列，则建议使用重叠的寡核苷酸融合靶基因并将同义词DNA序列引入氨苄青霉素抗性基因（在载体上发现）。以这种方式，基因可以在任何部分融合，并且质粒回收依赖于一个独特位点的连接（仅用一个限制酶消化）。 CAPPRESI的灵活性允许与其他技术结合使用。 进行PCR产物的纯化以消除模板DNA，降低连接互补DNA片段后亲本质粒污染的机会。实现这两个关键步骤增强了bac特异转化效率（正确组装结构的数量），允许使用化学感受态（CaCl 2 ）或电感受态大肠杆菌细胞进行CAPRRESI。第一种类型的感受态细胞代表大多数实验室用于细菌转化的大肠杆菌培养物的最便宜的来源。由于以前显示的所有功能，CAPRRESI表示组装嵌套的有用选项。 此外，CAPRRESI可以与重叠的PCR片段或​​质粒回收技术相结合。例如，代替每个互补DNA部分插入两个同义词序列，期望的断裂区域（在靶野生型基因上）可以使用重叠的寡核苷酸来融合中间序列。同义词序列的引入可以限于pUC18 / 19载体的ampR基因，导致仅使用一种限制酶来恢复plasmi诚信。这些未来的应用可以通过允许任何类型的DNA序列（ 即，不仅蛋白质编码基因）的融合而不损害连接效率来加强CAPRRESI。 为了测试CAPRRESI，通过交换两个野生型原始sigma因子基因rpoD （ 大肠杆菌 ）和sigA （ R.etli ）的区域来组装两个嵌合σ因子。所有已知的主要sigma因子包含四个域，σ1至σ48。嵌合01由RpoDσ1-σ2和SigAσ3-σ4组成，而嵌合体02具有SigAσ1-σ2和RpoDσ3-σ4。通过Sanger测序10证实了嵌合构建的完整性（ 图2 ）。

嵌合基因组装已被广泛用于分子生物学以阐明蛋白质功能和/或用于生物技术目的。存在融合基因的不同方法，如重叠PCR产物扩增1 ，质粒回收2 ，同源重组3 ，CRISPR-Cas9系统4 ，定位重组5和吉布森组装6 。这些都提供不同的技术优势;例如，重叠PCR设计的灵活性，质粒恢复期间的体内选择构建体 ，或CRISPR-Cas9和Gibson系统的高效率。另一方面，在执行这些方法时可能会出现一些困难;例如，前两种方法依赖于平头DNA片段，并且这些类型的产品的连接在技术上可能与stic结扎结扎。位点定向重组可以在原始样品上留下痕迹的额外的DNA序列（疤痕），如CrelxP系统5 。除了目标部位之外，CRISPR-Cas9有时可以修改其他基因组区域。 在这里，我们通过质粒回收和限制性内切酶位点插入（CAPRRESI）介绍嵌合体装配，这是一种融合蛋白质编码基因的方案，将基因质粒恢复方法（PRM）与限制酶位点插入同义词DNA序列，增强连接效率。为了确保氨基酸序列的完整性，将限制酶位点插入同义词DNA序列片段。 CAPPRESI的优点之一是可以使用普通的实验室试剂/工具（ 如酶，感受态细胞，溶液和热循环仪）进行，并且可以快速测定结果（使用适当的酶时）。依靠限制从同义词DNA序列出现的酶位点可以限制目标蛋白内部精确融合点的选择。在这种情况下，应使用重叠的寡核苷酸融合靶基因，并将限制酶位点插入到载体的抗性基因上。 CAPRRESI由七个简单步骤组成（ 图1 ）:1）选择克隆载体pUC18或pUC19 6 ; 2）待融合的野生型序列的计算机分析; 3）嵌合体装配和质粒破坏的断裂区域的选择; 4） 计算机生成含有限制酶位点的同义词DNA序列; 5）将野生型基因独立克隆到所选择的质粒中; 6）通过PCR进行质粒破坏，然后进行限制酶消化;和7）使用DNA连接和细菌转化的质粒回收。应该验证这种技术产生的嵌合基因测序。 pUC18 / 19载体提供克隆和嵌合体装配的技术优势，如小尺寸（ 即 2,686碱基对），高拷贝数，有利的测序反应特征和商业可用性7 。在这里，使用大肠杆菌宿主来组装和处理嵌合体，因为细菌培养物便宜且生长快。鉴于此，将需要随后将融合片段克隆到最终靶质粒中（ 例如，在哺乳动物细胞中的细菌或pCMV中的pRK415的表达载体）。 测试CAPRRESI融合两个主要的σ因子基因: 大肠杆菌D和根瘤菌（Rhizobium etlisigA） 。原始sigma因子是负责转录起始的RNA聚合酶亚基，它们由四个结构域组成（ 即 σ1，σ2，σ3和σ4） 8 。氨基酸序列长度由rpoD和sigA编码的蛋白质的h分别为613和685。 RpoD和SigA共享48％的身份（98％的覆盖率）。这些主要的σ因子在区域σ2和σ3之间分成两个互补的片段。根据该设计组装两个嵌合基因:嵌合体01（RpoDσ1-σ2+SigAσ3-σ4）和嵌合体02（SigAσ1-σ2+RpoDσ3-σ4）。通过测序验证DNA融合产物。

<table><tbody><tr><td>Platinum Taq DNA polymerase High Fidelity</td><td>Thermo Fisher</td><td>11304011</td><td>Produces a mix of blunt/3&amp;rsquo;-A overhang ended PCR products</td></tr><tr><td>High pure plasmid isolation kit</td><td>Roche</td><td>11754785001</td><td>Used for all plasmid purification reactions</td></tr><tr><td>High pure PCR product purification kit</td><td>Roche</td><td>11732676001</td><td>Used for all PCR purification reactions from agarose gels</td></tr><tr><td>AflII restriction enzyme</td><td>New England Biolabs</td><td>R0520L</td><td>Recognizes sequence 5&amp;rsquo;-CTTAAG-3&amp;rsquo; and cuts at 37 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>KpnI-HF restriction enzyme</td><td>New England Biolabs</td><td>R3142L</td><td>Recognizes sequence 5&amp;rsquo;-GGTACC-3&amp;rsquo; and cuts at 37 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>SpeI-HF restriction enzyme</td><td>New England Biolabs</td><td>R3133L</td><td>Recognizes sequence 5&amp;rsquo;-ACTAGT-3&amp;rsquo; and cuts at 37 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>XbaI restriction enzyme</td><td>New England Biolabs</td><td>R0145L</td><td>Recognizes sequence 5&amp;rsquo;-TCTAGA-3&amp;rsquo; and cuts at 37 &amp;deg;C</td></tr><tr><td>Ampicillin sodium salt</td><td>Sigma Aldrich</td><td>A0166-5G</td><td>Antibiotics</td></tr><tr><td>Nalidixic acid</td><td>Sigma Aldrich</td><td>N8878-5G</td><td>Antibiotics</td></tr><tr><td>Yeast Extract</td><td>Sigma Aldrich</td><td>Y1625-1KG</td><td>Bacterial cell culture</td></tr><tr><td>Casein peptone</td><td>Sigma Aldrich</td><td>70171-500G</td><td>Bacterial cell culture</td></tr><tr><td>NaCl</td><td>Sigma Aldrich</td><td>S9888-1KG</td><td>Sodium chloride</td></tr><tr><td>Agar</td><td>Sigma Aldrich</td><td>05040-1KG</td><td>Bacterial cell culture</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;XbaI&lt;/em&gt; restriction enzyme</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD0684</td><td>Fast digest &lt;em&gt;XbaI&lt;/em&gt; enzyme</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;KpnI&lt;/em&gt; restriction enzyme</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD0524</td><td>Fast digest &lt;em&gt;KpnI &lt;/em&gt;enzyme</td></tr><tr><td>Quick Ligation Kit</td><td>New England Biolabs</td><td>M2200S</td><td>Fast DNA ligation kit</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;AflII&lt;/em&gt; restriction enzyme</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD0834</td><td>Fast digest &lt;em&gt;AflII &lt;/em&gt;enzyme</td></tr><tr><td>&lt;em&gt;SpeI&lt;/em&gt; restriction enzyme</td><td>Thermo Fisher</td><td>FD1253</td><td>Fast digest &lt;em&gt;SpeI &lt;/em&gt;enzyme</td></tr></tbody></table>

caprresi: chimera assembly by plasmid recovery and restriction enzyme site insertion

在这里，我们通过质粒恢复和限制性酶切位点插入（CAPRRESI）提供嵌合体装配。 CAPRRESI受益于原始质粒回收方法的许多优点，并引入限制酶消化以缓解DNA连接反应（嵌合体装配所需）。对于该协议，用户将野生型基因克隆到同一质粒（pUC18或pUC19）中。 在嵌套嵌合体的氨基酸序列区域的计算机选择之后，用户获得编码它们的所有同义词DNA序列。 Ad hoc脚本使用户能够确定所有同义词DNA序列。在此步骤之后，另一个Perl脚本在所有同义词DNA序列上搜索限制酶位点。该计算机分析也使用在pUC18 / 19质粒上发现的氨苄青霉素抗性基因（ ampR ）进行。用户在同义词区域内设计寡核苷酸，通过PCR破坏野生型和ampR基因。在obt之后调整和纯化互补DNA片段，进行限制酶消化。通过连接适当的互补DNA片段来实现嵌合体装配。为CAPRRESI选择了pUC18 / 19载体，因为它们具有技术优势，如小尺寸（2,686碱基对），高拷贝数，有利的测序反应特征和商业可用性。用于嵌合体装配的限制酶的使用消除了产生平端产物的DNA聚合酶的需要。 CAPRRESI是一种快速且低成本的融合蛋白质编码基因的方法。

图1描绘了CAPRRESI。使用该方法，通过交换两个细菌原始sigma因子（ 即大肠杆菌 RpoD和R.etli SigA）的结构域来组装两个嵌合基因。使用GenBank基因组文件NC_000913和NC_007761的Artemis Genome浏览器14分别获得rpoD和sigA基因的DNA序列。从NCBI服务器的核苷酸数据库获得pUC18载体的DNA序列。通过运行REsearch.pl Perl脚本对DNA序列进行限制酶位点的计算机分析（参见步骤1.2.2）。这些结果用于寡核苷酸设计（步骤1.2.3）。外部寡核苷酸包括Xba I和Kpn I限制酶的识别位点，以将野生型基因克隆入pUC18多克隆位点。前向寡核苷酸还包括ribo一些结合位点（ 表2 ）。从在LB / Nal肉汤（37℃，220-250rpm）中生长的大肠杆菌 DH5α细胞和在PY / Nal / CaCl 2肉汤（30℃，220-250rpm）中生长的R. etli CFN42细胞提取基因组DNA ）。将这些样品用作野生型基因扩增的DNA模板（步骤1.5.2）。 使用Taq高保真DNA聚合酶扩增野生型基因，从DNA琼脂糖凝胶纯化（DNA纯化试剂盒），用KpnⅠ - XbaⅠ限制酶双酶切，并克隆到pUC18载体中。用5μL对应于野生型构建体pUC18rpoD和pUC18 sigA的连接反应（步骤1.5.5）转化化学感受态的大肠杆菌 DH5α细胞。在37℃下生长的固体LB / Amp / X-gal / IPTG平板上选择转化细胞。野生型结构由Sanger序列证实10 。使用MIRA 11组装Sanger序列读数（步骤1.5.8）。 通过运行translate.pl脚本获得野生型基因的氨基酸序列（步骤1.3.1）。在将野生型基因与Clustal 12进行比对后 ，分别在氨苄青霉素抗性基因（ ampR ）和野生型主要sigma因子上选择氨基酸区域TLV和NLR（步骤1.3.3）。这些氨基酸区域用于计算通过运行synonym.pl脚本编码它们的所有可能的DNA同义词序列（步骤1.4.1）。 REsynonym.pl脚本搜索在先前产生的同义词DNA序列上发现的限制酶位点（步骤1.4.2）。选择与野生型序列相比引入最少数量变化的同义词区域。对于主要的sigma因子基因，Rp的野生型序列oD（AACTTACGT）和SigA（AACCTTCGC）被替换为AA CTTAAG G。后者包括Afl II位点（粗体）。对于ampR基因，将野生型序列ACGCTGGTG交换为同义词AC ACTAGT G.插入到ampR基因中的同义词DNA序列含有Spe I位点（粗体）。进行野生型用于相应同义词序列的计算机取代以验证序列完整性和寡核苷酸设计（步骤1.2-1.4）。 通过PCR使用合适的寡核苷酸（ 表2 ）和野生型构建作为DNA模板（步骤1.5.2）引入同义词序列变化。扩增反应产生四个互补部分:pUC18 rpoDσ1 -σ2，pUC18 rpoDσ3 -σ4，pUC18 sigAσ1 -σ2和pUC18 sigAσ3 -σ4。补充部分dis不仅有西格玛因素，而且还有ampR基因。使用DNA纯化试剂盒纯化互补部分（步骤1.6.3）。 将这些互补DNA片段用Afl II和Spe I限制酶双重消化（步骤1.6.4）。根据CAPRRESI设计，将DNA片段pUC18 rpoDσ1 -σ2与pUC18 sigAσ3 -σ4连接以获得嵌合体01，并将pUC18 sigAσ1 -σ2与pUC18 rpoDσ3 -σ4连接以组装嵌合体02（步骤1.7.1-1.7 0.3）。用5μLpUC18 chim01和pUC18 chim02的连接反应（步骤1.7.4）转化化学感受态的大肠杆菌 DH5α细胞。在37℃下生长的固体LB / Amp / X-gal / IPTG平板上选择转化细胞（步骤1.7.5）。通过Sanger测序10验证嵌合构建（步骤2）。桑格序列使用MIRA 11进行组装，其结果文件列于表3 。 图2显示了在断裂区域的野生型和嵌合基因的组装序列的比对（使用MUSCLE进行） 9 。 <img alt="图1" src="/files/ftp_upload/55526/55526fig1.jpg" /> 图1:CAPRRESI概述。表示:基因（粗箭头），功能质粒（闭合圆圈）和寡核苷酸（薄的，黑色的箭头）。插入寡核苷酸的限制酶位点以颜色显示。缩写:Wt（野生型），FWD（正向寡核苷酸），REV（反向寡核苷酸）， ampR （氨苄青霉素抗性基因），RES（限制酶位点），RE（限制酶）。 <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55526/55526fig1large.jpg" target="_blank">请点击这里查看更大的经文</a>在这个数字上。 <img alt="图2" src="/files/ftp_upload/55526/55526fig2.jpg" /> 图2:组装的野生型和嵌合基因序列的比对。使用MUSCLE 9对齐组装的DNA序列。序列与MIRA 11组装。同义词序列以黑色显示。 Afl II识别站点出现下划线。 IUPAC核苷酸代码:R（A或G）和K（G或T）。构造: rpoD （红色）， sigA （蓝色），嵌合体01序列（ rpoDσ1 -σ2-sigAσ3-σ4）和嵌合体O 2序列（ sigAσ1 -σ2-rpoDσ3-σ4）。 <a href="https://ecsource-jove-com.bdigitaluss.remotexs.co/files/ftp_upload/55526/55526fig2large.jpg" target="_blank">请点击此处查看此图的较大版本。</a> <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td rowspan="2"> 解</td><td colspan="2"> 组件 </td><td rowspan="2"> 说明 </td></tr><tr><td> 数量 </td><td> 复合 </td></tr><tr><td rowspan="4"> Luria-Bertani（LB）肉汤</td><td> 5克</td><td>酵母抽提物</td><td rowspan="4">将所有组分溶解在水中。高压灭菌。储存于室温直至使用。对于固体LB肉汤，向食谱中加入15g细菌琼脂。 </td></tr><tr><td> 10克</td><td>酪蛋白胨</td></tr><tr><td> 10克</td><td>氯化钠</td></tr><tr><td>最多1 L </td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="4"> LB / Amp / X-gal / IPTG板</td><td> 100毫升</td><td>熔化固体LB肉汤</td><td rowspan="4">将所有组分加入到温带LB肉汤中。填充培养皿，等待固化。在本生灯的干净的层流罩上执行步骤。 </td></tr><tr><td> 100μL </td><td>氨苄青霉素（Amp）[100 mg / mL] </td></tr><tr><td> 100μL </td><td> X-gal [20mg / ml] </td></tr><tr><td> 50μL </td><td> 1 M IPTG解决方案</td></tr><tr><td rowspan="3">蛋白胨酵母（PY）肉汤</td><td> 3克</td><td>酵母抽提物</td><td rowspan="3">将所有组分溶解在水中。高压灭菌。储存于室温直至使用。对于固体PY肉汤，在食谱中加入15g细菌琼脂。对于R. etli培养物，在使用前加入700μL1M CaCl 2溶液。 </td></tr><tr><td> 5克</td><td>酪蛋白胨</td></tr><tr><td>最多1 L </td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="3"> PY / CaCl 2 / Nal板</td><td> 100毫升</td><td>熔化固体PY肉汤</td><td rowspan="3">加入所有组分温和的PY肉汤。填充培养皿，待其凝固。在本生灯的干净的层流罩上执行步骤。</td></tr><tr><td> 700μL </td><td> 1M CaCl 2溶液</td></tr><tr><td> 100μL </td><td>萘啶酸（Nal）[20 mg / mL] </td></tr><tr><td rowspan="2"> 1M氯化钙（CaCl 2 ）溶液</td><td> 11.1克</td><td> CaCl 2 </td><td rowspan="2">将CaCl 2溶于水中。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="3"> Tris-EDTA（TE）10:1 pH 8.0 </td><td> 1 mL </td><td> 1 M Tris溶液</td><td rowspan="3">混合所有组分。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td> 400μL </td><td> 0.25 M EDTA溶液</td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="3"> TE 50:20 pH 8.0 </td><td> 5 mL </td><td> 1 M Tris溶液</td><td rowspan="3">混合所有组分。高压灭菌。在室温下储存/ TD&gt; </tr><tr><td> 8 mL </td><td> 0.25 M EDTA溶液</td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> TE 10:10mM NaCl溶液</td><td> 58.4mg </td><td>氯化钠</td><td rowspan="2">溶解NaCl在TE 10:1。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td> TE 10:1 pH 8.0溶液</td></tr><tr><td rowspan="5">溶解液I </td><td> 80毫克</td><td>溶菌酶</td><td rowspan="5">将所有组分溶解并混合在水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。在室温下储存。 </td></tr><tr><td> 2 mL </td><td> 0.5 M葡萄糖溶液</td></tr><tr><td> 400μL </td><td> 0.5 M EDTA溶液</td></tr><tr><td> 500μL </td><td> 1 M Tris溶液</td></tr><tr><td>最多20 mL </td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="3">裂解液II </td&gt; <td> 1.2 mL </td><td> 5M氢氧化钠（NaOH）溶液</td><td rowspan="3">将所有组分溶解在水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。在室温下储存。 </td></tr><tr><td> 3 mL </td><td> 10％十二烷基硫酸钠（SDS）溶液</td></tr><tr><td>最多30 mL </td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="3">裂解液III </td><td> 29.4克</td><td>乙酸钾（CH 3 COOK） </td><td rowspan="3">将所有组分溶解并混合在水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。在室温下储存。 </td></tr><tr><td> 11.5 mL </td><td>绝对乙酸（CH 3 COOH） </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 1M氯化镁（MgCl 2 ）溶液</td><td> 9.5克</td><td> MgCl 2 </td><td rowspan="2">溶解MgCl 2亚特。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 3 M乙酸钠（CH 3 COONa）溶液</td><td> 24.6克</td><td> CH 3 COONa </td><td rowspan="2">将CH 3 COONa溶于水。高压灭菌。在室温下储存</td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 10％SDS溶液</td><td> 10克</td><td> SDS </td><td rowspan="2">用低速磁力搅拌棒将SDS溶解在水中。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 3 M CH 3 COOK溶液</td><td> 29.4克</td><td> CH 3 COOK </td><td rowspan="2">将CH 3 COOK溶于水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。在室温下储存。 </td></tR&gt; <tr><td>高达100毫升</td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2">蛋白酶K溶液</td><td> 5毫克</td><td>蛋白酶K </td><td rowspan="2">在TE 50:20溶液中溶解蛋白酶K.在37℃加热1小时。储存于-20ºC。 </td></tr><tr><td>最多1 mL </td><td> TE 50:20 pH 8.0溶液</td></tr><tr><td rowspan="2"> RNase溶液</td><td> 10毫克</td><td>核糖核酸酶</td><td rowspan="2">将RNase溶解在水中。在95℃加热10分钟。储存于-20ºC。 </td></tr><tr><td>最多1 mL </td><td>灭菌超纯水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 1M异丙基-β-D-硫代半乳糖苷（IPTG）溶液</td><td> 238.3mg </td><td> IPTG </td><td rowspan="2">将IPTG溶于水。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。储存于-20ºC。 </td></tr><tr><td>最多1 mL </td><td>灭菌超纯水</td></tr><tr><td rowspan5-溴-4-氯-3-吲哚基-β-D-吡喃半乳糖苷（X-gal）溶液</td><td> 20毫克</td><td> X-GAL </td><td rowspan="2">将X-gal溶于水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。储存于-20ºC。 </td></tr><tr><td>最多1 mL </td><td>灭菌超纯水</td></tr><tr><td rowspan="3">苯酚:氯仿:异戊醇24:24:1溶液</td><td> 24 mL </td><td>苯酚</td><td rowspan="3">混合所有组分。存放在4℃的琥珀盖帽中。警告！危险材料。戴防护眼镜，手套和棉花实验服。使用抽油烟机。处理时请勿打开本生灯或其他任何火源。替代方案:使用商业苯酚:氯仿:异戊醇25:24:1溶液</td></tr><tr><td> 24 mL </td><td>氯仿</td></tr><tr><td> 1 mL </td><td>异戊醇</td></tr><tr><td rowspan="2"> 0.5 M葡萄糖溶液</td><td> 9克</td><td> Glucose </td><td rowspan="2">将葡萄糖溶于水。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>灭菌超纯水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 0.5M乙二胺四乙酸（EDTA）pH 8.0溶液</td><td> 14.6克</td><td> EDTA </td><td rowspan="2">将EDTA溶于水中。用5 M NaOH溶液调节pH值。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 0.25 M EDTA pH 8.0溶液</td><td> 7.3克</td><td> EDTA </td><td rowspan="2">将EDTA溶于水中。用5 M NaOH溶液调节pH值。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 1M Tris pH8.0溶液</td><td> 12.1克</td><td>三</td><td rowspan="2">将Tris溶解于水中调整pH值无水盐酸（HCl）。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 5M氢氧化钠（NaOH）溶液</td><td> 19.9克</td><td>氢氧化钠</td><td rowspan="2">将NaOH溶于水中。在室温下储存。警告！苛性化合物。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2"> 0.1 M NaOH溶液</td><td> 399毫克</td><td>氢氧化钠</td><td rowspan="2">将NaOH溶于水中。在室温下储存。 </td></tr><tr><td>高达100毫升</td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="2">萘啶酸（Nal）储备溶液</td><td> 60毫克</td><td>萘啶酸</td><td rowspan="2">将Nal溶解在水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。储存于4℃。 </td></tr><tr><td>最多3 mL </td><td> 0.1 MNaOH溶液</td></tr><tr><td rowspan="2">氨苄青霉素（Amp）储备溶液</td><td> 300毫克</td><td>氨苄青霉素</td><td rowspan="2">将水溶解在水中。使用0.22μm过滤器进行过滤消毒。储存于4℃。 </td></tr><tr><td>最多3 mL </td><td>灭菌双蒸水</td></tr><tr><td rowspan="4"> 10倍的Tris-乙酸酯-EDTA缓冲液</td><td> 48.4克</td><td>三</td><td rowspan="4">将所有组分溶解在水中。高压灭菌。在室温下储存。 </td></tr><tr><td> 20毫升</td><td> 0.5 M EDTA溶液</td></tr><tr><td> 11.44毫升</td><td>冰醋酸</td></tr><tr><td>最多1 L </td><td>双蒸水</td></tr></tbody></table> 表1:溶液制备。解决方案准备说明<table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> 没有。 </str翁&gt; </td><td> 码 </td><td colspan="4"> 序列 </td><td> 长度（nt） </td><td> 特征 </td></tr><tr><td> 1 </td><td> RpoD-FWD </td><td colspan="4"> GC TCTAGA GA AGGAGA TATCATATGGAGCAAAACCCGCAGTCA </td><td> 43 </td><td> XbaI网站野生型基因扩增和载体克隆</td></tr><tr><td> 2 </td><td> ROD-REV </td><td colspan="4"> GG GGTACC TTAATCGTCCAGGAAGCTACG </td><td> 29 </td><td> KpnI网站野生型基因扩增和载体克隆</td></tr><tr><td> 3 </td><td>的SigA-FWD </td><td colspan="4"> GC TCTAGA GA AGGAGA TATCATATGGCAACCAAGGTCAAAGAG </td><td> 43 </td><td> XbaI网站野生型基因扩增和载体克隆</td></tr><tr><td> 4 </td><td>的SigA-REV </td><td colspan="4"> GG GGTACC TTAGCTGTCCAGAAAGCTTCT &lt;/ TD&gt; <td> 29 </td><td> KpnI网站野生型基因扩增和载体克隆</td></tr><tr><td> 3 </td><td>是AmpR-FWD </td><td colspan="4"> AC ACTAGT GAAAGTAAAAGAT </td><td> 21 </td><td> SpeI网站插入，同义词突变。 ampR基因的破坏</td></tr><tr><td> 4 </td><td>是AmpR-REV </td><td colspan="4"> TC ACTAGT GTTTCTGGGTGAG </td><td> 21 </td><td> SpeI网站插入，同义词突变。 ampR基因的破坏</td></tr><tr><td>五</td><td> σ2RpoD-FWD </td><td colspan="4"> AA CTTAAG GCTGGTTATTTCTATCGCT </td><td> 27 </td><td> AflII网站插入，同义词突变。 chim01-02的建设</td></tr><tr><td> 6 </td><td> σ2RpoD-REV </td><td colspan="4"> GC CTTAAG TTCGCTTCAACCATCTCTT </td><td> 27 </td><td> AflII网站插入，同义词突变。 chim01-02的建设</td></tr><tr><td> 7 </td><td> σ2SigA-FWD </td><td colspan="4"> AA CTTAAG GCTCGTCATTTCAATCGCC </td><td> 27 </td><td> AflII网站插入，同义词突变。 chim01-02的建设</td></tr><tr><td> 8 </td><td> σ2SigA-REV </td><td colspan="4"> GC CTTAAG TTCGCTTCGACCATTTCCT </td><td> 27 </td><td> AflII网站插入，同义词突变。 chim01-02的建设</td></tr></tbody></table> 表2:寡核苷酸序列。限制酶位点出现下划线。核糖体结合位点:粗体。 <table fo:keep-together.within-page="1"><tbody><tr><td> 施工 </td><td> 序列文件 </td><td> 质量档案 </td></tr><tr><td rowspan="2"> chimera01 </td><td> chim01_out.unpadded.fasta </td><td> chim01_out.unpadded.fasta.qual </td></tr><tr><td></td><td> chim01_A3 / B3 / E2 / F2 / G2 /H2.pdf </td></tr><tr><td rowspan="2"> chimera02 </td><td> chim02_out.unpadded.fasta </td><td> chim02_out.unpadded.fasta.qual </td></tr><tr><td></td><td> chim02_C3 / D3 / E3 / F3 / G3 / H3.pdf </td></tr><tr><td> rpoD </td><td> rpod_out.unpadded.fasta </td><td> rpod_out.unpadded.fasta.qual </td></tr><tr><td> SIGA </td><td> siga_out.unpadded.fasta </td><td> siga_out.unpadded.fasta.qual </td></tr></tbody></table> 表3:使用MIRA汇编器和DNA测序仪获得的序列文件。使用映射选项，使用MIRA 11软件组装来自嵌合和野生型结构的Sanger测序读数。嵌合体测序的色谱图显示为PDF文件。

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CAPRRESI：通过质粒恢复和限制性酶位点插入进行嵌合体组装 |生物学 |视频

CAPRRESI: Chimera Assembly by Plasmid Recovery and Restriction Enzyme Site Insertion

在这里，我们通过质粒恢复和限制性酶切位点插入（CAPRRESI）提供嵌合体装配，这是基于将限制酶位点插入同义词DNA序列和功能质粒恢复的方案。该协议是一种快速和低成本的融合蛋白质编码基因的方法。

CAPRRESI:通过质粒恢复和限制酶位点插入的嵌合体装配

Here, we present chimera assembly by plasmid recovery and restriction enzyme site insertion (CAPRRESI). CAPRRESI benefits from many strengths of the ...

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11.5K 次观看.  Universidad Nacional Autónoma de México. 在这里，我们通过质粒恢复和限制性酶切位点插入（CAPRRESI）提供嵌合体装配，这是基于将限制酶位点插入同义词DNA序列和功能质粒恢复的方案。该协议是一种快速和低成本的融合蛋白质编码基因的方法。 

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Identification of Functional Protein Regions Through Chimeric Protein Construction

The goal of this protocol encompasses the design of chimeric proteins in which distinct regions of a protein are replaced by their corresponding sequences in a structurally similar protein, in order to determine the functional importance of these regions. Such chimeras are generated by means of a nested PCR protocol using overlapping DNA fragments and adequately designed primers, followed by their expression within a mammalian system to ensure native secondary structure and post-translational modifications. 
The functional role of a distinct region is then indicated by a loss of activity of the chimera in an appropriate readout assay. In consequence, regions harboring a set of critical amino acids are identified, which can be further screened by complementary techniques (e.g. site-directed mutagenesis) to increase molecular resolution. Although limited to cases in which a structurally related protein with differing functions can be found, chimeric proteins have been successfully employed to identify critical binding regions in proteins such as cytokines and cytokine receptors. This method is particularly suitable in cases in which the protein's functional regions are not well defined, and constitutes a valuable first step in directed evolution approaches to narrow down the regions of interest and reduce the screening effort involved.

Structurally related proteins frequently exert distinct biological functions. The exchange of equivalent regions of these proteins in order to create chimeric proteins constitutes an innovative approach to identify critical protein regions that are responsible for their functional divergence.

用奇米蛋白构建功能蛋白区的鉴定

The goal of this protocol encompasses the design of chimeric proteins in which distinct regions of a protein are replaced by their corresponding sequences ...

科研

生物化学

Homemade Site Directed Mutagenesis of Whole Plasmids

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned target gene can be altered by substitution, deletion or insertion of a few bases directly into a plasmid. It works by simply amplifying the whole plasmid, in a non PCR-based thermocycling reaction. During the reaction mutagenic primers, carrying the desired mutation, are integrated into the newly synthesized plasmid. In this video tutorial we demonstrate an easy and cost effective way to introduce base substitutions into a plasmid. The protocol works with standard reagents and is independent from commercial kits, which often are very expensive. Applying this protocol can reduce the total cost of a reaction to an eighth of what it costs using some of the commercial kits. In this video we also comment on critical steps during the process and give detailed instructions on how to design the mutagenic primers.

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. Here we demonstrate an easy and cost effective way to introduce base substitutions into a plasmid using standard reagents.

自制的网站定向诱变整个质粒

Site directed mutagenesis of whole plasmids is a simple way to create slightly different variations of an original plasmid. With this method the cloned ...

生物学

<meta charset="utf8"></head><body>实施 Gibson Assembly 以增强分子生物学教育和技能

Improving Student Outcomes with an Adaptable Molecular Cloning Course-Based Undergraduate Research Experience

The continuous advancement of molecular biology techniques requires that molecular biology curricula are&#160;regularly refined to effectively prepare students to enter the workforce with modern competencies. In particular, the emergence of Gibson Assembly, a highly customizable and adaptive molecular cloning technique, has advanced the landscape of molecular cloning in numerous research environments. Thus, we created a Gibson Assembly cloning module for deployment in a molecular biology laboratory course at California Polytechnic State University, San Luis Obispo and evaluated student learning outcomes from the module. Over three iterations of the course, students participated in an experiment-based independent project that involved cloning three unique plasmid libraries to support research projects in natural products biosynthesis. Students were given pre- and post-questionnaires to evaluate their understanding of molecular cloning and their confidence in molecular biology terms and techniques. Students&#8217; responses showed a significant increase in both learning molecular cloning concepts and in self-reported confidence with molecular cloning terms and techniques. This module framework can be generalized to teach Gibson Assembly for various applications, providing instructors with a toolkit for teaching an adaptable and emergent cloning technology while advancing their research projects.

<meta charset="utf8"></head><body>通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

An adaptable Gibson Assembly molecular cloning module was employed in a course-based undergraduate research experience (CURE) format for molecular biology laboratory course students. Assessment of student learning outcomes showed improved understanding and confidence in molecular cloning after completion of the CURE, and novel plasmids were cloned for natural product biosynthesis research.&#160;&#160;

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

The continuous advancement of molecular biology techniques requires that molecular biology curricula are&#160;regularly refined to effectively prepare ...

Rapid Assembly of Multi-Gene Constructs using Modular Golden Gate Cloning

The Golden Gate cloning method enables the rapid assembly of multiple genes in any user-defined arrangement. It utilizes type IIS restriction enzymes that cut outside of their recognition sites and create a short overhang. This modular cloning (MoClo) system uses a hierarchical workflow in which different DNA parts, such as promoters, coding sequences (CDS), and terminators, are first cloned into an entry vector. Multiple entry vectors then assemble into transcription units. Several transcription units then connect into a multi-gene plasmid. The Golden Gate cloning strategy is of tremendous advantage because it allows scar-less, directional, and modular assembly in a one-pot reaction. The hierarchical workflow typically enables the facile cloning of a large variety of multi-gene constructs with no need for sequencing beyond entry vectors. The use of fluorescent protein dropouts enables easy visual screening. This work provides a detailed, step-by-step protocol for assembling multi-gene plasmids using the yeast modular cloning (MoClo) kit. We show optimal and suboptimal results of multi-gene plasmid assembly and provide a guide for screening for colonies. This cloning strategy is highly applicable for yeast metabolic engineering and other situations in which multi-gene plasmid cloning is required.

The goal of this protocol is to provide a detailed, step-by-step guide for assembling multi-gene constructs using the modular cloning system based on Golden Gate cloning. It also gives recommendations on critical steps to ensure optimal assembly based on our experiences.

使用模块化金门克隆的多基因结构快速组装

The Golden Gate cloning method enables the rapid assembly of multiple genes in any user-defined arrangement. It utilizes type IIS restriction enzymes that ...

生物工程

Markerless Gene Deletion by Floxed Cassette Allelic Exchange Mutagenesis in Chlamydia trachomatis

Chlamydia trachomatis is an obligate intracellular pathogen that has been historically difficult to genetically manipulate. Definitive progress in elucidating the mechanisms that C. trachomatis use to create and maintain a privileged intracellular niche has been limited due to a lack of genetic tools. Fortunately, there have recently been several new advances in genetic manipulation techniques. Among these is the development of fluorescence-reported allelic exchange mutagenesis (FRAEM). This method allows targeted gene deletion coupled with insertion of a selection cassette encoding antibiotic resistance and green fluorescent protein (GFP). Reliance on this strategy can be complicated when targeting genes within polycistronic operons due to the potential of polar effects on downstream genes. Floxed cassette allelic exchange mutagenesis (FLAEM), the protocol for which is described here, was developed to alleviate cassette-induced polar effects. FLAEM utilizes Cre-loxP genome editing to remove the selection cassette after targeted deletion by allelic exchange. The resulting strains contain markerless gene deletions of one or more coding sequences. This technique facilitates direct assessment of gene function and expands the repertoire of tools for genetic manipulation in C. trachomatis.

Markerless Gene Deletion by Floxed Cassette Allelic Exchange Mutagenesis in Chlamydia trachomatis

Described here is a method for targeted, markerless gene deletion in Chlamydia trachomatis using floxed cassette allelic exchange mutagenesis, FLAEM.

无标记基因删除由絮凝血盒等位基因交换突变在衣原体沙眼

Chlamydia trachomatis is an obligate intracellular pathogen that has been historically difficult to genetically manipulate. Definitive progress in ...

免疫与感染

Construction of Adenoviral Vectors using DNA Assembly Technology

Adenoviral vectors have been used as a gene transfer tool in gene therapy for more than three decades. Here, we introduce a protocol to construct an adenoviral vector by manipulating the genomic DNA of wild-type HAdV-7 by using a DNA assembly method. First, an infectious clone of HAdV-7, pKan-Ad7, was generated by fusing the viral genomic DNA with a PCR product from plasmid backbone, comprising of the kanamycin-resistant gene and the origin of replication (Kan-Ori), through DNA assembly. This was done by designing a pair of PCR primers, that contained ~25 nucleotides of the terminal sequence of HAdV-7 inverted terminal repeat (ITR) at the 5' end, a non-cutter restriction enzyme site for HAdV-7 genome in the middle, and a template-specific sequence for PCR priming at the 3' end. Second, an intermediate plasmid-based strategy was employed to replace the E3 region with transgene-expressing elements in the infectious clone to generate an adenoviral vector. Briefly, pKan-Ad7 was digested with dual-cutter restriction enzyme Hpa I, and the fragment containing the E3 region was ligated to another PCR product of plasmid backbone by Gibson assembly to construct an intermediate plasmid pKan-Ad7HpaI. For convenience, restriction-assembly was used to designate the plasmid cloning method of combined restriction digestion and assembly. Using restriction-assembly, the E3 genes in pKan-Ad7HpaI was replaced with a green fluorescent protein (GFP) expression cassette, and the modified E3 region was released from the intermediate plasmid and restored to the infectious clone to generate an adenoviral plasmid pKAd7-E3GFP. Finally, pKAd7-E3GFP was linearized by Pme I digestion and used to transfect HEK293 packaging cells to rescue recombinant HAdV-7 virus. To conclude, a DNA assembly-based strategy was introduced here for constructing adenoviral vectors in general laboratories of molecular biology without the need of specialized materials and instruments.

In this study, an infectious clone of human adenovirus type 7 (HAdV-7) was constructed, and an E3-deleted HAdV-7 vector system was established by modifying the infectious clone. This strategy used here can be generalized to make gene transfer vectors from other wild-type adenoviruses.

Adenoviral vectors have been used as a gene transfer tool in gene therapy for more than three decades. Here, we introduce a protocol to construct an ...

Use of In Vivo Assembly for High-efficiency Plasmid Construction

In vivo assembly (IVA) is a molecular cloning method that uses intrinsic enzymes present in bacteria that promote intermolecular recombination of DNA fragments to assemble plasmids. This method functions by transforming DNA fragments with regions of 15-50 bp of homology into commonly used laboratory Escherichia coli strains and the bacteria use the RecA-independent repair pathway to assemble the DNA fragments into a plasmid. This method is more rapid and cost-effective than many molecular cloning methods that rely on in vitro assembly of plasmids prior to transformation into E. coli strains. This is because in vitro methods require the purchase of specialized enzymes and the performance of sequential enzymatic reactions that require incubations. However, unlike in vitro methods, IVA has not been experimentally shown to assemble linear plasmids. Here we share the IVA protocol used by our laboratory to rapidly assemble plasmids and subclone DNA fragments between plasmids with different origins of replication and antibiotic resistance markers.

In vivo assembly is a ligation-independent cloning method that relies on intrinsic DNA repair enzymes in bacteria to assemble DNA fragments by homologous recombination. This protocol is both time and cost-effective, as few reagents are required, and cloning efficiency can be as high as 99 %.

体内 组装用于 高效质粒构建

In vivo assembly (IVA) is a molecular cloning method that uses intrinsic enzymes present in bacteria that promote intermolecular recombination of DNA ...

Subcloning Plus Insertion (SPI) - A Novel Recombineering Method for the Rapid Construction of Gene Targeting Vectors

Gene targeting refers to the precise modification of a genetic locus using homologous recombination. The generation of novel cell lines and transgenic mouse models using this method necessitates the construction of a &#8216;targeting&#8217; vector, which contains homologous DNA sequences to the target gene, and has for many years been a limiting step in the process. Vector construction can be performed in vivo in Escherichia coli cells using homologous recombination mediated by phage recombinases using a technique termed recombineering. Recombineering is the preferred technique to subclone the long homology sequences (>4kb) and various targeting elements including selection markers that are required to mediate efficient allelic exchange between a targeting vector and its cognate genomic locus. Typical recombineering protocols follow an iterative scheme of step-wise integration of the targeting elements and require intermediate purification and transformation steps. Here, we present a novel recombineering methodology of vector assembly using a multiplex approach. Plasmid gap repair is performed by the simultaneous capture of genomic sequence from mouse Bacterial Artificial Chromosome libraries and the insertion of dual bacterial and mammalian selection markers. This subcloning plus insertion method is highly efficient and yields a majority of correct recombinants. We present data for the construction of different types of conditional gene knockout, or knock-in, vectors and BAC reporter vectors that have been constructed using this method. SPI vector construction greatly extends the repertoire of the recombineering toolbox and provides a simple, rapid and cost-effective method of constructing these highly complex vectors.

Subcloning Plus Insertion SPI - A Novel Recombineering Method for the Rapid Construction of Gene Targeting Vectors

Gene targeting methodologies can be used to generate transgenic mice with knockout, knock-in and tagged alleles. Here, we describe an improved method of recombineering in E. coli, that we term &#8216;subcloning plus insertion&#8217;, which can be used to generate custom gene targeting vectors rapidly.

亚克隆加插入（SPI） - 一种新型重组工程方法基因打靶载体的快速构建

Gene targeting refers to the precise modification of a genetic locus using homologous recombination. The generation of novel cell lines and transgenic ...

CAPRRESI:通过质粒恢复和限制酶位点插入的嵌合体装配

摘要

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此视频中的章节

用奇米蛋白构建功能蛋白区的鉴定

自制的网站定向诱变整个质粒

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

使用模块化金门克隆的多基因结构快速组装

无标记基因删除由絮凝血盒等位基因交换突变在衣原体沙眼

Construction of Adenoviral Vectors using DNA Assembly Technology

体内组装用于高效质粒构建

亚克隆加插入（SPI） - 一种新型重组工程方法基因打靶载体的快速构建

CAPRRESI:通过质粒恢复和限制酶位点插入的嵌合体装配

摘要

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自制的网站定向诱变整个质粒

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

通过适应性强的分子克隆课程本科生研究体验提高学生成绩

使用模块化金门克隆的多基因结构快速组装

无标记基因删除由絮凝血盒等位基因交换突变在衣原体沙眼

Construction of Adenoviral Vectors using DNA Assembly Technology

体内 组装用于 高效质粒构建

亚克隆加插入（SPI） - 一种新型重组工程方法基因打靶载体的快速构建

体内组装用于高效质粒构建